金黄色葡萄球菌检测用引物、检测方法、检测试剂盒

摘要

本发明涉及一种基于环介导等温扩增(loop-mediated isothermalamplification，LAMP)技术的食源性病原体快速检测技术。一种金黄色葡萄球菌检测用引物，能扩增靶基因的特异碱基序列，所述靶基因为金黄色葡萄球菌的nuc---GenBank登陆号：V01281，所述引物与所述靶基因的548位---795位的核酸序列的一部分或其互补链互补。本发明通过提供一种对金黄色葡萄球菌特定基因片段具有特异性的引物组，及其用包含有上述引物组的试剂盒检测标本中是否存在金黄色葡萄球菌特定基因片段，进而确定标本中是否存在金黄色葡萄球菌。

权利要求

1.一种金黄色葡萄球菌检测用引物组，其特征在于，所述引物组由下列引物组成：正向外引物F3-nuc GTCAACCAATGACATTCAGAC反向外引物B3-nuc AACTTTAGCCAAGCCTTGA正向内引物FIP-nuc ATGCACTTGCTTCAGGACCACACCTGAAACAAAGCATCC反向内引物BIP-nuc

GAAGTCGAGTTTGACAAAGGTCAAACGTTTACCATTTTTCCATCAGC可以扩增金黄色葡萄球菌nuc基因---GenBank登录号：V01281，548位---795位的的特异性核酸序列。

2.一种金黄色葡萄球菌的检测方法，该方法用于检测食品中是否存在金黄色葡萄球菌，其特征在于，以金黄色葡萄球菌的nuc基因---GenBank登录号：V01281，548位---795位的核酸序列的一部分或其互补链为靶，通过LAMP法用权利要求1所述引物组选择性扩增所述靶基因，确认是否存在有扩增产物。

3.根据权利要求2所述的金黄色葡萄球菌的检测方法，其特征在于，所述检测方法具体为：

1)样品处理和模板提取，样品范围适用于食品样品标本；细菌待检标本用相应肠道增菌液增菌培养8-12小时后，取1.0ml增菌液10000rpm离心2分钟，弃其上清液后，用DNA提取试剂盒提取模板DNA或加20～30μl三蒸水煮沸5分钟，再取2μl上清液做待检模板DNA；

2)金黄色葡萄球菌的环介导等温扩增

取扩增反应液，先加待检模板，再加酶，最后加双蒸水，形成如下总体积为20μl～

100μl的反应体系，混匀点离后在约60-65℃条件下恒温保温约60-90分钟，然后置于80℃的环境下2分钟灭活酶；

反应总体积20μl～100μl的反应体系：

其中10×Bst DNA Polymerase Buffer反应缓冲液含有200mM pH 8.8的三羟基甲硫氨酸甲烷-盐酸、100mM氯化钾、100mM硫酸铵、20mM硫酸镁和1％曲拉通X-100；

所述酶为每微升含8-16个活性单位的Bst DNA酶；

3)LAMP反应产物的检测：

A)肉眼检测：与阴性对照管比较显示，检测管出现明显浑浊为阳性，未见浑浊为阴性；

或，

B)加染料后检测：每25μl体系的反应管加1000×SYBR Green I Invitrogen1-2μl，

1-5分钟观察结果，反应液变绿为阳性，保持无色或棕色为阴性；或，C)电泳检测：2-3％琼脂糖凝胶，70V电泳约60-100分钟，电泳图片显示LAMP特征性梯状条带，最小片段在190bp左右，则结果为阳性；如无任何条带则结果为阴性。

4.根据权利要求3所述的金黄色葡萄球菌的检测方法，其特征在于，当反应总体积为

25μl时，所述反应体系具体为：

5.一种金黄色葡萄球菌检测用试剂盒，其特征在于，所述试剂盒至少包括含有权利要求1所述的引物组的扩增反应液、酶；

所述扩增反应液中包括如下试剂：

其中10×Bst DNA Polymerase Buffer反应缓冲液含有200mM pH 8.8的三羟基甲硫氨酸甲烷-盐酸、100mM氯化钾、100mM硫酸铵、20Mm硫酸镁和1％曲拉通X-100；

所述酶为每微升含8-16个活性单位，终浓度0.16-0.64U/μl的Bst DNA酶。

6.根据权利要求5所述的金黄色葡萄球菌检测用试剂盒，其特征在于，扩增反应液：包含1/10预定反应体积的10×Bst DNA Polymerase Buffer反应缓冲液、3.6mM硫酸镁、1.6μM正向内引物FIP-nuc、1.6μM反向内引物BIP-nuc、0.2μM的正向外引物F3-nuc、0.2μM的反向外引物B3-nuc、1.4mM dNTP和1M甜菜碱；

酶：酶为每微升含8个活性单位，终浓度0.32U/μl的Bst DNA酶。

7.根据权利要求5或6所述的金黄色葡萄球菌检测用试剂盒，其特征在于，所述试剂盒还包括阴性及阳性对照模板，所述阴性对照模板为双蒸水；所述阳性对照模板为1～100nM的金黄色葡萄球菌基因组DNA。

说明书

金黄色葡萄球菌检测用引物、检测方法、检测试剂盒

技术领域

[0001] 本 发 明 涉 及 一 种 基 于 环 介 导 等 温 扩 增 (loop-mediated isothermalamplification，LAMP)技术的食源性病原体快速检测技术。特别涉及对金黄色葡萄球菌特定基因片段具有特异性的引物组；还涉及将所述引物组用环介导等温扩增法检测金黄色葡萄球菌的检测方法和检测试剂盒。

背景技术

[0002] 食源性疾病发病率较高，由沙门氏菌，志贺氏菌，金黄色葡萄球菌，变形杆菌，霍乱弧菌，副溶血性弧菌以及E.coli O157:H7，轮状病毒以及诺如病毒引起的食物中毒，其发病率在我国食源性疾病发病率中占非常高的比例，是一个严重的公共卫生问题。

[0003] 目前对食源性病原体的检测主要依靠病原体分离法、免疫学方法和各种PCR方法。病原体分离虽然是金标准，但繁琐费时，一般需要5天时间，最长需要一个月时间，而且免疫学方法的特异性和敏感性均较低。

[0004] 随着分子生物学技术的发展，人们采用PCR技术应用于细菌的诊断。例如PCR中国专利公开号CN1526825的专利申请，批露了一种利用副溶血性弧菌PR72H序列的特异性，通过DNA提取、PCR扩增、电泳观察等分子生物学手段检测副溶血性弧菌的方法。虽然该方法敏感、准确、快速，但由于需要昂贵的仪器设备、较高检测费用以及对检测人员较高的技术要求而使其不适用于现场快速检测及基层普及应用。

[0005] 环介导等温扩增(loop-mediated isothermal amplification，LAMP)技术(国际专利公开号WO 00/28082)是2000年Notomi等开发出一种核酸扩增新技术，即针对靶基因的6个区域设计4条特异引物(如有需要还可以添加有环引物对)，利用一种链置换DNA聚合酶(Bst DNA polymerase)在65℃左右恒温条件保温约60分钟，即可完成核酸扩增反应，扩增结果可直接对扩增副产物焦磷酸镁沉淀通过肉眼进行判断或者对其浊度进行检测，也可用结合双链DNA的荧光染料SYBR Green I染色，通过肉眼进行判定。用于LAMP技术扩增的2对引物乃针对基因6个区段，因而具有比PCR更高的特异性，同时也具备不需要热循环、其单位时间内扩增效率更高、且不需特殊仪器等优点。但是目前未有利用环介导等温扩增法检测金黄色葡萄球菌的检测方法和检测试剂盒，以及对金黄色葡萄球菌特定基因片段具有特异性的LAMP引物及引物组的报道。

发明内容

[0006] 本发明的一个目的在于，提供一种对金黄色葡萄球菌特定基因片段具有特异性的引物。

[0007] 上述目的是通过如下技术方案实现的：

[0008] 一种金黄色葡萄球菌检测用引物，其特征在于，能扩增靶基因的特异碱基序列，所述靶基因为金黄色葡萄球菌的nuc---GenBank登陆号：V01281，所述引物与所述靶基因的548位---795位的核酸序列的一部分或其互补链互补。

[0009] 本发明的另一个目的在于，提供一种对金黄色葡萄球菌特定基因片段具有特异性的引物组。

[0010] 上述目的是通过如下技术方案实现的：

[0011] 一种金黄色葡萄球菌检测用引物组，其特征在于，所述引物组由下列引物组成：

[0012] 正向外引物F3-nuc GTCAACCAATGACATTCAGAC

[0013] 反向外引物B3-nuc AACTTTAGCCAAGCCTTGA

[0014] 正向内引物FIP-nuc ATGCACTTGCTTCAGGACCACACCTGAAACAAAGCATCC[0015] 反向内引物BIP-nuc

[0016] GAAGTCGAGTTTGACAAAGGTCAAACGTTTACCATTTTTCCATCAGC

[0017] 可以扩增金黄色葡萄球菌的nuc(V01281)基因序列的548位---795位的核酸序列的一部分或其互补链。

[0018] 本发明的另一个目的在于，提供一种利用上述引物组基于环介导等温扩增法检测金黄色葡萄球菌的检测方法。

[0019] 上述目的是通过如下技术方案实现的：

[0020] 一种金黄色葡萄球菌的检测方法，该方法用于检测标本中是否存在金黄色葡萄球菌，其特征在于，以金黄色葡萄球菌的nuc(V01281)基因序列的548位---795位的核酸序列的一部分或其互补链为靶，通过LAMP法用上述引物组选择性扩增上述靶区域，确认是否存在有扩增产物。

[0021] 具体检测方法为：

[0022] 1)样品处理和模板提取，样品范围适用于食品样品、粪便、呕吐物等标本；细菌待检标本用相应肠道增菌液增菌培养8-12小时后，取1.0ml增菌液10000rpm离心2分钟，弃其上清液后，用DNA提取试剂盒提取模板DNA或加20～30ul三蒸水煮沸5分钟，再取2ul上清液做待检模板DNA；

[0023] 2)金黄色葡萄球菌的环介导等温扩增(LAMP)

[0024] 取扩增反应液，先加待检模板，再加酶，最后加双蒸水，形成如下总体积为20ul～100ul的反应体系，混匀点离后在约60-65℃条件下恒温保温约60-90分钟，然后置于80℃的环境下2分钟灭活酶。

[0025] 反应体系为(反应总体积20ul～100ul)：

[0026]成分 终浓度或量
待检模板 核酸模板 1-10ul
正向内引物FIP-nuc 1.0-2.0uM
反向内引物BIP-nuc 1.0-2.0uM
正向外引物F3-nuc 0.15-0.3uM
扩 反向外引物B3-nuc 0.15-0.3uM
增 甜菜碱betaine 0.8-1.5M
反 dNTP 1.0-1.6mM
应 mgsO4 2-6mM
液
成分 终浓度或量
反应缓冲液Bst DNA Polymerase Buffer 10× 1/10反应体积(ul)
酶 Bst DNA Polymerase 0.16-0.64U/ul
双蒸水 ddH2O 加至预定反应体积(ul)

[0027] 3)LAMP反应产物的检测：

[0028] A)肉眼检测：与阴性对照管比较显示，检测管出现明显浑浊为阳性，未见浑浊为阴性；或，

[0029] B) 加 染 料 后 检 测：每 25ul 体 系 的 反 应 管 加 1000×SYBR Green I(Invitrogen)1-2ul，1-5分钟观察结果，反应液变绿为阳性，保持无色或棕色为阴性；或，[0030] C)电泳检测：2-3％琼脂糖凝胶，70V电泳约60-100分钟，电泳图片显示LAMP特征性梯状条带，最小片段在190bp左右，则结果为阳性；如无任何条带则结果为阴性。

[0031] 本发明的另一个目的在于，提供一种利用上述引物或引物组基于环介导等温扩增法检测金黄色葡萄球菌的检测试剂盒。

[0032] 上述目的是通过如下技术方案实现的：

[0033] 一种金黄色葡萄球菌检测用试剂盒，其特征在于，所述试剂盒至少包括含有上述引物或引物组的扩增反应液、酶。

[0034] 所述扩增反应液中包括如下试剂：

[0035]成分 终浓度或量
正向内引物FIP-nuc 1.0-2.0uM
反向内引物BIP-nuc 1.0-2.0uM
正向外引物F3-nuc 0.15-0.3uM
扩 反向外引物B3-nuc 0.15-0.3uM
增 甜菜碱betaine 0.8-1.5M
反 dNTP 1.0-1.6mM
应 mgsO4 2-6mM
液
反应缓冲液Bst DNA Polymerase Buffer 10× 1/10预定反应体积(ul)[0036] 其中10×Bst DNA Polymerase Buffer反应缓冲液含有200mM pH8.8的三羟基甲硫氨酸甲烷-盐酸(Tris-HCl)、100mM氯化钾、100mM硫酸铵、20Mm硫酸镁和1％曲拉通X-100；

[0037] 所述酶为每微升含8-16个活性单位的Bst DNA酶。

[0038] 所述试剂盒还包括阴性及阳性对照模板，所述阴性对照模板为双蒸水；所述阳性对照模板为金黄色葡萄球菌基因组DNA(1～100nM)。

[0039] 本发明通过提供一种对金黄色葡萄球菌特定基因片段具有特异性的引物组，及其用包含有上述引物组的试剂盒检测标本中是否存在金黄色葡萄球菌特定基因片段，进而确定标本中是否存在金黄色葡萄球菌。本发明检测试剂和检测方法具有敏感性高、特异性强、方便快捷、不需特殊仪器、适用范围广等优点，可解决食源性病原体的现场快速检测和基层普及应用难题；特别是现场检测及战时野外应用。同时，与现有的PCR方法相比具有特异性强、敏感性比PCR高或相当、比PCR省时约2小时、不需特殊仪器(扩增反应在水浴锅中即可完成)等优点。

附图说明

[0040] 图1本发明所述引物组进行环介导等温扩增(LAMP)后可通过肉眼观察的结果。图例：1、阳性扩增结果；2、阴性扩增结果。

[0041] 图2本发明所述引物组进行环介导等温扩增(LAMP)后加入染料观察的结果。图例：1、阴性扩增结果；2，3、阳性扩增结果。

[0042] 图3本发明所述引物组进行环介导等温扩增(LAMP)结果的电泳图：图中，1：100bp marker；2：金黄色葡萄球菌；3、金黄色葡萄球菌产肠毒素A菌株；4-8分别为鼠伤寒沙门氏菌、伤寒沙门氏菌、肠炎沙门氏菌、痢疾志贺氏杆菌及阴性对照，上述细菌均为标准菌株菌。

[0043] 图4本发明所述引物组合进行环介导等温扩增(LAMP)结果的电泳图：图中1：100bp marker；2：金黄色葡萄球菌产肠毒素B菌株；3、金黄色葡萄球菌产肠毒素C菌株；
4-8分别为大肠杆菌O157:H7、变形杆菌、副溶血弧菌、霍乱弧菌、阴性对照，上述细菌均为标准菌株。

具体实施方式

[0044] 下面通过具体的金黄色葡萄球菌检测过程来对本发明进行说明，但本发明并不局限于这些实施例。

[0045] 实施例一 对已知菌株的nuc基因的扩增

[0046] 一)引物组的设计

[0047] 通过查阅文献和用BLAST软件分析筛选出金黄色葡萄球菌特异性基因nuc的548---795bp核酸序列，针对该片段的六个位点(这六个位点分别：548-568bp、584-602bp、
624-643bp、679-703bp、742-763bp、777-795bp)设计出LAMP引物并合成，得到如下的引物；
引物设计通过LAMP专用引物设计软件结合分子生物学分析软件Advance Vector NTI完成。

[0048] 序列编号1

[0049] 正向外引物F3-nuc GTCAACCAATGACATTCAGAC

[0050] 序列编号2

[0051] 反向外引物B3-nuc AACTTTAGCCAAGCCTTGA

[0052] 序列编号3

[0053] 正向内引物FIP-nuc

[0054] ATGCACTTGCTTCAGGACCACACCTGAAACAAAGCATCC

[0055] 序列编号4

[0056] 反向内引物BIP-nuc

[0057] GAAGTCGAGTTTGACAAAGGTCAAACGTTTACCATTTTTCCATCAGC

[0058] 所述6个位点的序列分别为：

[0059] 548-568bp： gtcaaccaatgacattcagac

[0060] 584-602bp： cacctgaaacaaagcatcc

[0061] 624-643bp tggtcctgaagcaagtg cat

[0062] 679-703bp ga agtcgagtttgacaaaggtcaaa

[0063] 742-763bp gctgatggaaaaatggtaaacg

[0064] 777-795bp tcaaggcttggctaaagtt

[0065] 其中，

[0066] 所述正向外引物F3：扩增始于548-568bp(gtcaaccaatgacattcagac)；

[0067] 所述正向内引物FIP：扩增始于624-643bp(tggtcctgaagcaagtgcat)的互补序列和584-602bp(cacctgaaacaaagcatcc)；

[0068] 所述反向外引物B3：扩增始于777-795bp(tcaaggcttggctaaagtt)的互补序列；

[0069] 反向内引物BIP：扩增始于679-703bp(gaagtcgagtttgacaaaggtcaaa)和742-763bp(gctgatggaaaaatggtaaacg)的互补序列。

[0070] 上述引物组中各引物的共性在于：与金黄色葡萄球菌特异性基因nuc的548---795bp核酸序列互补。

[0071] 二)本实施例实验的菌株与各菌株的扩增结果如下表一

[0072] 表一(为了便于理解，本申请人将下列序号与图3中编号设置成一致)[0073]序号 分子量标准品及供试菌株 有无扩增
1
100bp marker
2 金黄色葡萄球菌标准株(CMCC-26003-25) 阳
3 金黄色葡萄球菌产肠毒素A菌株(ATCC-13565) 阳
4 肠炎沙门菌(ATCC-13076) 阴
5 鼠伤寒沙门菌(CMCC-50115) 阴
6 伤寒沙门菌(CMCC-50071)
阴
7 痢疾志贺菌(CMCC-51252) 阴
序号 分子量标准品及供试菌株 有无扩增
8 阴性对照 阴

[0074] 表二(为了便于理解，本申请人将下列序号与图4中编号设置成一致)[0075]1
100bp marker
2 金黄色葡萄球菌产肠毒素B菌株(ATCC-14458) 阳

[0076]3 金黄色葡萄球菌产肠毒素C菌株(ATCC-19095) 阳
4 大肠杆菌O157:H7(CMCC-44050-3) 阴
5 副溶血性弧菌(VPL 4-90) 阴
6 奇异变形杆菌(CMCC-49005) 阴
7 霍乱弧菌(569B) 阴
8 阴性对照 阴

[0077] 上述供试菌株均为标准菌株，购自中国医学微生物菌种保藏管理中心。“阴”表示无扩增反应，“阳”表示有扩增反应。

[0078] 三)上述各菌株基因DNA的提取

[0079] 细菌待检标本(除金黄色葡萄球菌以外)用相应肠道增菌液增菌培养8-12小时后，取1.0ml增菌液10000rpm离心2分钟，弃其上清液后，用DNA提取试剂盒(如TIANamp Bacteria DNA Kit)提取模板DNA或加30ul三蒸水煮沸5分钟，直接取2ul上清液作模板DNA；金黄色葡萄球菌标本需用肠道增菌液增菌培养8-12小时后用基因组DNA提取试剂盒(TIANampBacteria DNA Kit)提取DNA。

[0080] 四)基于LAMP法的基因扩增

[0081] 取扩增反应液14.6ul，加2.0ul待检模板，加1ul酶，再加7.4ul ddH2O，形成如下表总体积为25ul的反应体系，在温度为65℃的恒温水浴锅保温约60分钟，然后置于80℃、2分钟灭活酶。

[0082] 反应体系为：(反应总体积为25ul)

[0083]成分 储存液浓度 量(ul) 终浓度
核酸模板 2.0
FIP-nuc 1.0
BIP-nuc 40uM 1.0 1.6uM
F3-nuc 40uM 0.5 1.6uM
10uM 0.2uM

[0084]B3-nuc 10uM 0.5 0.2uM
betaine 5M 5.0 1M
dNTP 10mM 3.5 1.4mM
mgsO4 150mM 0.6 3.6mM
Bst DNA Polymerase Buffer 10× 2.5
Bst DNA Polymerase 8U/ul 1.0
ddH2O 7.4 0.32U/ul

[0085] 除核酸模板外，上述反应体系可以简化为扩增反应液，酶和双蒸水。

[0086] 扩增反应液：包含10×Bst DNA Polymerase Buffer反应缓冲液、3.6mM硫酸镁、1.6uM正向内引物FIP-nuc、1.6uM反向内引物BIP-nuc、0.2uM的正向外引物F3-nuc、0.2uM的反向外引物B3-nuc、1.4mM dNTP和1M甜菜碱(betaine)

[0087] 其中10×Bst DNA Polymerase Buffer反应缓冲液含有200mM pH8.8的三羟基甲硫氨酸甲烷-盐酸(Tris-HCl)、100mM氯化钾、100mM硫酸铵、20mM硫酸镁和1％曲拉通X-100；

[0088] 酶：Bst DNA聚合酶(每微升含8个活性单位)。

[0089] 双蒸水的加入原则是，在其他试剂的量确定后，加入双蒸水使反应体积到达预定的反应体积。

[0090] 五)扩增产物的检测

[0091] 随着扩增反应的进行，从dNTP析出的焦磷酸根离子和反应液中存在的镁离子将形成焦磷酸镁沉淀。因此，只有在发生核酸扩增的反应液中才会出现白色浑浊。这样可以通过如下方式进行判断。

[0092] A)肉眼检测：与阴性对照管比较显示，检测管出现明显浑浊为阳性，未见浑浊为阴性；(参见图1)或，

[0093] B) 加 染 料 后 检 测：每 25ul 体 系 的 反 应 管 加 1000×SYBR Green I(invitrogen)1-2ul，1-5分钟观察结果，反应液变绿为阳性，保持无色或棕色为阴性；(参见图2)或，

[0094] C)电泳检测：2-3％琼脂糖凝胶，70V电泳约60-100分钟，电泳图片显示LAMP特征性梯状条带，最小片段在190bp左右，则结果为阳性；如无任何条带则结果为阴性。(参见图3，4)

[0095] 经对扩增产物的检测，表明上述引物组对金黄色葡萄球菌、金黄色葡萄球菌产肠毒素A菌株；金黄色葡萄球菌产肠毒素B菌株；金黄色葡萄球菌产肠毒素C菌株出现LAMP扩增反应，对照菌未出现扩增反应，显示了良好的特异性。

[0096] 6)灵敏度比较：

[0097] 以金黄色葡萄球标准菌作为检测菌，将1×106CFU/mL的菌液做一系列稀释：106、5 4 3 2 1 0
10、10、10、10、10、10，分别用LAMP方法和PCR方法(上下游引物分别为F3-nuc、B3-nuc)
1 2
来检测，检测结果表明LAMP反应敏感性达10CFU/mL；PCR反应敏感性达10CFU/mL；结果显示LAMP反应敏感性比PCR反应敏感10倍。

[0098] 实施例二

[0099] 本实施例与实施例一的区别在于，本实施例中，基于LAMP法的基因扩增使用的反应体系为：

[0100] 反应体系为：(反应总体积为25ul)

[0101]成分 储存液浓度 量(ul) 终浓度
核酸模板 1.0
FIP-nuc 1.0
BIP-nuc 25uM 1.0 1.0uM
F3-nuc 25uM 0.5 1.0uM
B3-nuc 7.5uM 0.5 0.15uM
betaine 7.5uM 5.0 0.15uM
dNTP 4M 2.5 0.8M
10mM 1.0mM

[0102]mgsO4 100mM 0.5 2.0mM
Bst DNA Polymerase Buffer 10× 2.5
Bst DNA Polymerase 8U/ul 0.5
ddH2O 10.0 0.16U/ul

[0103] 除核酸模板外，上述反应体系可以简化为扩增反应液，酶和双蒸水。

[0104] 扩增反应液：包含10×Bst DNA Polymerase Buffer反应缓冲液、2mM硫酸镁、1.0uM正向内引物FIP-nuc、1.0uM反向内引物BIP-nuc、0.15uM的正向外引物F3-nuc、
0.15uM的反向外引物B3-nuc、1.0mM dNTP和0.8M甜菜碱(betaine)；

[0105] 其中10×Bst DNA Polymerase Buffer反应缓冲液含有200mM pH8.8的三羟基甲硫氨酸甲烷-盐酸(Tris-HCl)、100mM氯化钾、100mM硫酸铵、20mM硫酸镁和1％曲拉通X-100；

[0106] 酶：Bst DNA聚合酶(每微升含8个活性单位)。

[0107] 双蒸水的加入原则是，在其他试剂的量确定后，加入双蒸水使反应体积到达预定的反应体积。

[0108] 反应条件：在温度为65℃的恒温水浴锅保温约60分钟，然后置于80℃、2分钟灭活酶。

[0109] 实施例三

[0110] 本实施例与实施例一的区别在于，本实施例中，基于LAMP法的基因扩增使用的反应体系为：

[0111] 反应体系为：(反应总体积为25ul)

[0112]成分 储存液浓度 量(ul) 终浓度
核酸模板 1.0
FIP-nuc 1.0
BIP-nuc 50uM 1.0 2.0uM
50uM 2.0uM

[0113]F3-nuc 15uM 0.5 0.3uM
B3-nuc 15uM 0.5 0.3uM
betaine 7.5M 5.0 1.5M
dNTP 10mM 4.0 1.6mM
mgsO4 150mM 1.0 6.0mM
Bst DNA Polymerase Buffer 10× 2.5
Bst DNA Polymerase 16U/ul 1.0
ddH2O 7.5 0.64U/ul

[0114] 除核酸模板外，上述反应体系可以简化为扩增反应液，酶和双蒸水。

[0115] 扩增反应液A：包含10×Bst DNA Polymerase Buffer反应缓冲液、6mM硫酸镁、2.0uM正向内引物FIP-nuc、2.0uM反向内引物BIP-nuc、0.3uM的正向外引物F3-nuc、0.3uM的反向外引物B3-nuc、1.6mM dNTP和1.5M甜菜碱(betaine)；

[0116] 其中10×Bst DNA Polymerase Buffer反应缓冲液含有200mM pH8.8的三羟基甲硫氨酸甲烷-盐酸(Tris-HCl)、100mM氯化钾、100mM硫酸铵、20mM硫酸镁和1％曲拉通X-100；

[0117] 酶：Bst DNA聚合酶(每微升含16U活性单位)。

[0118] 双蒸水的加入原则是，在其他试剂的量确定后，加入双蒸水使反应体积到达预定的反应体积。

[0119] 反应条件：在温度为65℃的恒温水浴锅保温约60分钟，然后置于80℃、2分钟灭活酶。

[0120] 实施例四

[0121] 本实施例与实施例一的区别在于，本实施例中，基于LAMP法的基因扩增使用的反应体系为：(反应总体积为100ul)

[0122]成分 储存液浓度 量(ul) 终浓度
核酸模板 10.0

[0123]FIP-nuc 40uM 4.0 1.6uM
BIP-nuc 40uM 4.0 1.6uM
F3-nuc 10uM 2.0 0.2uM
B3-nuc 10uM 2.0 0.2uM
betaine 5M 20.0 1M
dNTP 10mM 14.0 1.4mM
mgsO4 150mM 2.4 3.6mM
Bst DNA Polymerase Buffer 10× 10.0
Bst DNA Polymerase 8U/ul 4.0
ddH2O 27.6 0.32U/ul

[0124] 实施例五

[0125] 本实施例与实施例一的区别在于，本实施例中，基于LAMP法的基因扩增使用的反应体系为：(反应总体积为20ul)

[0126]成分 储存液浓度 量(ul) 终浓度
核酸模板 2.0
FIP-nuc 0.8
BIP-nuc 40uM 0.8 1.6uM
F3-nuc 40uM 0.4 1.6uM
B3-nuc 10uM 0.4 0.2uM
betaine 10uM 4.0 0.2uM
dNTP 5M 2.8 1M
mgsO4 10mM 0.48 1.4mM
Bst DNA Polymerase Buffer 150mM 2.0 3.6mM
Bst DNA Polymerase 10× 0.8
ddH2O 8U/ul 5.52
0.32U/ul

[0127] 实施例六 从呕吐物中分离的菌株的检测

[0128] 菌株基因DNA的提取及扩增、检测

[0129] 取食物中毒者呕吐物25g，用相应肠道增菌液增菌培养8-12小时后，用基因组DNA提取试剂盒(TIANamp Bacteria DNA Kit)提取DNA。另用前述肠道增菌培养液接种分离培养平板，菌落用用生物-梅里埃GNI+卡及VITEC32全自动微生物分析仪进行分离株的鉴定。

[0130] 对上述提取的基因DNA与实施例一同样的通过LAMP法进行核酸扩增和扩增产物进行检测。扩增结果与VITEC鉴定结果比对，如下表二。

[0131]菌株序号 有无扩增 鉴定结果
金黄色葡萄球菌
菌株1 有
大肠杆菌
菌株2 无

[0132] 基于VITEC 32全自动微生物分析仪的鉴定

[0133] 如表二所示，鉴定结果表明分离的菌株含金黄色葡萄球菌和大肠杆菌，基于VITEC32全自动微生物分析仪的鉴定结果与使用引物组扩增的结果一致，只有在鉴定为金黄色葡萄球菌的标本中观察到上述引物组产生的扩增。

[0134] 序列表

[0135] <110>珠海市疾病预防控制中心

[0136] <120>金黄色葡萄球菌检测用引物、检测方法、检测试剂盒

[0137] <160>5

[0138] <210>1

[0139] <211>21

[0140] <212>DNA

[0141] <213>人工序列

[0142] <220>

[0143] <223>引物

[0144] <400>1

[0145] GTCAACCAATGACATTCAGAC 21

[0146] <210>2

[0147] <211>19

[0148] <212>DNA

[0149] <213>人工序列

[0150] <220>

[0151] <223>引物

[0152] <400>2

[0153] AACTTTAGCCAAGCCTTGA 19

[0154] <210>3

[0155] <211>38

[0156] <212>DNA

[0157] <213>人工序列

[0158] <220>

[0159] <223>引物

[0160] <400>3

[0161] ATGCACTTGCTTCAGGACCACACCTGAAACAAAGCATCC 39

[0162] <210>4

[0163] <211>47

[0164] <212>DNA

[0165] <213>人工序列

[0166] <220>

[0167] <223>引物

[0168] <400>4

[0169] GAAGTCGAGTTTGACAAAGGTCAAACGTTTACCATTTTTCCATCAGC 47

[0170] <210>5

[0171] <211>248

[0172] <212>DNA

[0173] <213>金黄色葡萄球菌

[0174] <400>5

[0175] 548 gtc aaccaatgac attcagacta ttattggttg atacacctga aacaaagcat[0176] 601 cctaaaaaag gtgtagagaa atatggtcct gaagcaagtg catttacgaa aaaaatggta[0177] 661 gaaaatgcaa agaaaattga agtcgagttt gacaaaggtc aaagaactga taaatatgga[0178] 721 cgtggcttag cgtatattta tgctgatgga aaaatggtaa acgaagcttt agttcgtcaa[0179] 781 ggcttggcta aagtt