促进生物反应的屏障

摘要

本发明涉及进行生物反应的系统、装置和方法。本发明特别涉及亲脂性、水不混溶性、或者疏水性屏障在样品分离、纯化、修饰和分析过程中的用途。

权利要求

1.一种用于生物或环境样品处理的装置，其包括：a)第一室和第二室，其中所述第一室和第二室可操作地连接，所述第一室和第二室每个均含有含水溶液；

b)与水不混溶的亲脂性物质，在所述第一室和第二室之间形成所述物质的屏障，其中所述亲脂性物质与所述第一室中的含水溶液接触；以及c)转运部件，其产生外部应用力与第一室内的固相载体相互作用以使所述载体移动，从而使样品中感兴趣的分子从第一室中的含水溶液移动，穿过所述亲脂性物质，进入到第二室中的含水溶液，其中，所述第一室中的含水溶液与所述亲脂性物质形成界面，该界面在载体移动过程中保持静止；

其中，在装载到各自室后，所述第一室内的含水溶液和所述第二室内的含水溶液保持静止。

2.权利要求1的装置，其中所述第一室和第二室通过所述亲脂性物质的存在而形成。

3.权利要求1或2的装置，其中在所述第一室中、在第二室中、或者同时在两个室中进一步包含试剂。

4.权利要求3的装置，其中所述试剂选自样品纯化试剂和可以对感兴趣的分子或细胞进行检测的试剂。

5.权利要求4的装置，其中所述样品纯化试剂是引起细胞裂解的试剂、引起对感兴趣的分子捕获的试剂、或是同时引起二者的试剂。

6.权利要求5的装置，其中所述样品纯化试剂是磁性颗粒。

7.权利要求1的装置，其中所述转运部件是磁场。

8.权利要求7的装置，其中所述转运部件是磁体。

9.权利要求7或8的装置，其中所述固相载体是磁性颗粒。

10.权利要求1的装置，其中所述亲脂性物质是蜡或油。

11.权利要求1的装置，其中所述亲脂性物质是氟代烃油或液体的碳氢化合物类型蜡。

12.权利要求1的装置，其中所述亲脂性物质具有使其浮于水上的比重。

13.权利要求3的装置，其中所述装置在所述第一或第二室中存放了第二试剂，并且所述第二试剂是分析试剂。

14.权利要求1的装置，其中所述第一室前面是包含裂解试剂的裂解室。

15.包含权利要求1-14任一项的装置的系统。

16.权利要求15的系统，进一步包含检测部件。

17.处理样品的方法，其包含：

向权利要求1-14任一项的装置或者权利要求15或16的系统的第一室装载第一溶液并向第二室装载第二溶液；

装载后，将至少所述第一溶液与所述亲脂性物质接触；

将样品置于所述第一室中；以及

通过由所述转运部件施加力使该样品从所述第一室移动穿过所述亲脂性物质而进入所述第二室内；

其中，在所述装载后，所述第一和第二室中的所述第一和第二溶液保持静止。

18.权利要求17的方法，其中所述样品是含有感兴趣分子的生物样品。

19.权利要求18的方法，其中所述感兴趣分子是核酸、细胞、或多肽。

20.权利要求17的方法，其中移动所述样品包括转运部件对与所述样品或所述样品中的分析物结合的固相载体施加力，以使所述载体和所结合的样品或分析物移动。

21.权利要求1的装置，其中所述亲脂性物质形成所述第一室和第二室之间毗邻的屏障以使得各室中的含水溶液与所述亲脂性物质之间形成第一和第二静止界面。

22.权利要求21的装置，其中由所述亲脂性物质形成的所述毗邻的屏障是连接所述第一室和第二室的桥。

23.权利要求20的方法，其中所述转运部件与所述载体相互作用以使所述载体从所述第一室移动穿过所述亲脂性物质并直接进入所述第二室。

24.权利要求1的装置，其中所述装置不包含阀门并且没有流体流。

25.权利要求20的方法，其中所述转运部件选自磁体、电流、离心力、具有大于水的特定比重的液体及其组合。

说明书

促进生物反应的屏障

[0001] 相关申请的交叉参考

[0002] 本申请要求2008年2月29日申请的美国临时专利申请系列号61/032,655的优先权，其以全文援引加入本文。

[0003] 政府支持

[0004] 本申请得到National Institutes of Health授予的基金号CCF0329957以及National Science Foundation授予的基金号5RO1EB001418-03的支持。政府在本发明中享有某些权利。发明领域

[0005] 本发明涉及进行生物反应的系统、装置和方法。本发明特别涉及疏水性、水不混溶性或者亲脂性屏障在样品分离、纯化、修饰、和分析过程中的用途。

[0006] 发明背景

[0007] 有成本效益的、易于使用的用于分析生物样品的系统、方法和装置是非常需要的。许多可商购的系统需要花费几万至几十万美元，且具有许多活动部件，使其趋于失灵。由于这种系统的成本和复杂性，其使用通常局限于具有支持其运行和维持的人员及业务的临床实验室。

[0008] 由Abbott Architect、Siemens Centaur、Roche Elecsys等所代表的一类充分集成的自动化分析仪进行免疫测定。由Abbott m2000、Roche COBAS，bioMérieux NucliSENS等所代表的另一类模块分析仪进行核酸测定。这些系统的复杂性大部分是进行测定中所涉及的分离步骤的结果。

[0009] 模块系统也常用于研究实验室中。免疫测定分离可以通过平板洗涤器如Titertek MAP-C2、BioTek ELx50、Tecan PW 96/384等进行。核酸分离通过如下系统进行，如Applied TMBiosystems PRISM 6100、Invitrogen iPrep、Thermo Scientific KingFisher、Promega Maxwell等。

[0010] 特别关注的是可获得低成本可靠的分析仪，因为其涉及世界范围内疾病的诊断和管理。这个问题由与HIV感染管理相关的问题生动地说明。存在许多技术可以检测HIV相关的核酸或者蛋白质水平。这种检测对于感染HIV患者护理的管理非常重要。然而，这些系统的成本和复杂性阻止了其广泛应用。

[0011] 发明概述

[0012] 本发明涉及进行生物反应的系统、装置和方法。本发明特别涉及疏水性、水或醇不混溶性或者亲脂性屏障在样品分离、纯化、修饰和分析过程中的用途。

[0013] 在一些实施方案中，本发明提供了生物样品纯化和/或分析装置，包括：多个样品处理室，其包含用于生物分子或者细胞纯化、修饰、分析和/或检测的试剂；以及在两或多个室之间(例如分隔两或多个室)的亲脂性物质。在一些实施方案中，所述亲脂性物质是蜡。在一些实施方案中，所述蜡是相变蜡，其可以取液体或者固体形式的预定温度。例如，在一些实施方案中，所述蜡在贮存或者运输温度下取固体形式而在反应温度(例如室温)取液体形式。在一些实施方案中，所述亲脂性物质是油。在一些实施方案中，有两个反应室。在一些实施方案中，有三个反应室。在一些实施方案中，有四个反应室。在一些实施方案中，有五个反应室。在一些实施方案中，有六个或者更多个反应室(例如7、8、9、10、11、……、
20个、……)。在一些实施方案中，所述亲脂性材料提供了两或多个室之间毗邻的屏障(即样品从第一个室直接进入所述亲脂性材料以及直接穿过所述亲脂性材料进入第二个室)。
在其它实施方案中，在所述亲脂性材料和一或多个室之间存在空气、液体或者其它材料。在这种实施方案中，所述亲脂性材料以这样的位置放置，从而使要处理的样品或者生物分子在某点间穿过该亲脂性材料从第一个室转运至第二个室。

[0014] 在一些实施方案中，所有或者部分反应室专用于样品纯化。例如，一或多个反应室含有导致发生样品纯化现象包括但不限于细胞分解、生物分子捕获、生物分子分离，以及细胞培养、纯化和/或分析的试剂。在一些实施方案中，所有或者部分反应室专用于样品修饰。例如，一或多个反应室含有导致发生生物分子(例如核酸、蛋白质、脂质等)或者细胞修饰现象包括但不限于扩增、连接、分裂、标记、延伸、降解、与配体结合、低聚反应、转染、转化、转基因、分裂、分化及类似等的试剂。在一些实施方案中，所有或者部分反应室专用于样品分析。例如，一或多个反应室含有使得可以对感兴趣的生物分子或者细胞进行检测或者其它类型的分析的试剂或者其它成分。在一些实施方案中，所述反应室含有可以产生颜色、荧光信号、发光信号或者其它可检测特性的试剂。在一些实施方案中，将所述反应室配置为通过信号读出器(例如颜色读出器、荧光读出器、发光读出器、人眼等)来优化信号检测。一或多个反应室可用于多种不同任务，包括纯化、修饰、分析和/或检测。

[0015] 本发明不受所述反应室的配置和与彼此分离的方式所限。所述反应室每个都可以与另一个是相同大小和形状，或者不同大小或形状。可以使用各种不同的配置。在一些实施方案中，所述处理室是孔且所述亲脂性屏障位于所述孔的上面或者下面，从而由一个室向另一个室转移的任何材料必须通过向上或向下以及越过移动来穿过亲脂性材料。在一些实施方案中，所述室通过亲脂性材料的存在而形成。例如，在一些实施方案中，将亲脂性材料在一或多个通道中(例如在玻璃、塑料或者陶瓷管中)沿一或多个点沉积以在所述一或多个通道中区域之间形成屏障。所述通道可以是任何尺寸，包括小尺寸的如毛细管或者微流体槽。在一些实施方案中，将所述室和屏障进行配置，从而使感兴趣的样品或者生物分子必须穿过线性系列反应室。然而，在其它实施方案中，第一个反应室中的样品或者生物分子可任选地跳过一个或多个其它室。在一些实施方案中，将所述室放置在装置中，该装置具有配置好的大小或者形状以适合现有的实验设备(例如自动化机械臂、平板支托物(例如96-孔)、热循环仪、荧光检测仪等)。在一些实施方案中，通道用于分隔反应室，其中所有或者部分通道含有亲脂性材料。例如，在一些实施方案中，将所述装置配置为与96孔或者
384孔平板类似，具有连接两个更多孔的通道。在一些实施方案中，两个室之间的路径含有空气、水或者其它流体，其中所述样品在进入或者离开所述亲脂性材料之前和/或之后穿过所述空气、水或者其它流体。

[0016] 在一些实施方案中，反应室是含有亲水性溶液的微孔或者微管，而亲脂性物质在部分所述室或者在单独的室中被置于溶液的上面或者下面。

[0017] 在一些实施方案中，所述装置包括传送机制，可以将所希望的材料从一个反应室中经过亲脂性材料转移至另一个反应室中。例如，在一些实施方案中，在一个反应室中感兴趣的生物分子与磁性颗粒如磁珠结合。通过应用磁场(例如来自磁体)使得磁性颗粒从第一个室经过亲脂性屏障移动至第二个室，从而使感兴趣的生物分子从一个室移动到另一室。在其它实施方案中，形成电场以使用电荷将生物分子或者与所述生物分子结合的成分(例如配体、珠、电荷标记等)从一个反应室移动至另一反应室。在一些实施方案中，使用离心力将感兴趣的生物分子从一个室经过亲脂性屏障移至另一室。在一些实施方案中，使用来自真空或者抽吸的压力在室之间移动材料。本发明不受传送机制的限制。

[0018] 在一些实施方案中，所述装置包括蒸汽屏障(vapor barrier)以防止或者减少在处理或者使用期间的液体损失。在一些实施方案中，所述装置由互相叠放在一起的多个薄层材料组成。例如，在一些实施方案中，所述薄层包含夹在塑料层之间的铝箔层。

[0019] 在一些实施方案中，本发明的装置以系统(例如试剂盒)形式提供，其包含可以进行样品采集、样品处理、样品处置、数据收集、数据分析以及数据提示的一或多种其它成分。这些成分可以是单独的装置或者可以集成在单一的多成分装置中。这些成分可包括但不限于医学装置、环境样品处理装置、蛋白质纯化装置、核酸纯化装置、计算机、软件等。所述系统或者装置的一或多个成分可以是自动化的。在一些实施方案中，所述系统的一或多个成分被配置为无自动化运行。例如，在非自动化系统中，提供手持磁体将样品从一个室移动至另一室，使用加热模块(heat block)或者水浴产生所希望的反应温度，使用手持荧光检测仪检测信号，或者通过肉眼观测信号。

[0020] 本发明的系统和装置可用于多种样品。例如，在一些实施方案中，样品是生物或者环境样品。生物样品可得自动物(包括人)，并涵盖液体、固体、组织以及气体。生物样品包括血液产品如血浆、血清等，以及脑脊液、痰液、支气管洗涤液(bronchial washing)、支气管抽吸液(bronchial aspirates)、尿液、淋巴液，以及呼吸道、肠道和泌尿生殖道的各种外分泌物，眼泪、唾液、乳汁、白细胞、骨髓瘤、生物液如细胞培养上清、组织(固定或者未固定的)、细胞(固定或者未固定)等。环境样品包括但不限于环境材料，如表面物质、土壤、水以及工业样品。

[0021] 附图描述

[0022] 图1示出本发明的一些实施方案的用于样品纯化和PCR的药筒(cartridge)。图1a示出原型药筒。图1b示出液体蜡通道的图样。

[0023] 图2示出本发明一些实施方案的用于样品纯化的药筒。

[0024] 图3示出用于构建本发明一些实施方案药筒的箔层压板(foil laminate)的层。

[0025] 图4示出用于本发明一些实施方案中的箔层压板药筒的图样。

[0026] 图5示出(a)永磁体相对于两个不混溶流体的位置，以及(b)在x和y方向作用于颗粒上的磁力的表面图。

[0027] 图6示出使用落重法(weight drop method)评估表面张力的实验安排。

[0028] 图7示出在基于管的微流体系统中夹层测定各个阶段的图示。

[0029] 图8示出FL1高度对应Log(生物素浓度)的图示。

[0030] 图9示出由流式细胞计量仪记录的事件对应于前向散射、侧向散射和FL1高度的图示。

[0031] 图10示出链霉抗生物素蛋白包被的磁性颗粒从一个毛细管向另一毛细管的移动及随后与生物素反应的图示。

[0032] 图11a示出在移动穿过含有荧光染料的油之后链霉抗生物素蛋白包被颗粒的信号。图11b示出在移动穿过含有荧光染料的油以及随后在PBS缓冲液中搅动该颗粒之后链霉抗生物素蛋白包被颗粒的信号。

[0033] 图12示出在本发明一些实施方案中使用的两室小透明容器(cuvette)的示意图。

[0034] 图13示出在本发明一些实施方案中使用的两室小透明容器的示意图。

[0035] 图14示出使用不混溶相过滤(IPF)方法对来自血浆的HIV-1进行的qRT-PCR：相对log10HIV-1病毒拷贝数绘制的一式两份运行的4种不同RNA浓度的Ct值的标准曲线。

[0036] 图15示出对比IPF和人工纯化方法的Bland-Altman图：实心黑色方块示出两种方法之间的差异，实线(y＝-0.00772)示出两种方法之间的平均差异，虚线示出平均值+2和-2标准差(SD)。

[0037] 图16示出通过来自尿液样品衣原体qPCR的IPF量化。

[0038] 图17示出通过来自尿液样品淋病qPCR的IPF量化。

[0039] 图18示出对比衣原体的IPF和人工纯化方法的Bland-Altman图。

[0040] 图19示出对比淋病的IPF和人工纯化方法的Bland-Altman图。

[0041] 图20示出对来自25μL WB的前病毒DNA的IPF PCR。

[0042] 图21示出对比IPF和人工纯化方法的Bland-Altman图。

[0043] 定义

[0044] 为了便于理解本发明的揭示，术语定义如下。

[0045] 如本文所用，术语“亲脂性材料”是指在水、醇或者其它亲水性或者水成液体中基本上不混溶的任何物质。在一些实施方案中，本发明的亲脂性材料对于干扰特定生物过程如核扩增或者生物分子检测的物质具有低溶解性。在一些实施方案中，本发明的亲脂性材料具有低蒸汽压。亲脂性物质趋于通过范德华力与其自身以及与其它物质相互作用。它们具有很小能力乃至没有能力形成氢键。亲脂性物质典型具有大o/w(油/水)分配系数。

[0046] 术语“不溶于水”以及“疏水性”材料在本说明书中可同义使用。该术语包括在水中几乎不溶并在挥发性亲脂性溶剂如二氯甲烷以及非挥发性亲水性溶剂特别是N-甲基吡咯烷酮(NMP)中可自由溶解的聚合物。

[0047] “水混溶性”或者“亲水性”材料是指可以用至少等量部分的水稀释而不分离的有机液体。

[0048] “水不混溶性”或者“亲脂性”材料的性质是其不能用至少等量部分的水稀释而不分离。

[0049] “纯化的多肽”或者“纯化的蛋白质”或者“纯化的核酸”是指感兴趣的多肽或核酸或者其片段，其基本上没有与所述感兴趣的多肽或者多核苷酸天然结合的细胞成分，例如含有低于大约50％、优选低于大约70％、以及更优选低于大约90％的所述成分。

[0050] 术语“分离的”是指将所述材料从其原始环境(例如如果其是天然发生的，则为天然环境)中取出。例如，存在于活动物体内的天然发生的多核苷酸或者多肽不是分离的，但是与一些或者所有天然系统中共存的材料分开的相同多核苷酸或者DNA或者多肽则是分离的。这种多核苷酸可以是载体的一部分和/或这种多核苷酸或者多肽可以是组合物的一部分，且在所述载体或者组合物不是其天然环境的一部分的情况下仍是分离的。

[0051] “多肽”和“蛋白质”在本文可互换使用，并包括下文描述的所有多肽。多肽的基本结构为本领域熟知且已经在本领域的众多教科书及其它出版物中有描述。在此背景下，该术语在本文是指包含两个或更多个在线性链中通过肽键彼此连接的氨基酸的任何肽或者蛋白质。如本文所用，该术语既是指短链通常在本领域也称作肽、寡肽和寡聚体，也是指长链通常在本领域称作蛋白质，其有许多类型。

[0052] 应意识到多肽常含有除了通常称作20个天然发生氨基酸的20个氨基酸之外的氨基酸，且许多氨基酸、包括末端氨基酸在给定的多肽中可以是修饰的，所述修饰或者通过天然过程如加工及其它翻译后修饰进行，也可以通过本领域熟知的化学修饰技术进行。尽管在多肽中天然发生的一般修饰太多以至于不能在此详尽地列出，但是其在基础教科书中和在更详细的专著中以及在众多研究文献中有很好的描述，并且为本领域技术人员所熟知。在可以出现于本发明多肽中的已知修饰中，用于举例提及的有乙酰化、酰化、ADP-核糖基化、酰胺化、黄素的共价附着、血红素部分的共价附着、核苷酸或者核苷酸衍生物的共价附着、脂质或者脂质衍生物的共价附着、磷脂酰肌醇的共价附着、交联、环化、二硫键形成、去甲基化、共价交联形成、胱氨酸形成、焦谷氨酸形成、甲酰化、γ-羧化、糖基化、GPI锚形成、羟基化、碘化、甲基化、豆蔻酰化(myrisoylation)、氧化、蛋白酶解处理、磷酸化、异戊二烯化、外消旋作用、硒化、硫酸化、转移-RNA介导向蛋白质添加氨基酸，如精氨酰化，以及泛素化。

[0053] 这些修饰为本领域技术人员熟知，且已经在科学文献中有详细描述。一些特别常见的修饰例如糖基化、脂质附着、硫酸化、谷氨酸残基的γ-羧化、羟基化以及ADP-核糖基化在大部分基础教科书中描述，例如Proteins--Structure and Molecular Properties，2.sup.nd Ed.，T.E.Creighton，W.H.Freeman and Company，New York(1993)。在此问题上也有许多详细的综述可用，如例如Wold，F.，Posttranslational Protein Modifications：
Perspectives and Prospects，pg.1-12 in Posttranslational Covalent Modification of Proteins，B.C.Johnson，Ed.，Academic Press，New York(1983)、Seifter et al.，Analysis for protein modifications and nonprotein cofactors，Meth.Enzymol.182：
626-646(1990) 以 及 Rattan et al.，Protein synthesis：Posttranslational Modifications and Aging，Ann N.Y.Acad.Sci.663：48-62(1992)所述。

[0054] 应意识到且为本领域熟知及如上所述，多肽不总是完全线性的。例如，作为泛素化的结果，多肽可以是分支的，且其可以是有或者没有分支的环状，通常是作为翻译后修饰的结果，包括天然处理结果以及非天然发生的人工操控带来的结果。环状的、分支的以及分支环状的多肽也可以通过非翻译天然过程合成以及通过完全合成方法合成。

[0055] 修饰可以在多肽的任何部位发生，包括肽主链、氨基酸侧链以及氨基或者羧基末端。事实上，通过共价修饰封闭多肽中氨基或者羧基基团或者二者在天然发生的和合成的多肽中是常见的。例如，在大肠杆菌中产生的多肽的氨基末端残基在蛋白酶解处理之前几乎总是N-甲酰甲硫氨酸。

[0056] 在多肽中发生的修饰通常与其如何产生相关。例如对于通过在宿主中表达克隆的基因而产生的多肽而言，修饰的性质和程度大部分取决于宿主细胞翻译后修饰能力以及在多肽氨基酸序列中存在的修饰信号。例如，众所周知，通常在细菌宿主如大肠杆菌中不发生糖基化。因此，当需要糖基化时，多肽应在糖基化宿主、一般为真核细胞中表达。昆虫细胞通常进行与哺乳动物细胞相同的翻译后糖基化，且因此昆虫细胞表达系统已经被开发以有效表达具有糖基化天然模式的哺乳动物蛋白质。相似的考虑适用于其它修饰。

[0057] 应意识到相同类型的修饰可以以相同或者不同程度存在于给定多肽的几个部位。给定多肽也可以含有许多类型的修饰。

[0058] 通常，如本文所用，术语多肽涵盖了所有这些修饰，特别是通过在宿主细胞中表达多核苷酸而合成的多肽中存在的那些修饰。

[0059] 术语“成熟”多肽是指已经经历适于所述多肽和起源细胞的完全的翻译后修饰的多肽。

[0060] 特定多肽的“片段”是指这样的氨基酸序列，其包含衍生自该特定多肽的至少大约3-5个氨基酸，更优选至少大约8-10个氨基酸以及更优选至少大约15-20个氨基酸。

[0061] 术语“免疫学可鉴别”是指也存在于且为指定多肽所特有的表位和多肽的存在。免疫学相同性可以通过抗体结合和/或结合竞争确定。表位的独特性也可以通过计算机在已知数据库如GenBank检索编码表位的多核苷酸序列以及通过与其它已知蛋白质进行氨基酸序列对比而确定。

[0062] 如本文所用，“表位”是指多肽或者蛋白质的抗原决定簇。可以想象，表位在对该表位是独特的空间构象中可包含三个氨基酸。通常，表位由至少5个这种氨基酸组成，而更通常是由至少8-10个氨基酸组成。检验空间构象的方法为本领域已知，包括例如X射线结晶学和二维核磁共振。

[0063] “构象表位”是这样的表位，其包含在免疫学可识别结构中氨基酸的特定并列(juxtaposition)，这种氨基酸以毗邻或者非毗邻顺序存在于同一多肽上或者存在于不同多肽上。

[0064] 当多肽由于所述多肽中含有的特定表位的抗体识别能力而与抗体结合时，则所述多肽与抗体是“免疫学反应性的”。免疫学反应性可以通过抗体结合确定，更特别是可通过抗体结合动力学和/或通过使用已知多肽作为竞争剂的结合竞争而确定，所述已知多肽含有抗体所针对的表位。确定多肽是否与抗体是免疫学反应性的方法为本领域已知。

[0065] 如本文所用，术语“含有感兴趣表位的免疫原性多肽”是指天然发生的感兴趣多肽或者其片段，以及通过其它方式制备的多肽，例如通过化学合成或者在重组生物体中多肽的表达。

[0066] “纯化的产物”是指这样的产物制备物，其已经与所述产物正常相关联的细胞组成部分及与可以存在于感兴趣的样品中的其它类型细胞分离。

[0067] 如本文所用，“分析物”是测试样品中可能存在的待检测的物质，包括感兴趣的生物分子、小分子、病原体等。分析物可包括蛋白质、多肽、氨基酸、核苷酸靶等。分析物可在如血液、血浆或者血清、尿液等体液中是可溶的。分析物可以在组织中，在细胞表面或者在细胞内。分析物可以在分散于体液如血液、尿液、乳房抽吸液中的细胞上或其内，或者作为活组织检查的样品而获得。

[0068] 如本文所用，“特异性结合成员”是指特异性结合对的成员。即两个不同的分子，其中一个分子通过化学或者物理方式特异性结合另一分子。因此，在通常的免疫测定的抗原与抗体特异性结合对之外，其它特异性结合对可包括生物素和抗生物素蛋白、碳水化合物和凝集素、互补核苷酸序列、效应物和受体分子、辅因子和酶、酶抑制剂、以及酶等。此外，特异性结合对可包括是原始特异性结合成员的类似物的成员，例如分析物-类似物。免疫反应性特异性结合成员包括抗原、抗原片段、抗体以及抗体片段、其单克隆和多克隆及复合物，包括通过重组DNA分子所形成的那些。

[0069] 特异性结合成员包括“特异性结合分子”。“特异性结合分子”意指任何特异性结合成员，特别是免疫反应性特异性结合成员。如此，术语“特异性结合分子”涵盖抗体分子(得自多克隆和单克隆制备物)以及如下：杂种(嵌合)抗体分子(见例如Winter，et al，Nature 349：293-299(1991)和美国专利No.4,816,567)；F(ab′)2和F(ab)片段；Fv分子(非共价异源二聚体，见例如Inbar，et al.，Proc.Natl.Acad.Sci.USA 69：2659-2662(1972)和Ehrlich，et al.，Biochem.19：4091-4096(1980))；单链Fv分子(sFv)(见例如Huston，et al，Proc.Natl.Acad.Sci.USA 85：5879-5883(1988))；人源化抗体分子(见例如Riechmann，et al.，Nature 332：323-327(1988)，Verhoeyan，et al.，Science
239：1534-1536(1988)以及1994年9月21日公开的英国专利出版物No.GB2,276,169)；以及得自这种分子的任何功能片段，其中这种片段保留亲代抗体分子的免疫学结合性质。

[0070] 如本文所用，术语“半抗原”是指部分抗原或者非蛋白质结合成员，其能结合抗体，但是除非其与载体蛋白(carrier protein)结合否则不能激发抗体形成。

[0071] 如本文所用，“捕获试剂”是指未标记的特异性结合成员，其特异于夹层测定中的分析物、特异于竞争测定中的指示试剂或者分析物，或者特异于辅助特异性结合成员，其自身如在间接测定中一样特异于分析物。所述捕获试剂在进行所述测定之前或者期间可以直接或者间接结合于固相材料，从而使得可以从检测样品中分离固定的复合物。

[0072] “指示试剂”包含“产生信号的化合物”(“标记”)，其能够生成以及产生可通过外部方式检测的可测量信号。在一些实施方案中，所述指示试剂与特异性结合成员缀合(附着)。除了是特异性结合对的抗体成员之外，所述指示试剂也可以是任何特异性结合对的成员，包括半抗原-抗-半抗原系统如生物素或者抗生物素、抗生物素蛋白或者生物素、碳水化合物或者凝集素、互补核苷酸序列、效应物或者受体分子、酶辅因子和酶、酶抑制剂或者酶等。免疫反应性特异性结合成员可以是抗体、抗原、或者抗体/抗原复合物，其在夹层测定中能结合感兴趣的多肽、在竞争测定中能结合捕获试剂或者在间接测定中能结合辅助特异性结合成员。当描述探针和探针测定时，可以使用术语“报道分子”。报道分子包含如上文所述的产生信号的化合物，其与特异性结合对的特异性结合成员缀合，如咔唑或者金刚烷。

[0073] 预期的各种“产生信号的化合物”(标记)包括产色原(chromagen)，催化剂如酶，发光化合物如荧光素和罗丹明，化学发光化合物如二氧环乙烷(dioxetane)、吖啶鎓(acridinium)、菲啶鎓(phenanthridinium)以及鲁米诺，放射性元素和直接观测标记。酶的例子包括碱性磷酸酶、辣根过氧化物酶、β-半乳糖苷酶及类似等。特定标记的选择不是关键的，但是其应能够由其自身或者与一或多种其它物质一起产生信号。

[0074] “固相”(“固体支持物”)为本领域已知的那些，包括反应盘的孔壁、试管、聚苯乙烯珠、磁性或者非磁性珠、硝化纤维条、膜、微粒如乳胶颗粒等。所述“固相”不是关键的，可以由本领域技术人员选择。因此，乳胶颗粒、微粒、磁性或者非磁性珠、膜、塑料管、微滴定孔壁、玻璃或者硅芯片均是合适的例子。预期到并且在本发明范围内的是，所述固相也可包含任何合适的多孔材料。

[0075] 如本文所用，术语“检测”可以描述对可检测地标记的组合物进行的一般性的揭示或者识别的行为作用或者特异性的观测。

[0076] 术语“多核苷酸”是指核糖核酸(RNA)、脱氧核糖核酸(DNA)、修饰的RNA或者DNA、或者RNA或DNA模拟物的聚合物。因此，这个术语包括由天然发生的核碱基、糖和共价核苷酸间(主链)键组成的多核苷酸，以及具有起相似作用的非天然发生部分的多核苷酸。这种修饰的或者取代的多核苷酸为本领域所熟知，且对于本发明的目的而言被称作“类似物”。

[0077] 如本文所用，术语“核酸分子”是指任何含有核酸的分子，包括但不限于DNA或者RNA。该术语涵盖了包括DNA和RNA的任何已知碱基类似物的序列，包括但不限于：4-乙酰-胞嘧啶、8-羟基-N6-甲基腺苷、氮杂环丙基-胞嘧啶、假异胞嘧啶、5-(羧基羟基甲基)尿嘧啶、5-氟尿嘧啶、5-溴尿嘧啶、5-羧甲基氨基甲基-2-硫尿嘧啶、5-羧甲基氨基甲基尿嘧啶、二氢尿嘧啶、肌苷、N6-异戊烯基腺嘌呤、1-甲基腺嘌呤、1-甲基假尿嘧啶、1-甲基鸟嘌呤、1-甲基肌苷、2，2-二甲基鸟嘌呤、2-甲基腺嘌呤、2-甲基鸟嘌呤、3-甲基胞嘧啶、5-甲基胞嘧啶、N6-甲基腺嘌呤、7-甲基鸟嘌呤、5-甲基氨基甲基尿嘧啶、5-甲氧基氨基甲基-2-硫尿嘧啶、β-D-甘露糖基辫苷(β-D-mannosylqueosine)、5’-甲氧基羰基甲基尿嘧啶、5-甲氧基尿嘧啶、2-甲基硫-N6-异戊烯基腺嘌呤、尿嘧啶-5-氧乙酸甲基酯、尿嘧啶-5-氧乙酸、氧基丁氧苷(oxybutoxosine)、假尿嘧啶、辫苷(queosine)、2-硫胞嘧、5-甲基-2-硫尿嘧啶、2-硫尿嘧啶、4-硫尿嘧啶、5-甲基尿嘧啶、N-尿嘧啶-5-氧乙酸甲基酯、尿嘧啶-5-氧乙酸、假尿嘧啶、辫苷、2-硫胞嘧啶以及2，6-二氨基嘌呤。

[0078] 术语“基因”是指核酸(例如DNA)序列，其包含产生多肽、前体或者RNA(例如rRNA、tRNA)所必需的编码序列。多肽可以由全长编码序列或者由所述编码序列的任何部分编码，只要保留所希望的其全长或者片段的活性或者功能性质(例如酶活性、配体结合、信号转导、免疫原性等)即可。该术语也涵盖结构基因的编码区和在5’和3’末端分别与该端距离大约1kb或更多邻近编码区的序列，由此所述基因相应于全长mRNA的长度。位于编码区5’端并在mRNA上出现的序列被称作5’非翻译序列。位于编码区3’端或者下游并在mRNA上出现的序列被称作3’非翻译序列。术语“基因”涵盖了基因的cDNA和基因组形式。基因的基因组形式或者克隆含有由称作“内含子”或者“间插区”或者“间插序列”的非编码序列中断的编码区。内含子是基因被转录到核RNA(hnRNA)内的节段；内含子可含有调节元件如增强子。内含子从核或原始转录物中被除去或者“剪除”，因此内含子在信使RNA(mRNA)转录物中缺失。mRNA在翻译期间给定新生多肽中氨基酸的序列或者顺序。

[0079] 术语“核酸扩增试剂”包括用于扩增反应的常规试剂，包括但不限于具有聚合酶活性的一或多种酶、酶辅因子(如镁或者烟酰胺腺嘌呤二核苷酸(NAD))、盐、缓冲液、脱氧核苷三磷酸(dNTP；例如脱氧腺苷三磷酸、脱氧鸟苷三磷酸、脱氧胞苷三磷酸以及脱氧胸苷三磷酸)以及调节聚合酶活性或者引物特异性的其它试剂。

[0080] 如本文所用，术语“互补”或者“互补性”用于描述根据碱基配对规则相关联的多核苷酸(即核苷酸如寡核苷酸或者靶核酸的序列)。互补性可以是“部分的”，其中根据碱基配对规则仅一些核酸碱基匹配。或者，核酸之间可以是“完全”或者“全部”互补性。核酸链之间的互补性程度对于核酸链之间杂交的效率和强度具有显著作用。这在扩增反应以及依赖于核酸之间结合的检测方法中是特别重要的。

[0081] 术语“同源性”是指相同性的程度。可以有部分同源性或者完全同源性。部分相同的序列是与另一序列低于100％相同。

[0082] 如本文所用，术语“杂交”用于描述互补核酸的配对。杂交和杂交强度(即核酸之间结合的强度)受这样的因素影响，即核酸之间互补性的程度、所涉及条件的严格性、形成杂交体的Tm，以及核酸中G∶C比率。

[0083] 如本文所用，术语“Tm”用于描述“解链温度”。解链温度是在此温度下双链核酸分子群变成一半解离为单链的温度。计算核酸Tm的公式为本领域熟知。如标准参考所示，当核酸在1M NaCl水溶液中时，对Tm值的简便估计可以通过如下公式计算：Tm＝81.5+0.41(％G+C)(见例如Anderson and Young，Quantitative Filter Hybridization，in Nucleic Acid Hybridization(1985)。其它参考包括更精密的计算，其在对Tm的计算中考虑到结构以及序列特性。

[0084] 如本文所用，术语“严格性”用于描述温度、离子强度和其它化合物的存在的条件，在此条件下进行核酸杂交。在“高严格性”条件下，核酸碱基配对将仅在具有高频率互补碱基序列的核酸片段之间发生。因此，当希望杂交或者退火到一起的核酸彼此不完全互补时，通常需要“弱”或者“低”严格性条件。

[0085] 术语“野生型”是指具有分离自天然发生来源的基因或者基因产物的特性的基因或者基因产物。野生型基因是在群体中最常观测到的，并因此被专称作基因的“正常”或者“野生型”形式。相反，术语“修饰的”或者“突变体”是指当与野生型基因或者基因产物对比时在序列和/或功能性质(即改变的特性)中呈现修饰的基因或者基因产物。注意的是天然发生的突变体可以是分离的；这些通过这样的事实鉴别：即当与野生型基因或者基因产物相比时其具有改变的特性。

[0086] 如本文所用，术语“寡核苷酸”定义为包含两或更多个脱氧核糖核苷酸或核糖核苷酸的分子，优选至少5个核苷酸、更优选至少大约10-15个核苷酸以及更优选至少大约15-30个核苷酸或者更长。精确大小取决于许多因素，这些因素又继而取决于寡核苷酸的最终功能或者用途。寡核苷酸可以以任何方式产生，包括化学合成、DNA复制、逆转录或其组合。

[0087] 由于单核苷酸以如下方式反应产生寡核苷酸，即一个单核苷酸戊糖环的5’磷酸通过磷酸二酯键在一个方向与其相邻的3’氧原子附着，如果其5’磷酸未与单核苷酸戊糖环的3’氧原子连接，则将寡核苷酸的末端称作“5’末端”，如果其3’氧原子未与随后的单核苷酸戊糖环的5’磷酸连接，则将寡核苷酸的末端称作“3’末端”。如本文所用，即使核酸序列位于较大的寡核苷酸的内部，也可以称其具有5’和3’末端。当以5’至3’方向沿着核酸链行进时，如果沿核酸链的第一个区域的3’末端在第二个区域的5’末端之前，则称第一个区域在另一区域的上游。

[0088] 当两个不同的非重叠的寡核苷酸退火至相同线性互补核酸序列的不同区域并且一个寡核苷酸的3’末端朝向另一个的5’末端时，前者可以称作“上游”寡核苷酸，后者称作“下游”寡核苷酸。

[0089] 术语“引物”是指这样的寡核苷酸，当将其置于引物延伸起始的条件下时能发挥作为合成的起始点的作用。寡核苷酸“引物”可在如纯化的限制性消化中天然发生，或者可以合成产生。

[0090] 发明详述

[0091] 本发明涉及进行生物反应的系统、装置和方法。本发明特别涉及亲脂性屏障在样品分离、纯化、修饰和分析过程中的用途。

[0092] 如果需要，本发明的系统、装置和方法可以配置为便宜且易于使用的样品纯化和/或修饰和/或分析和/或检测系统。例如，本文描述的本发明的实施方案提供了经济的方法用于广泛的生物分子检测、分析和鉴定。这些系统、装置和方法具有许多用途。为了举例说明本发明的方面和益处，下文提供了其在核酸和蛋白质分析、特别是监测HIV感染和状态中的应用。本发明不限于这些举例说明性的实施方案。在一些实施方案中，本发明的系统、装置和方法与现有复杂昂贵的样品分离、纯化、修饰和分析设备一起应用。例如，在一些实施方案中，本发明的方法用于在使用传统设备(例如热循环仪、质谱分析仪、NMR装置等)修饰和/或分析之前进行样品分离(例如核酸或者多肽纯化)。

[0093] 有三千五百万成年人和儿童忍受HIV/AIDS，其中两千两百万在撒哈拉沙漠以南非洲。在非洲一般的诊所治疗大约400名患者，而运输的问题导致诊所数目增加而不是大型中心机构的增长。因此，需要超过100,000台病毒负荷测量仪器。目前可利用的病毒负荷测定的主要局限包括所需仪器的成本、复杂耗时的程序，导致需要高度培训的人员及需要试剂的低温运输。

[0094] 可负担的简便HIV病毒负荷测定的开发是在发展中国家改善AIDS患者护理质量的关键步骤。这需要将通常在中心实验室进行的自复杂诊断程序自动化成小的床旁(POC)装置；这个能力可以准许卫生保健工作人员和患者即使在最远程情况下也获得重要健康相关信息。所需的HIV病毒负荷测定应优选在床旁给予答复，但是将其从远程中心实验室转移至距患者较近的社区医院实验室将改善结果。这种装置将以短的周转时间和可负担的成本进行HIV的分离、扩增和检测。短时是关键，因为这样将减少门诊需要的机器数量以及缩短患者在门诊花费的时间，从而降低实际成本。

[0095] 当在中心实验室及外出到现场(out in the field)进行HIV病毒负荷测定时必须克服许多挑战。大的实验室使用自动化或者半自动化机器人系统来进行大体积HIV病毒负荷测定。然而，样品处理是这些检测的典型地最麻烦部分。目前，样品处理程序包括许多步骤，通常需要离心和提取步骤。这些方法通常也不足以纯化靶核酸。其通常在反应混合物中遗留抑制性或者干扰物质，引起扩增反应的抑制以及导致假阴性结果。目前样品处理技术的人工操作性质也可导致标本交叉污染，其可导致假阳性结果。

[0096] 已经进行可观的尝试试图使样品制备过程自动化，因为这样可以更广泛使用PCR或者其它核分析技术。然而，现有的自动化高通量系统进行多个提取和纯化步骤，且仍需要某些人工制备，包括样品和试剂装载以及废弃物去除。因此，需要高度培训的技术人员来进行测定和维护仪器。自动化系统非常昂贵，因为其使用复杂的机械臂来转移溶液或者磁性颗粒以及使用精确仪器来对液体进行移液。自动化系统的成本通常难以适合较小的实验室，尤其是在资源有限的那些实验室。交叉污染也是一个问题，因为其应用扩增技术。临床实验室通常使用单独的室进行试剂制备、样品制备、扩增和扩增后分析。由于这些原因，尽管已自动化，病毒负荷检测在临床实验室改进修正案(CLIA)中仍被认为是高复杂性测试。迄今为止，对于免除CLIA的状况(CLIA-waived status)还没有合格的核酸测试(NAT)系统，大部分是由于使样品制备和试剂处理自动化中的困难所致。

[0097] 进行现场使用或者接近患者的NAT涉及甚至更多挑战，尤其是因为其不可避免地由经验较少的使用者在非实验室环境中进行。目前已经开发了如下系统用于在现场部署NAT。

[0098] Cepheid(Sunnyvale，CA)的GeneXpert系统是最早的基于PCR的仪器之一，其集成了样品制备、扩增和检测。可抛弃性的单次测试GeneXpert样品制备药筒(cartridge)由四个功能部件组成：盖子、筒体、阀门体组件以及小体积PCR反应管。筒体内部分为许多各种大小和功能的室，一些室含有冻干的试剂珠，并且每个在底部均具有一个开口(port)用于流体流入和流出。所述室围绕中心的注射桶成放射状排列。阀门体组件位于筒体下面，是细胞分解和DNA纯化部位，在软件控制下，仪器上的旋转阀使得阀门体组件移动，从而使流体可以从合适的室内吸出或者分配至其中，用于根据程序化测定方案来进行混合、稀释和洗涤。反应管突出于筒体外，接受制备的样品并连接PCR反应器以进行靶分析物的扩增和检测。为了在GeneXpert系统上进行测试，操作者打开筒盖，将液体样品装载入样品室内。当操作者关闭盖时，所述药筒在整个检测程序和生物毒害清除中被持久密封，消除样品交叉污染的任何风险。通过在药筒下直接产生的超声搅动阀门体组件中的微小玻璃珠而使细胞分解。提取的DNA流入含有固定化DNA探针的微流体通道中，DNA作为细胞碎片流经所述探针。之后结合的DNA被从其附着部位释放并洗脱以进行PCR扩增。

[0099] 由IQuum Inc(Allston，MA)开发的另一系统是Liat Molecular Analyzer，基于其专有的lab-in-a-tube(Liat)技术平台。所述Liat试管使用柔性试管作为样品容器，并在试管节段中含有预先包装的所有测定试剂。单位剂量试剂和内部对照物可以通过使用可剥离的封条以用于测定的顺序分别地置于一系列试管节段中。所述可剥离的封条通过塑料试管的热焊接形成。通过对邻近每个封条的试管节段施加压力，所述封条可爆开而释放试剂。在Liat分析仪中，多个样品处理器模块与Liar试管排列在一起。每个模块由执行器(actuator)和夹具组成，其位置可被控制以操纵试管内的测试样品。可收回的磁体附着于一个模块以操纵磁珠。当将试管装载入分析仪中时，所述执行器和夹具相继挤压试管以使试剂和对照物从一个节段移动到另一个。相似地，通过同步执行器与夹具的动作，可以在试管内进行各种样品处理过程。这些过程包括调节节段中的液体体积；释放试剂至相邻节段；混合试剂与样品；在给定温度搅动并温育反应混合物；以及洗涤及从节段中除去废弃物。
废弃物移向盖子中的废弃物室，而纯化的样品移向该管的更下层。在最下面的室内，释放的DNA被扩增。

[0100] 用于现场使用的其它商业化实时PCR装置包括Idaho Technology Inc.(Salt Lake City)提供的Ruggedized Advanced Pathogen Identification Device、Lawrence Livermore National Laboratory(Livermore，CA)提供的Hand-HeldAdvanced Nucleic Acid Analyzer，以及Smiths Detection(Pine Brook，NJ)提供的Bio-Seeq检测仪。然而，这些装置不具有自动化样品制备和试剂处理功能。

[0101] 上述系统是在正确方向上的步骤。然而，GeneXpert在操作上仍具有一定复杂性，并需要经培训的技术人员操作。由于其需要使用者现场移液，因此需要精确测量仪器，这进一步增加了该系统成本。尽管Liar Molecular Analyzer不包括在现场测量精确液体体积，但是由于需要复杂机械系统以精确移动流体而成本较高。Liat试管难以生产，使得质量控制较难。所述试管难以贮存且具有渗漏问题。

[0102] 小量的分子如蛋白质和化学试剂的受控移动和输送代表了微流体技术中的一个现有的挑战，且对于开发POC装置如HIV病毒负荷装置有关键重要性。大多数微流体系统依赖于流体运动以使分子溶液从一个部位移向另一部位，结果这些系统非必须地消耗溶剂和材料且涉及控制流体流动的复杂机械系统。本发明的实施方案提供了另外的方法解决此问题，该方法使用磁性微粒作为载体使分子从一个反应介质移至下一介质并从该系统中去除了所有的流体流。其中磁性颗粒由磁力操纵的这种方法使得可以进行复杂的化学反应，如以低成本在密封药筒中进行的病毒负荷测试。由于该反应中的驱动力是磁场，因此该系统可以是自动化的，使得可以构建便携可靠系统进行病毒负荷测试而无污染问题。虽然当前系统举例用于HIV病毒RNA的样品纯化，但是该平台可轻易地扩展至其它核酸测试和免疫测定，以及其它感兴趣的生物分子或者非生物分子的检测。

[0103] 本发明的实施方案提供了用于在单一仪器中进行样品纯化和分析测定的装置。在一个举例的实施方案中(见例如实施例1)，其包括使用磁性颗粒作为固相以捕获RNA，随后纯化及释放RNA以进行扩增和检测。

[0104] 常规装置通过交换与固相接触的溶液而进行测定。所述固相可以是微滴定孔、微粒或者包装的柱。即使当固相是顺磁性颗粒(PMP)时，也典型在单一容器中通过磁性捕获微粒并交换溶液来进行测定。本发明的实施方案使用多个室容纳测试样品和基于水或者水-醇混合物洗涤缓冲液以及进行分析的缓冲液。室内的基于水的溶液由与该溶液不混溶的亲脂性材料(例如蜡或者油)分隔。在一些实施方案中，使用蜡材料和孔进行举例说明。不同孔中的蜡彼此连接形成蜡通道(图1)。所述蜡可以是固化的以便于贮存和运输。在测定期间，使蜡熔化并将PMP拖入蜡中，并通过将其从一个室穿过蜡移至另一室。磁场用于产生移动PMP及使其穿过基于水的溶液与蜡之间界面所需要的力。最大的力用于移动颗粒经过该界面并使用柔性顶部平板以使磁体接近该界面并降低产生所述力所需的磁体的强度。

[0105] 移动PMP而非液体消除了在自动化处理器中对泵和抽吸器的需要以及对培训技术人员等分液体的需要。蜡的使用消除了对在床旁分析仪中使用的单次使用测试药筒中室之间阀门的需求。通过减少从一个孔转至(carry over)下一孔的液体量也减少了从一个室转至下一室的抑制剂的量。由于用于移动颗粒的力是磁力，因此该系统可以是完全密闭的，显著降低了污染风险，污染是灵敏性测定如PCR的主要问题。

[0106] I.装置

[0107] 如上所述，本发明提供了产生和使用低成本装置进行样品制备和分析的能力。在一些实施方案中，所述装置是单次使用或者多次使用和可抛弃性的。在一些实施方案中，所述装置使用塑料(或者其它材料)药筒，其包含多个样品处理(例如样品制备和/或分析)孔。每个孔包含用于样品制备或者分析的试剂。试剂的性质依赖于所使用的特定样品及分析方法。在一些实施方案中，所述药筒由化学惰性且提供适当机械强度的任何材料组成。在一些实施方案中，所述药筒使用箔层压板构造，其包含用作蒸汽屏障目的的铝层以及与试剂接触的惰性聚合物层。在涉及RNA纯化和分析的实施方案中(例如病毒检测或者荷载测定)，优选所述药筒是无RNA和RNAse的。本领域已知的灭菌方法可用于在使用之前对所述药筒进行灭菌。

[0108] 本发明实施方案的药筒用分隔样品处理室的材料覆盖。在一些实施方案中，所述材料是亲脂性材料，其具有相变特性且与样品制备和分析的试剂以及样品中可干扰扩增和检测的物质不混溶。在一些实施方案中，所述材料是蜡。在一些实施方案中，所述蜡在室温是液体。在其它实施方案中，所述蜡在室温是固体而在适于反应的温度是液体。在其它实施方案中，所述亲脂性材料是油。所述亲脂性材料可以在使用温度、大小排阻、稳定性等方面加以选择以最适用于感兴趣的特定分子。

[0109] 在一些实施方案中，所述亲脂性材料分隔样品处理室。在其它实施方案中，所述亲脂性材料位于室之间，但是在室之间不形成物理屏障。在这种实施方案中，样品在穿过所述亲脂性材料之前或者之后可以穿过空气或者其它试剂。

[0110] 本发明不限于特定的亲脂性材料。在一些实施方案中，亲脂性材料在水和醇中不混溶，在水中呈现出低溶解性(例如ppm)，是化学惰性的，具有与测定处理相适合的熔点和沸点(例如全氟化己烷(perfluorohexame)具有56℃的bp)，具有与水不同的比重(例如在水中漂浮或者下沉)，具有低膨胀系数，以及在50℃长期稳定(例如几周、几个月或者几年)。

[0111] 可用于本发明实施方案中的可商购亲脂性材料包括但不限于Chill-Out14蜡(MJ Research)，石蜡蜡如IGI 1070A，微晶蜡如IGI Micosere 5788A，大豆和棕榈蜡如IGI R2322A，蜡烛蜡如IGI 6036A，热固性蜡如IGI Astorstat75，热熔性胶粘剂，无规聚丙烯和聚烯烃化合物，石油蜡以及牙科用蜡。

[0112] 在其它实施方案中，使用天然蜡如动物蜡(例如蜂蜡、羊毛脂或者)牛脂，植物蜡(例如巴西棕榈蜡、大戟蜡和大豆蜡)或者矿物质蜡如化石或者泥土(例如地蜡或者褐煤蜡)或者石油蜡(例如石蜡或者微晶蜡)。在其它实施方案中，使用合成的(人造)蜡如乙烯(ethylenic)聚合物(例如聚乙烯或者多元醇醚-酯)、氯化萘或者碳氢化合物类型蜡(例如Fischer-Tropsch)。

[0113] 在一些实施方案中，使用油如矿物质油、石蜡油、硅油、氟硅氧烷、氟代烃油(例如来自3M的Fluorinert FC-40)、全氟化碳液(例如来自F2Chemicals的Flutec Fluids)、全氟萘烷(例如来自Aldrich的P9900，FlutecPP6，FluoroMed APF-140HP)、全氟全氢化菲(perfluoroperhydrophenanthrene)(例如FluoroMed APF-215M)或者全氟化辛基溴(perfluorooctylbromide)(例如FluoroMed APF-PFOB)。

[0114] 其它的屏障材料包括但不限于1，4-二恶烷、乙腈、乙酸乙酯、叔丁醇、环己酮、二氯甲烷、叔戊醇、叔丁基甲基醚、丁基乙酸酯、己醇、硝基苯、甲苯、辛醇、辛烷、碳酸丙烯酯以及环丁砜(见例如Chin et al.，Biotechnology and Bioengineering 44：140(1994)，以其全部内容援引加入本文)。

[0115] 在进一步实施方案中，使用离子性液体(例如BMIM[PF6]、BMIM[Tf2N]和OMA[Tf2N]，其中：BMIM-双(三氟甲烷磺酰基)亚胺，PF6＝1-n-丁基-3-甲基咪唑六氟磷酸酯/盐，TfN2＝双(三氟甲基磺酰基)亚胺，以及OMA＝甲基三辛基铵)作为屏障材料。

[0116] 在其它实施方案中，使用1-丁基-3-甲基咪唑四氟硼酸盐/酯ECOENGTM21M、1-乙基-3-羟基甲基吡啶鎓硫酸乙酯(1-Ethyl-3-hydroxymethylpyridinium ethylsulfate)、丁基 甲基吡 咯烷 鎓双(三 氟甲 基磺酰 基)亚胺 (Butylmethylpyrrolidinium TM TMbis(trifluoromethylsulfonyl)imide)、ECOENG 212或 者ECOENG 1111P( 均 可 从Solvent Innovations获得)作为屏障材料。

[0117] 所述装置的不同隔间中提供的试剂可以是进行样品制备和分析的任何试剂。例子包括但不限于细胞裂解缓冲液、洗涤缓冲液、亲和性试剂、洗脱缓冲液以及用于生物测定的反应成分。本发明的装置适于纯化各种生物分子，包括但不限于核酸(例如RNA、基因组DNA、寡核苷酸等)、蛋白质(例如肽、肽片段、寡聚蛋白质、蛋白质复合物、膜蛋白等)以及抗体。本发明的装置适于进行任何数目的生物测定，包括但不限于RNA或者DNA扩增(例如PCR、TMA、NASBA)、核酸检测(例如杂交测定)以及免疫测定。

[0118] 在一些实施方案中，所述装置包括将样品从该装置的一个隔间转运至下一隔间的部件。在一些实施方案中，样品与磁珠结合，转运部件是磁体。在其它实施方案中，转运部件产生电流以转运样品。在进一步实施方案中，使用离心力转运样品，转运部件产生这种力(例如通过移动该装置产生)。在其它实施方案中，使用比重大于水的流体，从而该流体不用机械干预而流动。

[0119] 在一些实施方案中，所述装置包括检测部件以检测标记的或者另外存在的生物样品或者测定产物。例子包括但不限于分光光度计、质谱分析仪、NMR、显微镜等。在一些实施方案中，从该装置的最后隔间直接对产物读数(例如使用用于分光术的窗)。在其它实施方案中，从所述装置取出产物(例如使用该装置的自动化部件)进行检测。

[0120] 本发明的实施方案进一步提供了这样的装置，其包含由亲脂性材料“壁”分隔的反应物的流动室(例如垂直柱)，所述“壁”防止反应物混合但是允许微粒通过(例如由磁体转运的磁性颗粒)。

[0121] 在一些实施方案中，所述装置及其应用是自动化的。自动化系统包括样品纯化和分析装置、移动样品通过该装置的转运部件，以及足够或者用于过程自动化的任何其它必需部件(例如预处理试剂和样品转运或者分析后检测或者进一步分析部件)。在使用磁性转运的一些实施方案中，转运部件包含在该装置的室之间移动的磁体。在其它实施方案中，所述装置相对于静止磁体或者其它转运装置而移动。

[0122] II.方法

[0123] 如上所述，本发明提供了样品制备和分析装置及使用所述装置的方法。

[0124] A.样品

[0125] 根据本发明揭示的方法，可以检测怀疑含有待纯化和/或分析的预期材料的任何样品。在一些实施方案中，所述样品是生物样品。这种样品可以是细胞(例如怀疑感染了病毒的细胞)、组织(例如活组织检查样品)、血液、尿液、精液，或者其一部分(例如血浆、血清、尿液上清、尿液细胞沉淀或者前列腺细胞)，其可以得自患者或者其它生物材料来源，例如尸检组织样品或者法医学材料。

[0126] 在将样品与装置接触之前或者作为装置或者自动化系统的一个部件，样品可以被处理以分离或者富集样品的所希望分子。使用标准实验室实践的各种技术可用于此目的，如例如离心、免疫捕获、细胞裂解以及核酸靶捕获。

[0127] 在其它实施方案中，本发明实施方案的方法用于纯化和/或分析完整细胞(例如原核细胞或者真核细胞)。

[0128] B.纯化方法

[0129] 在一些实施方案中，本发明的装置用于样品制备和纯化。可以利用任何合适的纯化方法，包括但不限于靶捕获、洗涤、沉淀等等。在一些实施方案中，样品纯化完全在所述装置中进行，且不需要任何额外的纯化步骤。纯化可以在一或多个反应室中进行。这样将降低纯化的复杂性以及减少成本。本领域技术人员意识到具体的纯化方法取决于靶生物样品的性质。

[0130] C.修饰/分析/检测

[0131] 纯化的样品可以通过使用任何合适方法检测，包括但不限于本文揭示的那些方法。下文举例描述了针对生物分子如核酸和蛋白质的示例技术。根据希望或者需要，其它技术可用于生物分子或者非生物分子。

[0132] i.核酸检测

[0133] 核酸修饰/分析/检测方法的例子包括但不限于核酸测序、核酸杂交以及核酸扩增。用于举例说明的非限制性核酸测序技术的例子包括但不限于链终止子(Sanger)测序和染料终止子测序。本领域技术人员将意识到由于RNA在细胞中较不稳定且更易于受核酸酶攻击，因此实验上RNA在测序之前通常被逆转录为DNA。用于举例说明的非限制性核酸杂交技术的例子包括但不限于原位杂交(ISH)、微阵列以及Southern或者Northern印迹。核酸可以在检测之前或者在检测同时被扩增。

[0134] 用于举例说明的非限制性核酸扩增技术的例子包括但不限于聚合酶链反应(PCR)、逆转录聚合酶链反应(RT-PCR)、转录介导的扩增(TMA)、连接酶链反应(LCR)、链置换扩增(SDA)以及基于核酸序列的扩增(NASBA)。本领域技术人员将意识到某些扩增技术(例如PCR)需要在扩增前将RNA逆转录为DNA(例如RT-PCR)，而其它扩增技术直接扩增RNA(例如TMA和NASBA)。

[0135] 聚合酶链反应(美国专利No.4,683,195、4,683,202、4,800,159和4,965,188，每个专利均以其全部内容援引加入本文)，通常称作PCR，其使用多次循环的变性、引物对与相反链退火以及引物延伸，使得靶核酸序列的拷贝数呈指数增长。在称作RT-PCR的变化中，逆转录酶(RT)用于从mRNA中产生互补DNA(cDNA)，然后通过PCR扩增该cDNA产生DNA的多个拷贝。关于其它各种PCR的变化，见例如美国专利No.4,683,195、4,683,202和4,800,159；Mullis et al，Meth.Enzymol.155：335(1987)以及Murakawa et al.，DNA 7：
287(1988)所述，所述每个文献均以其全部内容援引加入本文。

[0136] 转录介导的扩增(美国专利No.5,480,784和5,399,491，所述文献均以其全部内容援引加入本文)，通常称作TMA，其在基本恒定的温度、离子浓度以及pH条件下自催化地合成靶核酸序列的多个拷贝，其中靶序列的多个RNA拷贝自催化地产生另外的拷贝。见例如美国专利No.5,399,491和5,824,518，所述文献均以其全部内容援引加入本文。在U.S.公开号20060046265(在此以其全部内容援引加入)中所描述的变化中，TMA任选结合使用封闭部分、终止部分及其它修饰部分以改善TMA过程的灵敏性和精确性。

[0137] 连接酶链反应(Weiss，R.，Science 254：1292(1991)，在此以其全部内容援引加入)，通常称作LCR，其使用与靶核酸的相邻区域杂交的两组互补DNA寡核苷酸。在热变性、杂交和连接的重复循环中，DNA寡核苷酸通过DNA连接酶共价连接，产生可检测的双链连接的寡核苷酸产物。

[0138] 链置换扩增(Walker，G.et al，Proc.Natl.Acad.Sci.USA 89：392-396(1992)；美国专利No.5,270,184和5,455,166，所述文献在此以其全部内容援引加入)，通常称作SDA，其使用引物对序列与靶序列的相反链退火、在存在dNTPαS的条件下引物延伸循环以产生双链半硫代磷酸化(hemiphosphorothioated)引物延伸产物，内切核酸酶介导半修饰的限制性内切核酸酶识别位点的切口，以及聚合酶介导的从切口的3’末端的引物延伸以置换现有链及产生用于下一循环引物退火、切口和链置换的链，导致产物呈几何级数扩增。嗜热SDA(tSDA)在基本相同的方法中在较高温度使用嗜热内切核酸酶和聚合酶(EP Pat.No.0684 315)。

[0139] 其它扩增方法包括例如：基于核酸序列的扩增(美国专利No.5,130,238，在此以其全部内容援引加入)，通常称作NASBA；其使用RNA复制酶扩增探针分子自身(Lizardi et al.，BioTechnol.6：1197(1988)，在此以其全部内容援引加入)，通常称作Qβ复制酶；基于转录的扩增方法(Kwoh et al.，Proc.Natl.Acad.Sci.USA 86：1173(1989))；以及自动维持序列扩增(Guatelli et al.，Proc.Natl.Acad.Sci.USA 87：1874(1990)，所述文献在此均以其全部内容援引加入)。对于已知扩增方法的进一步论述见Persing，David H.，″In Vitro Nucleic Acid Amplification Techniques″in Diagnostic Medical Microbiology：Principles and Applications(Persing et al.，Eds.)，pp.51-87(American Society for Microbiology，Washington，DC(1993))。

[0140] 未扩增的或者扩增的靶核酸可以通过任何常规方式检测。例如，靶mRNA可以通过与可检测地标记的探针杂交及测量所得杂交体而进行检测。用于举例说明的非限制性检测方法的例子如下文描述。

[0141] 一种用于举例说明的检测方法是杂交保护测定(HPA)，其涉及将化学发光寡核苷酸探针(例如吖啶鎓酯(acridinium ester，AE)标记的探针)与靶序列杂交，选择性水解在未杂交探针上呈现的化学发光标记，以及在光度计中测量从剩余探针中产生的化学发光。见例如美国专利No.5,283,174和Norman C.Nelson et al.，Nonisotopic Probing，Blotting，and Sequencing，ch.17(Larry J.Kricka ed.，2d ed.1995，所述文献在此均以其全部内容援引加入本文)。

[0142] 另一用于举例说明的检测方法提供了对扩增过程的实时定量评估。对扩增过程的“实时”评估涉及在扩增反应期间持续或者定期确定反应混合物中扩增子的量，以及使用所确定的值计算样品中最初存在的靶序列的量。基于实时扩增的确定样品中最初存在的靶序列的量的许多方法是本领域熟知的。这些方法包括在美国专利No.6,303,305和6,541,205中揭示的方法，所述文献在此以其全部内容援引加入。不基于实时扩增的确定样品中最初存在的靶序列的数量的另一方法在美国专利No.5,710,029中揭示，所述文献在此以其全部内容援引加入。

[0143] 扩增产物可以通过使用各种自身杂交(self-hybridizing)探针实时检测，大多数所述探针具有茎-环结构。这种自身杂交探针被标记，从而其发射出可不同地检测的信号，这取决于探针是自身杂交状态还是经与靶序列杂交改变的状态。通过非限制性例子，“分子火炬(molecular torch)”是一类自身杂交探针，其包含自身互补性的独特区域(称作“靶结合结构域”和“靶闭合结构域(closing domain)”)，其通过结合区(例如非核苷酸接头)连接起来且其在预定的杂交测定条件下彼此杂交。在优选的实施方案中，分子火炬在靶结合结构域中含有单链碱基区，其长度为1至大约20个碱基且易于在链置换条件下与存在于扩增反应中的靶序列接近而杂交。在链置换条件下，分子火炬的可以完全或者部分互补的两个互补区域的杂交是有优势的，除非存在靶序列，其将结合靶结合结构域中存在的单链区域并置换所有或者部分靶闭合结构域。分子火炬的靶结合结构域和靶闭合结构域包含可检测的标记或者一对相互作用标记(例如发光剂/猝灭剂)，所述标记经定位使得当该分子火炬自身杂交时与该分子火炬与靶序列杂交时产生不同的信号，从而可以在存在未杂交的分子火炬的条件下检测出检测样品中的探针：靶双链体。分子火炬和许多类型的相互作用标记对是已知的(例如美国专利No.6,534,274，所述文献在此以其全部内容援引加入)。

[0144] 另一具有自身互补性的检测探针的例子是“分子信标”(见美国专利No.5,925,517和6,150,097，所述文献在此以其全部内容援引加入)。分子信标包括这样的核酸分子，其具有靶互补序列、在扩增反应中不存在靶序列时使探针保持在密闭构象的亲和性对(或者核酸臂)、以及当探针处于密闭构象中时相互作用的标记对。靶序列与靶互补序列的杂交分开亲和性对的成员，从而使探针转变为开放构象。向开放构象的转变可以检测，这是因为标记对的相互作用降低，所述标记对可以是如荧光团与猝灭剂(例如DABCYL与EDANS)。

[0145] 其它自身杂交探针也为本领域技术人员熟知。非限制性例子，具有相互作用标记的探针结合对(例如见美国专利No.5,928,862，在此以其全部内容援引加入)可适用于本文所揭示的组合物和方法中。也可以使用用于检测单核苷酸多态性(SNP)的探针系统。其它检测系统包括“分子开关”(例如见U.S.Publ.No.20050042638，在此以其全部内容援引加入)。其它探针如那些包含插入染料和/或荧光染料的探针也可用于在本文揭示的方法中检测扩增产物(例如见美国专利No.5,814,447，在此以其全部内容援引加入)。

[0146] 在一些实施方案中，检测方法是定性的(例如特定核酸的存在与否)。在其它实施方案中，其是定量的(例如病毒负荷)。

[0147] ii.蛋白质检测

[0148] 蛋白质检测方法的例子包括但不限于酶测定、直接观测以及免疫测定。在一些实施方案中，免疫测定使用针对纯化蛋白质的抗体。这种抗体可以是多克隆或者单克隆的、嵌合的、人源化的、单链或者Fab片段，其可以被标记或者未标记，所有这些均通过使用熟rd知方法和标准实验室技术产生。见例如Burns，ed.，Immunochemical Protocols，3 ed.，Humana Press(2005)；Harlow and Lane，Antibodies：A Laboratory Manual，Cold Spring Harbor Laboratory(1988)；Kozbor et al，Immunology Today 4：72(1983)；Kohler andMilstein，Nature 256：495(1975)。在一些实施方案中，使用可商购的抗体。

[0149] D.数据分析

[0150] 在一些实施方案中，在纯化和检测之后，使用基于计算机的分析程序将由检测测定所产生的原始数据(例如指定靶分子的存在、不存在或者量)翻译成提供给临床医生或者研究人员的预测值的数据。在一些实施方案中，将软件程序集成进自动化装置中。在其它实施方案中，其位于远程。临床医生可以使用任何合适方式存取数据。因此，在一些优选的实施方案中，本发明提供了进一步的益处，即不太可能经过遗传学或者分子生物学培训的临床医生不需要理解原始数据。数据以其最有用的形式直接呈现给临床医生。然后临床医生可以立即使用该信息优化对对象的护理。

[0151] 能向和从进行测定的实验室、信息提供、医务人员和对象接受、处理和传送信息的任何方法均可以使用。例如，在本发明的一些实施方案中，样品(例如活组织检查或者血清或者尿液样品)得自对象并呈递给服务机构(例如医疗机构的临床实验室，基因组谱分析公司(genomic profiling business)等)，其位于世界上任何地方(例如在与所述对象居住地或者信息的最终使用地不同的地区)以产生原始数据。当样品包含组织或者其它生物样品时，对象可以去医疗中心以获得样品并送至谱分析中心，或者对象可以自己收集样品(如尿样)并直接送至谱分析中心。当样品包括先前确定的生物学信息时，所述信息可以通过对象直接送至谱分析服务机构(例如含有所述信息的信息卡可以由计算机扫描并用电子通讯系统将数据传输至谱分析中心的计算机)。一旦谱分析服务机构接收后，样品被处理并产生对象所需的特异于诊断或预后信息的谱(即表达数据)。

[0152] 然后将谱数据制备成适合治疗性临床医生解读的格式。例如，不是提供原始数据，而是制备格式可以代表对对象的诊断或风险评估(例如病毒载荷水平)，连同特定治疗选项的建议一起。数据可以通过任何合适方法展示给临床医生。例如，在一些实施方案中，谱分析服务机构生成一份报告，报告可以打印给临床医生(例如在床旁)或者在计算机监视器上展示给临床医生。

[0153] 在一些实施方案中，首先在床旁或者在地区性机构分析信息。然后将原始数据输送至中心处理机构做进一步分析和/或将该原始数据转变成可为临床医生或者患者所用的信息。中心处理机构提供数据分析的隐私性(所有数据均在统一安全方案下贮存在中心机构中)、速度和一致性的优势。然后中心处理机构可在治疗对象后控制数据结局(fate)。例如，使用电子通讯系统，中心处理机构可以为临床医生、对象或者研究人员提供数据。

[0154] 在一些实施方案中，对象能够使用电子通讯系统直接存取数据。所述对象基于结果可以选择进一步介入或者咨询。在一些实施方案中，所述数据用于研究用途。例如，数据可用于进一步优化作为疾病特定状况或阶段的有用指示的标记的包含或者清除。

[0155] E.组合物与试剂盒

[0156] 在一些实施方案中，本发明的系统和/或装置以含有进行纯化和分析必需的所有成分(例如预加载在装置中)来交付。在其它实施方案中，另外的反应成分可以在分隔的容器中提供，所述容器包装在一起形成试剂盒。

[0157] 任何这些组合物，单独或者与本文揭示的或者本领域熟知的其它组合物组合，可以以试剂盒形式提供。试剂盒可进一步包含合适的对照物和/或检测试剂。可用于本发明所述任何方法中的任一种或多种试剂均可提供在所述试剂盒中。

[0158] 实验

[0159] 如下实施例是提供用来证明和举例说明本文所揭示的组合物和方法的某些优选的实施方案和方面，但是不应被理解为限制本发明的范围。

[0160] 实施例1

[0161] 这个实施例描述了使用磁力移动顺磁性微粒以捕获RNA，随后纯化以及释放RNA用来扩增和检测。其还显示了液体蜡的使用，作为例证的亲脂性材料，以及作为各个室之间的阀门，其允许顺磁性微粒移动同时在各个洗涤缓冲液之间形成屏障。

[0162] (a)药筒的制作

[0163] 通过加工无菌清洁的圆底聚苯乙烯96孔平板制备进行测定用的单个药筒(图1a)。使用符合FDA的光面(plain back)1/16″聚丙烯薄板来制成蜡通道。为了制作蜡通道，将准备用于低表面能基材的9495LE丙烯粘性传送带(adhesive transfer tape)(3M，St.Paul，MN)粘在切割成适当规格的长方形塑料片两侧。从塑料片碾压(mill out)出长方形通道。碾压过程也切削胶带。鉴于聚丙烯的不良热传导性和低熔点，在加工时要特别小心。在通道的加工期间形成的毛边使用刀片除去。顶板也是用聚丙烯薄板制成。在顶板上穿几个小孔以用于导入流体。

[0164] 聚丙烯用于制成顶板和通道是由于其极佳的化学抗性。饱和的烯链对大多数油和溶剂以及基于水的化合物、肥皂和中等酸和碱产生抗性。很少数具有聚丙烯强度性质的其它材料达到匹配聚丙烯的化学抗性。聚丙烯坚硬的、高度光滑的表面使其对于担心会干扰药筒的流动灭菌的环境是理想的：优选在检测期间维持无RNA环境。虽然商购的塑料平板是用γ射线照射来灭菌，开发了可以在实验室容易进行的对塑料部分进行灭菌的方案。在对所述平板进行加工之前，将待用于测试的孔用粘性带密封。在加工完成后，使用如下方案洗涤所述药筒：

[0165] a.用水洗涤两次

[0166] b.用100％乙醇洗涤两次

[0167] c.用RNaseZap RNase净化溶液(Ambion，Austin，TX)洗涤

[0168] d.用水洗涤两次。

[0169] 在完成洗涤之后，将药筒在50℃干燥过夜。

[0170] RNA纯化测定：

[0171] 使用400μL含有106个拷贝/mL Armored RNA(Abbott Molecular，DesPlaines，IL)的血浆样品进行测定。使用Armored RNA而不是裸RNA作为检测样品是因为其对核糖核酸酶具抗性且易于通过RNA拷贝数量化。其也是非感染性的，这使其易于操作。

[0172] 为了从血浆样品纯化RNA，使用MagMAX Viral RNA Isolation试剂盒(Ambion，Austin，TX)。在这种方法中，使用基于硫氰酸胍溶液的传统方法破坏细胞。这同时释放病毒RNA及使样品基质中的核酸酶失活。然后所述RNA在存在离液剂和醇的条件下结合二氧化硅包被的磁珠。然后将该珠在水性低盐缓冲液中洗涤和洗脱。

[0173] 裂解/结合溶液和珠混合物的制备：在表1所示裂解/结合溶液浓缩物中加入载体RNA并简单混合。随后加入100％异丙醇。为了制备珠混合物，对每个反应将10μL RNA结合珠与10μL裂解增强剂混合。该珠经涡旋之后分成等份。

[0174] 表1：为制备裂解缓冲液加入的试剂体积

[0175]试剂 量
裂解/结合溶液浓缩物 400μL
载体RNA 2μL
100％异丙醇 400μL

[0176] 药筒的制备：

[0177] 将802μL裂解溶液连同含有armored RNA的400μL血浆样品一起加入微离心管中。当加入样品时，移液管尖端应略浸入溶液中以防止气溶胶形成而导致污染。将该溶液轻轻涡旋混合30秒，然后在该管中加入20μL珠混合物。将该溶液在涡旋混合仪上轻轻涡旋混合4分钟以使病毒充分裂解以及使RNA结合磁珠。通过将微离心管置于磁性座(magnetic stand)上来捕获该珠。移出600μL溶液并弃去。将该珠在剩余222μL溶液中涡旋混合。将此溶液等份置于所述药筒的第一个室内。在室2和室3内分别加入150μL含有异丙醇的洗涤缓冲液1。在室4和室5内分别加入225μL含有乙醇的洗涤缓冲液2。在室6内加入50μL洗脱缓冲液。

[0178] 通过剥离附着在蜡通道上粘性传送带的薄纸层，将蜡通道(图1-b)粘在药筒上，并将该蜡通道应用于药筒。随后通过相似方法将顶板粘在蜡通道上。然后将Chill-Out液体蜡(Bio-Rad Laboratories，Hercules，CA)通过顶板上打出来的小孔移液至药筒中，直至在药筒中无空气间隙。图1示出完全充填了不同缓冲液和蜡的药筒图像。

[0179] 样品纯化方案

[0180] (a)在药筒中纯化。在样品纯化过程中，使用磁力进行各个纯化步骤(图2)，例如使所述珠经磁性分离以积聚成团，使颗粒从缓冲液中移至蜡，使该颗粒在蜡中移动，将该颗粒再导入下一缓冲液中以及在该缓冲液中搅动该颗粒(表2中样品C1)。这种磁力是由永磁体产生的。使所述颗粒团从室1中的裂解缓冲液中通过在室2-5中的各个洗涤缓冲液移至室6的洗脱缓冲液中。使该颗粒在每个洗涤缓冲液中搁置30秒，在洗脱缓冲液中搁置10分钟。在这些时期通过磁力使所述颗粒在缓冲液中移动。

[0181] (b)在微离心管中纯化。也使用Ambion MagMax试剂盒在微离心管中进行样品纯化。在这种情况中，将含有裂解缓冲液和RNA结合PMP的微离心管置于磁性座上以捕获PMP。一旦捕获完成，RNA结合珠在磁性座中紧靠磁体形成沉淀。抽吸掉上清而不干扰到所述珠。将该管从磁性座中取出，向其中加入洗涤缓冲液1。将该溶液搅动30秒。进行相似的捕获和抽吸步骤。将所述珠用洗涤缓冲液1洗涤两次，用洗涤缓冲液2洗涤两次。在这项研究中，使用洗涤缓冲液体积的两种不同组合：(i)300μL洗涤缓冲液1和450μL洗涤缓冲液2(表2中样品C2)；(ii)150μL洗涤缓冲液1和225μL洗涤缓冲液2(表2中样品C3)。在4个洗涤步骤之后，将所述珠敞开置于室温下使得剩余的醇蒸发。检查该管是否有任何剩余醇，因为醇抑制PCR。加入50μL洗脱缓冲液，将样品用力搅动4分钟。在每种情况中，所述颗粒在洗脱后被捕获并将12.5μL样品用于使用Abbott实时测定的RT-PCR。

[0182] 结果和数据分析

[0183] 下表示出了三种样品类型的平均Ct值。

[0184] 表2：样品和Ct值

[0185]

[0186] 数据表明当所述颗粒穿过蜡移动时，RNA纯化有2.8倍的改善(2^平均Ct差异)。尽管洗涤缓冲液体积减少，但这个结果仍发生。将结果与相似体积的洗涤缓冲液相比，RNA纯化有30倍改善。在样品纯化的人工方法中，大量溶液粘附于颗粒而不能被吸出。因此，虽然每个洗涤步骤导致裂解溶液中携带的抑制剂稀释，但是完全稀释所有抑制剂需用大量洗涤和洗涤缓冲液体积。虽然使用蜡作为颗粒转运介质，但是运载的液体量明显较低，由此导致Ct改善。

[0187] 醇对RT-PCR的作用

[0188] 醇是已知的PCR抑制剂。因此，Ambion样品纯化试剂盒需要在躲避(eluding)RNA之前使颗粒在空气中干燥。在本文描述的新方案中，干燥步骤完全去除。这再一次示出从一个室运载至下一室的流体量是最小的。这也显著简化了样品纯化过程，使得易于自动化。较小数量的抑制剂的存在也使得可以在较小数量的洗脱缓冲液中洗脱，由此而加快热循环速度，从而减少进行测试所需的时间。

[0189] 实施例2

[0190] 自动化

[0191] 通过移动磁性颗粒而非流体来开发出便宜的自动化样品纯化系统。设计了可以容纳流体长期贮存的药筒。这消除了现场任何种类的移液操作。在这种新平台中测定的优化使得可以改善样品纯化过程以及发展出对该系统更好的理解。用于进行纯化的自动化系统使得不需要经高度培训的实验室技术人员就可以测量病毒负荷。密闭的药筒与自动化装置的组合将以廉价便利的方式以及降低的交叉污染风危来创建床旁平台，所述平台不仅用于HIV病毒负荷也用于所有种类的核酸测试。

[0192] 优化该系统的实验包括：

[0193] a.使用箔层压板制作药筒以容纳贮存的化学物及进行反应。

[0194] b.在新药筒中对样品纯化方案的优化。

[0195] c.构建有力的自动化系统以消除人力需求。

[0196] a.制作原型药筒以进行样品纯化

[0197] 这个制作有两个部分：(a)用于造药筒的材料，(b)药筒自身的设计。

[0198] (a)材料。用于建造药筒的材料优选提供(a)蒸汽屏障以保持液体在长时期贮存时物明显损失；(b)机械强度；以及(c)化学惰性表面，其不粘附血液或者溶液中存在的颗粒。

[0199] 虽然聚苯乙烯和聚丙烯由于其化学惰性而被选择作为进行化学测定的材料，但是它们不提供长期贮存试剂所需的蒸汽屏障。材料的蒸汽屏障以水蒸气透过性速率(WVTR)来测量，其是对穿过物质的水蒸气的测量。

[0200] WVTR＝Δw/Δt A(g m-2s-1)，其中Δw/Δt是每单位转移时间的水分丧失量(g -1 2s )，A是暴露于水分转移的面积(m)。

[0201] 表3：一些常用塑料的WVTR特性

[0202]

[0203] 表3示出一些塑料和箔层压板(RP#26-1244，Rollprint，Addison，IL)的WVTR。显然箔层压板在贮存期间为试剂提供极佳的蒸汽屏障。箔层压板另外具有极其廉价的益处。由箔层压板制成的单个药筒的成本不会超过几分。要使用的箔层压板的各种层在下图3中示出。

[0204] 箔层压板(Rollprint Packaging Products，Addison，IL)含有2mil铝层，其是低WVTR的原因，使其对于贮存试剂很理想。聚酯层提供了进行测定优选的化学惰性和疏水性的表面。其还使得箔层经加热密封在另一片箔层或者塑料上。尼龙外表面保护铝表面免于腐蚀并且也为箔层压板提供了机械强度。所述箔层压板缺乏刚性。这可以通过将其包装在刚性材料中而克服。应注意虽然箔层压板实际上是不可透过蒸汽的，但两层箔板之间的密封不是且负责水汽的一些损失。

[0205] 在其它实施方案中，使用由与96孔平板相似的聚丙烯或者聚苯乙烯制成的真空形成的室。在一些实施方案中，为了提供蒸汽屏障，这将通过蒸汽沉积(vapor deposition)来镀铝。

[0206] (b)药筒的形状和尺寸。虽然室的形状由移动颗粒的各种力以及简化自动化的需要而控制的，但是所述室的尺寸是由与样品纯化相关的化学所控制的。使用3D Mechanical CAD程序，Solidworks(Solidworks Corporation，Concerd，MA)进行原型设计。基于现在使用体积的药筒的例子在图4中示出。化学或者自动化需求中的改变通过相应改变所述室的形状和尺寸来进行适应。

[0207] (c)可剥离层和顶板：药筒的顶板优选是透明的，以在热循环期间进行光学读数。图中未示出的是可剥离的箔层压板，其位于顶板与箔层室之间。这与打印墨盒相似。剥离层的末端出现于顶板与蜡层之间。这提供了适宜于长期贮存的蒸汽屏障。固体蜡存在于封条的上面和下面。下面的蜡使得可以除去剥离层而无丧失粘在剥离层上试剂的风险。在测试之前，除去剥离层并使蜡熔化。顶板可以制成是柔性的，其使得我们可以对其进行压缩以除去由于除去封条产生空腔而形成的任何空气间隙。其也应是化学惰性的，因为当牵引其从一个室至下一室时要与所述颗粒接触。可剥离的封条是加热密封在所述室上。室之间的距离优选是6mm，以允许适当密封，但是可以使用其它规格。此密封过程在Rollprint Inc.进行。

[0208] 制作。使用压紧装置(pinch press device)来进行铝箔药筒的制作，所述装置包括适合相同大小的阴模子的半球形阳头。通过在阳头(positive head)与阴模(negative mold)之间压紧箔层，所述箔层被拉伸成符合模具的形状。虽然层压板的屈服强度和拉伸强度未知，但是标准工业实践是：

[0209] (制成室之后最大面积)＜(2×拉伸前面积)

[0210] 药筒的蜡通道、固体支持物以及顶板均使用3M粘性传送带粘在一起。在选择此带之前测试了一些粘性带，这是因为其极佳的粘附性质，特别对于低表面能表面。用GML(Vadnais Heights，MN)将粘性带用激光切割成适当大小。

[0211] 样品纯化方案的优化以改善测定性能：

[0212] 使用来自Ambion的基于二氧化硅包被的PMP的MagMax试剂盒进行测定。优化该试剂盒方案以在测定形式中发挥最佳性能，所述测定形式涉及沉积所述珠以及抽吸出流体。这并不必然使用蜡。为了进一步理解蜡对于样品纯化的作用以及优化样品纯化过程，进行如下实验：

[0213] 1.通过蜡的水带出(carryover)：基于最初的实验，将所述颗粒通过蜡移动被假定为会使水或者缓冲液从一个室至下一室的带出显著地减少。这部分基于上述结果，其显示出由于醇而缺少抑制。为了证实这个假说，将已知浓度的荧光染料荧光素溶解在水中。向这个溶液中加入已知数目的颗粒(在Luminex流式细胞仪上测量)。然后，将所述颗粒通过磁性移动穿过蜡进入已知体积的无荧光素的水中。基于测量起始样品和最终样品中荧光素的浓度，可以定量地估计从一个室带出至下一室的水的体积(Va)。

[0214] 所述实验具有用于对比结果的两个对照：(a)用挑样针(pick-pin)将颗粒从相同的荧光素溶液移至水中。这代表了目前可用的系统如Maxwell或Kingfisher，(b)通过将含有荧光素溶液和颗粒的微离心管置于磁体座上然后小心移液吸出溶液而收集颗粒。随后加入固定量的无荧光素水。

[0215] 纯化性能的改善通过比较从一个室携带穿到下一室的液体的平均体积而进行定量。使用方差来定量纯化过程中由于样品操作所致的变异。对不同数目的颗粒、样品的不同起始体积、以及不同荧光素浓度重复进行实验。携带穿过的液体体积是含有移至蜡中的颗粒的小液滴体积(V)的分数Φ。

[0216] (1-Φ)V＝(4/3)πr3N

[0217] ΦV＝Va

[0218] Φ＝Va/(Va+4πr3N)

[0219] 在上述公式中，r是颗粒的半径，而N是颗粒总数。小液滴体积V依赖于N，因此液体体积ΦV也依赖于N。人们不会预期ΦV依赖于荧光素溶液的初始体积，而是依赖于荧光素浓度。这个实验使得可以确定最佳洗涤步骤和体积，或者所需裂解缓冲液的体积。

[0220] 2.选择最佳洗涤步骤体积和数目。将Ambion推荐的方案针对手动移液程序进行优化。其未考虑蜡的存在。因此，使用蜡优化所述方案。尽管血浆中存在的抑制PCR的全部抑制剂不是明确已知的，但是公认的是大多数抑制剂的抑制作用是浓度依赖性的。来自先前实验的结果提供了关于蜡对流体移出的影响的信息。使用其作为指导，纯化步骤数被减少。纯化步骤数的减少降低了样品纯化方法的复杂性，降低了测试成本及测试所需时间。抑制剂浓度的降低使得允许在更小体积的洗脱缓冲液中进行洗脱，导致RNA浓度进一步增加并且热循环更快。

[0221] 方法的灵敏性与该方法实用性的下限有关。对于化学品，最低可检测值通常是指最低可检测的净浓度或量。

[0222] LOD的确定

[0223] LOD的计算在专业科学实体之间和不同应用之间有差异，但是LOD的一个定义是：

[0224] LOD·(空白的平均值)+K(sd)

[0225] 其中空白的平均值＝赋予与测定相关的空白确定的平均值；K＝与希望的置信水平相关的覆盖因子(coverage factor)；sd＝空白确定的标准差。

[0226] 这个计算不适合于估算与实时定量PCR方法相关的LOD，因为空白对照典型地具有等于PCR反应中所用最高循环数的值。另外，如果所述测定正确工作，则这些空白的值全部相同，它们的分布被缩短，由此排除了有用标准差的计算。

[0227] 为了克服使用科学文献中描述的LOD传统计算方法时所遇到的一些困难，可以将LOD定义为在至少95％时间给出可检测PCR扩增产物的最低拷贝数。这也可以解释为可以以95％概率与背景噪音区分的最低拷贝数。使用用于RNA纯化的Ambion试剂盒及用于Rt-PCR的Abbott实时方案的现有Rt-PCR测定据报道具有在1.0ml血浆样品中40拷贝RNA的LOD。优选的测定检测最低500拷贝的RNA。因此，对于每种方案，测定的灵敏性通过形成Ct相对于RNA拷贝的稀释曲线而进行测量。所希望的目标是从裂解缓冲液进行到洗脱缓冲液而无单一的洗涤步骤。用不同洗涤步骤数和洗涤体积进行所述纯化测定。

[0228] 3.蜡熔点

[0229] 实施例1所描述实验中使用的蜡具有10℃的熔点，因此这种蜡在室温是液体。在一些实施方案中使用在60℃或其他更高熔解温度熔解的蜡(DyNA wax Reagent，Finland)。这使得蜡在储存期间是固体，随后在即将实验前熔解，由此产生用于颗粒运动的相变插塞(phase change plug)。另外的优点是在可剥离密封下存在蜡使得可以剥离箔层而不从可能附着于箔片的室中损失任何流体。然而，这涉及在水浴中进行实验或者使用peltier加热器加热蜡。

[0230] 样品纯化方案的自动化

[0231] 提供了自动化的样品纯化系统。自动化具有许多益处，即：(a)所述方法不需要熟练工人；(b)提供了对系统的更好了解；(c)加快了测定开发及测试方法，(d)通过标准化方法降低样品与样品的差异。

[0232] (a)第一个组件是移动磁体及药筒的台架(stage)。为了将方法自动化，搭建所述台架用于进行5个过程，即(a)颗粒在流体中聚集，(b)将所述流体拖过界面，(c)拖动蜡中的颗粒聚集体，(d)将颗粒聚集体从蜡中拖动到水中，(e)搅动流体中的颗粒。在手动操作模式中，药筒被保持稳定，同时磁体相对于药筒位移。为了自动化地形成复合运动，在一些实施方案中，药筒相对于磁体移动。因此将磁体和/或药筒被安置在移动台架上。哪种物体移动取决于构建的方便性、方法的成本及可靠性。可以使用步进电机来实现各种运动。

[0233] i)将颗粒在洗涤缓冲液中聚集。该设计是由对所涉及的力的简单估计来指导的。3
密度为Pp、半径为Rp、体积Vp＝(4πRp )/3、质量为mp的球形磁性颗粒的运动由几种力控制，包括(a)由于所有场源导致的磁力，(b)流体拖拽(fluidic drag)，(c)颗粒/液体相互作用(对流场的扰动)，(d)浮力，(e)重力，(g)热动力(布朗运动)，及(h)颗粒间作用如磁偶极子相互作用。为了指导设计参数，对其中磁力和粘性拖拽力占优势的低浓度和慢流动状态中磁性颗粒的行为进行建模。因此，颗粒/流体相互作用和颗粒间作用被忽略。重力被包括在内，虽然其是第二位，但是根据颗粒大小也不能被忽略。根据经典牛顿动力学：

[0234] mp＝dvp/dt＝Fm+Ff+Fg，

[0235] 其中vp是颗粒速度，而Fm、Ff和Fg分别是磁力、流体力、种间(interracial)和重力。磁力用“有效”偶极矩方法获得，其中被磁化的颗粒由力矩为mp.eff的“等价”点偶极子替换(Furlani and Ng，2006)。偶极子上的力(及因此颗粒上的力)如下给出：

[0236] Fm＝μf/(mp.eff·▽)Ha，其中μf是转运流体的磁导率，mp.eff是颗粒的“有效”偶极矩，Ha是在等价点偶极子所处的颗粒中心(外部)施加的磁场强度。如果颗粒是在自由空间中，mp.eff＝VPMP且上述公式还原为常用形式Fm＝μ0(mp·▽)Ha，其中Vp和Mp是颗粒-7的体积和磁化强度，且μ0＝4πx10 是自由空间磁导率。图5显示了磁体在流体室上方的排列以及在距磁体的固定距离作用于颗粒上的力在x方向和y方向中的表面图。力的计算需要选择颗粒尺寸及组成颗粒的Fe3O4(磁铁矿)的材料性质。在所显示的计算中，假定
3 5
Fe3O4具有密度p＝5000kg/m 、饱和磁化强度M＝4.78x10A/m及颗粒大小是0.5微米。在Matlab中编写程序以估算由一块磁体或一个磁体阵列所组成的系统的磁力。这使得可以计算不同磁体和磁体排列的磁力。尽管目前的程序仅能估算由于磁体线性阵列的力，但是生成程序以估算更复杂的磁体排列是可能的。

[0237] 对于均一流动中的球上的拖拽，流体力用斯托克斯定律(Stokes′law)进行预测，Ff＝-6πηRp(vp-vf)，其中η和vf分别是流体的粘度和速度。重力由给出，其中ρP和ρf分别是颗粒和流体的密度，g＝9.8m/s2是缘于重力的加速度。重力作用于-y方向。当分析亚微米颗粒的磁泳(magnetophoretic)运动时重力经常被忽略，因为其通常比磁力弱得多。

[0238] 将各种力插入牛顿运动方程，可以预测颗粒聚集所需的近似时间及甚至绘制颗粒轨迹。这些计算用于指导设计参数。

[0239] (ii)测量表面张力及拖动颗粒穿过界面。自动化方法中使用的磁体强度由克服种间表面张力所需的磁场强度所控制。尽管难以移动一个颗粒穿过界面，但是可以将颗粒团移动穿过界面。

[0240] 种间力(interracial force)可以估算为y2πRp，其中y是蜡和缓冲液之间的种间张力。种间力用遵守Tate定律的落重法来测量。

[0241] 这是确定表面张力的精确方法并且可能是最方便的测量液-气或者液-液界面的表面张力的实验室方法。如图6所举例说明的，该过程是在试管末端形成蜡滴，使它们掉进含有缓冲液的容器中。然后用蜡滴的重量确定表面张力。Tate定律给出对于W的非常简单的表述，液滴减去置换的液体的重量：W＝2πryf，其中是形成液滴的试管的半径，而f是无1/3
量纲比率r/V 的函数，V是液滴体积。图6所示系统用于测量蜡和各种洗涤缓冲液之间的表面张力。当采用这个方法时采取的一个重要预防措施是使用末端已被磨光滑没有任何缺口的移液管枪头(tip)。在不湿润移液管枪头的液体的情况中，r是内半径。液滴还应该缓慢形成，否则液滴重量会很高。

[0242] 估算种间力后，可以估算移动颗粒穿过界面所需的磁力。因此，设计标准是：Fm＞Fi，其中Fm和Fi分别是磁力和种间力。这个估算也忽略了摩擦力。这个估算指导磁体的选择。为了降低将颗粒从缓冲液移动到蜡中所需的磁体强度，磁体尽可能接近界面移动。这用柔性顶板(flexible top plate)来达成。柔性顶板也可以用来被压下以除去任何空气间隙，所述空气间隙可能在位于室和顶板之间的箔层压板被剥离时产生。

[0243] iii)拖动颗粒聚集体穿过蜡。拖动颗粒通过蜡的运动方程类似于颗粒聚集的运动方程。然而，在这种情况中，运动是含有颗粒聚集体的流体小液滴而非单个颗粒的运动。净摩擦力如下给出：Ff＝-6πηRp(vp-vf)，其中Rp是平移张量，其依赖于小液滴的形状及小液滴的内粘度。将颗粒聚集体拖动通过蜡相当容易。在此期间，颗粒与药筒的上表面接触。
因此优选用于顶板的材料是化学惰性的并且具有光滑表面质地。

[0244] (iv)拖动颗粒聚集体从蜡到缓冲液。因为颗粒从蜡到洗涤缓冲液的移动伴有表面能的降低，因此这是一个简单过程。小的磁力就足以拖动颗粒回到水中。而且，重量分析力(gravimetric force)有助于颗粒沉降。

[0245] (v)验证搅动的需求：在实施例1中进行的测定中，通过围绕室移动磁体而搅动颗粒。进行这一步是因为涉及手工移液的样品纯化方法需要通过涡旋混合来搅动洗涤缓冲液中的颗粒。尽管通过在座架上移动磁体可以形成变化的磁场，但是其增加了测定成本。因此在一些实施方案中不搅动。

[0246] 控制步进式电机和药筒运动的软件。计算机的USB端口可以经USB至RS232转换器而连接于步进式电机控制器。这使得可以用超级终端(hyperterminal)发送命令给电机。任何串行通信软件如Docklight可以用来使用RS232命令集而有效地与步进式电机通信。

[0247] 测试自动化样品纯化系统的性能。为了测试样品纯化系统的性能，测量了颗粒的损失。这与手动形式的测定及使用流体移液测定中的性能损失进行比较。为此，用Luminex流式细胞仪测量颗粒浓度。与普通流式细胞仪不同，Luminex系统具有正流动控制系统，其使得可以计数颗粒以及测量所用溶液体积，由此使得可以测量珠溶液的浓度。珠损失＝珠的最初浓度×所用样品Vol-珠最终浓度×洗脱缓冲液Vol。

[0248] ％珠损失＝(珠损失/珠的最初总数)x 100

[0249] 在自动化方法的每个阶段测量珠损失百分比以测量系统的性能。目的是降低损失百分比至低于手动方法中所观察到的损失百分比。比较自动化方法和手动方法的平均％珠损失及％珠损失的方差。预期自动化系统具有比手动方法低的方差。

[0250] 实施例3

[0251] 管形处理器(Tubular Processor)

[0252] 本实施例描述了用于进行生物学反应的管形处理器。用于诊断测定的实验设置如图7所示。其由附着于CAVRO 3000XL数字式泵的0.060″内直径试管(Small Parts Inc.)组成。所述数字式泵通过RS232接口控制。不同的洗涤缓冲液、分析物、含有磁性颗粒的溶液及硅油(Gelest Inc.)从试管远端泵入。

[0253] 实验中使用的颗粒是羧基包被的光滑表面磁性颗粒，得自SpherotechInc。所述TMSPHERO 光滑表面磁性颗粒有一厚层聚合物包被在颗粒表面以完全封装氧化铁涂层。在颗粒表面无暴露的氧化铁。

[0254] 将圆柱形钕磁体(Bunting Magnetics Co)沿毛细管的长度移动。磁体位于毛细管周围以混合颗粒。所有实验使用N35和N40级磁体。

[0255] 发现特氟龙试管比玻璃试管更好并用于所有实验。颗粒粘附于玻璃比粘附于特氟龙更多。据猜测比玻璃更疏水的特氟龙比亲水性的玻璃更排斥亲水性颗粒，因为颗粒表面上存在羧基基团。然而，颗粒不粘附于特氟龙，因为其是极度疏水性的。

[0256] 对下述实验不在试管中进行荧光读数，虽然可以将光学系统附着在毛细管系统上。在化学反应完成后，从试管中取出颗粒并在流式细胞仪中读数。所有读数均相对于SPHERO Rainbow Calibration Particles进行标准化。SPHERO Rainbow Calibration Particles含有几种具有不同荧光强度的类似大小颗粒的混合物。每种颗粒含有可在365-650nm的任意波长激发的荧光团的混合物。这使得可以用同组颗粒校准流式细胞仪的所有通道。使用的荧光团是非常稳定的但是非光谱匹配于常用荧光团如FITC、PE或PE-Cy5。将几滴所述颗粒连续敲击(flam)夹口瓶(chopper bottle)至1mL稀释液的稀释过程可提供用于流式细胞仪校准的适当颗粒浓度。稀释的Rainbow Calibration Particles在重复的冷冻和解冻后保持稳定。

[0257] 管形处理器和微离心管中的链霉抗生物素蛋白-生物素反应

[0258] 用作诊断装置的管形处理器优选能进行测定而不损失灵敏性。将颗粒移动通过油可以使结合于颗粒的蛋白质变性或者在颗粒上形成层，使得从总体溶液扩散至颗粒表面变得困难。

[0259] 使用了链霉抗生物素蛋白-生物素系统。生物素-抗生物素蛋白或者生物素-链霉抗生物素蛋白相互作用具有一些独特特征，使得其作为通用桥系统是有利的。抗生物素蛋白、链霉抗生物素蛋白和NeutrAvidin生物素结合蛋白每种均以一个蛋白分子高亲和性和选择性结合4个生物素。

[0260] 实验中使用由未标记的链霉抗生物素蛋白包被的具有3μ平均直径的SPHERO光6
滑表面磁性颗粒(1％w/v)。在下述每个实验中，使用0.7*10个磁性颗粒。在磷酸盐缓冲盐水(PBS)中洗涤颗粒，磁性分离并重悬于60μL含有0.1％Nonidet P-40去污剂的PBS缓冲液中。将不同浓度的Alexa-488-生物素溶解于含有0.1％Nonidet P-40的Na磷酸盐缓冲液中。

[0261] 将下述溶液以给出的顺序注射进毛细管中，每个用60μL硅油隔开：

[0262] (a)60μL含有磁性颗粒的PBS缓冲液

[0263] (b)60μL含有0.1％Nonidet P-40的PBS的洗涤缓冲液

[0264] (c)200μL含有已知浓度的Alexa-488-生物素和0.1％Nonidet P-40的Na-磷酸盐缓冲液

[0265] (d)60μL含有0.1％Nonidet P-40的PBS的洗涤缓冲液

[0266] 颗粒首先从“溶液a”由磁性移动到含有洗涤缓冲液(溶液b)的室中。这清除了颗粒碎片。然后将其移动到含有Alexa-488-生物素的室中，使得链霉抗生物素蛋白包被的颗粒结合至Alexa-488生物素(溶液c)。颗粒不断以磁性进行混合。使反应持续90分钟，然后将颗粒移动到下一室(溶液d)以洗涤掉任何可能粘着于颗粒的碎片。将颗粒从一个室通过硅油移动到下一个室涉及颗粒集合形成团，从而使它们可以穿过油-水屏障。因此，每次颗粒从一个室移动到下一室，通过移动磁体而使得它们混合良好。颗粒然后被收集，颗粒上的荧光在流式细胞仪中测量。

[0267] 用于实验的Alexa Fluor染料是一系列优异的荧光染料，它们跨越近-UV、可见光和近-IR光谱。这些染料无例外地产生比荧光素更亮的缀合物。所述Alexa-488在495nm吸收光，在519nm发射，并且具有71000的消光系数。该染料是水溶性的并在宽pH范围内保持高度荧光。

[0268] 在微离心管中进行了相同反应。在PBS中洗涤0.7*106个颗粒，磁性分离并重悬于60μL含有0.1％Nonidet P-40去污剂的PBS缓冲液中。然后将颗粒与下述溶液混合，每次在重悬于下一种溶液中之前用磁性分离。

[0269] (a)60μL含有磁性颗粒的PBS缓冲液

[0270] (b)60μL含有0.1％Nonidet P-40的PBS的洗涤缓冲液

[0271] (c)200μL含有已知浓度的Alexa-488-生物素和0.1％Nonidet P-40的Na-磷酸盐缓冲液

[0272] (d)60μL含有0.1％Nonidet P-40的PBS的洗涤缓冲液

[0273] 与在毛细管中反应的情况一样，将链霉抗生物素蛋白包被的磁性颗粒与含有生物素的缓冲液混合90分钟。颗粒在此期间不断混合。从这些颗粒取荧光读数并与来自毛细管系统的颗粒的荧光读数相比较。

[0274] 图8显示了在不同生物素浓度下在流式细胞仪中测量的FL1高度值。菱形代表在毛细管系统中进行的链霉抗生物素蛋白生物素反应的信号，而粉红色方块代表在微离心管中进行的链霉抗生物素蛋白生物素反应的信号。所有测量均通过将彩虹的第三个峰保持在-10固定值而进行标准化。如图可见，颗粒完全饱和直至10 M的生物素浓度，之后信号开始下降。无论反应是在毛细管还是在微离心管中进行，结合到链霉抗生物素蛋白包被颗粒上的生物素的量是类似的。两个反应之间的差异在所有测量的生物素浓度均不是统计学显著-10
的。该图示出在高浓度生物素下，荧光信号有一些猝灭。图8示出生物素浓度为0.5*10 M时管形处理器中链霉抗生物素蛋白-生物素反应的5份重复。这代表了反应从一轮到另一轮的变异性。

[0275] 对实验接下来的程序与上述前个实验相同。图9由针对两组颗粒所测量的两个叠加图像组成，即：

[0276] (a)与10-12M生物素溶液反应的链霉抗生物素蛋白包被的SPHERO光滑表面磁性颗粒

[0277] (b)与去离子水反应的链霉抗生物素蛋白包被的SPHERO光滑表面磁性颗粒[0278] 前向散射和侧向散射如预期那样对于两组颗粒是相同的，因为两组颗粒相同的尺寸和表面粗糙度。FL1高度是颗粒表面发射出的荧光量的测量，因此是结合于链霉抗生物素-12蛋白的生物素量的直接测量，其对于两组颗粒是不同的。图9示出当颗粒与10 M生物素反应时中位FL1高度(峰)可清楚区分的并高于当链霉抗生物素蛋白包被的颗粒与水反应-12
时的中位高度。发现装置的灵敏性对于生物素是10 M(超过空白2dB)。

[0279] 试管之间颗粒转运

[0280] 如图10所示，将一个试管插入另一个试管中，从而较细试管的外直径几乎等于较大试管的内直径。将链霉抗生物素蛋白包被的颗粒移动到含有PBS缓冲液的室中。-8
在这样做的时候，其还从一个毛细管移动到另一个毛细管。其然后移动到含有含10 M Alexa-488-生物素和0.1％Nonidet-P40(NP-40)的PBS缓冲液的室中。从一个室到另一个室的移动涉及穿过硅油区。使颗粒与Alexa-488-生物素反应90分钟，之后将颗粒取出并在流式细胞仪中测量其荧光。荧光读数表明尽管从一个毛细管移动到另一个但是反应仍发生。

[0281] 在便携式诊断装置中，试剂可以潜在地存在于一个试管中，而待测量样品可以收集在另一个单独试管或适于样品收集的容器中。这个实验证实了如下可行性，即使得颗粒与样品在试管或者收集容器中反应，然后将它们移动到存在其余试剂的试管中，由此使得后续反应进行。

[0282] 硅油的作用

[0283] 影响诊断装置的因素之一是硅油对颗粒的作用。对颗粒移动通过油区期间油是否粘附于颗粒进行了研究。为此，将荧光染料吡咯甲川546(pyromethene 546)溶解于硅油中。吡咯甲川是油溶性激光染料，其在546nm发荧光。使颗粒通过含有吡咯甲川546的硅油区。然后从毛细管中取出颗粒并在流式细胞仪中测量荧光信号(图11a)。

[0284] 在另一个实验中，将颗粒移动通过含有吡咯甲川546的硅油，然后在含有0.1％Nonidet P40的PBS缓冲液中混合。使用磁体搅动这些颗粒。然后从毛细管中取出颗粒并且在流式细胞仪中测量荧光信号，如图11b所示。

[0285] 前向散射值描述了颗粒尺寸，而侧向散射给出关于颗粒表面性质的信息。在图11a中，前向散射图显示广阔的分布，尽管颗粒是大约相同的尺寸。这证明了油粘着于颗粒或者形成了各种尺寸的油滴。在将颗粒移动通过油之后在PBS缓冲液中搅动颗粒时，颗粒尺寸分布显示所预期的两个独立峰，即所述颗粒及所述颗粒的双联体(doublets)(图11b)。图11a的侧向散射图也示出两个峰，提示可能也有小油滴形成。图11a的FL1高度中位值是
73，其证明一些荧光染料与颗粒一起迁移。这可以通过混合颗粒而洗掉，因此在图11b中获得较低的荧光值38。

[0286] 实施例4

[0287] 使用液体蜡的商业病毒RNA纯化的效率

[0288] 本实施例证明将结合至顺磁性颗粒的RNA转运通过液体蜡介质的纯化方法可适应于采用不同类型颗粒及各种裂解、洗涤和洗脱缓冲液的商购试剂盒。测试的试剂盒含有二氧化硅(Ambion)、氧化铁(Abbott/Promega)和纤维素(Cortex)磁性颗粒。除了颗粒化学中的差异之外，这些试剂盒还在其各自的裂解和洗脱缓冲液以及中间体洗涤缓冲液的组成中有差异。

[0289] 将点加(spike)到正常血浆中的病毒颗粒根据试剂盒厂商指示进行纯化，包括裂解和洗脱之间的所有洗涤步骤，并经实时PCR确定RNA水平。然后将经过点加的血浆用仅使用裂解和洗脱缓冲液的蜡相方法进行纯化，并比较RNA水平。

[0290] 以Ct单位表示的RNA浓度的比较显示液体蜡转运纯化方法学的效率等价于厂商详述的指南中程序的效率。总而言之，这些结果表明通过液体蜡排除裂解缓冲液是RNA纯化系统典型规定的多个手工洗涤的合适替代。

[0291] 蜡-桥透明小容器(Wax-Bridge Cuvette)

[0292] 所有实验均在图12和13所示的两室透明小容器中进行，其设计用于促进颗粒从裂解缓冲液移动到洗脱缓冲液。如图12所示，裂解缓冲液被加入到左边的室中，洗脱缓冲液被加入到右边的室中。然后加入液体蜡以覆盖两种溶液并形成两室之间的桥。当磁体被置于裂解室侧壁上时，颗粒被吸引至壁上形成沉淀。如图13所示，然后将磁体向上移动，拖动沉淀沿壁通过裂解缓冲液进入油层。然后水平移动磁体以拖动颗粒穿过油桥直至沉淀位于洗脱室上方。最后，将磁体向下移动，拖动颗粒离开油进入洗脱缓冲液。

[0293] 厂商方案

[0294] 测试了Ambion MagMax病毒RNA分离试剂盒(Catalog No.AM1929)，Abbott/Promega M样品制备系统(Catalog No.02K02-24)和Cortex BiochemMagaZorb RNA分离试剂盒(Catalog No.MB2001)。将病毒RNA样品根据包括多个洗涤步骤的试剂盒方案用每种厂商试剂进行处理。

[0295] 液体蜡方案

[0296] Ambion MagMax病毒RNA试剂：

[0297] 样品裂解

[0298] 将25μL含有1.5x106cp/mL HIV-1病毒粒的血浆加入到1.5mL旋转盖试管中的802μL裂解缓冲液(组成：400μL厂商提供的裂解/结合浓缩液，400μL无水异丙醇，2μL厂商提供的载体RNA)中并用移液管混合。在20μL良好悬浮的磁性颗粒(厂商提供的；组成：10μL颗粒，10μL结合增强剂)存在下，在50℃进行多至10分钟的裂解。可以在最初裂解步骤后加入颗粒或者在裂解期间呈现出颗粒；未观察到对纯化效率的可辨别影响。

[0299] 药筒设置

[0300] 将磁性颗粒沉积在磁性架(rack)上并弃去600μL上清液以允许装载到制备好的药筒中。将多至250μL含有裂解缓冲液和RNA结合颗粒的浆液转移到药筒的“裂解”室。将25μL厂商提供的Tris-EDTA洗脱缓冲液装载到药筒的“洗脱”室内。将Chill-Out液体蜡(Bio-Rad)层铺(layer)在两个室中流体的上面，从而穿过药筒顶部形成蜡“桥”，典型需要800μL液体蜡。可以此方式分批制备用于多个样品的药筒并排列在制作好的架上。

[0301] 纯化

[0302] 用磁体将RNA结合的珠积聚成紧密沉淀。逐个处理药筒以将颗粒从“裂解”室转移到“洗脱”室。以稳定方式通过磁体将磁性颗粒转移通过蜡进入洗脱缓冲液中，从而使珠保持紧密沉淀并使裂解缓冲液的带出最小化。一旦在洗脱缓冲液中，则通过磁体的手工操作来混合珠。

[0303] 样品回收

[0304] 从药筒中吸取液体蜡从而使最小量(弯月面1mm)保留在“洗脱”室上而无样品损失。将药筒置于-20℃4分钟以便液体蜡固化，但是洗脱缓冲液/珠浆液保持为液相。可以通过移液管尖除去液体蜡插塞或者可以将其穿孔以提取洗脱缓冲液。将洗脱缓冲液/珠浆液转运到1.5mL旋转盖试管中并在70℃加热多至10分钟以促进病毒RNA完全洗脱进入上清缓冲液中。珠沉积在磁架上并从每个试管收集多至50μL的Tris-EDTA缓冲液中的RNA，以备用于qRT-PCR。

[0305] Abbott/Promega试剂：

[0306] 样品裂解

[0307] 将25μL含有1.5x106cp/mL HIV-1病毒粒的血浆加入到1.5mL旋转盖试管中的600μL裂解缓冲液(补加了2μL厂商提供的载体RNA)和25μL氧化铁磁性颗粒中并用移液管混合。在50℃进行多至10分钟的裂解。

[0308] 药筒设置

[0309] 裂解后，将磁性颗粒沉积并弃去400μL上清液。将25μL高盐洗脱缓冲液加入到“洗脱”室。将多至250μL含有裂解缓冲液和RNA结合颗粒的浆液转运到药筒的“裂解”室。将Chill-Out液体蜡(Bio-Rad)层铺在两个室中液体的上面，从而穿过药筒顶部形成蜡“桥”，典型需要800μL液体蜡。可以此方式分批制备用于多个样品的药筒并排列在制作好的架上。

[0310] 纯化及样品回收

[0311] 使用了与Ambion试剂盒所采用的相同的程序。

[0312] Cortex Biochem试剂：

[0313] 样品裂解

[0314] 将25μL含有1.5x106cp/mL HIV-1病毒粒的血浆通过在1.5mL旋转盖试管中轻轻混合而用20μL蛋白酶K处理。加入200μL厂商提供的裂解缓冲液并用脉冲涡旋15秒混合样品，随后在55℃加热多至15分钟。将500μL厂商提供的结合缓冲液和20μL单分散MagaZorb试剂加入到样品中并在室温(20℃)温育10分钟，偶尔倒置混合。

[0315] 药筒设置

[0316] 将磁性颗粒沉积在磁性架上并弃去500μL上清液以允许装载到制备好的药筒中。将多至250μL含有裂解缓冲液和RNA结合颗粒的浆液转运到药筒的“裂解”室。将25μL厂商提供的Tris-EDTA缓冲液加入到“洗脱”室。将Chill-Out液体蜡(Bio-Rad)层铺到两个室中液体的上面，从而穿过药筒顶部形成蜡“桥”，典型需要800μL液体蜡。可以此方式分批制备用于多个样品的药筒并排列在制作好的架上。

[0317] 纯化及样品回收

[0318] 使用与Ambion试剂盒所采用的相同的程序，除了将洗脱缓冲液/珠浆液加热到70℃15分钟以促进病毒RNA的洗脱。

[0319] 程序的比较

[0320] 各种病毒RNA纯化化学对液体蜡纯化方法的适应性通过使用随Abbott m2000rt测定试剂盒提供的试剂用qRT-PCR进行评估。在每种情况中，使用含有HIV-1病毒粒的血浆作为qRT-PCR分析的模板，并计划了合适的阳性(纯HIV-1转录物)和阴性(模拟物血浆纯化或水)对照。所有纯化样品均包括载体RNA作为内部对照并以双份重复进行。对于每种RNA制备物，使用5μL RNA进行分析，每个反应中产生7500个HIV-1RNA拷贝。单个样品的qRT-PCR混合物见下表4所述：

[0321] 表4

[0322]成分 体积(μL)
m2000rt寡聚物.预混合 8.75
Tth聚合酶(Roche) 0.75
醋酸镁(Roche) 2.5
Crowding试剂(5X) 5.0
纯化的RNA 5.0
无核酸酶的dH2O 3.0

[0323] qRT-PCR分析的结果

[0324] qRT-PCR仪器给出的Ct值见下表5：

[0325] 表5

[0326]

[0327] 对于设定的HIV-1模板拷贝的数目，在来自qRT-PCR分析所报道的Ct值中在所测试的化学及所采用的纯化方法之间几乎没有观测到差异。这些实验中的阴性扩增和模拟物纯化对照在这些实验中没有给出Ct值或给出可忽略的Ct值。相门纯化程序(phase gate purification procedure)在效率上与试剂盒厂商方案相当，证明裂解缓冲液和其它PCR抑制剂的液体蜡排除与多次洗涤同样有效。从Abbott/Promega样品洗脱的RNA样品的分光光度分析显示在230nm无吸收。胍鎓(guanidinium)以高摩尔浓度存在于这个裂解缓冲液中并且在230nm吸收紫外光；吸收峰的缺失表明这个污染物的带出很低。观察到的Ct值在重复品之间一致，在纯化化学之间很大程度上不变及在纯化方法学之间相当，这证明已实现良好的RNA回收。

[0328] 实施例5

[0329] CD4+T细胞的分离

[0330] 新鲜外周血单个核细胞(PBMNC)购自Allcells(Emeryville，CA)。用抗CD4抗体包被的Dynabeads CD4磁性颗粒(4.5um直径)购自Invitrogen(Carlsbad，CA)。

[0331] 将1.2ml的PBMNC与50μl的Dynabeads CD4磁性颗粒混合。在4℃、轻轻倾斜和转动下进行捕获反应45分钟。使用三种程序比较CD4+ve T细胞阳性分离。

[0332] a)使用Dynabeads CD4方案的阳性分离：将200μl上述原液等分至研究药筒的孔1中(如图12所示，标记的裂解缓冲液，和图13)。将磁体置于药筒侧面1分钟，引起磁性颗粒和捕获的细胞在该侧形成沉淀。吸出上清并丢弃。将沉淀通过重悬于200μl PBS中及用磁体分离而洗涤3次。最后一次洗涤后，加入60μl 0.2％Triton X-100以裂解细胞。

[0333] b)通过Chill-Out液体蜡(Bio-Rad，Hercules，CA)的阳性提取。将200μl原液等分进研究药筒的孔1中。将60μl 0.2％Triton X-100裂解缓冲液等分进研究药筒的孔2中(如图12所示，标记的洗脱缓冲液，和图13)，其与孔1通过Chill-Out液体蜡分开。将磁体置于药筒侧面1分钟，吸引磁性颗粒和捕获的细胞至孔1的该侧。然后通过沿图13所示路径拖动磁体而将沉淀缓慢移动通过蜡进入孔2中。该磁体用于搅动孔2中的颗粒。

[0334] c)通过芥花籽油(canola oil)(Jewel-Osco/Supervalu，Eden Prairie，MN)的阳性提取。将200μl原液等分进药筒的孔1中。将60μl 0.2％Triton X-100裂解缓冲液等分进裂解室，其与孔2通过芥花籽油分开。将磁体置于药筒侧面1分钟，吸引磁性颗粒和捕获的细胞至孔1的该侧。然后用磁体将沉淀缓慢移动通过芥花籽油进入孔2中。该磁体用于搅动孔2中的颗粒。

[0335] 通过对β2-微球蛋白基因的实时PCR测定来测量孔2中溶液等份中细胞DNA的量从而测定转运穿过亲脂性屏障的效率。在每个所述实验中，用磁体将颗粒吸引至孔2侧面；将60μl裂解的细胞悬液转运至Eppendorf管中。然后获得5μl每种样品并用于RT-PCR，所述RT-PCR使用针对β2-微球蛋白的Phusion GC测定(New England Biolabs，Ipswich，MA)。

[0336] 结果

[0337] 下表6示出达到实时PCR测定的阈值荧光强度所需的循环数

[0338] 表6

[0339] 细胞纯化 Ct值

[0340] DynalBeads方案 27.59

[0341] Chill-Out蜡 27.14

[0342] 植物油 28.99

[0343] 结果显示得自三种细胞分离程序的Ct值是相当的。因为所述测定对β2-微球蛋白定量，因此结果显示细胞中遗传材料在移动通过蜡和油时得以保持。

[0344] 实施例6

[0345] 用葡聚糖PMP从血浆纯化RNA

[0346] 为了消除用于纯化核酸的所有洗涤步骤及消除处理系统和样品之间的所有接触，用外部施加的磁场在孔之间转运PMP。孔用疏水性液体相连，PMP经其转运(图12)。所述疏水性液体作为裂解室和洗脱室之间的屏障，防止两种溶液混合。在应用磁力后，PMP穿过疏水性液体移动，将NA从裂解室转运至洗脱室，而裂解缓冲液和洗脱缓冲液则保持静止。所述疏水性液体作为不混溶相过滤器(IPF)，其使处理减少为仅三个步骤：细胞裂解/NA结合，PMP转运、及NA洗脱。为证明将IPF掺入RNA纯化方案中的可行性，如在测量病毒负荷中一样从血浆中提取HIV-1RNA。HIV-1的定量测量对于监测疾病进展和评估抗逆转录病毒药物治疗结果是很重要的(Mylonakis，Paliou et al.，Am.Fam.Phisician 63(3)483 2001)。
由于衍生自人血的样品中相对低病毒拷贝数及PCR抑制剂丰度，所以病毒负荷测量在技术上是苛求的(Dineva，Mahilum-Tapay et al.Analyst 132：1193-1199 2007)，这个测定提供了良好的模型系统。

[0347] 将得自Rush Virology Quality Assurance Laboratory的1.5X106拷贝/ml血浆的HIV-1病毒在血清反应阴性血浆中稀释以获得分别为300、60和12拷贝/μL的HIV-1TM浓度。根据厂商推荐进行Ambion MagMax Total RNA分离试剂盒(Applied Biosystem；
Foster City，CA)手动方案。对于用IPF方法纯化，将由200μL Ambion裂解/结合溶液浓缩液(Applied Biosystem；FosterCity，CA)、200μL异丙醇、1μL载体RNA(Applied Biosystem；Foster City，CA)、5μL Ambion PMP和5μL结合增强剂(Applied Biosystem；
Foster City，CA)组成的裂解和结合试剂加入到药筒的较大室中并混合。然后向其中加入
50μL含有HIV-1病毒的血浆并用自动化系统混合4分钟。将50μL洗脱缓冲液等分进IPFTM
药筒的较小室中，两种水成液用Chillout 液体蜡(BioradLaboratories；Hercules，CA)覆盖，如图12所示。一种自动化系统用外部磁体聚集PMP 2分钟，并将聚集体从裂解缓冲液移动到洗脱缓冲液。将含有PMP的洗脱缓冲液加热至55℃10分钟以洗脱RNA。将PMP聚集并从洗脱缓冲液中移出。用Abbott RealTime HIV-1扩增试剂盒(Huang，Salituro et al.2007)(Abbott Molecular，Des Plaines，IL)通过加入0.2mg/ml牛血清白蛋白(B8667，Sigma)、150mM海藻糖(T9531；Sigma)和0.2％Tween 20(28320；Pierce Thermo Fisher Scientific)及5μl模板到25μl的反应体积中来进行HIV-1病毒负荷定量。扩增反应在Cepheid SmartCycler II(Sunnyvale，CA)中进行。

[0348] 纯化的RNA用Abbott RealTime HIV-1扩增试剂盒进行扩增。观察到E＝102％的PCR效率(图14)，表明即使在消除了标准方案所需的4个洗涤步骤和醇蒸发步骤后，抑TM制剂带出也是极低的。IPF与使用Ambion MagMax Total RNA分离试剂盒的RNA纯化的标准方案的比较显示，在0.05显著性水平(α＝0.05)，两种方法之间无统计学差异(p值＝
0.967)(图15)。将每个都在若干低拷贝数的10个重复进行纯化，发现60个拷贝的病毒RNA可以以100％灵敏性在PCR反应中检测到。因为使用了50μl血浆，这相当于具有100％灵敏性的每ml血液600个拷贝。

[0349] 实施例7

[0350] 从尿中纯化衣原体和淋病DNA

[0351] 为了消除用于纯化核酸的所有洗涤步骤及消除处理系统和样品之间的所有接触，用外部施加的磁场在孔之间转运PMP。孔用疏水性液体相连，PMP经其转运(图12)。所述疏水性液体作为裂解室和洗脱室之间的屏障，防止两种溶液混合。在应用磁力后，PMP穿过疏水性液体移动，将NA从裂解室转运至洗脱室，而裂解缓冲液和洗脱缓冲液则保持静止。所述疏水性液体作为不混溶相过滤器(IPF)，其使处理减少为仅三个步骤：细胞裂解/NA结合、PMP转运、及NA洗脱。为了证明使用IPF方法从尿中提取NA的可行性，从沙眼衣原体(Chlamydia trachomatis，CT)和淋病奈瑟氏球菌(Neisseria gonorrhoeae，NG)中纯化细菌DNA用于这些性传播疾病的诊断。

[0352] 通过将在McCoy细胞培养悬液中的衣原体：ATCC沙眼血清型F和重悬于含有30％甘油PBS中的冻干的淋病奈瑟氏球菌与对照尿液(Fisher Scientific，PA)组合而制备尿样品。根据厂商方案用Abbott RealTime CT/NG测定进行手动方案。对于用IPF方法纯化，混合200μL Ambion裂解/结合溶液浓缩液(Applied Biosystem；Foster City，CA)、200μL异丙醇、1μL载体RNA(Applied Biosystem；Foster City，CA)、5μL Ambion PMP和5μL结合增强剂(Applied Biosystem；Foster City，CA)。然后向其中加入200μL尿样品。将该溶液加热至55℃10分钟，与血浆样品一样进行两步纯化。如前所述(Marshall et al.，J.Clin.Microbiol，45：747-51，2007)，纯化的DNA用AbbottRealTime CT/NG测定在50μL反应体积中扩增。扩增反应在Abbott Molecular m2000rt仪器(Abbott Park，IL)中进行。

[0353] 跨7个数量级的CT和NG测定的PCR效率分别是97.2％和94.5％(图16-17)，表明抑制剂带出(carryover)极低。这些效率类似于使用AbbottRealtime CT/NG试剂盒的手工提取方法所获得的效率(分别为87.9％和87.9％)。CT和NG测定的Bland-Altman图显示出使用Abbott DNA纯化试剂盒的标准方法和IPF方法之间无统计学差异(图18-19)。在0.05显著性水平(α＝.05)，发现两种方法是一致的(p值分别为0.42和0.70)。

[0354] 实施例8

[0355] 从全血纯化基因组DNA

[0356] 为了消除用于纯化核酸的所有洗涤步骤及消除处理系统和样品之间的所有接触，用外部施加的磁场在孔之间转运PMP。孔用疏水性液体相连，PMP经其转运穿过(图12)。所述疏水性液体作为裂解室和洗脱室之间的屏障，防止两种溶液混合。在应用磁力后，PMP穿过疏水性液体移动，将NA从裂解室转运至洗脱室，而裂解缓冲液和洗脱缓冲液则保持静止。所述疏水性液体作为不混溶相过滤器(IPF)，其使处理降为仅三个步骤：细胞裂解/NA结合，PMP转运及NA洗脱。

[0357] 全血(WB)是基因组DNA的丰富来源；然而，其是极度复杂的含有许多高浓度PCR抑制剂的介质。为了确定所述方法是否可以处理这种样品，开发了一种qPCR测定以检测整合到外周血单核细胞中的原病毒HIV-1DNA。原病毒DNA检测常规用于诊断具有HIV-1的婴儿(Read and Committee on Pediatric AIDS Pediatrics120(6)：e 1547-1562 2007)。由10个步骤(裂解、7个洗涤、干燥和洗脱)组成的Promega Magnesil gDNA纯化试剂盒被调整以适用于IPF，其包括3个步骤(裂解、经液体蜡的PMP转运、及洗脱)。

[0358] 加入到来自血清反应阴性供体的WB中的每个细胞含有单拷贝HIV-1基因组的经培养的8E5细胞(Folks，Powell et al.J.Exp.Med.164(1)：280-2901986)(Rush Virology Quality Assurance Laboratory，Chicago，IL)用于模拟婴儿血液以进行原病毒DNA测定。解冻细胞，用血细胞计数器进行计数，在磷酸盐缓冲盐水(PBS)中进行系列稀释并以8000个细胞/μl、1600个细胞/μl、320个细胞/μl和64个细胞/μl的浓度加入到来自血清反应阴性供体的WB中。根据厂商推荐进行Promega Magnesil gDNA纯化方案。在IPF方法中，将25μL血液加入到60μL裂解缓冲液中，搅动1分钟并在室温温育4分钟。加入
44μL裂解缓冲液和6μL PMP，搅动1分钟并温育4分钟。向所述溶液中加入15μL裂解缓冲液和200μL醇洗涤缓冲液，如前所述进行IPF纯化。纯化的DNA用Abbott RealTime HIV-1扩增试剂盒(Abbott Molecular，Des Plaines，IL)(Huang，Salituro et al.2007)在25μl反应体积中进行扩增。扩增反应在Cepheid SmartCycler II(Sunnyvale，CA)中进行。

[0359] 跨4个数量级的系列稀释液产生具有斜率-3.15的标准曲线以及108％的PCR效率(图20)。原病毒PCR测定的Bland-Altman图显示出使用Promega纯化试剂盒的标准方法和IPF方法之间无统计学差异(图21)。在0.05显著性水平(α＝.05)，发现两种方法是一致的(p值＝0.98)。

[0360] 在上述说明书中提及的所有出版物、专利、专利申请和由登记号标识的序列均以其全部内容援引加入本文。尽管本发明已经结合具体实施方案加以描述，但是应理解所要求保护的发明不应当不恰当地被局限于这些具体实施方案。在不明显改变本文所述组合物和方法的功能特征的前提下，本发明所述的组合物和方法的修改和变化也应当在所附权利要求书要求保护的范围之内。