一种检测甾体类激素及多环芳烃的高效生物化学发光传感器

摘要

一种检测甾体类激素及多环芳烃的高效生物化学发光传感器，属于分子生物学及微生物学技术领域，其特征是：将质粒pTopo-3α-F1和质粒p6转化进大肠杆菌中，建立了一种发光检测系统，重组质粒p6含有3α-HSD全部调控基因，共5257碱基对；当环境中存在雌激素等物质时，可以诱导p6质粒上3α-HSD的调控序列表达调控作用的蛋白，该蛋白可使质粒pTopo-3α-F1上的启动子启动进而表达出荧光素酶，加入荧光素酶底物后，能够产生化学发光，此时发光强度严格受到诱导物含量的控制。有益效果是：与绿色荧光蛋白基因相比，检测发光强度高出十倍以上，且检测系统稳定。表达具有放大、增强效应，进一步扩大了检测的线性范围。可应用于所有甾体类激素及多环芳烃的检测。

权利要求

1.一种检测甾体类激素及多环芳烃的高效生物化学发光传感器，其特征是：将质粒pTopo-3α-F1和质粒p6分别转化进大肠杆菌中，建立了一种萤火虫荧光素酶基因标记的高效生物化学发光检测系统，在重组质粒pTopo-3α-F1的顺势β-半乳糖苷酶启动子基因下游依次插入了包含3α-HSD启动子的470碱基对及萤火虫荧光素酶报告基因1647碱基对；重组质粒p6含有3α-HSD全部调控基因，共5257碱基对；当环境中存在雌激素物质时，可以诱导p6质粒上3α-HSD的调控序列表达调控作用的蛋白，该蛋白可使质粒pTopo-3α-F1上的启动子启动进而表达出荧光素酶，加入荧光素酶底物后，能够产生化学发光，此时发光强度严格受到诱导物含量的控制。

2.根据权利要求1所述的一种检测甾体类激素及多环芳烃的高效生物化学发光传感器，其特征是：质粒pTopo-3α-F1中顺势LacZ启动子基因能够作用于其本身质粒中的

3α-HSD启动子，促进其后的荧光素酶大量表达，加入荧光素酶底物后，能够产生强化学发光，对其发光信号具有放大、增强作用。

3.根据权利要求1所述的一种检测甾体类激素及多环芳烃的高效生物化学发光传感器，其特征是：根据该高效生物化学发光传感器的发光强度大小，通过对照标准曲线可以计算出特异性物质的相对含量。

4.根据权利要求1所述的一种检测甾体类激素及多环芳烃的高效生物化学发光传感-15器，其特征是：检测对象是甾体类激素和多环芳烃两类物质，样品检测浓度范围为：10 至-3

10 摩尔每升。

5.根据权利要求1所述的一种检测甾体类激素及多环芳烃的高效生物化学发光传感器，其构建方法是：a、将质粒pTopo-3α-F1转化进大肠杆菌HB101中，经过双抗性筛选得到一株重组大肠杆菌HB101-F1；

(1)取新鲜制备的大肠杆菌HB101感受态细胞，将细胞均匀悬浮后置于冰上；

(2)加入质粒pTopo-3α-F1，冰浴；

(3)42℃水浴热激90秒，迅速放置冰上3分钟；

(4)加37℃预热的LB培养基，37℃，120转每分振荡培养60分钟以上；

(5)将细菌涂布在含有卡那霉素和氨苄青霉素双抗性的LB琼脂平板上；

(6)平板在37℃下正向放置1小时以上，待涂布的液体吸收进琼脂后，将平板倒置，培养16小时以上；

(7)挑取单菌落，在液体LB培养基培养，提取质粒鉴定，筛选阳性克隆，即获得重组大肠杆菌HB101-F1；

b、将质粒p6转化进大肠杆菌HB101中，经过抗性筛选得到一株重组大肠杆菌HB101-p6；

(1)取新鲜制备的大肠杆菌HB101感受态细胞，将细胞均匀悬浮后置于冰上；

(2)加入质粒p6，冰浴；

(3)42℃水浴热激90秒，迅速放置冰上3分钟；

(4)加37℃预热的LB培养基，37℃，120转每分振荡培养60分钟以上；

(5)将细菌涂布在含有氨苄青霉素抗性的LB琼脂平板上；

(6)平板在37℃下正向放置1小时，待涂布的液体吸收进琼脂后，将平板倒置，培养16小时以上；

(7)挑取单菌落，在液体LB培养基培养，提取质粒鉴定，筛选阳性克隆，即获得重组大肠杆菌HB101-p6；

c、制备高效生物化学发光传感器试剂

(1)将重组大肠杆菌HB101-F1按体积比1∶50的比例接种于LB培养基中，37℃，

180～200转每分恒温培养箱中振荡培养，至OD600＝2.0～4.0；

(2)取出4000转每分离心20～30分钟，去上清，加入无菌水将菌体混匀，4000转每分离心20～30分钟，去上清，重复两次；

(3)加入原菌体体积1/10的无菌水及终浓度为100μg/ml溶菌酶，充分混匀，-20℃反复冻融三次，取出，10000转每分离心20～30分钟，吸取上清即为制备的HB101-F1无细胞系统细胞浆；

(4)将重组大肠杆菌HB101-p6按体积比1∶50的比例接种于LB培养基中，37℃，

180～200转每分恒温培养箱中振荡培养，至OD600＝2.0～4.0；

(5)取出4000转每分离心20～30分钟，去上清，加入无菌水将菌体混匀，4000转每分离心20～30分钟，去上清，重复两次；

(6)加入原菌体体积1/10的无菌水及终浓度为100μg/ml溶菌酶，充分混匀，-20℃反复冻融三次，取出，10000转每分离心20～30分钟，吸取上清即为制备的HB101-p6无细胞系统细胞浆；

(7)将制备的重组大肠杆菌HB101-F1无细胞系统细胞浆与制备的重组大肠杆菌HB101-p6无细胞系统细胞浆用考马斯亮蓝法分别测定蛋白含量，用无菌水将两种无细胞系统细胞浆分别稀释到0.02mg/ml，并按体积比1∶1的比例混合，即为制备的高效生物化学发光传感器试剂；

d、建立高效生物化学发光标准检测曲线

(1)将检测样品的标准品用无水乙醇溶解，分别配制浓度为1fM、1pM、1nM、1μM、1mM的标准检测液；

(2)取高效生物化学发光传感器试剂分别加入标准检测液，空白对照加入无水乙醇，静置，再加入荧光素酶底物，用荧光酶标仪检测其化学发光值，建立标准检测曲线。

说明书

一种检测甾体类激素及多环芳烃的高效生物化学发光传感

器

技术领域

[0001] 本发明属于分子生物学及微生物学技术领域。

背景技术

[0002] 伴随着工、农、畜牧业的快速发展，甾体类激素和多环芳烃类物质造成的环境和食品污染日益严重，给人类生活健康带来了巨大危害。如何快速、高效的检测这两类污染物倍受国内外政府部门和相关研究机构的关注。目前，环境、食品中甾体类激素及多环芳烃污染物检测方法主要为化学和生物两大类：前者多为色谱及质谱法，仪器设备大型昂贵，检测样品单一，样品前处理复杂，而且无法检测未知污染物；某些生物学检测方法如细胞增值实验等，过程繁琐、耗时长、成本高，检测样品单一，对检测环境、实验人员要求严格。

发明内容

[0003] 本发明的目的是：提供一种检测甾体类激素及多环芳烃的高效生物化学发光传感器，将质粒pTopo-3α-F1和质粒p6分别转化进大肠杆菌中，建立了一种萤火虫荧光素酶基因标记的高效生物化学发光检测系统，检测对象为甾体类激素和多环芳烃两大类物质。

[0004] 本发明的技术方案是：

[0005] 本发明构建了基于睾丸酮丛毛单胞菌(C.testosteroni，C.T)的甾体类激素及多环芳烃高效生物化学发光检测系统。睾丸酮丛毛单胞菌能够以睾丸酮等甾体类激素作为唯一碳源和能源，还能降解非固醇类的多环芳烃等物质，通过3α-羟类固醇脱氢酶(3α-HSD)等酶的代谢，消化这类底物。荧光素酶(Luciferase)是自然界中能够产生生物荧光的酶的统称，其中最有代表性的是一种学名为“Photinus pyrali”的萤火虫体内的荧光素酶(firefly luciferase)。萤火虫荧光素酶灵敏度高，适用于高通量筛选，因此自1986年起，萤火虫荧光素酶基因被用作测定基因表达的报告基因，获得了广泛的应用。

[0006] 本发明将质粒pTopo-3α-F1和质粒p6分别转化进大肠杆菌中，建立了一种萤火虫荧光素酶基因标记的高效生物化学发光检测系统。在重组质粒pTopo-3α-F1的顺势β-半乳糖苷酶(LacZ)启动子基因(见序列1)下游依次插入了3α-HSD启动子等调控序列(见序列2)470碱基对及萤火虫荧光素酶报告基因(见序列3)1647碱基对；重组质粒p6含有3α-HSD全部调控基因(见序列4)，共5257碱基对。当环境中存在雌激素等物质时，可以诱导p6质粒上3α-HSD的调控序列表达调控作用的蛋白，该蛋白可使质粒pTopo-3α-F1上的启动子启动进而表达出荧光素酶，加入荧光素酶底物后，能够产生化学发光，此时发光强度严格受到诱导物含量的控制。

[0007] 质粒pTopo-3α-F1中顺势LacZ启动子基因能够作用于其本身质粒中的3α-HSD的调控序列和启动子基因，促进其后的荧光素酶大量表达，加入荧光素酶底物后，能够产生强化学发光，对其发光信号具有放大、增强作用。根据该高效生物化学发光传感器的发光强度大小，通过对照标准曲线可以计算出特异性物质的相对含量。

[0008] 本发明的构建方法：

[0009] 1、将质粒pTopo-3α-F1转化进大肠杆菌HB101中，经过双抗性筛选得到一株重组大肠杆菌HB101-F1：

[0010] (1)取新鲜制备的大肠杆菌HB101感受态细胞，将细胞均匀悬浮后置于冰上。

[0011] (2)加入质粒pTopo-3α-F1，冰浴。

[0012] (3)42℃水浴热激90秒，迅速放置冰上3分钟。

[0013] (4)加37℃预热的LB培养基，37℃，120转每分振荡培养60分钟以上；

[0014] (5)将细菌涂布在含有卡那霉素(kannmycin)和氨苄青霉素(ampicillin)双抗性的LB琼脂平板上。

[0015] (6)平板在37℃下正向放置1小时以上，待涂布的液体吸收进琼脂后，将平板倒置，培养16小时以上。

[0016] (7)挑取单菌落，在液体LB培养基培养，提取质粒鉴定，筛选阳性克隆，即获得重组大肠杆菌HB101-F1。

[0017] 2、将质粒p6转化进大肠杆菌HB101中，经过抗性筛选得到一株重组大肠杆菌HB101-p6：

[0018] (1)取新鲜制备的大肠杆菌HB101感受态细胞，将细胞均匀悬浮后置于冰上。

[0019] (2)加入质粒p6，冰浴。

[0020] (3)42℃水浴热激90秒，迅速放置冰上3分钟。

[0021] (4)加37℃预热的LB培养基，37℃，120转每分振荡培养60分钟以上；

[0022] (5)将细菌涂布在含有氨苄青霉素(ampicillin)抗性的LB琼脂平板上。

[0023] (6)平板在37℃下正向放置1小时，待涂布的液体吸收进琼脂后，将平板倒置，培养16小时以上。

[0024] (7)挑取单菌落，在液体LB培养基培养，提取质粒鉴定，筛选阳性克隆，即获得重组大肠杆菌HB101-p6。

[0025] 3、制备高效生物化学发光传感器试剂

[0026] (1)将重组大肠杆菌HB101-F1按体积比1∶50的比例接种于LB培养基中，37℃，180～200转每分恒温培养箱中振荡培养，至OD600＝2.0～4.0。

[0027] (2)取出4000转每分离心20～30分钟，去上清，加入无菌水将菌体混匀，4000转每分离心20～30分钟，去上清，重复两次。

[0028] (3)加入原菌体体积1/10的无菌水及终浓度为100μg/ml溶菌酶，充分混匀，-20℃反复冻融三次，取出，10000转每分离心20～30分钟，吸取上清即为制备的HB101-F1无细胞系统细胞浆。

[0029] (4)将重组大肠杆菌HB101-p6按体积比1∶50的比例接种于LB培养基中，37℃，180～200转每分恒温培养箱中振荡培养，至OD600＝2.0～4.0。

[0030] (5)取出4000转每分离心20～30分钟，去上清，加入无菌水将菌体混匀，4000转每分离心20～30分钟，去上清，重复两次。

[0031] (6)加入原菌体体积1/10的无菌水及终浓度为100μg/ml溶菌酶，充分混匀，-20℃反复冻融三次，取出，10000转每分离心20～30分钟，吸取上清即为制备的HB101-p6无细胞系统细胞浆。

[0032] (7)将制备的重组大肠杆菌HB101-F1无细胞系统细胞浆与制备的重组大肠杆菌HB101-p6无细胞系统细胞浆用考马斯亮蓝法分别测定蛋白含量。用无菌水将两种无细胞系统细胞浆分别稀释到0.02mg/ml，并按体积比1∶1的比例混合，即为制备的高效生物化学发光传感器试剂。

[0033] 4、建立高效生物化学发光标准检测曲线

[0034] (1)将检测样品的标准品用无水乙醇溶解，分别配制浓度为1fM/L、1pM/L、1nM/L、1μM/L、1mM/L的标准检测液。

[0035] (2)取高效生物化学发光传感器试剂分别加入标准检测液，空白对照加入无水乙醇，静置，再加入荧光素酶底物，用荧光酶标仪检测其化学发光值，建立标准检测曲线。

[0036] 本发明检测对象是：

[0037] 甾体类激素和多环芳烃两类物质，样品检测浓度范围为：10-15至10-3摩尔每升。

[0038] 本发明的有益效果是：

[0039] 1、质粒pTopo-3α-F1中的报告基因萤火虫荧光素酶基因(firefly luciferase：F1)与之前本实验室利用报告基因绿色荧光蛋白基因(GFP)相比，检测发光强度高出十倍以上，且检测系统稳定。

[0040] 2、质粒pTopo-3α-F1中顺势β-半乳糖苷酶基因(LacZ)启动子对萤火虫荧光素-15 -3酶基因的表达具有放大、增强效应，进一步扩大了检测的线性范围(10 至10 摩尔每升)，与原绿色荧光蛋白基因(GFP)标记的传感器相比，不同甾体类激素、多环芳烃的标准检测液的检测线性范围可高出3到9个数量级。

[0041] 3、用无细胞系统检测试剂建立的传感器检测时间短，只需15分钟可完成检测，检测体积小，具有稳定、快速、高效的特点。

[0042] 4、以往的检测方法必须在已知检测物质的前提下才能够检测物质的含量，而高效生物化学发光传感器可以检测环境中未知甾体类激素及多环芳烃的含量。

[0043] 5、可应用于所有甾体类激素及多环芳烃的检测。

附图说明

[0044] 图1、质粒pTopo-3α-F1示意图；

[0045] 图2、质粒p6示意图；

[0046] 图3、睾丸酮高效生物化学发光标准检测曲线；

[0047] 图4、雌二醇高效生物化学发光标准检测曲线；

[0048] 图5、苯并芘高效生物化学发光标准检测曲线；

[0049] 具体实施方式：

[0050] 实施例1、用睾丸酮标准品建立高效生物化学发光标准检测曲线[0051] 1、重组大肠杆菌HB101-F1的构建

[0052] (1)取新鲜制备的100μL大肠杆菌HB101感受态细胞，将细胞均匀悬浮后置于冰上。

[0053] (2)加入质粒pTopo-3α-F1 3μL，冰上放置30分钟。

[0054] (3)42℃水浴热激90秒，迅速放置冰上3分钟。

[0055] (4)加600μL 37℃预热的LB培养基，37℃，120转每分振荡培养60分钟；

[0056] (5)将200μL细菌涂布在含有卡那霉素(kannmycin)和氨苄青 霉素(ampicillin)双抗性的LB琼脂平板上。

[0057] (6)平板在37℃下正向放置1小时，待涂布的液体吸收进琼脂后，将平板倒置，过夜培养16小时。

[0058] (7)挑取单菌落，在液体LB培养基培养，提取质粒鉴定，筛选阳性克隆，即获得重组大肠杆菌HB101-F1。

[0059] 2、重组大肠杆菌HB101-p6的构建

[0060] (1)取新鲜制备的100μL大肠杆菌HB101感受态细胞，将细胞均匀悬浮后置于冰上。

[0061] (2)加入质粒p6 3μL，冰上放置30分钟。

[0062] (3)42℃水浴热激90秒，迅速放置冰上3分钟。

[0063] (4)加600μL 37℃预热的LB培养基，37℃，120转每分振荡培养60分钟；

[0064] (5)将200μL细菌涂布在含有氨苄青霉素(ampicillin)抗性的LB琼脂平板上。

[0065] (6)平板在37℃下正向放置1小时，待涂布的液体吸收进琼脂后，将平板倒置，过夜培养16小时。

[0066] (7)挑取单菌落，在液体LB培养基培养，提取质粒鉴定，筛选阳性克隆，即获得重组大肠杆菌HB101-p6。

[0067] 3、制备高效生物化学发光传感器试剂。

[0068] (1)将重组大肠杆菌HB101-F1按体积比1∶50的比例接种于LB培养基中，37℃，180转每分恒温培养箱中振荡培养，至OD600＝3.0。

[0069] (2)取出4000转每分离心20分钟，去上清，加入无菌水将菌体混匀，4000转每分离心20分钟，去上清，重复两次。

[0070] (3)加入原菌体体积1/10的无菌水及终浓度为100μg/ml溶菌酶，充分混匀，-20℃反复冻融三次，取出，10000转每分离心20分钟，吸取上清即为制备的重组大肠杆菌HB101-F1无细胞系统细胞浆。

[0071] (4)将重组大肠杆菌HB101-p6按体积比1∶50的比例接种于LB培养基中，37℃，180转每分恒温培养箱中振荡培养，至OD600＝3.0。

[0072] (5)取出4000转每分离心20分钟，去上清，加入无菌水将菌体混匀，4000转每分离心20分钟，去上清，重复两次。

[0073] (6)加入原菌体体积1/10的无菌水及终浓度为100μg/ml溶菌酶，充分混匀，-20℃反复冻融三次，取出，10000转每分离心20分钟，吸取上清即为制备的重组大肠杆菌HB101-p6无细胞系统细胞浆。

[0074] (7)将制备的重组大肠杆菌HB101-F1无细胞系统细胞浆与制备的重组大肠杆菌HB101-p6无细胞系统细胞浆用考马斯亮蓝法分别测定蛋白含量。用无菌水将两种无细胞系统细胞浆分别稀释到0.02mg/ml，并按体积比1∶1的比例混合，即为制备的高效生物化学发光传感器试剂。

[0075] 4、建立睾丸酮标准品高效生物化学发光标准检测曲线

[0076] (1)将睾丸酮标准品用无水乙醇溶解，分别配制浓度为1fM/L、1pM/L、1nM/L、1μM/L、1mM/L的标准检测液。

[0077] (2)取每100μL高效生物化学发光传感器试剂分别加入2μL 5个浓度的睾丸酮标准检测液，空白对照组加入2μL无水乙醇，共六个样品，30℃放置10分钟后，每个样品均加入5μL的荧光素酶底物，用荧光酶标仪检测其化学发光值，并建立标准曲线。

[0078] 表1.睾丸酮化学发光检测结果

[0079]

[0080] 睾丸酮标准品检测范围为10-15至10-6摩尔每升，检测化学发光强度与浓度符合三2
次多项式曲线：y＝-16434x3+149201x2-321112x+408121，R ＝0.9973

[0081] 实施例2、用雌二醇标准品建立高效生物化学发光标准检测曲线[0082] 1、重组大肠杆菌HB101-F1的构建

[0083] (1)取新鲜制备的100μL大肠杆菌HB101感受态细胞，将细胞均匀悬浮后置于冰上。

[0084] (2)加入质粒pTopo-3α-F1 3μL，冰上放置30分钟。

[0085] (3)42℃水浴热激90秒，迅速放置冰上3分钟。

[0086] (4)加600μL 37℃预热的LB培养基，37℃，120转每分振荡培养60分钟；

[0087] (5)将200μL细菌涂布在含有卡那霉素(kannmycin)和氨苄青 霉素(ampicillin)双抗性的LB琼脂平板上。

[0088] (6)平板在37℃下正向放置1小时，待涂布的液体吸收进琼脂后，将平板倒置，过夜培养16小时。

[0089] (7)挑取单菌落，在液体LB培养基培养，提取质粒鉴定，筛选阳性克隆，即获得重组大肠杆菌HB101-F1。

[0090] 2、重组大肠杆菌HB101-p6的构建

[0091] (1)取新鲜制备的100μL大肠杆菌HB101感受态细胞，将细胞均匀悬浮后置于冰上。

[0092] (2)加入质粒p6 3μL，冰上放置30分钟。

[0093] (3)42℃水浴热激90秒，迅速放置冰上3分钟。

[0094] (4)加600μL 37℃预热的LB培养基，37℃，120转每分振荡培养60分钟；

[0095] (5)将200μL细菌涂布在含有氨苄青霉素(ampicillin)抗性的LB琼脂平板上。

[0096] (6)平板在37℃下正向放置1小时，待涂布的液体吸收进琼脂后，将平板倒置，过夜培养16小时。

[0097] (7)挑取单菌落，在液体LB培养基培养，提取质粒鉴定，筛选阳性克隆，即获得重组大肠杆菌HB101-p6。

[0098] 3、制备高效生物化学发光传感器试剂。

[0099] (1)将重组大肠杆菌HB101-F1按体积比1∶50的比例接种于LB培养基中，37℃，180转每分恒温培养箱中振荡培养，至OD600＝3.0。

[0100] (2)取出4000转每分离心20分钟，去上清，加入无菌水将菌体混匀，4000转每分离心20分钟，去上清，重复两次。

[0101] (3)加入原菌体体积1/10的无菌水及终浓度为100μg/ml溶菌酶，充分混匀，-20℃反复冻融三次，取出，10000转每分离心20分钟，吸取上清即为制备的重组大肠杆菌HB101-F1无细胞系统细胞浆。

[0102] (4)将重组大肠杆菌HB101-p6按体积比1∶50的比例接种于LB培养基中，37℃，180转每分恒温培养箱中振荡培养，至OD600＝3.0。

[0103] (5)取出4000转每分离心20分钟，去上清，加入无菌水将菌体混匀，4000转每分离心20分钟，去上清，重复两次。

[0104] (6)加入原菌体体积1/10的无菌水及终浓度为100μg/ml溶菌酶，充分混匀，-20℃反复冻融三次，取出，10000转每分离心20分钟，吸取上清即为制备的重组大肠杆菌HB101-p6无细胞系统细胞浆。

[0105] (7)将制备的重组大肠杆菌HB101-F1无细胞系统细胞浆与制备的重组大肠杆菌HB101-p6无细胞系统细胞浆用考马斯亮蓝法分别测定蛋白含量。用无菌水将两种无细胞系统细胞浆分别稀释到0.02mg/ml，并按体积比1∶1的比例混合，即为制备的高效生物化学发光传感器试剂。

[0106] 4、建立雌二醇标准品高效生物化学发光标准检测曲线

[0107] (1)将雌二醇标准品用无水乙醇溶解，分别配制浓度为1fM/L、1pM/L、1nM/L、1μM/L、1mM/L的标准检测液。

[0108] (2)取每100μL高效生物化学发光传感器试剂分别加入2μL 5个浓度的雌二醇标准检测液，空白对照组加入2μL无水乙醇，共六个样品，30℃放置10分钟后，每个样品均加入5μL的荧光素酶底物，用荧光酶标仪检测其化学发光值，并建立标准曲线。

[0109] 表2.雌二醇化学发光检测结果

[0110]

[0111] 雌二醇标准品检测范围为10-15至10-6摩尔每升，检测化学发光强度与浓度符合三次多项式曲线：y＝-15615x3+147277x2-340838x+436881，R2＝0.9844[0112] 实施例3、用苯并芘标准品建立高效生物化学发光标准检测曲线[0113] 1、重组大肠杆菌HB101-F1的构建

[0114] (1)取新鲜制备的100μL大肠杆菌HB101感受态细胞，将细胞均匀悬浮后置于冰上。

[0115] (2)加入质粒pTopo-3α-F1 3μL，冰上放置30分钟。

[0116] (3)42℃水浴热激90秒，迅速放置冰上3分钟。

[0117] (4)加600μL 37℃预热的LB培养基，37℃，120转每分振荡培养60分钟；

[0118] (5)将200μL细菌涂布在含有卡那霉素(kannmycin)和氨苄青 霉素(ampicillin)双抗性的LB琼脂平板上。

[0119] (6)平板在37℃下正向放置1小时，待涂布的液体吸收进琼脂后，将平板倒置，过夜培养16小时。

[0120] (7)挑取单菌落，在液体LB培养基培养，提取质粒鉴定，筛选阳性克隆，即获得重组大肠杆菌HB101-F1。

[0121] 2、重组大肠杆菌HB101-p6的构建

[0122] (1)取新鲜制备的100μL大肠杆菌HB101感受态细胞，将细胞均匀悬浮后置于冰上。

[0123] (2)加入质粒p6 3μL，冰上放置30分钟。

[0124] (3)42℃水浴热激90秒，迅速放置冰上3分钟。

[0125] (4)加600μL 37℃预热的LB培养基，37℃，120转每分振荡培养60分钟；

[0126] (5)将200μL细菌涂布在含有氨苄青霉素(ampicillin)抗性的LB琼脂平板上。

[0127] (6)平板在37℃下正向放置1小时，待涂布的液体吸收进琼脂后，将平板倒置，过夜培养16小时。

[0128] (7)挑取单菌落，在液体LB培养基培养，提取质粒鉴定，筛选阳性克隆，即获得重组大肠杆菌HB101-p6。

[0129] 3、制备高效生物化学发光传感器试剂。

[0130] (1)将重组大肠杆菌HB101-F1按体积比1∶50的比例接种于LB培养基中，37℃，180转每分恒温培养箱中振荡培养，至OD600＝3.0。

[0131] (2)取出4000转每分离心20分钟，去上清，加入无菌水将菌体混匀，4000转每分离心20分钟，去上清，重复两次。

[0132] (3)加入原菌体体积1/10的无菌水及终浓度为100μg/ml溶菌酶，充分混匀，-20℃反复冻融三次，取出，10000转每分离心20分钟，吸取上清即为制备的重组大肠杆菌HB101-F1无细胞系统细胞浆。

[0133] (4)将重组大肠杆菌HB101-p6按体积比1∶50的比例接种于LB培养基中，37℃，180转每分恒温培养箱中振荡培养，至OD600＝3.0。

[0134] (5)取出4000转每分离心20分钟，去上清，加入无菌水将菌体混匀，4000转每分离心20分钟，去上清，重复两次。

[0135] (6)加入原菌体体积1/10的无菌水及终浓度为100μg/ml溶菌酶，充分混匀，-20℃反复冻融三次，取出，10000转每分离心20分钟，吸取上清即为制备的重组大肠杆菌HB101-p6无细胞系统细胞浆。

[0136] (7)将制备的重组大肠杆菌HB101-F1无细胞系统细胞浆与制备的重组大肠杆菌HB101-p6无细胞系统细胞浆用考马斯亮蓝法分别测定蛋白含量。用无菌水将两种无细胞系统细胞浆分别稀释到0.02mg/ml，并按体积比1∶1的比例混合，即为制备的高效生物化学发光传感器试剂。

[0137] 4、建立苯并芘标准品高效生物化学发光标准检测曲线

[0138] (1)将苯并芘标准品用无水乙醇溶解，分别配制浓度为1fM/L、1pM/L、1nM/L、1μM/L、1mM/L的标准检测液。

[0139] (2)取每100μL高效生物化学发光传感器试剂分别加入2μL 5个浓度的苯并芘标准检测液，空白对照组加入2μL无水乙醇，共六个样品，30℃放置10分钟后，每个样品均加入5μL的荧光素酶底物，用荧光酶标仪检测其化学发光值，并建立标准曲线。

[0140] 表3.苯并芘化学发光检测结果

[0141]

[0142] 苯并芘标准品检测范围为10-15至10-3摩尔每升，检测化学发光强度与浓度符合三2
次多项式曲线：y＝-7930.5x3+77226x2-145810x+286787，R ＝0.9814。