解淀粉芽孢杆菌及其用途

摘要

本发明涉及一株解淀粉芽孢杆菌及其用途，属于微生物领域。本发明提供的解淀粉芽孢杆菌Bacillus amyloliquefaciens JNC-002及其用途，该菌株的保藏号为CGMCC No.5740，是从四川剑南春（集团）有限责任公司的酒曲中分离得到的。本发明解淀粉芽孢杆菌产四甲基吡嗪能力可以达到2.4g/L，可用于四甲基吡嗪的生产。

权利要求

1.解淀粉芽孢杆菌（Bacillus amyloliquefaciens）JNC-002，保藏号为CGMCC No.5740。

2.权利要求1所述的解淀粉芽孢杆菌的培养方法，其特征在于：将解淀粉芽孢杆菌接种到成分为蔗糖80～120g/L，豆饼粉25～40g/L、酵母膏3～5g/L、磷酸氢二铵25～60g/L，pH7.0～7.5的培养基中，35～37℃温度下，180～200rpm培养96～120h。

3.根据权利要求2所述的解淀粉芽孢杆菌的培养方法，其特征在于：所述培养基成分为蔗糖100g/L，豆饼粉40g/L，酵母膏5g/L、磷酸氢二铵40g/L，pH7.5。

4.权利要求1所述的解淀粉芽孢杆菌在生产四甲基吡嗪中的用途。

5.权利要求1所述的解淀粉芽孢杆菌在酿酒中的用途。

6.权利要求2或3所述的解淀粉芽孢杆菌的培养方法在生产四甲基吡嗪中的用途。

7.权利要求2或3所述的解淀粉芽孢杆菌的培养方法在酿酒中的用途。

说明书

解淀粉芽孢杆菌及其用途

技术领域

[0001] 本发明涉及一种解淀粉芽孢杆菌及其用途，属于微生物领域。

背景技术

[0002] 四甲基吡嗪又叫川芎嗪（Ligustrazine，缩写为TTMP），其药理作用主要有扩张血管；轻度降压；改善组织微循环，提高组织血液灌注；抑制血小板粘附聚集和血栓形成；抑
制平滑肌细胞和成纤维细胞增生；调节脂质代谢、抗脂质过氧化；有一定的调解免疫的作
用；抗组织纤维化，对肺纤维化和肝纤维化有一定的治疗作用。而吡嗪类化合物（在白酒中
的含量3000~6000ug/L）是中国传统固态发酵白酒特有的风味成分，也是酒体中的健康因
子。因此，提高白酒中四甲基吡嗪的含量可以有利于人体健康。若能从酿酒环境中选育出
代谢四甲基吡嗪的功能菌株，对白酒业来说具有重大的现实意义。

[0003] 目前报道显示解淀粉芽孢杆菌可产α-淀粉酶、β-1,3-1,4-葡聚糖酶、蛋白酶等[1-3]
多种酶类，已广泛用于酶制剂生产 。一些研究表明，解淀粉芽孢杆菌还能产生抗菌蛋白、
iturin（伊枯草菌素）、surfactin（表面活性素）、fengycin（芬荠素）和bacillomycin（杆
[4-8]
菌霉素）等抗菌物质，抗菌谱广，特别是对于霉菌有较好的抑制作用 ，而对于产吡嗪类化
合物的解淀粉芽孢杆菌还未见报道。

发明内容

[0004] 本发明所要解决的技术问题是提供一株解淀粉芽孢杆菌Bacillusamyloliquefaciens JNC-002，该菌株于2012年4月6日保藏于中国微生物菌种保藏管理
委员会普通微生物中心（CGMCC），保藏号为CGMCC No.5740，保藏地址：北京市朝阳区北辰
西路1号院3号中国科学院微生物研究所，邮编100101。

[0005] 进一步的，解淀粉芽孢杆菌的16S rDNA序列如SEQ ID No.3所示。

[0006] 进一步的，该菌株的细菌学特征如下：菌体呈杆状，长度2~3μm，直径0.6~0.8μm，无荚膜，中生芽孢；菌落呈奶油色、不透明、菌落边缘粗糙扩散；生理生化特征
为革兰氏阳性，过氧化氢酶阳性，卵黄反应阴性，吲哚反应阳性，可水解明胶、淀粉、酪蛋白，
利用柠檬酸盐、铵盐、丙二酸，硝酸盐还原阳性，以阿拉伯糖、木糖、甘露醇代替葡萄糖可产
酸。

[0007] 本发明还提供了解淀粉芽孢杆菌的培养方法，将解淀粉芽孢杆菌接种到成分为蔗糖80～120g/L，豆饼粉25~40g/L、酵母膏3~5g/L、磷酸氢二铵25~60g/L，pH7.0~7.5的培
养基中，35~37℃温度下，180~200rpm培养96～120h。

[0008] 进一步的，所述培养基成分为蔗糖100g/L，豆饼粉40g/L，酵母膏5g/L、磷酸氢二铵40g/L，pH7.5。

[0009] 本发明还提供了解淀粉芽孢杆菌在生产四甲基吡嗪中的用途。

[0010] 本发明还提供了解淀粉芽孢杆菌在酿酒中的用途。

[0011] 本发明还提供了解淀粉芽孢杆菌的培养方法在生产四甲基吡嗪中的用途。

[0012] 本发明还提供了解淀粉芽孢杆菌的培养方法在酿酒中的用途。

[0013] 本发明的菌株是从四川剑南春（集团）有限责任公司的酒曲中分离获得。

[0014] 本发明的有益效果在于：本发明首次发现一株高产四甲基吡嗪的解淀粉芽孢杆菌。该菌株产四甲基吡嗪的能力可达到约2.4g/L，为四甲基吡嗪的生产提供了新的选择，为
生物制药提供了宝贵的菌种资源，具有极大的应用应用价值。本发明解淀粉芽孢杆菌是从
酒曲中分离出来的，可用于生产白酒，提高酒体中四甲基吡嗪的含量，为增强酒体典型风味
特征提供了新途径。

[0015] 本发明提供的解淀粉芽孢杆菌Bacillus amyloliquefaciens，于2012年2月1日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心（CGMCC），保藏号为CGMCC
No.5740。

附图说明

[0016] 图1、初筛得到各菌株的产四甲基吡嗪的能力。

[0017] 图2、氮源优化实验结果。

[0018] 图3、本发明解淀粉芽孢杆菌的菌体形态，显微镜放大倍数为100倍。

具体实施方式

[0019] 本发明的解淀粉芽孢杆菌Bacillus amyloliquefaciens JNC-002菌株于2012年4月6日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心（CGMCC），保藏号为CGMCC
No.5740，保藏地址：北京市朝阳区北辰西路1号院3号中国科学院微生物研究所，邮编
100101。

[0020] 进一步的，解淀粉芽孢杆菌的16S rDNA序列如SEQ ID No.3所示。

[0021] 进一步的，该菌株的细菌学特征如下：菌体呈杆状，长度2~3μm，直径0.6~0.8μm，无荚膜，中生芽孢；菌落呈奶油色、不透明、菌落边缘粗糙扩散；生理生化特征
为革兰氏阳性，过氧化氢酶阳性，卵黄反应阴性，吲哚反应阳性，可水解明胶、淀粉、酪蛋白，
利用柠檬酸盐、铵盐、丙二酸，硝酸盐还原阳性，以阿拉伯糖、木糖、甘露醇代替葡萄糖可产
酸。

[0022] 具体的，解淀粉芽孢杆菌的培养方法：将解淀粉芽孢杆菌接种到成分为蔗糖80~120g/L，豆饼粉25~40g/L、酵母膏3~5g/L、磷酸氢二铵25~60g/L，pH7.0~7.5的培养基
中，35~37℃温度下，180~200rpm培养96~120h。

[0023] 进一步的，所述培养基成分为蔗糖100g/L，豆饼粉40g/L，酵母膏5g/L、磷酸氢二铵40g/L，pH7.5。

[0024] 本发明还提供了解淀粉芽孢杆菌在生产四甲基吡嗪中的用途。

[0025] 本发明还提供了解淀粉芽孢杆菌在酿酒中的用途。

[0026] 本发明还提供了解淀粉芽孢杆菌的培养方法在生产四甲基吡嗪中的用途。

[0027] 本发明还提供了解淀粉芽孢杆菌的培养方法在酿酒中的用途。

[0028] 本发明的菌株是从四川剑南春（集团）有限责任公司的酒曲中分离获得。

[0029] 本发明解淀粉芽孢杆菌产四甲基吡嗪能力可以达到2.0~2.4g/L，是一株高产四甲基吡嗪的新菌株，可用于四甲基吡嗪的生产。本发明解淀粉芽孢杆菌是从酒曲中分离出来
的，可用于生产白酒，提高酒体中四甲基吡嗪的含量，为增强酒体典型风味特征提供了新途
径。同时，本发明解淀粉芽孢杆菌也为生物制药提供了宝贵的菌种资源，具有极大的应用价
值。

[0030] 实施例1菌株筛选

[0031] 1、菌株的初筛

[0032] 材料：四川剑南春（集团）有限责任公司使用的酒曲

[0033] 培养基：酪蛋白20.0g，氯化铵1.0g，牛肉膏1.0g，氯化镁5.0g，琼脂20.0g，蒸馏水定容至1000mL，pH 7.0

[0034] 实验方法：

[0035] 无菌条件下取10克酒曲于装有90mL无菌水并放有玻珠的25mL三角瓶中，置揺床-6
上室温振荡30分钟。取菌液按10倍的梯度稀释到10 ，取各稀释度菌液1mL放入无菌平
皿中，倒入灭菌后冷却至50℃的培养基，混匀，待凝固后放入37℃培养箱培养5～7天，按
其是否产透明圈及透明圈内外直径比值对菌株进行初筛。微生物学认为能够降解酪蛋白的
细菌，能产吡嗪类物质。菌体降解酪蛋白时，因利用酪蛋白而会在菌体周围形成一个透明
圈。因为微生物菌落本身大小有差异，所以根据透明圈外直径与内直径的比值来筛选，能比
较直观的说明微生物降解酪蛋白的能力，进而反映出微生物产吡嗪类物质的能力。初筛得
到的菌株经形态观察发现菌株基本都是芽孢杆菌属。

[0036] 表1初筛得到菌株的透明圈比值

[0037]菌株编号 比值 菌株编号 比值
TTMP-1 2.3 TTMP-13 1.1
TTMP-2 3.1 TTMP-14 1.7
TTMP-3 1.7 TTMP-15 2.3
TTMP-4 2.6 TTMP-16 4.1
TTMP-5 3.7 TTMP-17 2.0
TTMP-6 2.0 TTMP-18 1.4
TTMP-7 1.4 TTMP-19 2.3
TTMP-8 3.1 TTMP-20 2.0
TTMP-9 2.3 TTMP-21 3.8
TTMP-10 1.1 TTMP-22 4.0
TTMP-11 2.6 TTMP-23 2.6
TTMP-12 2.6 TTMP-24 1.7

[0038]

[0039] 2、菌株的复筛

[0040] 将初筛菌株经活化后分别以5%接种量接种于液态发酵培养基（蔗糖100g/L，豆饼粉40g/L，酵母膏5g/L，磷酸氢二铵30g/L，pH7.5），37℃180rpm培养120h，用气相色
谱检测各菌株发酵液中四甲基吡嗪的含量（见图1），以此筛选高产四甲基吡嗪的菌株，以
TTMP-16、TTMP-22、TTMP-21、TTMP-5、TTMP-8、TTMP-2较高，与初筛结果相一致。

[0041] 3、菌株产四甲基吡嗪发酵条件优化

[0042] 氮源在菌株产TTMP培养过程中具有两层重要意义，一是满足细胞生长的需要，二是稳定和调节发酵过程的pH。文献报道显示氮源的利用情况直接影响菌株对TTMP的代谢
与否[9]，因此，氮源条件的优化尤其重要，本实验对氮源浓度进行优化，优化结果如图2。

[0043] 氮源优化实验培养基配方：蔗糖100g/L，豆饼粉40g/L，酵母膏5g/L，pH7.5；采用不同磷酸氢二铵使用量进行优化，浓度分别为1%、2%、3%、4%、5%、6%。

[0044] 由图2可知，各菌株产吡嗪的趋势都是随着氮源浓度的增加先增加，到达一个最适值后降低。通过菌株优化实验发现，在最优条件下，各菌株产TTMP的能力都有所提升，尤
其是TTMP-16菌株在氮源浓度为40g/L时产TTMP得到大幅提高，比优化前提高了33%，达到
2398mg/L。

[0045] 在复筛的六株菌株中，TTMP-16菌株产四甲基吡嗪能力最强，命名为JNC-002，并对其进行鉴定。

[0046] 实施例2TTMP-16菌株的鉴定

[0047] 1、16S rDNA序列分析

[0048] （1）DNA提取

[0049] 收集菌体，溶于5mL提取缓冲液（100mMTris·Cl，100mM EDTA-Na2，200mM NaCl，2%CTAB，pH8.0）中，37℃振荡45min。加入0.75mL 20%SDS，65℃水浴1h。12,000rpm，离心
10min，收集上清。上清用等体积的酚︰氯仿︰异戊醇（25︰24︰1）抽提2次，加入终浓度
0.3M的NaAC（pH5.2）及2倍体积的无水乙醇，室温沉淀1h。4℃，12,000rpm，离心20min，
收集沉淀，用70%乙醇漂洗2次，晾干后溶于50μL TE（10mmTris-Hcl，1mmNa2EDTA）中，即
得总DNA。

[0050] （2）扩增16S rDNA

[0051] 以总DNA为模板，细菌16S rDNA通用引物EU27（如SEQ ID No.1所示）和1492R（如SEQ ID No.2所示）分别为正向引物和反向引物扩增16S rDNA。扩增反应体系为50μL：
10×Buffer 5μL，dNTP 1μL，Taq酶0.5μL（2U），正反向引物各1μL，模板DNA1μL，
ddH2O40.5μL。扩增反应条件：94℃4min预变性；94℃0.5min，56℃1min，72℃0.5min，30
个循环；72℃延伸7min。

[0052] （3）16S rDNA序列分析

[0053] 将扩增的16S rDNA片段送上海生工测序，通过美国国家生物技术信息中心的BLAST搜索程序进行比较获得同源性分析结果（见表2）。

[0054] 16S rDNA扩增测序结果SEQ ID No.3所示，如下：

[0055] TGGTTACCTTGTTACGACTTCACCCCAATCATCTGTCCCACCTTCGGCGGCTGGCTCCATAAAGGTTACCTCACCGACTTCGGGTGTTACAAACTCTCGTGGTGTGACGGGCGGTGTGTACAAGGCCCGGGAACGTATTCACCGCG
GCATGCTGATCCGCGATTACTAGCGATTCCAGCTTCACGCAGTCGAGTTGCAGACTGCGATCCGAACTGAGAACAGA
TTTGTGGGATTGGCTTAACCTCGCGGTTTCGCTGCCCTTTGTTCTGTCCATTGTAGCACGTGTGTAGCCCAGGTCAT
AAGGGGCATGATGATTTGACGTCATCCCCACCTTCCTCCGGTTTGTCACCGGCAGTCACCTTAGAGTGCCCAACTGA
ATGCTGGCAACTAAGATCAAGGGTTGCGCTCGTTGCGGGACTTAACCCAACATCTCACGACACGAGCTGACGACAAC
CATGTACCACCTGTCACTCTGCCCCCGAAGGGGACGTCCTATCTCTAGGATTGTCAGAGGATGTCAAGACCTGGTAA
GGTTCTTCGCGTTGCTTCGAATTAAACCACATGCTCCACCGCTTGTGCGGGCCCCCGTCAATTCCTTTGAGTTTCAG
TCTTGCGACCGTACTCCCCAGGCGGAGTGCTTAATGCGTTAGCTGCAGCACTAAGGGGCGGAAACCCCCTAACACTT
AGCACTCATCGTTTACGGCGTGGACTACCAGGGTATCTAATCCTGTTCGCTCCCCACGCTTTCGCTCCTCAGCGTCA
GTTACAGACCAGAGAGTCGCTTTCGCCACTGGTGTTCCTCCACATCTCTACGCATTTCACCGCTACACGTGGAATTC
CACTCTCCTCTTCTGCACTCAAGTTCCCCAGTTTCCAATGACCCTCCCCGGTTGAGCCGGGGGCTTTCACATCAGAC
TTAAGAAACCGCCTGCGAGCCCTTTACGCCCAATAATTCCGGACAACGCTTGCCACCTACGTATTACCGCGGCTGCT
GGCACGTAGTTAGCCGTGGCTTTCTGGTTAGGTACCGTCAAGGTGCCGCCCTATTTGAACGGCACTTGTTCTTCCCT
AACAACAGAGCTTTACGATCCGAAAACCTTCATCACTCACGCGGCGTTGCTCCGTCAGACTTTCGTCCATTGCGGAA
GATTCCCTACTGCTGCCTCCCGTAGGAGTCTGGGCCGTGTCTCAGTCCCAGTGTGGCCGATCACCCTCTCAGGTCGG
CTACGCATCGTCGCCTTGGTGAGCCGTTACCTCACCAACTAGCTAATGCGCCGCGGGTCCATCTGTAAGTGGTAGCC
GAAGCCACCTTTTATGTCTGAACCATGCGGTTCAGACAACCGTCCGGTATTAGCCCCGGTTTCCCGGAGTTATCCCA
GTCTTACAGGCAGGTTACCCACGTGTTACTCACCCGTCCGCCGCTAACATCAGGGAGCAAGCTCCCATCTGTCCGCT
CGACTTGCATGTATTAGGCACGCCGCCAGCGTTCGTCCTGAGCCAGGATCAAACTCTA

[0056] 表2扩增片段的同源性比对分析

[0057]相似菌株 同源性
Bacillus subtilis（枯草芽孢杆菌） 99%
Bacillus amyloliquefaciens（解淀粉芽孢杆菌） 99%
Uncultured Bacillus(未培养芽孢杆菌) 99%
Bacillus sp（芽孢杆菌） 99%

[0058] 2、Biolog微生物鉴定仪鉴定

[0059] 经16S rDNA序列分析，发现复筛得到的菌株与枯草芽孢杆菌、解淀粉芽孢杆菌、未培养芽孢杆菌、芽孢杆菌均的同源性均达到99%，为了进一步的鉴定出该菌株，发明人决定
采用Biolog GENIII全自动微生物鉴定仪（美国BIOLOG公司）鉴定。

[0060] 将待鉴定菌株接种至Biolog推荐的培养基BUG+B上，33℃培养，培养时间应为16小时。

[0061] 以未接种的接种液为空白调整浊度仪使读数为100%记为T，准备预期浊度的接种物。用无菌棉签从培养平板上有细胞生长的地方沾取直径3mm的菌落。对于快速生长的细
菌，沾取一个单菌落即可；对于中等速度生长的细菌，则沾取一小簇菌落；而对于缓慢生长
的细菌，则沾取第一个菌落交汇生长的区域。将棉签的末端深入装有接种液的接种管的底
端，并来回上下晃动、搅拌均匀，以便将细菌充分释放到接种液中。用浊度仪检测，调整细胞
浓度为90~98%T，得到菌悬液。

[0062] 将菌悬液倒入V型加样水槽中，使用8道移液器将菌悬液吸入移液器吸头中。按每孔100μL的量将菌悬液按顺序加入微孔板的所有孔中。盖好微孔板的盖子，弹出枪头。
将微孔板直接放入读数仪中，或者放入33℃培养箱中培养24~48小时。读板，诠释结果（见
表3）。经鉴定，筛选得到高产四甲基吡嗪的菌株为解淀粉芽孢杆菌。

[0063] 表3Biolog微生物鉴定仪鉴定结果

[0064]英文名 参考中文名
Bacillus amyloliquefaciens 解淀粉芽孢杆菌

[0065] 实施例3本发明解淀粉芽孢杆菌株的形态特征及生物学特性鉴定

[0066] 下述各实验中均要用到活化的菌体，活化采用LB平板培养基，划线接种，37℃倒置培养1~2天。

[0067] 1、菌落及菌体形态观察

[0068] 划线接种活化的菌体在LB平板培养基上，37℃培养，观察菌落形态；用接种针挑取少许菌体，于显微镜下观察菌体形态（见图3）。

[0069] 观察结果如下：菌体呈杆状，无荚膜，中生芽孢；菌落呈奶油色、不透明、菌落边缘粗糙扩散。

[0070] 2、革兰氏染色

[0071] 取新活化的菌体少许固定于干净载玻片上，用结晶紫的混合液染1min后，水洗，再用碘液作用1min，水洗，吸干，再用95%乙醇或丙酮溶液脱色30s，用番红液染2~3min，水
洗，风干后于显微镜下观察，观察发现为革兰氏阳性杆状菌、产芽孢。

[0072] 3、过氧化氢酶实验[10]

[0073] 接种环挑取新活化的菌一环，涂抹于滴有3%过氧化氢的玻片上，半分钟内如有气泡产生则为阳性，无气泡则为性，结果见表5。

[0074] 4、淀粉水解实验[10]

[0075] 取活化的菌体点接于含0.2%可溶性淀粉的肉汁培养基平板上，37℃培养4天，形成明显菌落后，在平板上滴加卢哥氏典液，菌落周围如有无色透明圈，表示淀粉水解阳性，
仍是蓝黑色为阴性，结果见表5。

[0076] 5、硝酸盐还原实验[10]

[0077] 将活化的菌体接种于硝酸盐液体培养基中，37℃培养5天，取培养液一滴，加入格里斯氏试剂一滴，如溶液变为红色，为硝酸盐还原阳性，如无红色出现，再加两滴二苯胺试
剂，如不呈蓝色反应，仍为硝酸盐还原阳性，如呈蓝色反应，为硝酸盐还原阴性，结果见表5。

[0078] 6、吲哚反应实验[10]

[0079] 1%胰胨水溶液，调pH7.2~7.6，分装到试管中，115℃灭菌30min。冷却后接入新活化的菌体，37℃培养5天，沿管壁缓缓加入5mm高的对二甲基氨基苯甲醛试剂于培养液表
面，在液层界面发生红色，即为阳性反应，结果见表5。

[0080] 7、明胶穿刺实验[10]

[0081] 将蛋白胨明胶培养基分装到试管中，115℃灭菌20min。穿刺接入新活化的菌体，25℃培养3周，观察生长情况和明胶是否液化，结果见表5。

[0082] 8、卵磷脂酶实验[10]

[0083] 取培养24h的菌体点接在20%卵黄琼脂培养基平板上，37℃培养20h观察，如菌落周围形成乳白色混浊环，表示卵磷脂酶阳性；否则为阴性，结果见表5。

[0084] 9、石蕊牛奶实验[10]

[0085] 将脱脂牛奶100mL与2.5%石蕊水溶液4mL混合后分装到试管，112℃灭菌25min，冷却后接入活化的菌体，37℃培养3周观察酸碱反应，酸凝、酶凝胨化、还原等，结果见表5。

[0086] 10、糖醇类发酵实验[10]

[0087] 取新活化的菌体穿刺接种于休和利夫森二氏培养基中（葡萄糖以1%糖醇代替），37℃培养4天后观察，如指示剂变黄，表示产酸，产酸为阳性，否则为阴性，结果见表5。

[0088] 11、柠檬酸盐利用实验[10]

[0089] 取新活化的菌体在西蒙斯氏柠檬酸盐斜面培养基上划线接种，37℃培养至5天，指示剂显蓝色表示能利用柠檬酸盐，为阳性，否则为阴性，结果见表5。

[0090] 12、丙二酸利用实验[10]

[0091] 取新活化的菌体接种于丙二酸-溴百里酚蓝培养基中，37℃培养2天，培养基由绿变蓝者为阳性，培养基不变色者为阴性，结果见表5。

[0092] 13、氮源利用实验[10]

[0093] 按生长图谱法，用无氮源的培养基倒平皿，当培养基表面凝固后，接种活化的菌体，用最后在选择性的在一定区域撒上硝酸盐和铵盐，37℃培养2天，观察菌株是否生长，
凡能同化者在所加氮源的周围形成生长圈，结果见表5。

[0094] 表5菌株的生理生化特征

[0095]

[0096] 注：“＋”为阳性，“－”为阴性。

[0097] 14、碳源利用情况

[0098] 采用Biolog GP Microplate进行碳源利用实验，将微生物菌悬液细胞浓度调为28%T，每孔接入100μL，35℃培养24小时，由读数仪读出数据，获得碳源利用情况见表6：

[0099] 表6本发明解淀粉芽孢杆菌的碳源利用情况

[0100]况
情
用
利 + + - - + - - + + - + + - -
酸 酸
磷 磷 酸
称 醇 醇 醇伯 -6- -6- 酸氨 醛糖 酸 酸醛 胺酰
名 梨 露 拉 糖 糖 冬 乳 酸 糖 糖 醛
源 山 甘 阿 醇 油 葡 果 天 胶 半 乳 葡 葡 糖
碳 -D -D -D 肌 甘 -D -D -D 果 -D -L -D -D 葡
况
情
用
利 + + + - - - - - + - + - + +

糖 酸
称名源 糖葡-D- 糖露甘 糖果 糖乳半 葡酰甲 糖果 糖果 糖李鼠 胶 糖二 酸氨丙 酸氨精 氨冬天 酸氨谷碳 α -D -D -D -3 -D -L -L 明 蜜 -L -L -L -L
况
情
用
利 + - - + + + + - - + - + - +

酸 苷糖 胺
称 糖 糖 糖二 糖 糖 糖乳 丁L,D-基 葡-D-酰 苷 糖葡-D-
名源碳 精糊 芽麦-D 藻海-D 维纤-D 二胆龙 糖蔗 二松-D 糖苏水 糖子棉 -D-α 羟-β 甲-β 杨水-D 酰乙-N

- - - + - - +
酸 酸 酸
酸 果 果 乙
酸 宁 苹 酸 苹 酸 酰
粘 奎 -L 乙 -D 丙 乙
+ - - - - - -

酸 酸
酸氨胺组 酸氨谷焦 04温 丁-基氨- 丁-基羟- 酸檬 酸丁-酮-
-L -L 吐 γ α 柠 α
- - - - - + - -

胺
糖露 胺糖 酸氨 酯
-D-β- 乳半-D- 酸乙苯- 酯甲 酯甲 脯-L-酰 内酸醛糖 酸二戊-
酰乙-N 酰乙-N 基羟-p 酸酮丙 酸乳-D 乙基氨 乳半-L 酮-α

[0101] 注：“＋”为阳性，“-”为阴性。

[0102] 参考文献

[0103] [1]史永昶,姜涌明,樊飚,等.蛋白酶对解淀粉芽孢杆菌α-淀粉酶活力的影响[J].微生物学通报,1995,22(1):23-25.

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