一种长白山牛皮杜鹃基因组DNA提取的方法转让专利

申请号 : CN201210113210.2

文献号 : CN103074326B

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发明人 : 周晓馥徐洪伟未晓巍

申请人 : 吉林师范大学

摘要 :

本发明属于遗传工程技术领域。公开了一种高山植物长白山牛皮杜鹃基因组DNA提取的方法。该方法首次将CTAB法与SDS法相结合提取纯化长白山牛皮杜鹃基因组DNA,并且提取方法中,CTAB提取缓冲液中的PVP用量为4%,较常规方法增加了2%;?-巯基乙醇用量为4.3%,较常规方法增加了约1倍;65℃温浴时间由常规方法的1小时延长至4小时;并结合SDS法纯化所提取的基因组,成功地提取出了纯度高、质量好的长白山牛皮杜鹃基因组DNA。本发明克服了现有高山植物基因组提取困难、提取的基因组纯度低、易降解的不足,对于后续的分子水平研究及高山植物基因组的研究均具有重要意义。

权利要求 :

1.一种长白山牛皮杜鹃基因组DNA提取的方法,其特征在于:该方法采用CTAB法与SDS法相结合,即首先采用CTAB法提取牛皮杜鹃基因组DNA,然后再采用SDS法纯化所提取的基因组DNA,具体步骤如下:(1)、CTAB法提取牛皮杜鹃基因组DNA:

向提取容器内加入CTAB提取缓冲液预热至65℃;将牛皮杜鹃新鲜叶片在研磨前加入β-巯基乙醇,加入量为CTAB提取缓冲液体积的4.3%V/V,经液氮研磨成冻粉状后迅速加入到上述预热的CTAB提取缓冲液中,充分混匀;于65℃温浴4小时;然后按常规方法-1提取出牛皮杜鹃基因组DNA;所述的CTAB提取缓冲液是由:2%CTAB,100mmol·L Tris-HCl -1 -1pH8.0,20mmol·L EDTA,1.4mol·L NaCl,4%PVP组成;

(2)、结合SDS法纯化所提取的基因组DNA:

向上述提取出的牛皮杜鹃基因组DNA溶液中加入1/10体积2%的SDS,冰浴10分钟;

-1

加入1/10体积5mol·L KAc,冰浴30分钟;18℃下12,000rpm离心10分钟,取上清液;加-1入1/20体积2%的SDS,冰浴10分钟;加入1/20体积5mol·L KAc,冰浴30分钟;离心,取上清液;酚氯仿抽提一次,取上清液;醇沉,洗涤沉淀,溶解沉淀即为纯化的牛皮杜鹃基因组DNA;所述的酚氯仿是苯酚与氯仿按1:1体积比配制而成。

2.根据权利要求1所述的一种长白山牛皮杜鹃基因组DNA提取的方法,其特征在于:该方法的具体步骤如下:

(1)、CTAB法提取牛皮杜鹃基因组DNA:

取2.0ml离心管,加入700ul的CTAB提取缓冲液,65℃预热;取新鲜幼嫩牛皮杜鹃材料

0.3g,研磨前加入30ulβ-巯基乙醇,液氮中研磨成冻粉末状并迅速将该冻粉转入上述离心管中,充分混匀;水浴中65℃温浴4小时;然后按常规方法提取出牛皮杜鹃基因组DNA;

-1 -1

所述的CTAB提取缓冲液是由:2%CTAB,100mmol·L Tris-HCl pH8.0,20mmol·L EDTA,-1

1.4mol·L NaCl,4%PVP组成;

(2)、结合SDS法纯化所提取的基因组:

向上述提取出的牛皮杜鹃基因组DNA溶液中加入1/10体积2%的SDS,冰浴10分钟;

-1

加入1/10体积5mol·L KAc,冰浴30分钟;18℃下12,000rpm离心10分钟,取上清液;加-1入1/20体积2%的SDS,冰浴10分钟;加入1/20体积5mol·L KAc,冰浴30分钟;离心,取上清液;酚氯仿抽提一次,取上清液;醇沉,洗涤沉淀,溶解沉淀即为纯化的牛皮杜鹃基因组DNA;所述的酚氯仿是苯酚与氯仿按1:1体积比配制而成。

说明书 :

一种长白山牛皮杜鹃基因组DNA提取的方法

技术领域

[0001] 本发明涉及一种高山植物基因组DNA提取的方法,属于基因工程技术领域,具体的说涉及一种长白山牛皮杜鹃基因组DNA提取的方法。

背景技术

[0002] 由于高山植物环境条件恶劣,所以高山植物通常被认为是陆地上最为极端的生物,但是高山植物却也拥有丰富极具价值的基因资源。自1896年以来,作为生物进化研究中的热点和难点,高山和极地植物对生境的适应机制和策略一直倍受研究者们的关注。高山植物基因组DNA的提取技术是进行植物分子生物学研究的基本技术之一,DNA产率的高低,质量的好坏直接影响到后续实验的成败。探讨高山植物基因组DNA的提取方法是一项非常有意义的工作,为确保在农作物环境胁迫抗性育种方面提供优异种质和选择指标、为农业基础研究与基因工程提供相关基因。将这种特殊的基因资源应用在观赏陆地植物,将保护与合理利用有效结合,走人与自然和谐发展的可持续性发展道路,这不仅有利于该区域植被的生长发育、生态系统的稳定,更有利于地区经济的发展。
[0003] 高山植物的基因组提取方法有多种,近年来,人们一直致力于研究一种高效快速的提取方法,但是由于物种的特异性,高山植物的基因组提取起来并不是那么方便,。高山植物生存的环境温度低,辐射强,在这样的环境中,植物生长极其缓慢,产物消耗减少,为提高其抵御寒冷和生理干旱方面,使部分糖分和脂类物质积累并储存于叶片组织细胞中,使得高山植物基因组DNA的提取难度加大。王卓伟,等在对桑叶DNA提取方法研究过程中发现PVP还能有效地去除多糖。罗志勇等在研究中对这种方法进行了几点改进:①提高CTAB的浓度;②对于含多酚类较多的植物,增加CTAB提取缓冲液中ß-巯基乙醇的含量,同时加入PVP使其与多酚类物质结合形成复合物;③增加低盐沉淀缓冲液的量;④增加高盐溶液中盐的浓度。用改进的方法从人参、西洋参、三七等药用植物中分离获得了高纯度的DNA; -1Porebski,等在沉淀粗提 DNA时,将提取缓冲液中氯化钠的浓度提高至2.5 mol·L 以使DNA在高盐缓冲条件下优先沉淀,可更有效地除去多糖。余志雄对火龙果总DNA提取方法比较研究验证了CTAB法对火龙果基因组提取是有效,而且应雄美对两种不同甘蔗基因组DNA提取方法的比较,同时证明了SDS和CTAB法都能提取到基因组DNA并且对两种方法进行了改进。
[0004] 长白山杜鹃是一种有代表性高山植物,在海拔1700 m-2500 m海拔带均有分布,其生理生化指标较为特殊,关于本研究中提到的长白山杜鹃基因组提取的方案也有多种,但是不同方法对不同植物的基因组提取效果大不相同。对于杜鹃的基因组DNA提取方面的研究还是很少的。赵喜华,等以杜鹃属常绿杜鹃亚属井冈山杜鹃树叶为材料分别采用CTAB法、碱裂解法、SDS法提取杜鹃基因组DNA,三种方法所提取的DNA纯度及产率有差别,其中CTAB法较好。庄得凤,曹后男,采用CTAB法(①取0.2 g 左右研磨好的新鲜叶片置于1.5 - 1mL 离心管中, 加800 ul 经65℃预热的CTAB ( 2% CTAB; 100 mmol·L Tris -HCl , - 1 - 1
pH8.0;20 mmol·L EDTA;1.4 mol·L NaC1;2% PVP ) 提取缓冲液, 研磨前加入2% β- 巯基乙醇;充分混匀后, 在水浴锅中65℃温浴1h;等)提取几个品种长白山杜鹃的基因组DNA, 所得的DNA 纯度高、质量好,但是牛皮杜鹃及孢叶杜鹃基因组未能提取出来。
本实验用SDS法提取植物基因组(魏群.分子生物学实验指导[M].北京:高等教育出版社,2007.)的方法:“取0.2g新鲜植物叶片,在液氮中研磨成粉末状;转移至2 mL离心管-1 -1
中,加入800 ul细胞提取液(pH 8.0,100 mmol·L Tris·HCl, 5 mmol·L EDTA, 500 -1 o
mmol·L NaCl, 1.25% SDS, 100 ul β-巯基乙醇 ),充分混匀;65C水浴保温20分钟; -1
从水浴中取出离心管,加入250 ul 5 mol·L KCl溶液,混匀,冰浴20分钟;等”来提取长白山杜鹃的基因组,未能成功提取出其基因组DNA。

发明内容

[0005] 针对上述不足,本发明的目的在于克服现有技术对长白山杜鹃基因组DNA提取方法中,基因组提取困难、纯度低、易降解的不足,提供一种新的长白山杜鹃基因组DNA提取的方法,从而获得纯度高、稳定性强的长白山杜鹃基因组DNA。
[0006] 本发明是按以下技术方案实现的:该方法采用CTAB法与SDS法相结合,即首先采用CTAB法提取牛皮杜鹃基因组,然后再采用SDS法纯化所提取的牛皮杜鹃基因组DNA。
[0007] 该方法的具体步骤如下:
[0008] (1)、CTAB法提取牛皮杜鹃基因组DNA:
[0009] 向提取容器内加入CTAB提取缓冲液,预热至65 ℃;将牛皮杜鹃新鲜叶片在研磨前加入ß-巯基乙醇,加入量为CTAB提取缓冲液体积的4.3%V/V,经液氮研磨成冻粉状后迅速加入到上述预热的CTAB提取缓冲液中,充分混匀;于 65 ℃温浴4小时;然后按常规方法提取出基因组DNA;
[0010] (2)、结合SDS法纯化所提取的基因组DNA:
[0011] 向上述CTAB法提取出的牛皮杜鹃基因组DNA溶液中加入1/10体积(SDS体积:基-1因组DNA溶液体积=1:10)2% 的SDS,冰浴10 分钟;加入1/10体积5 mol·L KAc,冰浴
30 分钟;18 ℃下12,000 rpm离心10 分钟,取上清液;加入1/20体积2% 的 SDS,冰浴10 -1
分钟;加入1/20体积5 mol·L KAc,冰浴30 分钟;离心,取上清液;酚氯仿抽提一次,取上清液;醇沉,洗涤沉淀,溶解沉淀即为纯化的牛皮杜鹃基因组DNA。
[0012] 所述的CTAB法提取牛皮杜鹃基因组DNA的具体步骤如下:
[0013] 取2.0 ml离心管,加入700 ul的CTAB提取缓冲液,65 ℃预热; 取新鲜幼嫩牛皮杜鹃材料0.3 g,研磨前加入30 ul ß-巯基乙醇,液氮中研磨成冻粉末状并迅速将该冻粉转入上述离心管中,充分混匀;水浴中65 ℃温浴4小时;然后按常规方法提取出牛皮杜鹃基因组DNA粗品;
[0014] 所述的结合SDS法纯化所提取的基因组的具体步骤如下:
[0015] 向上述CTAB法提取出的牛皮杜鹃基因组DNA溶液中加入1/10体积2% 的SDS,-1冰浴10 分钟;加入1/10体积5 mol·L KAc,冰浴30 分钟;18 ℃下12,000 rpm离心10 -1
分钟,取上清液;加入1/20体积2% 的 SDS,冰浴10 分钟;加入1/20体积5 mol·L KAc,冰浴30 分钟;离心,取上清液;酚氯仿抽提一次,取上清液;醇沉,洗涤沉淀,溶解沉淀即为纯化的牛皮杜鹃基因组DNA。
[0016] 以上牛皮杜鹃基因组DNA提取的方法中,所述的CTAB提取缓冲液是由:2% CTAB,-1 -1 -1100 mmol·L Tris-HCl pH 8.0, 20mmol·L EDTA,1.4 mol·L NaCl,4% PVP组成;所述的酚氯仿是苯酚与氯仿按1:1体积比配制而成。
[0017] 本发明具有以下有益的效果:
[0018] 1、本发明的牛皮杜鹃基因组提取方法中,首次采取了CTAB法与SDS法结合,即CTAB法提取基因组之后,结合SDS法纯化所提取的基因组。
[0019] 2、本发明的方法对现有的CTAB法和SDS法进行了有创造性的改进,具有突出的实质性特点和显著的进步,具体体现在 :
[0020] 步骤(1) CTAB法提取牛皮杜鹃基因组DNA过程中:较常规的CTAB法比:CTAB提取缓冲液中的PVP用量增加了2%,即由2%增加至4%;研磨前ß-巯基乙醇用量较常规的CTAB法,增加了约1倍,即由2%增加至4.3%;温育时间由常规的CTAB法1小时延长至4小时。
[0021] 步骤(2) 结合SDS法纯化所提取的基因组过程中:SDS加量分别为0.2%(1/10体积2% 的SDS)与0.1%(1/20体积2% 的SDS),且是在基因组提取出来之后单独加入的,而常规的SDS法中,SDS的加量为1.25%,且是在基因组提取出来之前混合在细胞提取液中加-1 -1入的;纯化步骤还分别用0.5 mol·L 与0.25 mol·L 的KAc代替了常规SDS法中的1.56 -1
mol·L 的KCl。
[0022] 由于CTAB法与SDS法的结合与改进并用,克服了高山植物基因组与其它多糖、多酚类等次生代谢物难分离的困难。提取得到了用常规方法不易提取的牛皮杜鹃基因组DNA。
[0023] 3、本发明的方法与其他植物基因组提取的方法相比,经检测,本发明获得的牛皮杜鹃基因组DNA,不仅提取效率高,而且基因组DNA的纯度高,不容易降解,为后续分子生物学的研究奠定了坚实基础,且操作简单可行,实用性强。

附图说明

[0024] 图1是海拔2000 m左右的长白山牛皮杜鹃实物照片图。
[0025] 图2是长白山极地杜鹃基因组DNA电泳检测结果图,其中1-为试剂盒快速提取的长白山杜鹃基因组DNA,2-为SDS法提取的长白山杜鹃基因组DNA,3,4-均为CTAB-SDS法提取的长白山牛皮杜鹃基因组DNA。

具体实施方式

[0026] 下面结合实施案例对本发明作进一步说明:
[0027] 一、CTAB-SDS法提取长白山杜鹃基因组DNA
[0028] (一)、改进CTAB法提取植物基因组DNA
[0029] 1、取0.4 g左右的长白山牛皮杜鹃新鲜叶片,液氮研磨成粉末状,置于2 ml离o -1心管中,管中预先加入700 ul 经65 C预热的CTAB提取缓冲液(2% CTAB,100 mmol·L -1 -1
Tris-HCl pH 8.0,20mmol·L EDTA;1.4 mol·L NaCl,4% PVP),研磨前加入30 ul β-巯基乙醇。
[0030] 2、迅速充分混匀后,在水浴锅中65 oC温浴4小时,每隔30 分钟轻轻摇匀。
[0031] 3、加等体积(730 ul)的酚:氯仿(1:1)混合液,颠倒混匀混合物,18 oC下12000 rpm离心10分钟;重复一次。
[0032] 4、取上清液,加3倍体积的无水乙醇,颠倒混匀,-20oC醇沉1-2小时。
[0033] 5、18oC下12000 rpm离心30分钟,弃上清液。
[0034] 6、加入1 ml 70%乙醇,清洗沉淀,18℃下12000 rpm 离心6分钟;重复2次。
[0035] 7、弃上清,风干沉淀。
[0036] 8、加入适量103 ul (ddH2O:胰RNA酶预混液)(100 ul:3 ul)溶解沉淀,37 oC水浴1小时。
[0037] 9、加入等体积的酚:氯仿(1:1)混合液,颠倒混匀混合物,18 oC下12000 rpm离心10分钟。
[0038] 10、取上清液,加1/10体积3 mol·L-1 NaAc(pH 5.2),3倍体积的无水乙醇,-20 oC静置1-2小时。
[0039] 11、18 oC下12000 rpm离心30分钟,弃上清液。
[0040] 12、加入1 ml 70%乙醇,清洗沉淀,12000 rpm 18 ℃离心6分钟;重复2次。
[0041] 13、弃上清,风干沉淀。
[0042] 14、加入适量(30-80 ul)(ddH2O:胰RNA酶预混液)溶解沉淀。
[0043] (二)、结合SDS法纯化植物基因组DNA
[0044] 15、在上述所提基因组DNA溶液中加入1/10体积 2% SDS,冰浴10分钟。
[0045] 16、加入1/10体积 KAc(5mol/L),冰浴30分钟。
[0046] 17、18 oC下12000 rpm离心10分钟,取上清液。
[0047] 18、重复上述步骤15—18,但1/10改为1/20。
[0048] 19、加入1/10体积3 mol·L-1NaAc,再加入3倍体积无水乙醇,-20 oC醇沉2小时,有白色絮状沉淀出现时取出。
[0049] 20、18 oC下12000 rpm离心30分钟,弃上清。
[0050] 21、加入1 ml 70%乙醇,清洗沉淀,18 ℃下12000 rpm 离心6分钟;重复2次。
[0051] 22、弃上清,风干沉淀,加入20ul ddH2O溶解沉淀。
[0052] 23、短期用存于4oC,长期保存存于-20oC。
[0053] 三、琼脂糖凝胶电泳检测(见图2)
[0054] 用1.2%的琼脂糖凝胶进行电泳检测,电泳缓冲液为1×TAE,上样缓冲液为10×LoadingBuffer,分子量标准Marker为DL2,000,记录点样顺序及点样量(样品:5ul,Marker:DL2,000)。用紫外凝胶成像仪在紫外灯312nm下观察电泳结果,照相,保存。