一种分泌性能提高的碱性果胶酶突变体

摘要

本发明公开了一种分泌性能提高的碱性果胶酶突变体，属于生物工程技术领域。本发明将源于Bacillus sp.WSHB04-02的碱性果胶酶的第58位的异亮氨酸I点突变为缬氨酸V。突变后碱性果胶酶胞外酶活提高为337.58U/mL，是突变前的2.60倍，胞外分泌表达量明显提高。此外，突变体的最适反应温度提高了5℃，可以更好地在高温条件下表现出最优酶活；其Km改善明显，与底物结合能力增强为突变前的4.5倍，kcat、t1/2和kcat/Km等都有改善。本发明提供的PGL的酶学性质有大幅度提高，更加适合工业化生产需求，满足社会生产的要求。

权利要求

1.一种分泌性能提高的碱性果胶酶突变体，其特征在于，是将氨基酸序列如SEQ ID NO.2所示的碱性果胶酶的第58位的异亮氨酸I点突变为缬氨酸V。

2.编码权利要求1所述突变体的基因。

3.携带权利要求2所述基因的载体或细胞。

4.一种获得权利要求1所述碱性果胶酶突变体的方法，是通过设计引物对编码碱性果胶酶的基因进行定点突变后表达；所述方法以质粒pET-20b(+)-pgl为模板设计引物进行突变并将突变后的质粒转化进入E.coli JM109进行扩增，然后以E.coli BL21(DE3)表达含突变基因的重组质粒，得到分泌性能增强的碱性果胶酶突变体；所述用于定点突变的引物是：pglI58V primer1：5'-AATCATTTATGTTAAGGGAACGATT-3'pglI58V primer2：5'-TTTGGCGTTGTGTTCGTTTC-3'。

5.应用基因工程菌发酵生产权利要求1所述碱性果胶酶突变体的方法，其特征在于，-1是将含有编码突变碱性果胶酶的基因的重组菌活化培养后接入含有100μg mL 氨苄青霉-1素的发酵培养基中，于37℃、200r min 培养；菌体生长到OD600＝0.6，加入IPTG进行诱导，同时将温度调整为30℃，诱导发酵48h；所述活化培养是将重组菌接种于含有100μg -1mL 氨苄青霉素的种子培养基中，培养温度37℃，200rpm摇床上振荡培养10h；所述种子培养基组成：酵母粉5g/L，胰蛋白胨10g/L，NaCl 10g/L，葡萄糖20g/L，pH7.0；所述发酵培养-1 -1基组成：酵母粉24g/L，胰蛋白胨12g/L，甘油5g/L，K2HPO4 72mmol L ，KH2PO4 17mmol L ；

所述重组菌为以E.coli BL21(DE3)为宿主、含有质粒pET-20b(+)-pglI58V的重组菌。

说明书

一种分泌性能提高的碱性果胶酶突变体

技术领域

[0001] 本发明涉及一种分泌性能提高的碱性果胶酶突变体，属于生物工程技术领域。

背景技术

[0002] 碱性果胶酶(E.C.4.2.2.2，简称PGL)，全称聚半乳糖醛酸裂解酶，该酶广泛存在于细菌、酵母菌、真菌、植物以及和某些寄生线虫。碱性果胶酶广泛应用于食品、纺织、造纸、环境、生物技术等各个领域，在茶和咖啡发酵、纺织和植物纤维加工、油提取、含果胶工业废水处理等发挥巨大作用。碱性果胶酶在碱性条件下具有高活性，可以利用反式消去作用切断聚乳糖醛酸的α-1,4-糖苷键，将果胶质分解为不饱和的寡聚半乳糖醛酸。

[0003] 在棉纤维初生细胞壁的最表面含有很多伴生杂质，如：果胶质、蜡质、含氮物质以及蛋白质等非纤维素类物质，互相包结成为复杂庞大的疏水网状结构。纺织工业中包含精炼步骤，其目的就是去除棉纤维上的杂质，提高棉织物的吸湿功能性，再进行后续加工。传统的化学纺织精炼方法即热碱法，其需要消耗大量的化学品与水资源，环境污染严重，据统计，印染过程中约70％的废水是在这个步骤中产生的。除此之外，热碱处理将对纤维造成严重损伤，机械强度将大幅下降。

[0004] 近十几年来，随着分子生物学与工业微生物研究的迅猛快速发展，研究者开始采用基因工程手段构建重组菌，以期实现碱性果胶酶的过量重组表达。目前，已相继出现了利用Escherichia coli、Bacillus subtilis和Pichia pastoris等作为宿主表达不同来源果胶酶基因的报道。现在对碱性果胶酶的研究主要集中于合成碱性果胶酶工程菌与发酵过程控制。

[0005] 近十年，国外碱性果胶酶的研究方向集中到酶的分离纯化、酶学特性及其蛋白质结构特征研究等方面，我国对碱性果胶酶的研究主要集中在菌种选育、发酵工艺和应用工艺的改良方面，尚缺效价很高的商品碱性果胶酶，为进一步实现工业化铺垫，这方面的研究不容忽视。

发明内容

[0006] 本发明要解决的第一个技术问题是提供一种分泌性能提高的碱性果胶酶突变体。所述突变体是以源于Bacillus sp.WSHB04-02的氨基酸序列如SEQ ID NO.2所示的碱性果胶酶(野生型)为基础，将第58位的异亮氨酸I点突变为缬氨酸V。

[0007] 本发明要解决的第二个技术问题是提供构建所述碱性果胶酶突变体的方法，是通过设计引物对编码碱性果胶酶的基因进行定点突变后表达。

[0008] 所述构建方法，优选以质粒pET-20b(+)-pgl为模板设计引物进行突变并将突变后的质粒转化进入E.coli JM109进行扩增，然后以E.coli BL21(DE3)表达含突变基因的重组质粒，得到分泌性能提高的碱性果胶酶突变体。

[0009] 所述pET-20b(+)-pgl的构建方法参见文献：Overproduction of alkaline polygalacturonate lyase in recombinant Escherichia coli by a two-stage glycerol feeding approach.2011,Shuying Fang et al.Volume102,Issue22,p10671–10678。

[0010] 所述用于定点突变的引物是：

[0011] pglI58V primer1：5'-AATCATTTATGTTAAGGGAACGATT-3'

[0012] pglI58V primer2：5'-TTTGGCGTTGTGTTCGTTTC-3'

[0013] 本发明要解决的第三个技术问题是提供应用基因工程菌发酵生产所述碱性果胶酶突变体的方法，是将含有编码突变碱性果胶酶的基因的重组菌E.coli BL21(DE3)-1(pET-20b(+)-pglI58V活化培养后接入含有100μg mL 氨苄青霉素的发酵培养基中，装液-1
量为50mL/500mL，于37℃，200r min 培养。菌体生长到一定阶段(OD600＝0.6)，加入终浓度0.4mM IPTG进行诱导，同时将温度调整为30℃，诱导发酵48h。

[0014] 所述活化培养是从甘油管中将重组菌E.coli BL21(DE3)(pET-20b(+)-pglI58V)-1接种于含有100μg mL 氨苄青霉素的种子培养基中，装液量为20mL/250mL。培养温度
37℃，200rpm摇床上振荡培养10h。

[0015] 所述种子培养基组成(g/L)：酵母粉5，胰蛋白胨10，NaCl10，葡萄糖20，pH7.0。

[0016] 所述发酵培养基组成：酵母粉24g/L，胰蛋白胨12g/L，甘油5g/L，K2HPO472mmol -1 -1L ，KH2PO417mmol L 。

[0017] 本发明通过定点突变改造碱性果胶酶基因，使所编码的PGL酶活提高，耐热性增强。突变后碱性果胶酶胞外酶活提高为337.58U/mL，是突变前的2.60倍，胞外分泌表达量明显提高。此外，突变体的最适反应温度提高了5℃，可以更好地在高温条件下表现出最优酶活；其Km改善明显，与底物结合能力增强为突变前的4.5倍，kcat、t1/2和kcat/Km等都有改善。本发明提供的PGL的酶学性质有大幅度提高，更加适合工业化生产需求，满足社会生产的要求。

附图说明

[0018] 图1突变株以及原始菌株的分泌表达量(SDS-PAGE蛋白电泳)，WT：突变前的酶；I58V：突变体。

[0019] 图2突变株以及原始菌株的耐热性，WT：突变前的酶；I58V：突变体。

具体实施方式

[0020] 碱性果胶酶酶活力检测：取一定量发酵液，8000rpm离心10min，胞外碱性果胶酶即包含于发酵上清液之中。碱性果胶酶反应体系为：酶稀释液20μL，含0.2％PGA的甘氨-1 -1酸-NaOH缓冲液(0.2mol L ，0.44mmol L 的CaCl2，pH9.4)2mL，无活性的酶液为空白对照。
-1
碱性果胶酶反应条件为：45℃水浴15min，使用3mL磷酸溶液(0.03mol L )终止反应，235nm处测定反应物吸光度值。

[0021] 碱性果胶酶酶活单位定义为：1分钟裂解聚半乳糖醛酸产生1μmol不饱和聚半乳糖醛酸所对应酶量。

[0022] 碱性果胶酶酶活计算方法：

[0023] (OD235×106×体系体积×酶液稀释倍数)/(103×比色杯厚度×4600×酶反应线性范围内的酶促反应时间×酶液体积)

[0024] 碱性果胶酶纯化条件：A液：甘氨酸-NaOH，pH7.5；B液：甘氨酸-NaOH，2M硫酸铵，pH7.5；5mL疏水柱[HiTrap Phenvl(high sub)FF]，3mL/min，30％B液洗脱得到目的蛋白；30kDa millipore超滤离心管浓缩得到SDS-PAGE电泳纯。

[0025] 碱性果胶酶热稳定性检测：在不同温度下按照标准方法测定酶活力，以处理前酶活定为100％.，将酶液分别在30℃保温24h，40℃保温2h，50℃保温2h，55℃下保温1h，利用冰浴迅速冷却后，按上述方法测残余酶活力，考察其热稳定性。

[0026] 碱性果胶酶Km、Vmax检测：在0.05-2g/L不等的底物浓度下测定，由GraphPad Prism5预测得到。

[0027] 实施例1突变表达质粒的构建及重组枯草芽孢杆菌的获得

[0028] 1、以pET-20b(+)-pgl质粒为模板构建突变表达载体

[0029] 编码野生型碱性果胶酶及由21个氨基酸组成的信号肽的基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示，野生型成熟碱性果胶酶的氨基酸序列如SEQ ID NO.2所示。通过分析碱性果胶酶的三维结构，推测58位的异亮氨酸I对碱性果胶酶的分泌表达有较大影响，设计突变实验，将58位的异亮氨酸突变成缬氨酸V。

[0030] 以pET-20b(+)-pgl质粒为模板，利用PCR(聚合酶链式反应)体外扩增含突变基因的质粒，将58位的异亮氨酸突变成缬氨酸。

[0031] 用于定点突变的引物：

[0032] pglI58V primer1：5'-AATCATTTATGTTAAGGGAACGATT-3'

[0033] pglI58V primer2：5'-TTTGGCGTTGTGTTCGTTTC-3'

[0034] PCR反应体系如下：(引物浓度为20μmol/L)

[0035]

[0036] 加水补至50μl。

[0037] PCR反应条件：94℃预变性10min，98℃变性10s，55℃退火15s，72℃延伸5min，30个循环后72℃延伸10min，4℃保存。将通过PCR得到的质粒pET-20b(+)-pglI58V先磷酸化，再过夜连接(试剂盒购于TAKARA宝生物)，反应体系及条件如表1：

[0038] 表1：质粒磷酸化与连接反应体系与反应条件

[0039]

[0040] pET-20b(+)-pgl的 构 建 方 法 参 见 文 献：Overproduction of alkaline polygalacturonate lyase in recombinant Escherichia coli by a two-stage glycerol feeding approach.2011,Shuying Fang et al.Volume102,Issue22,p10671–10678。

[0041] 2、突变表达载体的转化

[0042] (1)感受态细胞的制备

[0043] 将E.coli BL21(DE3)在划线平板培养基上挑取单菌落，接种到LB培养基中。37℃振荡(200rpm)培养。测定OD600值，当OD600值达到0.35～0.5时(约培养5小时)放置冰中停止培养(如果OD600值超出此范围将不能保证感受态细胞的转化效率)。取上述菌体培养液1ml于1.5ml Microtube中(根据需要量确定Microtube数量)。1,500×g(一般的微型离心机约4000rpm)4℃离心5分钟，弃上清(注意尽量除尽上清)。在每个Microtube中加入100l冰中预冷的Solution A，轻轻弹动Microtube使沉淀悬浮，禁止剧烈振荡1,500×g(一般的微型离心机约4000rpm)4℃离心5分钟，弃上清(注意尽量除尽上清)。
在每个Microtube中加入100μL冰中预冷的Solution B，轻轻弹动Microtube使沉淀悬浮，禁止剧烈振荡。

[0044] (2)突变表达载体的验证扩增

[0045] 感受态细胞制作完成。本感受态细胞可以直接用于DNA的转化实验，也可以于-80℃中保存，以备以后使用。在-80℃保存时，可以有效保存一年以上，但不能反复冻融，一旦融解后，不能再进行-80℃保存。感受态细胞的DNA转化将-80℃保存的感受态细胞置于冰中融化10分钟。取100μL的感受态细胞移至新的转化管中。向感受态细胞中加入0.1ng～10ng(3μL～10μL)的转化用DNA，轻轻混匀后冰中放置30分钟。42℃水浴中放置90秒钟后，立即于冰中放置1～2分钟。加入890μL37℃预温的LB培养基。37℃振荡培养1小时。取适量涂平板后，将平板倒置于37℃培养箱中培养一夜。确认培养菌落，进行下步实验。

[0046] 实施例2突变PGL的表达

[0047] 种子培养基组成(g/L)：酵母粉5，胰蛋白胨10，NaCl10，葡萄糖20，pH7.0。-1

[0048] 发酵培养基组成：酵母粉24g/L，胰蛋白胨12g/L，甘油5g/L，K2HPO472mmol L ，-1KH2PO417mmol L 。

[0049] 从甘油管中将含有突变表达载体pET-20b(+)-pglI58V的重组菌E.coli -1BL21(DE3)(pET-20b(+)-pglI58V)接种于含有100μg mL 氨苄青霉素的种子培养基中，装-1
液量为20mL/250mL。培养温度37℃，200rpm min 摇床上振荡培养10h。

[0050] 将培养10h的种子液以3％(V/V)的接种量接入含有100μg mL-1氨苄青霉素的发-1酵培养基中，装液量为50mL/500mL，于37℃，200r min 培养。菌体生长到一定阶段(OD600＝0.6)，加入终浓度0.4mM IPTG进行诱导，同时将温度调整为30℃，诱导发酵48h。

[0051] 实施例3突变前后PGL胞外酶活

[0052] 按照实施例2所述的方法分别以含未经突变的表达载体pET-20b(+)-pgl的E.coli BL21(DE3)及突变株E.coli BL21(DE3)(pET-20b(+)-pgl I58V)进行发酵。

[0053] 图1 SDS-PAGE蛋白电泳显示突变后碱性果胶酶I58V胞外分泌表达量明显提高，突变前碱性果胶酶胞外酶活为129.65U/mL，突变后碱性果胶酶胞外酶活提高为337.58U/mL，是突变前的2.60倍。结合表1，突变后碱性果胶酶比酶活从179.14U/mg提高到295.63U/mg，是突变前的1.65倍。说明突变后碱性果胶酶I58V的分泌能力增强，酶活性增强。

[0054] 实施例4突变前后PGL的酶学性质

[0055] 按照实施例2所述的方法分别对E.coli BL21(DE3)(pET-20b(+)-pgl)及突变株E.coli BL21(DE3)(pET-20b(+)-pglI58V)进行发酵，纯化后进行耐热性等酶学性质分析。由表2可以看出，突变后最适反应温度提高了5℃，突变后碱性果胶酶可以更好的在高温条件下表现出最优酶活；Km改善明显，与底物结合能力增强为突变前的4.5倍，kcat、t1/2和kcat/Km等都有改善。说明突变后碱性果胶酶的整体酶学性质都得到改善。

[0056] 表2突变株以及原始菌株酶学参数

[0057]

[0058] 结果表明，通过序列比对与结构结合方式在关键位点突变氨基酸，可以使该酶分泌性能极大提高，酶与底物结合能力极大增强，酶学性质明显提升，这种策略可以广泛应用于酶学性质的改进。

[0059] 虽然本发明已以较佳实施例公开如上，但其并非用以限定本发明，任何熟悉此技术的人，在不脱离本发明的精神和范围内，都可做各种的改动与修饰，因此本发明的保护范围应该以权利要求书所界定的为准。