MAPK信号整合激酶2在治疗动脉粥样硬化中的功能和应用

摘要

本发明公开了一种MAPK信号整合激酶2（Mnk2）在治疗动脉粥样硬化中的功能和应用，属于基因的功能与应用领域。本发明以ApoE-/-小鼠及Mnk2-/-ApoE-/-小鼠为实验对象，通过高脂饮食诱导获得动脉粥样硬化模型，结果表明与ApoE-/-小鼠对比，Mnk2基因缺陷显著减少了主动脉的斑块面积，增强了主动脉窦斑块的稳定性，显著减轻了炎症反应。这表明Mnk2在动脉粥样硬化中的功能主要体现为促进主动脉斑块形成，特别是促进动脉粥样硬化。针对Mnk2的上述功能，Mnk2可作为药物靶标用于筛选预防、缓解和/或治疗动脉粥样硬化的药物，Mnk2的抑制剂可用于制备预防、缓解和/或治疗动脉粥样硬化的药物。

权利要求

1.Mnk2作为药物靶标在筛选预防、缓解和/或治疗动脉粥样硬化的药物中的应用。

说明书

MAPK信号整合激酶2在治疗动脉粥样硬化中的功能和应用

技术领域

[0001] 本发明属于基因的功能与应用领域，具体涉及一种MAPK信号整合激酶2（Mnk2）在治疗动脉粥样硬化中的功能和应用，具体是Mnk2在制备预防、缓解和/或治疗动脉粥样硬化的药物中的应用。

背景技术

[0002] 心脑血管疾病在许多发达国家中是主要致死性病因，在我国的发病率和致死率也逐年升高。心脑血管疾病的基础是动脉粥样硬化（Atheosclersisis，AS），动脉粥样硬化可使动脉管壁增厚、变硬、管腔狭窄，导致很多心脑血管事件发生。而动脉粥样硬化不稳定斑块的破裂、血小板的聚集及血栓形成造成的冠状动脉急性狭窄和闭塞是导致急性冠状动脉综合征（acute coronary syndrome，ACS）的重要原因。

[0003] 动脉粥样硬化是多种遗传基因、危险因素及免疫机制共同参与的一种慢性炎症性疾病，局部和全身的炎症免疫反应在动脉粥样硬化发生发展过程中起着重要作用，固有免疫和适应性免疫共同参与调节动脉粥样硬化病变，病理上表现为大、中动脉多处斑块形成，好发于血液分流、动脉弯曲及动脉分支等区域，其病变特征是血中脂质在动脉内膜沉积，引起内膜灶性纤维性增厚，病灶深部为由坏死组织和细胞外脂质池形成的粥样物质。动脉粥样硬化斑块中存在着多种免疫细胞，其中以巨噬细胞和T细胞最为常见，此外还有少量的树突状细胞（Dentritic cell，DC）、自然杀伤细胞（natural killer cell，NK cell）和肥大细胞（mast cell）等，偶有B淋巴细胞。

[0004] 动脉粥样硬化最早期肉眼可见的损伤是脂质条纹，主要由摄取了大量胆固醇的巨噬细胞源性泡沫细胞构成。血液循环中的单核细胞在动脉易损部位黏附到活性内皮细胞，启动了脂质条纹的形成，黏附的单核细胞随后受局部产生的化学趋附分子的吸引迁移到内膜下，并进一步分化为巨噬细胞。大量胆固醇脂在巨噬细胞内积聚，形成泡沫细胞，这是动脉粥样硬化形成早期的特征性病理生理过程。动脉粥样硬化的发生是多因素共同作用的结果，目前已发现的动脉粥样硬化危险性因素很多，但相关针对治疗及控制效果均不理想，降脂和抗炎治疗是目前最主要的治疗措施。

[0005] 丝裂原活化蛋白激酶（mitogen-activated protein kinases，MAPKs）是一族丝氨酸/苏氨酸（Ser/Thr）蛋白激酶，介导多种细胞外刺激所产生的生物学效应，参与调节细胞增殖、分化和凋亡等多种生物学过程。MAPKs信号通路主要包括ERK1/2（extracellular signal-regulated kinase-1 and -2, 细胞外信号调节激酶-1和-2）、p38 MAPK和JNK（c-Jun amino-terminal kinase, c-Jun氨基末端激酶）三条通路。Mnks（MAPK signal-integrating kinases，MAPK信号整合激酶）是目前已明确的MEK/ERK和p38 MAPK的共同下游激酶【1-2】，可调控真核起始因子4E（eukaryotic initiation factor 4E，eIF4E）的磷酸化，调节其他效应元素，如hnRNPA1和PSF。Mnks包括Mnk1和Mnk2，分别由MKNK1和MKNK2基因编码。各亚型有共同的结构元件，即含PBR（polybasic region，多碱基区）的N端、中间的催化结构域及含MAPK结合域的C端。Mnks广泛表达，在多种细胞因子受体参与的信号通路中发挥关键作用。近来研究显示Mnks被认为是抗癌靶点，不仅调控促炎症细胞因子的合成，还能影响炎性介质合成酶的活性，在炎症反应中发挥重要作用。研究发现ERK1/2和p38 MAPK通路的下游激酶Mnks能磷酸化ARE结合蛋白如核不均一性核糖核蛋白A1（hnRNP A1）和RNA剪接因子PSF/p54nrb以及eIF4E，增强巨噬细胞和T细胞中促炎症细胞因子（TNF-α、IL-1β、IL-6、MCP-1）的生物合成【3-7】。郭津和徐长庆【8】发现在大鼠动脉粥样硬化模型中，促凋亡JNK和p38蛋白激酶被激活，抗凋亡ERK1/2也被激活，抑制或减轻细胞凋亡可有效防止AS的发生与发展。张旻发现ERK的激活与调节是AS发生发展的始动机制之一【9】。

[0006] 小鼠和基因工程小鼠资源是目前疾病机制研究、基因功能研究、药物创制等领域最重要的动物模型之一，也是这些领域创新研究的必须条件。利用基因工程小鼠针对动脉粥样硬化病理过程中的各个分子环节进行研究，对阐明动脉粥样硬化发生发展过程中的分子机制，寻找动脉粥样硬化治疗的分子靶点具有重要的意义。

[0007] 【参考文献】

[0008] 1. Fukunaga R, Hunter T. MNK1, a new MAP kinase-activated protein kinase, isolated by a novel expression screening method for identifying protein kinase substrates. Embo J. 1997; 16(8): 1921-1933.

[0009] 2. Waskiewicz AJ, Flynn A, Proud CG, et al. Mitogen-activated protein kinases activate the serine/threonine kinases Mnk1 and Mnk2. Embo J. 1997;16(8): 1909-1920.

[0010] 3. Joshi S, Platanias LC.Mnk Kinases in Cytokine Signaling and Regulation of Cytokine Responses. Biomol Concepts. 2012 Apr; 3(2):127-139.[0011] 4. Rowlett RM, Chrestensen CA, Nyce M, et al. MNK kinases regulate multiple TLR pathways and innate proinflammatory cytokines in macrophages. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2008; 294(2): G452-459.

[0012] 5. Buxade M, Parra JL, Rousseau S, et al. The Mnks are novel components in the control of TNF alpha biosynthesis and phosphorylate and regulate hnRNP A1. Immunity. 2005; 23(2): 177-189.

[0013] 6. Buxade M, Morrice N, Krebs DL, et al. The PSF.p54nrb complex is a novel Mnk substrate that binds the mRNA for tumor necrosis factor alpha. J Biol Chem. 2008; 283(1): 57-65.

[0014] 7. Andersson K, Sundler R. Posttranscriptional regulation of TNFalpha expression via eukaryotic initiation factor 4E (eIF4E) phosphorylation in mouse macrophages. Cytokine. 2006; 33(1): 52-57.

[0015] 8. 郭津, 徐长庆. 动脉硬化大鼠心肌钙敏感受体表达增加通过激活MAPK通路诱导细胞凋亡. 中国科技论文在线, 2011, 6(3): 231-236.

[0016] 9. 张旻. 血管内皮细胞的ERK信号转导通路调节机制研究. 中国实用医药,2009, 4(25): 250-252。

发明内容

[0017] 本发明的目的在于确定Mnk2的表达和动脉粥样硬化的相互关系，提供一个用于预防、缓解和/或治疗动脉粥样硬化的靶基因Mnk2的新用途。

[0018] 本发明的目的通过下述技术方案实现：

[0019] 本发明确定的Mnk2的表达和动脉粥样硬化的关系如下：

[0020] 1. Mnk2基因敲除显著减少了动脉粥样硬化的斑块面积

[0021] 本发明以ApoE基因敲除（ApoE-/-）小鼠与Mnk2/ApoE双基因敲除（Mnk2-/-ApoE-/-）小鼠为实验对象，分别通过低脂饲料和高脂饲料饮食诱导获得动脉粥样硬化小鼠模型-/- -/- -/-（AS）。结果表明ApoE 和Mnk2 ApoE 小鼠通过低脂饲料饮食，主动脉树有少量斑块形成；
-/- -/-
通过高脂饲料饮食后，斑块面积显著增加，Mnk2 ApoE 小鼠的主动脉树、主动脉窦以及头-/-
臂干的斑块面积均显著小于ApoE 小鼠（图1-2）。

[0022] 2. Mnk2基因敲除显著增强主动脉窦斑块的稳定性

[0023] 本发明以ApoE基因敲除（ApoE-/-）小鼠与Mnk2/ApoE双基因敲除（Mnk2/-ApoE-/-）小鼠为实验对象，通过高脂饲料饮食诱导获得动脉粥样硬化小鼠模型（AS），对主动脉窦斑块的稳定性进行研究。结果表明Mnk2基因敲除显著减少主动脉窦斑块内巨噬细胞的含量和坏死中心的面积，增加斑块内平滑肌细胞的含量和胶原成分含量，增强了主动脉窦斑块的稳定性（图3）。

[0024] 3. Mnk2基因敲除显著减轻了炎症反应

[0025] 本发明以ApoE基因敲除（ApoE-/-）小鼠与Mnk2/ApoE双基因敲除（Mnk2-/-ApoE-/-）小鼠为实验对象，通过高脂饲料饮食诱导获得动脉粥样硬化小鼠模型（AS），对主动脉窦斑块的炎症因子的表达进行研究。结果表明Mnk2基因敲除显著降低了主动脉窦斑块的ICAM-1和IL-6等促炎因子，升高了IL-10等抑炎因子的表达水平（图4）。

[0026] 由以上结果可知发生动脉粥样硬化时，Mnk2基因缺陷减少了斑块面积，增强主动脉窦斑块的稳定性，显著减轻了炎症反应。因此Mnk2具有促进动脉粥样硬化发生发展的作用，为研究防治动脉粥样硬化的新靶点和新策略提供了理论依据和临床基础。

[0027] 因此，Mnk2基因可作为药物靶点，构建Mnk2基因过表达的体外细胞模型或动物模型，用于筛选预防、缓解和/或治疗动脉粥样硬化的药物；Mnk2基因也可作为基因治疗中的靶基因，设计并制备预防、缓解和/或治疗动脉粥样硬化的药物和/或生物学试剂，通过基因工程技术达到预防、缓解和/或治疗动脉粥样硬化的目的。例如以Mnk2为靶基因，设计可干扰Mnk2表达的双链siRNA，通过化学方法合成以后，注射入人体通过RNA干扰的方法使Mnk2基因沉默来治疗动脉粥样硬化；还可以设计并构建Mnk2的突变体，注射后进入细胞，竞争Mnk2原形的作用底物，从而抑制Mnk2的功能，起到治疗目的；此外，还可以以Mnk2为靶点设计小分子化合物抑制剂，利用Mnk2基因过表达的体外细胞模型或动物模型，通过筛选，发现其中能够特异性抑制Mnk2的分子，从而为动脉粥样硬化的治疗提供新的治疗性分子。

[0028] 针对Mnk2的上述功能，提供Mnk2作为药物靶标在筛选预防、缓解和/或治疗动脉粥样硬化的药物中的应用。

[0029] 针对Mnk2的上述功能，提供Mnk2的抑制剂在制备预防、缓解和/或治疗动脉粥样硬化的药物中的应用。

[0030] 一种预防、缓解和/或治疗动脉粥样硬化的药物，包含Mnk2的抑制剂。

[0031] 所述的Mnk2的抑制剂优选为Mnk2基因的siRNA、Mnk2基因的RNA干扰载体，Mnk2的抗体及其他能够抑制Mnk2表达的抑制剂中的一种。

[0032] 本发明相对于现有技术具有如下的优点及效果：

[0033] 1. 本发明发现Mnk2基因的新功能，即Mnk2能够促进动脉粥样硬化的作用。

[0034] 2. 基于Mnk2促进动脉粥样硬化的功能，为研制动脉粥样硬化的药物提供靶标。

[0035] 3. Mnk2的抑制剂可用于制备预防、缓解和/或治疗动脉粥样硬化的药物。

附图说明

[0036] 图1是ApoE-/-和Mnk2-/-ApoE-/-小鼠的主动脉树油红O染色及斑块面积统计图，结果表明Mnk2基因敲除显著减少了主动脉树的斑块面积（NS：无显著性差异）。

[0037] 图2是ApoE-/-和Mnk2-/-ApoE-/-小鼠主动脉窦及头臂干HE染色及斑块面积统计柱状图，结果表明Mnk2基因敲除显著减少了主动脉窦以及头臂干的斑块面积（*：p＜0.05 vs -/-HFD ApoE 组）。

[0038] 图3是ApoE-/-和Mnk2-/-ApoE-/-小鼠的主动脉窦斑块内坏死中心、胶原成分、巨噬细胞及平滑肌细胞含量染色及结果统计柱状图，结果表明Mnk2基因敲除显著减少主动脉窦斑块内巨噬细胞的含量和坏死中心的面积，增加斑块内平滑肌细胞的含量和胶原成分含-/-量（*：p＜0.05 vs HFD ApoE 组）。

[0039] 图4是ApoE-/-和Mnk2-/-ApoE-/-小鼠的主动脉窦斑块内ICAM-1、IL-6、IL-10等炎症因子的表达水平免疫荧光染色及结果统计柱状图，结果表明Mnk2基因敲除显著降低了主动脉窦斑块的促炎因子ICAM-1和IL-6 的表达水平，升高了抑炎因子IL-10的表达水平-/-（*：p＜0.05 vs HFD ApoE 组）。

具体实施方式

[0040] 下面结合实施例及附图对本发明作进一步详细的描述，但本发明的实施方式不限于此。

[0041] 实验用动物及饲养

[0042] 实验动物种属，性别，周龄及来源：ApoE基因敲除（ApoE-/-）小鼠与Mnk2/ApoE双-/- -/- -/-基因敲除（Mnk2 ApoE ）小鼠，雄性，8周龄，体重19-25g。ApoE基因敲除小鼠（ApoE ，购-/- -/-
自Jackson Laboratory，货号002052）；Mnk2 ApoE 小鼠由Mnk2基因敲除小鼠（购自日本RIKEN公司，货号：RBRC01513）和ApoE基因敲除小鼠杂交得到。

[0043] 实验动物饲料配方：高脂饲料（HFD，购自北京华阜康生物科技有限公司，按AIN-76 A Western Diets配方，热量百分比：蛋白质15.8%，脂肪40%，碳水化合物44.2%）；低脂饲料（NC，购自北京华阜康生物科技有限公司，货号D12450B）：热量百分比：蛋白质20%，碳水化合物70%，脂肪10%。

[0044] 动物饲养及环境条件：所有的实验小鼠均饲养在武汉大学心血管病研究所SPF级动物房（许可证号：SYXK（鄂）：2009-0053）。每12小时交替照明，温度24±2℃，湿度40%-70%，小鼠自由饮水进食。

[0045] 实施例1 小鼠动脉粥样硬化模型（AS）获得

[0046] 1. 实验动物分组：选用8周龄，体重19-25g，雄性，ApoE-/-小鼠和Mnk2-/-ApoE-/-小-/-鼠，分别给予高脂饲料（Western Diets，HFD）和低脂饲料（Normal chow，NC）饲养，ApoE -/- -/- -/- -/- -/-
HFD组，ApoE NC组，Mnk2 ApoE HFD组，Mnk2 ApoE NC组共4个组别，每组各20只。

[0047] 2. 动脉粥样硬化模型通过高脂饲料诱导操作流程：

[0048] 采用ApoE-/-小鼠和Mnk2-/-ApoE-/-小鼠，建立AS模型，进行表型相关分析，明确Mnk2基因对动脉粥样硬化疾病发挥的作用。小鼠从8周龄开始，HFD组全程高脂饲料喂养28周处死并收集样本，NC组全程低脂饲料喂养28周处死并收集样本。

[0049] 实施例2 AS模型小鼠斑块面积测定

[0050] 1. 小鼠终末组织取材

[0051] 小鼠喂养高脂或低脂饲料直至28周时，称重，用3%戊巴比妥钠，90mg/kg麻醉小鼠，用针头固定于取材板，用纱布湿润小鼠胸腹部皮肤，用眼科剪剪开胸腔，暴露心脏，剪开右心耳，把输液器的针头刺进左心室，用50mL注射器缓慢推注10-15mL PBS缓冲液，待右心耳流出液清亮，换上4%多聚甲醛继续推注10-15mL。灌流结束后，清除胸腹腔脏器，仅保留心脏。将小鼠置于显微镜下，分离主动脉弓周围筋膜、脂肪组织，剪下头臂干，放入装有4%多聚甲醛的5mL EP管中，在升主动脉起始部剪下心脏，在胸主动脉中部剪断，并在颈总和锁骨下约3mm处剪断，把主动脉弓放入上述EP管中。

[0052] 2. 主动脉树斑块面积测定

[0053] 主动脉树置于4%多聚甲醛中隔夜固定→纯水漂洗30min→60%异丙醇处理10min→油红O染液（公司sigma，货号00625）染色60min→60%异丙醇漂洗1min×3次至背景干净→解剖镜下去除残余外壁脂肪→将染色好的动脉平铺于黑色解剖蜡板上，染色后用数码相机拍照，并使用Image-Pro Plus 6.0图像分析软件进行斑块面积定量测定（油红O原液=0.5克油红O+100毫升100%异丙醇，油红O 染液（工作液）：V（油红O原液）/ V（H2O）=3/2）。

[0054] 主动脉树斑块面积（%）= 斑块总面积/主动脉树总面积*100%。

[0055] 3. 病理组织处理

[0056] 3.1 石蜡标本制备

[0057] 4%多聚甲醛中隔夜固定后，将头臂干、主动脉弓用滤纸小心包好，以防从包埋框间隙中漏出。流水冲洗30min后放入脱水机，30%乙醇15min→50%乙醇15min→75%乙醇15min→85%乙醇15min→95%乙醇15min→100%乙醇15min→100%乙醇15min→二甲苯15min→二甲苯15min→石蜡30min→石蜡30min。头臂干及主动脉弓脱水完成后，从脱水机拿出。头臂干呈Y直立于石蜡中，主动脉弓平躺于石蜡中。

[0058] 3.2 主动脉组织切片

[0059] 使用切片机分别对主动脉窦和头臂干石蜡标本切片（切片厚度5μm）。

[0060] 4. 主动脉窦斑块面积测定

[0061] 苏木素伊红染色（HE染色）：取主动脉窦石蜡白片65℃烘烤30分钟→二甲苯5分钟×3次→100%乙醇1分钟→95%乙醇1分钟→70%乙醇1分钟→纯水漂洗（以玻片上不挂有水珠为标准）→甩尽载玻片上的水分，苏木素溶液（珠海贝索，BA-4021）浸染5分钟→自来水漂洗（去除玻片上苏木素的浮色）→1%盐酸乙醇1-3秒→自来水漂洗（去除玻片上盐酸乙醇）→Scott液（碳酸氢钠0.35g，硫酸镁2g，蒸馏水100mL）1分钟→自来水浸洗（去除玻片上的Scott液）→甩尽在玻片上的水分，伊红溶液（珠海贝索，BA-4024）染色10秒钟→纯水漂洗（去除玻片上伊红的浮色）→70%乙醇一下→95%乙醇一下→100%乙醇30秒，3次→二甲苯2分钟，3次→趁二甲苯未干时封片（以切片无气泡为原则）→通风橱内吹干，显微镜拍照。

[0062] 5. 头臂干斑块面积测定

[0063] 苏木素伊红染色（HE染色），取头臂干石蜡白片，具体操作方法同实施例2.4。

[0064] HE染色图片统计：直接用Image-Pro Plus 6.0图像分析软件圈主动脉窦和头臂干斑块面积。

[0065] 通过主动脉树油红O染色可大体评估整条血管上动脉粥样硬化斑块形成的多少、分布情况及斑块面积的大小。图1是小鼠AS模型后主动脉树油红O染色结果图，头臂干和-/- -/- -/-主动脉窦是动脉粥样硬化斑块最明显的部位，ApoE 和Mnk2 ApoE 小鼠通过低脂饲料饮-/- -/- -/-
食，主动脉树就有少量斑块形成，且Mnk2 ApoE 小鼠的斑块面积和ApoE 小鼠无显著差-/- -/-
异；通过高脂饮食后，斑块含量显著增加，Mnk2 ApoE 小鼠的主动脉树斑块面积显著小于-/-
ApoE 小鼠。图2是小鼠AS模型后主动脉窦和头臂干HE染色结果图，结果表明经高脂饮-/- -/- -/-
食后Mnk2 ApoE 小鼠的主动脉窦和头臂干的斑块面积显著小于ApoE 小鼠。以上结果表明Mnk2基因敲除显著降低了动脉粥样硬化的斑块面积。

[0066] 实施例3 AS模型小鼠斑块稳定性的测定

[0067] 1. 主动脉窦坏死中心的面积大小测定

[0068] 主动脉窦石蜡白片苏木素伊红染色（HE染色），方法同实施例2.4，选取含胆固醇结晶、无细胞核纤维结构的组织显微镜拍照。

[0069] 坏死中心的面积测定：使用Image-Pro Plus 6.0图像分析软件圈坏死中心面积。

[0070] 2. 主动脉窦胶原成分含量测定：

[0071] 天狼星红（PSR）染色，主要步骤为：取主动脉窦石蜡白片55℃烘烤30min→二甲苯2min，3次→100%酒精1min→95%酒精1min→70%酒精1min→流水冲洗10min→双蒸水1min→质量分数0.2%磷钼酸2min→0.1%天狼猩红苦味酸溶液滴于组织上，湿盒中染色90min→去除残液→0.01N盐酸4s→70%酒精1次→90%酒精1次→100%酒精30s，3次→二甲苯2min，3次→趁二甲苯未干立即盖玻片封片，显微镜拍照。

[0072] 胶原比例测定：使用Image-Pro Plus 6.0图像分析软件圈红色胶原面积，胶原比例（%）= 胶原面积/斑块面积*100%。

[0073] 3. 主动脉窦巨噬细胞及平滑肌细胞标志物的表达测定

[0074] 免疫荧光染色检测主动脉窦巨噬细胞标志物CD68、平滑肌细胞标志物SMA（Smooth Muscle Actin）的表达。所需一抗信息：CD68（MCA1957; 1:100; rat; AbD Serotec），SMA（ab5694; 1:100; rabbit; Abcam）；所需二抗信息：Alexa Flour® 568 goat anti-rat IgG （A11077；Invitrogen），Alexa Fluor 488-conjugated goat anti-rabbit IgG（A11008；Invitrogen）。

[0075] 主要步骤为：

[0076] 1）烤片：将主动脉窦石蜡白片置于烤箱中30min以上。

[0077] 2）脱蜡：二甲苯5min×3次。

[0078] 3）水合：100%乙醇5min×2次；95%乙醇5min；70%乙醇5min；ddH2O浸洗5min×2次。

[0079] 4）柠檬酸盐组织抗原修复（高压修复）：取一定量的pH6.0柠檬酸盐抗原修复工作液于修复盒中，放入高压锅中，大火加热至沸腾，将脱蜡水合后的组织切片置于修复盒中，盖上锅盖，扣上压力阀，继续加热至喷气，开始计时5min后，取出修复盒；室温放置20min，自然冷却后取出切片。

[0080] 5）ddH2O漂洗5min×2次，PBS漂洗5min×2次。

[0081] 6）组化笔划圈，滴加10%羊血清（GTX27481，GeneTex）封闭，于湿盒中37℃封闭60min。

[0082] 7）弃封闭液，滴加适当比例稀释的一抗，4℃孵育过夜，37℃复温30min，弃去一抗，PBS洗10min×3次。

[0083] 8）滴加二抗，于湿盒中37℃孵育60min，弃去二抗，PBS浸洗5min×3次。

[0084] 9）SlowFade Gold antifade reagent with DAPI（S36939，Invitrogen）封片。

[0085] 10）荧光镜下观察，拍照。

[0086] 荧光定量统计：使用Image-Pro Plus 6.0图像分析软件对阳性细胞计数测定，CD68/SMA（%）= 阳性细胞数/斑块面积*100%。

[0087] 巨噬细胞是斑块内最重要的细胞成分，它主要有血液循环单核细胞进入内皮下后分化而来，单核/巨噬细胞可分泌多种粘附、趋化因子如细胞黏附分子（ICAM-1）、单核细胞趋化和激活因子（MCP-1）等，增进斑块内细胞的进入，此外巨噬细胞还可分泌多种基质金属蛋白酶（MMPs），降低斑块内胶原面积，从而破坏斑块的稳定性；平滑肌细胞可分泌多种细胞基质，是动脉粥样硬化斑块内分泌胶原的细胞源，主要作用是修复被破坏的细胞基质成分从而起到保护作用；胶原成分是斑块内最重要的细胞外基质，也是纤维帽的主要成分，具有抗血流冲击防止斑块破裂的作用，也是维护斑块稳定性的重要评估指标。

[0088] 图3是ApoE-/-小鼠和Mnk2-/-ApoE-/-小鼠的主动脉窦斑块内含物的分析结果图。主-/- -/- -/-动脉窦HE染色可见Mnk2 ApoE 小鼠的坏死中心面积明显小于ApoE 小鼠；PSR染色结-/- -/- -/-
果表明高脂饮食后的模型，Mnk2 ApoE 组小鼠的胶原比例明显高于ApoE 小鼠；免疫荧-/- -/- -/-
光发观察巨噬细胞标志物CD68在Mnk2 ApoE 小鼠斑块内的表达量则显著低于ApoE 小-/- -/- -/-
鼠；平滑肌细胞标志物SMA在Mnk2 ApoE 小鼠斑块内的表达量明显高于ApoE 小鼠。以上结果表明Mnk2基因敲除显著减少主动脉窦斑块内巨噬细胞的含量和坏死中心的面积，增加斑块内平滑肌细胞的含量和胶原成分含量；Mnk2基因敲除可以增强主动脉窦斑块的稳定性（图3）。

[0089] 实施例4 AS模型小鼠斑块内炎症因子表达的测定

[0090] 免疫荧光染色检测主动脉窦ICAM-1、IL-6、IL-10等炎症因子的表达。所需一抗信 息：ICAM-1（AF796；1:100；goat；R&D systems）、IL-6（AF-406-NA；1:100；goat；R&D systems）、IL-10（AF-217-NA；1:100；goat；R&D systems）；所需二抗信息：Alexa Flour®568 donkey anti-goat IgG（A11057；Invitrogen）。

[0091] 主要步骤为：参见实施例3.3。

[0092] 荧光定量统计：使用Image-Pro Plus 6.0图像分析软件对阳性细胞进行吸光度（IOD）测定。

[0093] 炎症反应是导致动脉粥样硬化斑块破裂的主要因素之一。炎性细胞分泌大量细胞因子如白细胞介素6（IL-6），白细胞介素10（IL-10）等可导致内皮细胞的活化、平滑肌细胞的增生、凋亡及粥样病变的进展。受损的内皮细胞和单核/巨噬细胞分泌的粘附、趋化因子是介导炎症细胞向动脉粥样硬化斑块聚集的关键因子。通过免疫荧光染色观察ICAM-1、IL-6、IL-10等炎症因子的表达变化，结果表明Mnk2基因敲除显著降低了主动脉窦斑块内促炎因子ICAM-1、IL-6的表达水平，升高了IL-10抗炎症因子的表达水平（图4）。

[0094] 上述实施例结果显示，ApoE-/-小鼠及Mnk2-/-ApoE-/-小鼠在高脂饮食的诱导下发生-/-动脉粥样硬化，和ApoE 小鼠相比，Mnk2/ApoE双基因敲除后小鼠的主动脉斑块面积显著减少，斑块稳定性也增加，炎症反应明显减轻。这些结果表明，Mnk2可显著促进主动脉斑块的形成和动脉粥样硬化的发生发展。本发明证明了Mnk2在动脉粥样硬化模型中有着重要的恶化作用，其抑制剂可用于制备治疗动脉粥样硬化疾病的药物。

[0095] 上述实施例为本发明较佳的实施方式，但本发明的实施方式并不受上述实施例的限制，其他的任何未背离本发明的精神实质与原理下所作的改变、修饰、替代、组合、简化，均应为等效的置换方式，都包含在本发明的保护范围之内。