一种鹿鞭酒及其制备方法

摘要

本发明涉及一种鹿鞭酒及其制备方法。采用的技术方案是鹿鞭酒以鹿鞭、鹿茸、鹿血和白酒为主料，以灵芝、淫羊藿、枸杞、甘草和五味子为辅料制成。本发明利用现代生物技术酿制而成，酒体澄清透明棕红色，醇香浓郁，回味绵长，含有丰富的营养物质，具有较好的营养价值和保健功能。本发明的鹿鞭酒中蛋白质含量为7.2mg/100ml，总糖含量为6.00mg/100ml，还原糖含量为5.91mg/100ml，脂肪含量为40mg/100ml，含抗坏血酸的量为0.565mg/100ml。

权利要求

1.一种鹿鞭酒的制备方法，其特征在于：方法如下：

1）按鹿鞭500g、鹿茸100g、鹿血200g，备料，取鹿鞭和鹿茸原料洗净后，切片、粉碎，加入

5倍量体积百分浓度为70%的乙醇，60℃水浴连续回流提取3次，每次5小时，之后，经过滤澄清，合并澄清液，加入蛋清1000g，充分搅拌后，煮沸30分钟，加入鹿血，搅拌均匀，5000rpm离心去除沉淀，保留上清液，得上清液A，备用；

2）按灵芝100g、淫羊藿3000g、枸杞1000g、甘草300g、五味子1250g，取灵芝、淫羊藿、枸杞、甘草和五味子加入10倍量水，在回流装置中回流提取1小时，过滤，得滤液B，备用；

3）将上清液A和滤液B合并，添加到200kg 60°纯高粱酒中，以纯净水调节酒精度为35°。

说明书

一种鹿鞭酒及其制备方法

技术领域

[0001] 本发明属于酒类领域，特别涉及一种具有活血、壮阳、补肾、益精的鹿鞭酒及其加工方法。

背景技术

[0002] 随着生活水平的提高，人们的保健意识逐步增强，市面上各种保健产品琳琅满目，而保健酒随着人们消费意识和生活水平的提高也越来越得到重视，市场规模越来越大。然而现有的保健酒大都是将人参，鹿茸或中药草用酒浸泡后饮用，这种方法并不能有效地将人参、鹿茸和中草药的有效成分有效利用，浪费了资源。如今，随着消费者的健康意识的抬头，酒水的低度化、清淡化、健康化日趋明显。随着人类的进步，医药学也有了新的发展，人们开始有意识的泡制药酒，以此达到养生和治病的目的。所以，人们越来越需要一种科学配伍，主要以养生健体为主，同时具有保健强身作用的保健酒。

发明内容

[0003] 针对上述问题，本发明的目的在于提供一种具有活血、壮阳、补肾、益精的鹿鞭酒。

[0004] 本发明的另一目的是提供一种鹿鞭酒的制备方法。

[0005] 本发明采用的技术方案是：一种鹿鞭酒，包括以鹿鞭、鹿茸、鹿血和白酒为主料制成。优选的，按重量份配比，鹿鞭2-10份、鹿茸1-3份、鹿血1-5份、白酒2-5份。

[0006] 上述的鹿鞭酒，所述的白酒为50-70°高粱酒。

[0007] 上述的鹿鞭酒，还包括辅料，所述的辅料为灵芝、淫羊藿、枸杞、甘草和五味子。优选的，按重量份配比，灵芝0.5-1.5份、淫羊藿20-40份、枸杞5-15份、甘草2-5份、五味子10-15份。

[0008] 一种鹿鞭酒的制备方法：按鹿鞭、鹿茸、鹿血和白酒的配比备料，方法如下：取鹿鞭和鹿茸原料洗净后，切片、粉碎，加入5倍量体积百分浓度为70％的乙醇，60-70℃水浴回流提取，过滤，取滤液，于滤液中加入蛋清，充分搅拌后，煮沸，然后加入鹿血，搅拌均匀，离心去除沉淀，保留上清液，将上清液加入白酒中即为目标产物。

[0009] 一种鹿鞭酒的制备方法，按上述的主料和辅料配比备料，方法如下：

[0010] 1)取鹿鞭和鹿茸原料洗净后，切片、粉碎，加入5倍量体积百分浓度为70％的乙醇，60-70℃水浴回流提取，过滤，取滤液，于滤液中加入蛋清，充分搅拌后，煮沸，然后加入鹿血，搅拌均匀，离心去除沉淀，保留上清液A备用；

[0011] 2)取灵芝、淫羊藿、枸杞、甘草和五味子加入10倍量水，在回流装置中回流提取，过滤，取滤液B备用；

[0012] 3)将上清液A和滤液B合并，添加到白酒中，以纯净水调节酒精度为30-50°。

[0013] 本发明的有益效果是：

[0014] 1)本发明的鹿鞭酒，对人体具有强壮作用，能提高人体机体的工作能力，从而改善睡眠和饮食，减少疲劳。

[0015] 2)本发明的鹿鞭酒，能促进伤口愈合，鹿鞭中的多胺类化合物能够增强机体内RNA聚合酶Ⅱ的活性，促进蛋白质的合成，促进伤口肌肉再生，加快伤口的愈合速度。

[0016] 3)本发明的鹿鞭酒，经动物实验证实，对小鼠作皮下注射，几天后即可观察其前列腺，精囊重量明显增加。

[0017] 4)本发明的鹿鞭酒，具有抗衰老作用。磷脂类化合物，能够抑制机体内单胺氧化酶及丙二醛的活性，减少机体内氧自由基的形成，促进蛋白质合成，增加脑和肝组织中蛋白质的含量。

[0018] 5)本发明，利用上述方案，可生产具有活血、壮阳、补肾、益精的鹿鞭酒，并通过分析鹿鞭酒中蛋白质、糖类、脂质、Vc的含量，结果表明，鹿鞭酒中蛋白质含量为6-8mg/100ml，总糖含量为5.00-7.00mg/100ml，还原糖含量为5.80-6.00mg/100ml，脂肪含量为30-40mg/100ml，含抗坏血酸的量为0.5-0.6mg/100ml。

附图说明

[0019] 图1是考马斯亮蓝比色法标准曲线图。

[0020] 图2是血清睾酮含量测定标准曲线。

具体实施方式

[0021] 实施例1一种鹿鞭酒

[0022] (一)配方

[0023] 按重量份配比，鹿鞭500g、鹿茸100g、鹿血200g、60°纯高粱酒200kg。

[0024] (二)制备方法

[0025] 按上述的配比，取鹿鞭和鹿茸原料洗净后，切片、粉碎，加入5倍量70％乙醇(V/V)，60℃水浴连续回流提取3次，每次5小时，之后，经过滤澄清，合并澄清液，加入蛋清1000g，充分搅拌后，煮沸30分钟，加入鹿血，5000rpm离心去除沉淀，保留上清液，将上清液加入60°纯高粱酒中，即为一种鹿鞭酒。

[0026] 实施例2一种鹿鞭酒

[0027] (一)配方

[0028] 鹿鞭500g、鹿茸100g、鹿血200g、灵芝100g、淫羊藿3000g、枸杞1000g、甘草300g、五味子1250g，60°纯高粱酒200kg。

[0029] (二)制备方法

[0030] 1)取鹿鞭和鹿茸原料洗净后，切片、粉碎，加入5倍量体积百分浓度为70％的乙醇，60℃水浴连续回流提取3次，每次5小时，之后，经过滤澄清，合并澄清液，加入蛋清1000g，充分搅拌后，煮沸30分钟，加入鹿血，搅拌均匀，5000rpm离心去除沉淀，保留上清液，得上清液A，备用。

[0031] 2)取灵芝、淫羊藿、枸杞、甘草和五味子加入10倍量水，在回流装置中回流提取1小时，过滤，得滤液B，备用；

[0032] 3)将上清液A和滤液B合并，添加到60°纯高粱酒中，以纯净水调节酒精度为35°，过滤、分装。

[0033] (三)检测方法

[0034] 以实施例制备的鹿鞭酒为实验材料，利用考马斯亮蓝比色法、铁氰化钾滴定法、乙醚萃取法、2，6-二氯酚靛酚滴定法，依次对鹿鞭酒中蛋白质、糖类、脂质、Vc含量进行测定。同时探究鹿鞭酒对小鼠生殖器官体重比以及血液中睾丸酮含量的影响。确定鹿鞭酒的功效。

[0035] 1.蛋白质的测定-考马斯亮蓝比色法

[0036] 1.1 0～100μg/ml标准曲线的制作

[0037] 取15支离心管，编号管0以及两组平行对照组A1～A7，B1～B7，按表1加入试剂，盖塞后，将各试管中的溶液纵向倒转混匀，室温静止5min后，以管0为空白对照，在595nm下比色测定。以标准蛋白质含量(μg)为横坐标，吸光度为纵坐标，取两组平均值，绘出标准曲线，如图1所示。

[0038] 表1标准曲线的测定

[0039]

[0040] 由图1和表1可见，利用考马斯亮蓝比色法对鹿鞭酒中蛋白质含量进行检测，染料主要是与蛋白质结构中的碱性氨基酸(特别是精氨酸)以及芳香族氨基酸残基相结合。在595nm下测定样品的吸光度值A595，然后与蛋白质浓度成正比，从而得出蛋白质含量。

[0041] 1.2样品中蛋白质含量测定:

[0042] 向三支样品离心管X，Y，Z中分别加入1ml制备的鹿鞭酒和5ml考马斯亮蓝染液，将三支试管中的溶液纵向倒转混匀，室温下静止约5min后，在595nm下测定样品的吸光度值A595，由样品液的吸光度值查标准曲线即可求出含量。

[0043] 1.3实验结果如表2

[0044] 表2蛋白质含量测定结果

[0045]

[0046] 2、糖类的检测-铁氰化钾滴定法

[0047] 利用铁氰化钾滴定法对鹿鞭酒中糖类含量进行检测，费林溶液与还原糖共沸，会在碱性溶液中将铜离子还原成亚铜离子，并与溶液中的亚铁氰化钾络合而呈现黄色。以次甲基蓝为指示液，滴至到达终点时，稍微过量的还原糖会将次甲基蓝还原成无色，故可依据试样水解液的消耗体积，计算总糖含量。

[0048] 2.1预备试验

[0049] 准确吸取费林甲、乙液各5.00mL于100mL烧杯中，加入50ml水，摇匀，在燃气灶上加热至沸腾，在沸腾状态下用葡萄糖标准溶液(2.5g/L)滴定，当溶液的蓝色将消失呈红色时，加2滴次甲基蓝，继续滴至蓝色消失，记录消耗葡萄糖标准溶液的总体积。

[0050] 2.2正式试验

[0051] 吸取费林甲，乙液各5.00mL于250mL锥形瓶中，加入50ml水和比预备试验少1ml的葡萄糖标准溶液(2.5g/L)，加热至沸，并保持2min，加2滴次甲基蓝，在沸水状态下于1min内用葡萄糖标准溶液(2.5g/L)滴至终点，记录消耗葡萄糖标准溶液的总体积(V)。

[0052] 2.3样品测定：

[0053] ①测总糖用样：准确吸取鹿鞭酒5ml(V1)于100ml容量瓶中，加5ml盐酸溶液，加水至20ml，摇匀。于68℃水浴上水解15min，取出，冷却。用氢氧化钠溶液中和至中性，室温下加水定容至100ml(V2)，备用。

[0054] ②测还原糖用试样：吸取20ml的样品(V1′)于100ml(V2′)容量瓶，加水定容至刻度，备用。

[0055] ③以试样代替葡萄糖标准溶液，按步骤1同样操作，记录消耗式样的体积(V3)，(V3′)。

[0056] 2.4实验结果如表3。

[0057] 表3糖类含量测定结果

[0058]

[0059] 计算公式：F＝(m×V)/1000＝(2.5×6.07)/1000＝0.0152(g)

[0060] F1＝(1000×F×V2)/(V1×V3)＝(1000×0.0152×100)/(5×50.67)＝6.00mg/ml[0061] F2＝(1000×F×V2′)/(V1′×V3′)＝(1000×0.0152×100)/(20×12.87)＝5.91mg/ml

[0062] 式中:F-费林溶液甲乙各5ml相当于葡萄糖的克数，单位为克(g)

[0063] F1-总糖的含量

[0064] F2-还原糖的含量

[0065] m-称取无水葡萄糖的质量，单位为克(g)

[0066] V-消耗葡萄糖标准溶液的总体积，单位为毫升(ml)

[0067] 由表3可见，采用本发明的方法，总糖含量：6.00mg/ml；还原糖含量：5.91mg/ml。

[0068] 3、鹿鞭酒中脂质的检测-乙醚萃取法

[0069] 3.1称量

[0070] 用分析天平准确称取烧杯重量，记为a(精确到0.001g)。

[0071] 3.2水浴：

[0072] 取100ml鹿鞭酒原液于烧杯中，于80℃恒温水浴中，直至烧杯中无酒味溢出，取出烧杯，在室温下冷却后作为样品备用。

[0073] 3.3萃取：

[0074] 将烧杯中的样品导入预先准备好的分液漏斗中(实验前分液漏斗必须检查瓶塞和下端旋塞是否漏水)，再加入略少于样品的无水乙醚，旋紧瓶塞，将分液漏斗倒置倾斜45度角摇匀，使得样品溶液与乙醚充分混合，反复多次然后将分液漏斗摆正架在铁架台上静置10分钟，分层后，旋转漏斗旋塞，将下层液体从漏斗底部缓慢流出进入锥形瓶中(分液漏斗下端出口必须紧贴锥形瓶杯壁)，等下层溶液全部流出后，旋紧旋塞，打开漏斗瓶塞，从上将剩余液体倒入烧杯中。如此反复多次对样品进行萃取。

[0075] 3.4称重：

[0076] 用自来水冲洗烧杯表面，干净后，将烧杯转移至通风橱，放在电磁炉中低温烘烤加速乙醚挥发。带乙醚挥发完全，取出烧杯，在室温下冷却10分钟后称重(记b).[0077] 3.5、实验结果如表4。

[0078] 表4脂质含量测定结果

[0079]

[0080] 结果计算

[0081] b-a＝所求脂肪质量

[0082] a-空烧杯的质量

[0083] b-实验后烧杯的质量

[0084] 可见，采用本发明的方法，样品中脂肪含量：40mg/100ml。

[0085] 4、鹿鞭酒中Vc的检测-2，6-二氯酚靛酚滴定法

[0086] 4.1 2,6—二氯酚靛酚溶液的标定：

[0087] 准确吸取4.0ml抗坏血酸标准液于100ml锥形瓶中，加16ml l％草酸溶液，用2,6—二氯酚靛酚滴定至淡红色，15s内不退色即为终点。记录所用染料溶液的体积(ml)，计算出1ml染料溶液所能氧化抗坏血酸的量(mg)。

[0088] 4.2样品滴定：

[0089] 准确吸取样品提取液3份，每份20ml，分别放入3个锥形瓶中，按上面的操作进行滴定并记录所用染料溶液体积。

[0090] 4.3、实验结果如表5

[0091] 表5 Vc含量测定结果

[0092]

[0093] 结果计算

[0094] 通过标准滴定，得1ml染料溶液所能氧化抗坏血酸的量：0.565mg；

[0095] 通过样品滴定，得样品中所含抗坏血酸的量：0.565mg/100ml。

[0096] 5、鹿鞭酒对小鼠生殖器官体重比影响的测定

[0097] 5.1小鼠的饲养：

[0098] 取用6周龄雄性小鼠20只，随机分为4组，每组小鼠饲养在同一个恒温鼠笼中，保证充足供应和环境的稳定。实验组分别按每日1、2、3ml/kg喂饲鹿鞭酒，对照组每日按2ml/kg喂饲35°白酒，连续喂饲10天，每组小鼠均当天称体重。

[0099] 5.2样品滴定：

[0100] 在最末次喂饲12h后，用剪刀和镊子解剖小鼠，取出椭圆状的睾丸与两翼状的储精囊，保证所取器官的完整和准确，通过电子分析天平逐一称重并依次记录重量数据。

[0101] 5.3实验结果如表6。

[0102] 利用乙醚萃取法对鹿鞭酒中脂质含量进行检测，由于无水乙醚对脂质的高溶解性，从而得出脂质含量

[0103] 表6鹿鞭酒对小鼠生殖器官体重比影响结果

[0104]

[0105] 从实验结果可见，低、中、高浓度鹿鞭酒组的小鼠生殖器与体重比的指标均高于白酒对照组。随服用鹿鞭酒浓度的增加，小鼠的生殖器与体重比有升高趋势，但趋于平缓，说明在一定浓度后鹿鞭酒对小鼠的生殖指标影响趋于稳定。

[0106] 6、鹿鞭酒对小鼠血清睾酮含量影响的测定

[0107] 6.1溶液的配置：

[0108] 按柠檬酸钠(1.32％)、柠檬酸(0.48％)、葡萄糖(1.47％)的比例加入蒸馏水配置100ml柠檬酸葡萄糖抗凝剂(ACD)，将配置好的抗凝剂用移液枪分别待检样品中加入175μl。

[0109] 6.2实验操作：

[0110] 24孔酶标板每孔加显色剂50μl，振荡混匀后，37℃避光显色15分钟，每孔加终止液50μl。酶标仪取波长450nm，先用空白孔调零，然后测定各孔OD值，处理数据，使用计算机以标准液浓度(nmol/L)为横坐标，以OD值(450nm)为纵坐标绘制出标准曲线，并根据标准曲线计算出各组对应的睾丸酮含量平均值。血清睾酮含量标准曲线如图2。

[0111] 6.3实验结果如表7。

[0112] 表7鹿鞭酒对小鼠血清睾酮含量影响的测定结果

[0113]

[0114] 从实验结果可以看出，在低浓度组睾丸酮含量没有表现出明显的变化，但是当浓度达到中浓度组(2ml/kg)时，可以观察到曲线有显著的上升趋势，这种趋势在高浓度组有趋于平缓。随着小鼠服用鹿鞭酒浓度的上升，血液正睾丸酮含量呈现上升趋势，但是，如果能够进一步扩大各组间鹿鞭酒浓度的差距，也许会观察到各实验组中小鼠血液睾丸酮含量的更加显著变化。