细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒及其临床应用

摘要

本发明公开了一种细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒及其在红细胞膜抗原保存与血型抗体检测中的应用，该复合颗粒是通过将细菌磁颗粒表面‑NH2基团经过处理使其活化，与红细胞膜共同孵育，使细菌磁颗粒表面结合红细胞膜；将该细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒用于长期保存人红细胞膜血型抗原并用于血型抗体的检测，可为临床提供一种快速、简便的试验方法；本方法的优点在于细菌磁颗粒较化学合成的磁性粒子性能、大小更均一，来源不受限制，生物相容性更好，能够与红细胞膜牢固结合并最大限度保证红细胞膜表面血型抗原的表位活性，其制备的细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒，特别有利于临床红细胞血型抗原的保存及血型抗体的检测。

权利要求

1.一种细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒的制备方法，其特征在于，所述方法包括如下步骤：细菌磁颗粒的制备：

a.将趋磁细菌MSR-1菌株进行扩大培养；所述趋磁细菌MSR-1菌株扩大培养包括如下步骤：a)在培养罐内加入第一培养基，105-110℃灭菌10min，静置1h后，将趋磁细菌MSR-1菌株接种到培养罐中，进行第一次培养，获得第一培养液；第一次培养的条件为：起始pH值为

5.5-6，培养温度为28-30℃，培养时间为3-5天，摇床转速为250-300转/分钟，培养过程中通入氧气，通入氧气的方式为：间隔20min，通入50min氧气；

b)将第一培养液加入含有第二培养基的培养罐中，无氧状态进行第二次培养；第二次培养的条件为：起始pH值为6.5-7.0，培养温度为20-25℃，培养时间为2-3天，摇床转速为

100-200转/分钟；所述第一培养基由重量份数为5-10份的谷氨酰胺、1-3份麦芽糖醇、0.5-1份泛酸钙、0.5-1份酪蛋白酸钠、0.2-0.5份磷酸二氢钾、0.5-1份月桂酸肌氨酸和1-2份氯化钠组成，所述第二培养基由重量份数为2-3份蛋白胨、2-5份生物素、1-2份甘氨酸、0.5-1份酒石酸钠、1-2份硝酸铵、1-2份磷酯酰丝氨酸和0.2-0.5份月桂醇硫酸酯钠组成；

b.离心并收集趋磁细菌MSR-1菌株，用Tris-HCl缓冲液悬浮，制得悬浮液，转速8000-

10000rpm，离心时间5-10min；

c.超声波破碎悬浮液中的细胞，超声功率250-350w，超声时间2-7s，间隔时间2-7s，超声次数80-100次，重复3次；

d.磁铁吸附破碎后的细胞，静置过夜，弃去上清，用磷酸盐缓冲液重新悬浮吸附到的沉淀，超声波清洗，磁铁再次吸附，弃上清，将吸附到的沉淀用磷酸盐缓冲液悬浮，洗涤3次，即得细菌磁颗粒，超声波清洗条件为：超声功率70-90w，超声时间2-7s，间隔时间2-7s，超声次数40-60次；

1)活化：

细菌磁颗粒处理：

(1)取细菌磁颗粒，加入处理剂搅拌条件下反应，反应完成后将产物洗涤至中性；所述处理剂为体积比是40-60：1-3：0.3-1的无水乙醇、氨水和正硅酸乙酯的混合液；

(2)将步骤(1)反应后得到的细菌磁颗粒配成浓度为0.1％～0.3％的溶液，调节溶液pH值至3.0-5.0，向上述溶液中加入浓度为5-15％的3-氨丙基三乙氧基硅烷乙醇溶液中，搅拌条件下反应，反应完成后将产物洗涤至中性，制得经过处理的细菌磁颗粒；

(3)取经过处理的细菌磁颗粒，加入偶联剂混合物，搅拌反应，过滤，所述偶联剂为质量比为1:1-1.2的EDC和NHS的混合物，制得活化后的细菌磁颗粒；

2)孵育：将活化后的细菌磁颗粒与红细胞膜混合，加入孵育剂，孵育剂重量份数比为2:

5.5-7.2：2-3的壳聚糖、海藻酸钠和聚乙二醇4000的混合物，140-160rpm涡旋振荡，室温孵育，反应过夜；

3)磁铁吸附并洗涤，收集沉淀，即得细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒。

2.如权利要求1所述的细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒的制备方法，其特征在于，所述红细胞膜的制备方法为：a)取新鲜红细胞，用NaCl溶液洗涤至上清液澄清，获得压积红细胞；

b)向压积红细胞中加入等体积的NaCl溶液，混匀后室温作用，离心并收集沉淀；

c)向步骤b)收集的沉淀中加入等体积的NaCl溶液，混匀后室温作用，离心并收集沉淀；

d)向步骤c)收的沉淀中加入等体积的蒸馏水，混匀后室温作用，离心，收集沉淀并用PBS悬浮，即得红细胞膜。

说明书

细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒及其临床应用

技术领域

[0001] 本发明涉及医学检验领域，特别是涉及细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒及其在红细胞膜抗原保存及血型抗体检测中的应用。

背景技术

[0002] 红细胞血型是人类遗传多态型标志之一，自20世纪初发现ABO血型以来，已发现500多个人类红细胞血型抗原，目前已确认200多个。其中，与临床最为密切的血型系统包括ABO、Rh、MNS等29个系统。临床血型血清学检测主要有：血型检测、抗体筛检和鉴定、交叉配血。目前，血型血清学检测所使用的红细胞均为新鲜细胞。然而新鲜红细胞保存期短，仅3个月，而且在使用过程中，易受环境条件的影响，难以满足临床常规检测应用。

[0003] 趋磁细菌(Magnetotactic bacteria，MTB)是一类能沿磁力线方向排列或作定向运动、在细胞内合成由生物膜包围的细菌磁颗粒的革兰氏阴性细菌，其在自然界普遍分布，但是由于其对生长条件、营养要求非常苛刻，使得其纯培养和特性的研究相当困难。在80年代和90年代初期对趋磁细菌的研究一度处于低迷状态。近年来，随着分子生物学技术等的迅速发展，对趋磁细菌的形态学、生物学特性、培养条件等的研究也迅速发展起来。

[0004] 趋磁细菌是从环境中吸收大量的铁，形成一种特殊的细胞器，即细菌磁颗粒，其内部含有一个单磁畴的四氧化三铁(Fe3O4)或四硫化三铁(Fe3S4)的晶体，其外部有脂类和蛋白组成的单位膜包被。不同的菌株可以合成不同形状的细菌磁颗粒，具有种专一性。细菌磁颗粒主要有平截八面体、棱柱状、子弹状、箭头状、齿状等，直径30～120nm。在细胞内，细菌磁颗粒通常高度有序地排列成一条或几条链，形成一个或多个“小磁针”，从而使菌体可以感知外界磁场；细菌磁颗粒的形成过程属于生物矿化(biomineralization)，其整个过程多在50nm左右的泡囊内进行，受到严格的生物调控，条件温和，产物为单磁畴晶体，粒径均一、晶形稳定，在同类材料中磁性最强，是名副其实的“纳米工厂(Nanofactory)”。同时，细菌磁颗粒有单位膜包被，与裸露的磁性材料相比，其具有超顺磁性，易于分散，目前尚无法人工模拟。此外，细菌磁颗粒大小均匀、表面积大，并且外有生物膜包被，颗粒间不容易聚集，具有良好的分散性和生物相容性。

[0005] 细菌磁颗粒是一种天然磁性纳米生物材料，由于其优良的性能而在许多领域具有巨大的潜在应用价值，例如CN102419370公开的用抗Bt杀虫蛋白多克隆抗体包被的细菌磁颗粒可用于检测小鼠组织内Bt杀虫蛋白；CN101077418公开的载阿霉素细菌纳米细菌磁颗粒可用于抑制癌细胞的增殖等；但是现有技术还没有公开利用细菌磁颗粒与红细胞膜并用于血型抗体检测的相关报道。

发明内容

[0006] 为了解决上述技术问题，本发明提供一种细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒及其在红细胞膜抗原保存及血型抗体检测中的应用，该检测方法简便、高效，结果准确、可靠。

[0007] 本发明具体技术方案如下：

[0008] 本发明一方面提供一种细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒，其中该颗粒是由表面NH2基团通过偶联剂活化后的细菌磁颗粒和红细胞膜通过孵育剂孵育而成。

[0009] 进一步的改进，该孵育剂为聚乙二醇4000，该偶联剂选自质量比为1:1-1.2的EDC和NHS的混合物。其中EDC为1-乙基-3-(3-二甲基氨丙基)-碳化二亚胺，NHS为N-羟基硫代琥珀酰亚胺，通过采用EDC和NHS的混合物作为偶联剂可以显著提高细菌磁颗粒负载红细胞膜的量。

[0010] 进一步的改进，为了进一步提高细菌磁颗粒的活化效果，上述偶联剂中还加入了质量比为1:2.5的琼脂和无水硫酸钙的混合物。

[0011] 进一步的改进，所述孵育剂为重量份数比为2:5.5-7.2：2-3的壳聚糖、海藻酸钠和聚乙二醇4000的混合物。选择3种物质的混合物作为孵育剂可显著提高细菌磁颗粒对红细胞膜的负载效果。

[0012] 进一步的改进，红细胞膜上的血型抗原保持抗原表位活性，血型抗原包括但不限于ABO、Rh、Kell、Duffy、Jk、MNSs、Di或Le中的抗原。

[0013] 本发明提供的细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒在临床检验领域用于红细胞膜血型抗原的长期保存(特别是稀有血型抗原保存)，及作为新鲜试剂谱红细胞的替代品用于血型抗体检测中的应用。

[0014] 本发明另一方面还提供一种细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒的制备方法，该制备方法包括如下步骤：

[0015] 1)活化：加入偶联剂对细菌磁颗粒表面进行活化，制得活化后的细菌磁颗粒；

[0016] 2)孵育：将活化后的细菌磁颗粒与红细胞膜混合，加入孵育剂，室温孵育；

[0017] 3)磁铁吸附并洗涤，收集沉淀，即得细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒；

[0018] 优选地，细菌磁颗粒先经过处理步骤再进行活化；

[0019] 优选地，所述细菌磁颗粒的处理步骤具体方法如下：

[0020] (1)取细菌磁颗粒，加入处理剂搅拌条件下反应，反应完成后将产物洗涤至中性；所述处理剂为体积比是40-60：1-3：0.3-1的无水乙醇、氨水和正硅酸乙酯的混合液；

[0021] (2)将步骤(1)反应后得到的细菌磁颗粒配成浓度为0.1％～0.3％的溶液，调节溶液pH值至3.0-5.0，向上述溶液中加入浓度为5-15％的3-氨丙基三乙氧基硅烷乙醇溶液中，搅拌条件下反应，反应完成后将产物洗涤至中性，制得经过处理的细菌磁颗粒；

[0022] 优选地，所述活化步骤具体方法如下：

[0023] (a)取经过处理的细菌磁颗粒，加入偶联剂混合物，搅拌反应，过滤，所述偶联剂为质量比为1:1-1.2的EDC和NHS的混合物；

[0024] 优选地，孵育的条件为：140-160rpm涡旋振荡，室温，反应过夜；

[0025] 优选地，所述孵育剂为聚乙二醇4000；

[0026] 优选地，所述孵育剂重量份数比为2:5.5-7.2：2-3的壳聚糖、海藻酸钠和聚乙二醇4000的混合物。

[0027] 本发明另一方面还提供了一种细菌磁颗粒的制备方法，其包括如下步骤：

[0028] a.将趋磁细菌MSR-1菌株进行扩大培养；

[0029] b.离心并收集趋磁细菌MSR-1菌株，用Tris-HCl缓冲液悬浮，制得悬浮液；

[0030] c.超声波破碎悬浮液中的细胞；

[0031] d.磁铁吸附破碎后的细胞，静置过夜，弃去上清，用磷酸盐缓冲液重新悬浮吸附到的沉淀，超声波清洗，磁铁再次吸附，弃上清，将吸附到的沉淀用磷酸盐缓冲液悬浮，洗涤3次，即得细菌磁颗粒；

[0032] 优选地，

[0033] 离心条件为：转速8000-10000rpm，离心时间5-10min；

[0034] 超声波破碎条件为：超声功率250-350w，超声时间2-7s，间隔时间2-7s，超声次数80-100次，重复3次；

[0035] 超声波清洗条件为：超声功率70-90w，超声时间2-7s，间隔时间2-7s，超声次数40-60次。

[0036] 本发明另一方面还提供了红细胞膜的制备方法，该方法包括如下步骤：

[0037] a)取新鲜红细胞，用NaCl溶液洗涤至上清液澄清，获得压积红细胞；

[0038] b)向压积红细胞中加入等体积的NaCl溶液，混匀后室温作用，离心并收集沉淀；

[0039] c)向步骤b)收集的沉淀中加入等体积的NaCl溶液，混匀后室温作用，离心并收集沉淀；

[0040] d)向步骤c)收的沉淀中加入等体积的蒸馏水，混匀后室温作用，离心，收集沉淀并用PBS悬浮，即得红细胞膜。

[0041] 本发明另一方面还提供了趋磁细菌MSR-1菌株扩大培养方法，其包括如下步骤：

[0042] a.在培养罐内加入第一培养基，105-110℃灭菌10min，静置1h后，将趋磁细菌MSR-1菌株接种到培养罐中，进行第一次培养，获得第一培养液；第一次培养的条件为：起始pH值为5.5-6，培养温度为28-30℃，培养时间为3-5天，摇床转速为250-300转/分钟，培养过程中通入氧气，通入氧气的方式为：间隔20min，通入50min氧气；

[0043] b.将第一培养液加入含有第二培养基的培养罐中，无氧状态进行第二次培养；第二次培养的条件为：起始pH值为6.5-7.0，培养温度为20-25℃，培养时间为2-3天，摇床转速为100-200转/分钟。

[0044] 进一步的改进，趋磁细菌扩大培养过程中的，第一培养基由重量份数为5-10份的谷氨酰胺、1-3份麦芽糖醇、0.5-1份泛酸钙、0.5-1份酪蛋白酸钠、0.2-0.5份磷酸二氢钾、0.5-1份月桂酸肌氨酸和1-2份氯化钠组成；第二培养基由重量份数为2-3份蛋白胨、2-5份生物素、1-2份甘氨酸、0.5-1份酒石酸钠、1-2份硝酸铵、1-2份磷酯酰丝氨酸和0.2-0.5份月桂醇硫酸酯钠的组成。

[0045] 本发明另一方面提供的孵育过程中加入了重量份数比为2:5.5-7.2的壳聚糖和海藻酸钠的混合物。

[0046] 本发明的有益效果在于细菌磁颗粒与裸露的磁性材料相比，易于分散、大小均匀、表面积大，并且外有生物膜包被，颗粒间不容易聚集，具有良好的分散性、超顺磁性和生物相容性。将细菌磁颗粒用于红细胞血型抗原的长期保存，可为临床提供一种快速、简便的血清学检测试验方法。

具体实施方式

[0047] 下面将对本发明实施例中的技术方案进行清楚、完整地描述，显然，所描述的实施例仅是本发明的一部分实施例，而不是全部的实施例。基于本发明中的实施例，本领域普通技术人员在没有做出创造性劳动前提下所获得的所有其它实施例，都属于本发明保护的范围。

[0048] 实施例1一种细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒

[0049] 该颗粒是由表面基团通过偶联剂活化后的细菌磁颗粒和红细胞膜通过孵育剂孵育而成；

[0050] 该颗粒的制备方法为：

[0051] 1)活化：加入质量比为1:1的EDC和NHS的混合物对细菌磁颗粒表面进行活化，制得活化后的细菌磁颗粒；

[0052] 2)孵育：将活化后的细菌磁颗粒与红细胞膜混合，加入聚乙二醇4000，室温孵育；

[0053] 3)磁铁吸附并洗涤，收集沉淀，即得细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒。

[0054] 实施例2一种细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒

[0055] 该颗粒是由表面基团通过偶联剂活化后的细菌磁颗粒和红细胞膜通过孵育剂孵育而成；

[0056] 该颗粒的制备方法为：

[0057] 1)活化：加入质量比为1:1.2的EDC和NHS的混合物对细菌磁颗粒表面进行活化，制得活化后的细菌磁颗粒；

[0058] 2)孵育：将活化后的细菌磁颗粒与红细胞膜混合，加入重量份数比为2:5.5：2的壳聚糖、海藻酸钠和聚乙二醇4000的混合物，室温孵育；

[0059] 3)磁铁吸附并洗涤，收集沉淀，即得细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒。

[0060] 实施例3一种细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒

[0061] 该颗粒是由表面基团通过偶联剂活化后的细菌磁颗粒和红细胞膜通过孵育剂孵育而成；

[0062] 该颗粒的制备方法为：

[0063] (1)取细菌磁颗粒，加入处理剂搅拌条件下反应，反应完成后将产物洗涤至中性；所述处理剂为体积比是40：1：0.3的无水乙醇、氨水和正硅酸乙酯的混合液；

[0064] (2)将步骤(1)反应后得到的细菌磁颗粒配成浓度为0.1％的溶液，调节溶液pH值至3.0，向上述溶液中加入浓度为15％的3-氨丙基三乙氧基硅烷乙醇溶液中，搅拌条件下反应，反应完成后将产物洗涤至中性，制得经过处理的细菌磁颗粒；

[0065] (3)取经过处理的细菌磁颗粒，加入质量比为1:1的EDC和NHS混合物，搅拌反应，过滤，制得活化后的细菌磁颗粒；

[0066] 4)将活化后的细菌磁颗粒与红细胞膜混合，加入聚乙二醇4000，室温孵育；

[0067] 5)磁铁吸附并洗涤，收集沉淀，即得细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒。

[0068] 实施例4一种细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒

[0069] 该颗粒是由表面基团通过偶联剂活化后的细菌磁颗粒和红细胞膜通过孵育剂孵育而成；

[0070] 该颗粒的制备方法为：

[0071] (1)取细菌磁颗粒，加入处理剂搅拌条件下反应，反应完成后将产物洗涤至中性；所述处理剂为体积比是40：1：0.3的无水乙醇、氨水和正硅酸乙酯的混合液；

[0072] (2)将步骤(1)反应后得到的细菌磁颗粒配成浓度为0.1％的溶液，调节溶液pH值至3.0，向上述溶液中加入浓度为15％的3-氨丙基三乙氧基硅烷乙醇溶液中，搅拌条件下反应，反应完成后将产物洗涤至中性，制得经过处理的细菌磁颗粒；

[0073] (3)取经过处理的细菌磁颗粒，加入质量比为1:1的EDC和NHS混合物，搅拌反应，过滤，制得活化后的细菌磁颗粒；

[0074] 4)将活化后的细菌磁颗粒与红细胞膜混合，加入重量份数比为2:7.2：3的壳聚糖、海藻酸钠和聚乙二醇4000的混合物，室温孵育；

[0075] 5)磁铁吸附并洗涤，收集沉淀，即得细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒。

[0076] 实施例5一种细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒

[0077] 该颗粒是由表面基团通过偶联剂活化后的细菌磁颗粒和红细胞膜通过孵育剂孵育而成；

[0078] 该颗粒的制备方法为：

[0079] (1)取细菌磁颗粒，用蒸馏水配制成0.1％～0.3％(w/v)浓度，超声处理10min；

[0080] (2)取30mL上述细菌磁颗粒，然后加入50mL无水乙醇、2mL氨水和500μL正硅酸乙酯，在200rpm搅拌条件下反应5h，反应完成后将产物用去离子水洗涤至中性；

[0081] (3)用无水乙醇配制0.1％～0.3％(w/v)浓度的细菌磁颗粒，用冰乙酸调节溶液pH值至4.0，取20mL上述溶液加入至30mL 10％3-氨丙基三乙氧基硅烷乙醇溶液中，在200rpm搅拌条件下反应3h，反应完成后将产物用去离子水洗涤至中性，制得经过处理的细菌磁颗粒；

[0082] (4)用乙酸-乙酸钠缓冲溶液(pH为6.0)洗涤经过处理的细菌磁颗粒，并配制成1％～5％(w/v)浓度的悬液；

[0083] (5)取2mL上述细菌磁颗粒悬液，加入100μL浓度为10％(w/v)的EDC溶液和100μL 10％(w/v)的NHS溶液，室温150rpm涡旋振荡反应3h，然后用去离子水洗去过量的EDC和NHS，并最终悬浮至2mL；

[0084] (6)将活化后的细菌磁颗粒悬液与红细胞膜混合；

[0085] (7)加入等体积的20％(W/V)聚乙二醇4000，室温作用30min，轻轻震荡；

[0086] (8)磁铁吸附，弃上清，将沉淀溶于磷酸盐缓冲液中并洗涤3次，制得细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒。

[0087] 实施例6一种细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒

[0088] 该颗粒是由表面基团通过偶联剂活化后的细菌磁颗粒和红细胞膜通过孵育剂孵育而成；

[0089] 该颗粒的制备方法与实施例5不同的是，所述步骤(7)中加入等体积的20％(W/V)重量份数比为2:5.5-7.2：2-3的壳聚糖、海藻酸钠和聚乙二醇4000的混合物。

[0090] 实施例7一种细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒的制备方法

[0091] 该方法包括如下步骤：

[0092] 1)活化：加入质量比为1:1.1的EDC和NHS的混合物对细菌磁颗粒表面进行活化；

[0093] 2)孵育：将活化后的细菌磁颗粒与红细胞膜混合，加入聚乙二醇4000，室温孵育；

[0094] 3)磁铁吸附并洗涤，收集沉淀，即得细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒。

[0095] 实施例8一种细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒的制备方法

[0096] 该方法制备方法与实施例7不同的是，步骤2)中加入的重量份数比为2:6：2.5的壳聚糖、海藻酸钠和聚乙二醇4000的混合物，室温孵育。

[0097] 实施例9一种细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒的制备方法

[0098] 该方法包括如下步骤：(1)取细菌磁颗粒，加入处理剂搅拌条件下反应，反应完成后将产物洗涤至中性；所述处理剂为体积比是40-60：1-3：0.3-1的无水乙醇、氨水和正硅酸乙酯的混合液；

[0099] (2)将步骤(1)反应后得到的细菌磁颗粒配成浓度为0.1％～0.3％的溶液，调节溶液pH值至3.0-5.0，向上述溶液中加入浓度为5-15％的3-氨丙基三乙氧基硅烷乙醇溶液中，搅拌条件下反应，反应完成后将产物洗涤至中性，制得经过处理的细菌磁颗粒；

[0100] (3)取经过处理的细菌磁颗粒，加入质量比为1:1.2的EDC和NHS的混合物，搅拌反应，过滤，制得活化后的细菌磁颗粒；

[0101] 4)将活化后的细菌磁颗粒与红细胞膜混合，加入聚乙二醇4000，室温孵育；

[0102] 5)磁铁吸附并洗涤，收集沉淀，即得细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒。

[0103] 实施例10一种细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒的制备方法

[0104] 该制备方法与实施例9不同的是，步骤4)中加入了重量份数比为2:6.5：3的壳聚糖、海藻酸钠和聚乙二醇4000的混合物，室温孵育。

[0105] 实施例11一种细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒的制备方法

[0106] 该方法包括如下步骤：

[0107] (1)取细菌磁颗粒，用蒸馏水配制成0.1％～0.3％(w/v)浓度，超声处理10min；

[0108] (2)取30mL上述细菌磁颗粒，然后加入50mL无水乙醇、2mL氨水和500μL正硅酸乙酯，在200rpm搅拌条件下反应5h，反应完成后将产物用去离子水洗涤至中性；

[0109] (3)用无水乙醇配制0.1％～0.3％(w/v)浓度的细菌磁颗粒，用冰乙酸调节溶液pH值至4.0，取20mL上述溶液加入至30mL 10％3-氨丙基三乙氧基硅烷乙醇溶液中，在200rpm搅拌条件下反应3h，反应完成后将产物用去离子水洗涤至中性，制得经过处理的细菌磁颗粒；

[0110] (4)用乙酸-乙酸钠缓冲溶液(pH为6.0)洗涤经过处理的细菌磁颗粒，并配制成1％～5％(w/v)浓度的悬液；

[0111] (5)取2mL上述细菌磁颗粒悬液，加入100μL浓度为10％(w/v)的EDC溶液和100μL 10％(w/v)的NHS溶液，室温150rpm涡旋振荡反应3h，然后用去离子水洗去过量的EDC和NHS，并最终悬浮至2mL，，制得活化后的细菌磁颗粒；

[0112] (6)将活化后的细菌磁颗粒悬液与红细胞膜混合；

[0113] (7)加入等体积的20％(W/V)聚乙二醇4000，室温作用30min，轻轻震荡；

[0114] (8)磁铁吸附，弃上清，将沉淀溶于磷酸盐缓冲液中并洗涤3次，制得细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒。

[0115] 实施例12一种细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒的制备方法

[0116] 该制备方法与实施例11不同的是，步骤7)中加入了重量份数比为2:6.3:2的壳聚糖、海藻酸钠和聚乙二醇4000的混合物。

[0117] 实施例13一种细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒的制备方法

[0118] 该制备方法与实施例7不同的是，该制备方法还包括细菌磁颗粒的制备方法，其包括如下步骤：

[0119] 1)将趋磁细菌MSR-1菌株进行扩大培养；

[0120] 2)离心并收集趋磁细菌MSR-1菌株，用Tris-HCl缓冲液悬浮，得悬浮液；

[0121] 3)超声波破碎悬浮液中的细胞；

[0122] 4)磁铁吸附破碎后的细胞，静置过夜，弃去上清，用磷酸盐缓冲液重新悬浮吸附到的沉淀，超声波清洗，磁铁再次吸附，弃上清，将吸附到的沉淀用磷酸盐缓冲液悬浮，洗涤3次，即得细菌磁颗粒。

[0123] 实施例14一种细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒的制备方法

[0124] 该制备方法与实施例13不同的是，细菌磁颗粒的制备方法包括如下步骤：

[0125] (1)将趋磁细菌MSR-1菌株进行扩大培养。

[0126] (2)离心收集菌株(10000rpm,5min)，用适量Tris-HCl缓冲液(pH7.4)悬浮，得悬浮液；

[0127] (3)超声波破碎悬浮液中的细胞，超声波破碎条件为：超声功率300w，超声时间5s，间隔时间5s，超声次数90次，重复3次，至细胞完全破碎；

[0128] (4)磁铁吸附破碎后的菌体细胞，静置过夜后，弃去上清，用10mM磷酸盐缓冲液重新悬浮吸附到的沉淀，超声波清洗，磁铁再次吸附，弃上清，磷酸盐缓冲液悬浮，重复洗涤3次，超声波清洗条件为：超声功率80w，超声时间5s，间隔时间5s，超声次数50次；

[0129] (5)纯净的细菌磁颗粒在蒸馏水中超声波清洗两次，磁铁吸附，将吸附的细菌磁颗粒用蒸馏水悬浮；冷冻干燥后-20℃保存备用。

[0130] 实施例15一种细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒的制备方法

[0131] 该制备方法与实施例7不同的是，该方法还包括红细胞膜的制备方法，其包括如下步骤：

[0132] (1)采集新鲜红细胞，用0.9％(W/V)NaCl溶液洗涤至上清澄清；

[0133] (2)弃上清，向压积红细胞中加入等体积的0.6％(W/V)NaCl溶液，混匀后室温作用5分钟，离心(2000rpm,5min)并收集沉淀；

[0134] (3)弃上清，加入等体积的0.2％(W/V)NaCl溶液，混匀后室温作用5分钟，(3000rpm,10min)离心并收集沉淀；

[0135] (4)弃上清，加入等体积的蒸馏水，混匀后室温作用5分钟，离心(3000rpm,10min)并收集沉淀并用PBS悬浮，即得红细胞膜。

[0136] 实施例16一种细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒的制备方法

[0137] 该制备方法与实施例13不同的是，该方法还包括趋磁细菌MSR-1菌株的扩大培养，其包括如下步骤：

[0138] a.在培养罐内加入第一培养基，107℃灭菌10min，静置1h后，将趋磁细菌MSR-1菌株接种到培养罐中，进行第一次培养，获得第一培养液；第一次培养的条件为：起始pH值为5.8，培养温度为30℃，培养时间为5天，摇床转速为300转/分钟，培养过程中通入氧气，通入氧气的方式为：间隔20min，通入50min氧气；

[0139] b.将第一培养液加入含有第二培养基的培养罐中，无氧状态进行第二次培养；第二次培养的条件为：起始pH值为6.5，培养温度为25℃，培养时间为2天，摇床转速为150转/分钟；

[0140] 其中，第一培养基由重量份数为7.5份的谷氨酰胺、2份麦芽糖醇、0.7份泛酸钙、0.7份酪蛋白酸钠、0.3份磷酸二氢钾、0.7份月桂酸肌氨酸和1.5份氯化钠组成；

[0141] 所述第二培养基由重量份数为2.5份蛋白胨、3份生物素、1.5份甘氨酸、0.75份酒石酸钠、1.5份硝酸铵、1.5份磷酯酰丝氨酸和0.3份月桂醇硫酸酯钠的组成。

[0142] 对照例1

[0143] 该对照例与实施例16不同的是：

[0144] 第一次培养的条件为：起始pH值为5，培养温度为32℃，培养时间为5天，摇床转速为200转/分钟，培养过程中一直通入氧气；

[0145] 第二次培养的条件为：起始pH值为7.2，培养温度为30℃，培养时间为2天，摇床转速为250转/分钟；

[0146] 第一培养基由重量份数为7.5份的谷氨酰胺、0.7份泛酸钙、0.7份酪蛋白酸钠、0.3份磷酸二氢钾和1.5份氯化钠组成；

[0147] 第二培养基由重量份数为2.5份蛋白胨、1.5份甘氨酸、0.75份酒石酸钠、1.5份硝酸铵、和0.3份月桂醇硫酸酯钠的组成。

[0148] 对照例2

[0149] 该对照例与实施例16不同的是：

[0150] 第一次培养的条件为：起始pH值为6.2，培养温度为25℃，培养时间为5天，摇床转速为350转/分钟，培养过程中不通入氧气；第二次培养的条件为：起始pH值为6，培养温度为15℃，培养时间为2天，摇床转速为100转/分钟；

[0151] 第一培养基由重量份数为7.5份的谷氨酰胺、2份麦芽糖醇、0.7份泛酸钙、0.7份酪蛋白酸钠、0.3份磷酸二氢钾、2份琼脂、0.7份月桂酸肌氨酸和1.5份氯化钠组成；

[0152] 第二培养基由重量份数为2.5份蛋白胨、3份生物素、1.5份甘氨酸、0.75份酒石酸钠、1.5份硝酸铵、2份琼脂、2份葡萄糖、1.5份磷酯酰丝氨酸和0.3份月桂醇硫酸酯钠的组成。

[0153] 试验例1红细胞血型抗体检测

[0154] 1.红细胞反定型检测

[0155] 用已知血型的A型红细胞、B型红细胞、O型红细胞按上述具体实施方式制备A型细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒、B型细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒、O型细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒，以替代新鲜红细胞进行ABO血型系统反定型，即血浆中抗A、抗B检测。

[0156] 检测步骤如下：

[0157] (1)取洁净试管三支，分别标记A、B、0；

[0158] (2)各加入待检样本(血清或血浆)50ul；

[0159] (3)对应管分别加入制备的A型细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒、B型细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒、O型细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒50ul；

[0160] (4)混匀，室温反应1min；

[0161] (5)磁铁吸附，振荡试管并判定结果，若细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒发生凝集，则为阳性反应；反之，若细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒不发生凝集，则为阴性反应。反应格局判定标准如下：

[0162]

[0163] 2.红细胞不规则抗体检测

[0164] 用已知血型的覆盖我国临床有意义红细胞抗原的多人份O型红细胞按上述具体实施方式制备成细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒，以替代新鲜红细胞进行红细胞不规则抗体检测。

[0165] 检测步骤如下：

[0166] (1)取洁净试管，做好标记；

[0167] (2)加入待检样本(血清或血浆)50ul；

[0168] (3)加入上述细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒50ul；

[0169] (4)混匀，室温反应1min；

[0170] (5)磁铁吸附，振荡试管并判定结果，若细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒发生凝集(阳性反应)，表明待检样本中含有与该颗粒抗原相对应的抗体，反之，若细菌磁颗粒红细胞膜复合颗粒不发生凝集(阴性反应)，表明待检样本中不含与该颗粒抗原相对应的抗体。

[0171] 试验例2细菌磁颗粒负载红细胞膜效果试验

[0172] 选择不同的偶联剂，其余的方法按照实施例9的方法制备细菌磁颗粒抗原复合颗粒，细菌磁颗粒对红细胞膜的负载效果见表1；

[0173] 表1不同偶联剂对红细胞膜负载效果的影响

[0174]

[0175] 选择不同的孵育剂，其余的方法按照实施例10的方法制备细菌磁颗粒抗原复合颗粒，细菌磁颗粒对红细胞膜的负载效果见表2；

[0176] 表2不同孵育剂对红细胞膜的负载效果的影响

[0177]

[0178] 从表1中可看出，通过选择4中不同的偶联剂进行偶联，红细胞膜的负载量可达到789μg/mg，当采用2或3种偶联剂进行混合，或者采用本发明之外的偶联剂进行偶联，细菌磁颗粒负载的红细胞膜的量均显著降低；从表2中可以看出，当选择合适比例的壳聚糖、海藻酸钠和聚乙二醇4000混合孵育时，可提高细菌磁颗粒对红细胞膜的负载量。

[0179] 选择不同的处理条件，偶联剂选自质量比为1:1：1:2.5的EDC、NHS、琼脂和无水硫酸钙的混合物，孵育剂选自质量比为2:5.5：2的壳聚糖、海藻酸钠和聚乙二醇4000的混合物，其余的步骤按照实施例14的方法制备细菌磁颗粒抗原复合颗粒，细菌磁颗粒对红细胞膜的负载效果见表3；

[0180] 表3不同处理步骤对红细胞膜负载效果的影响

[0181]

[0182] 从表3中可知，细菌磁颗粒的处理步骤对细菌磁颗粒对红细胞膜的负载效果具有很大的影响。

[0183] 试验例3趋磁细菌MSR-1菌株扩大培养情况

[0184] 1)分组

[0185] 试验1组：本发明实施例16所述的制备方法；

[0186] 对照1组：对照例1的制备方法；

[0187] 对照2组：对照例2的制备方法；

[0188] 对照3组：CN1952112公开的一种兼性厌氧趋磁细菌及其分离、纯培养方法和细菌磁颗粒的提取、纯化方法中公开的培养方法；

[0189] 2)采用台盼蓝经典染色法对细胞进行计数，接种时细胞为1×104个/ml，分别统计原代细胞和扩大培养后的数量，结果见表4。

[0190] 表4各组趋磁细菌MSR-1菌株体外培养扩增试验结果

[0191]

[0192] 由表中可以看出，本发明提供的趋磁细菌培养方法可以有效的体外培养趋磁细菌MSR-1菌株。

[0193] 以上所述仅为本发明的实施例，并非因此限制本发明的专利范围，凡是利用本发明说明书内容所作的等效结构或等效流程变换，或直接或间接运用在其它相关的技术领域，均同理包括在本发明的专利保护范围内。