凝血酶抗体、其抗原结合片段及医药用途转让专利
申请号 : CN201780001366.2
文献号 : CN107531797B
文献日 : 2021-07-02
发明人 : 应华 , 刘佳建 , 付雅媛 , 张玲 , 张昊颖 , 孙嘉康 , 张连山 , 陶维康 , 孙飘扬 , 胡齐悦
申请人 : 江苏恒瑞医药股份有限公司 , 上海恒瑞医药有限公司
摘要 :
权利要求 :
1.一种凝血酶抗体或其抗原结合片段,其包含抗体重链可变区和抗体轻链可变区,其中,
所述抗体重链可变区包含:如SEQ ID NO:7所示的HCDR1,如SEQ ID NO:8所示的HCDR2,和如SEQ ID NO:9、SEQ ID NO:23、SEQ ID NO:24、SEQ ID NO:25或SEQ ID NO:26所示的HCDR3;
所述抗体轻链可变区包含:分别如SEQ ID NO:10,SEQ ID NO:11和 SEQ ID NO:12所示的LCDR1、 LCDR2和LCDR3。
2.根据权利要求1所述的凝血酶抗体或其抗原结合片段,其中所述的凝血酶抗体或其抗原结合片段为鼠源抗体或其功能片段。
3.根据权利要求2所述的凝血酶抗体或其抗原结合片段,其中所述的凝血酶抗体或其抗原结合片段进一步包含鼠源κ链或鼠源κ链变体的轻链FR区、或者进一步包含鼠源λ链或鼠源λ链变体的轻链FR区;和/或其中所述的凝血酶抗体或其抗原结合片段进一步包含鼠源IgG1或其变体的重链FR区、或进一步包含IgG2或其变体的重链FR区、或进一步包含IgG3或其变体的重链FR区。
4.根据权利要求3所述的凝血酶抗体或其抗原结合片段,其中所述的凝血酶抗体或其抗原结合片段包含SEQ ID NO:5的重链可变区和SEQ ID NO:6的轻链可变区。
5.根据权利要求2所述的凝血酶抗体或其抗原结合片段,其中凝血酶抗体或其抗原结合片段进一步包含鼠源κ链或其变体的轻链恒定区、或者鼠源λ链或其变体的轻链恒定区;
和/或其中所述的凝血酶抗体或其抗原结合片段进一步包含鼠源IgG1或其变体的重链恒定区、或进一步包含IgG2或其变体的重链恒定区、或进一步包含IgG3或其变体的重链恒定区。
6.根据权利要求1所述的凝血酶抗体或其抗原结合片段,其中所述的凝血酶抗体或其抗原结合片段为嵌合抗体或其功能片段。
7.根据权利要求1所述的凝血酶抗体或其抗原结合片段,其中所述的凝血酶抗体或其抗原结合片段为人源化抗体或其功能片段。
8.根据权利要求7所述的凝血酶抗体或其抗原结合片段,其中所述的人源化抗体或其抗原结合片段的重链FR区序列来源于人种系重链IGHV3‑23*04和hjh6.1的组合序列;其中所述的人源化抗体或其抗原结合片段包含人种系重链IGHV3‑23*04的FR1、FR2、FR3区和hjh6.1的FR4区。
9.根据权利要求8所述的凝血酶抗体或其抗原结合片段,其中所述人源化抗体或其抗原结合片段包含SEQ ID NO:13所示的重链可变区。
10.根据权利要求8所述的凝血酶抗体或其抗原结合片段,其中所述的人源化抗体或其抗原结合片段的重链FR区序列具有选自R87K、K98R、Q3K和S49A的氨基酸回复突变。
11.根据权利要求10所述的凝血酶抗体或其抗原结合片段,其中所述的人源化抗体或其抗原结合片段包含SEQ ID NO:14,SEQ ID NO:27,SEQ ID NO:28,SEQ ID NO:29,SEQ ID NO:30或SEQ ID NO:15所示的重链可变区。
12.根据权利要求7所述的凝血酶抗体或其抗原结合片段,其中所述的人源化抗体或其抗原结合片段的轻链FR区序列来源于人种系轻链模板IGKV1‑39*01和hjk4.1的组合序列;
其中所述的人源化抗体或其功能片段包含人种系轻链IGKV1‑39*01的FR1、FR2、FR3区和hjk4.1的FR4区。
13.根据权利要求12所述的凝血酶抗体或其抗原结合片段,其中所述人源化抗体或其抗原结合片段包含SEQ ID NO:16所示的轻链可变区。
14.根据权利要求12所述的凝血酶抗体或其抗原结合片段,其中所述的人源化抗体或其抗原结合片段的轻链FR区序列具有选自Y49S、T69K、K45R、L47I和F71Y的氨基酸回复突变。
15.根据权利要求14所述的凝血酶抗体或其抗原结合片段,其中所述人源化抗体或其抗原结合片段包含SEQ ID NO:17或SEQ ID NO:18所示的轻链可变区。
16.根据权利要求7所述的凝血酶抗体或其抗原结合片段,其中所述人源化抗体或其抗原结合片段包含:
如SEQ ID NO:13所示的重链可变区和如SEQ ID NO:16所示的轻链可变区,如SEQ ID NO:14所示的重链可变区和如SEQ ID NO:16所示的轻链可变区,如SEQ ID NO:15所示的重链可变区和如SEQ ID NO:16所示的轻链可变区,如SEQ ID NO:13所示的重链可变区和如SEQ ID NO:17所示的轻链可变区,如SEQ ID NO:14所示的重链可变区和如SEQ ID NO:17所示的轻链可变区,如SEQ ID NO:15所示的重链可变区和如SEQ ID NO:17所示的轻链可变区,如SEQ ID NO:13所示的重链可变区和如SEQ ID NO:18所示的轻链可变区,如SEQ ID NO:14所示的重链可变区和如SEQ ID NO:18所示的轻链可变区,如SEQ ID NO:15所示的重链可变区和如SEQ ID NO:18所示的轻链可变区,如SEQ ID NO:27所示的重链可变区和如SEQ ID NO:18所示的轻链可变区,如SEQ ID NO:28所示的重链可变区和如SEQ ID NO:18所示的轻链可变区,如SEQ ID NO:29所示的重链可变区和如SEQ ID NO:18所示的轻链可变区,或者如SEQ ID NO:30所示的重链可变区和如SEQ ID NO:18所示的轻链可变区。
17.根据权利要求7所述的凝血酶抗体或其抗原结合片段,其中所述凝血酶抗体或其抗原结合片段进一步包含选自人源IgG1、IgG2、IgG3、 IgG4或其变体的重链恒定区, 所述凝血酶抗体或其抗原结合片段的轻链进一步包含人源κ、λ链或其变体的轻链恒定区。
18.根据权利要求17所述的凝血酶抗体或其抗原结合片段,其中所述凝血酶抗体或其抗原结合片段包含人源IgG4或其变体的重链恒定区。
19.根据权利要求17所述的凝血酶抗体或其抗原结合片段,其中所述凝血酶抗体或其抗原结合片段包含如SEQ ID NO:19所示的重链恒定区,和如SEQ ID NO:20所示的轻链恒定区。
20.根据权利要求1所述的凝血酶抗体或其抗原结合片段,其中所述抗原结合片段是选自Fab、Fab'、F(ab')2、单链抗体、双抗体和dsFv的抗原结合片段。
21.根据权利要求1 至20 任一项所述的凝血酶抗体或其抗原结合片段,其结合一个或多个选自凝血酶的R70,Y71,E72,R73,N74,I75 和Y114的残基。
22.根据权利要求21所述的凝血酶抗体或其抗原结合片段,其进一步结合凝血酶的第
9、24、60、62、64、66、69、78和113位的残基。
23.一种药物组合物,其含有治疗有效量的根据权利要求1至22中任一项所述的凝血酶抗体或其抗原结合片段,以及一种或多种药学上可接受的载体、稀释剂或赋形剂。
24.一种DNA分子,其编码根据权利要求1‑22中任一项所述的凝血酶抗体或其抗原结合片段。
25.一种表达载体,其含有根据权利要求24所述的DNA分子。
26.一种宿主细胞,其为用根据权利要求25所述的表达载体转化的宿主细胞,所述宿主细胞选自原核细胞和真核细胞,所述宿主细胞不是胚胎干细胞,也不是植物细胞。
27.根据权利要求26所述宿主细胞,其中所述宿主细胞选自CHO细胞和NSO 细胞。
28.根据权利要求1至22任一项所述的凝血酶抗体或其抗原结合片段或根据权利要求
23所述的药物组合物或根据权利要求24所述的DNA分子在制备用于治疗凝血酶介导的疾病或病症的药物中的用途,其中所述的疾病或病症为血栓性疾病。
29.根据权利要求28所述的用途,其中所述的疾病或病症为:静脉血栓形成或动脉血栓形成。
30.根据权利要求28所述的用途,其中所述的疾病或病症为:肺栓塞、血栓形成引起的中风、动脉粥样硬化疾病、脑动脉病或末梢动脉病。
31.根据权利要求28所述的用途,其中所述的疾病或病症为:末梢动脉形成。
32.根据权利要求28所述的用途,其中所述的疾病或病症为:静脉血栓形成。
33.根据权利要求28所述的用途,其中所述的疾病或病症为血栓形成引起的中风或动脉粥样硬化。
34.用于检测或测定人凝血酶的试剂,所述试剂包含权利要求1 至22任一项的抗体或其抗原结合片段。
说明书 :
凝血酶抗体、其抗原结合片段及医药用途
技术领域
片段的药物组合物,以及其作为抗凝药物的用途。
背景技术
栓症(如急性心肌梗塞(AMI)、静脉血栓塞等)是一类严重危及人类健康及生命的心血管疾
病。世界卫生组织2008年统计,到目前,心血管发病及死亡率已经跃居第一位。世界每年心
血管病死亡人数约1733万人,占死亡总数30%,中国心血管患者2.9亿人,每年死亡约350万
人,占总死亡原因41%。2010年全球疾病负担研究(GBD)统计,中风是我国居民第一大死因。
所以近年来,研究有效的治疗心血管疾病的药物及方法引起了人们越来越多的关注。目前,
一些抗凝血疗法可以治疗病理学血液凝固,例如使用传统药物肝素、小分子肝素或华法林,
或者使用直接凝血酶抑制剂达比加群酯(Dabigatran)等。这些疗法的普遍缺陷是增加出血
风险。许多抗凝药物起效剂量(阻止血栓形成)和安全剂量(最高无出血风险)之间的窗口不
够大,考虑到个体病人的反应差异,该窗口将进一步缩小。以凝血酶为靶点,用凝血酶拮抗
剂来抑制血栓的生成即是临床治疗血栓的方法之一。
纤维基质),对细胞也有很多直接调控。作为一种丝氨酸蛋白酶,它触发血小板发生形变,释
放血小板活化剂ADP、血清素和血栓烷A2,以及趋化因子和生长因子。除此以外,还促进粘附
分子P‑选择素和CD40配体迁移到血小板表面,进而激活整合素aIIb/b3。后者结合纤维蛋白
原和血管性血友病因子(von Willebrand factor,vWF),进而介导血小板的聚集。凝血酶还
刺激血小板表面的促凝血活性,反过来促进凝血酶的表达。在内皮细胞的培养中,凝血酶促
进vWF的释放,细胞质膜的P‑选择素的出现和趋化因子的产生。这些反应被认为触发体内血
小板和白细胞与内皮细胞表面的结合。内皮细胞随即改变形状,内皮细胞层通透性增加。这
些反应被预计将促进血浆蛋白的局部渗出,促进水肿。在非内皮组织中,凝血酶通过作用于
平滑肌细胞引起血管收缩。在成纤维细胞或血管平滑肌细胞的体外培养中,凝血酶调节细
胞因子的产生并促进有丝分裂,在T淋巴细胞中它触发钙信号和其他的反应。这些细胞反应
表明凝血酶将组织损伤与止血过程、炎症反应、甚至加强免疫应答的机体调控关联在了一
起。这些细胞反应也提出了一种可能性:除了组织受损外,内皮细胞和其他类型细胞的凝血
酶可能在白细胞外渗,血管重塑和/或血管生成中也扮演了一定的角色。因此,凝血酶成为
了一个极具潜力的,新的抗凝血抗栓靶标。
理反应(即止血)。例如,止血不会被抗体分子抑制或会被其最低程度地抑制(即微小程度地
抑制,不会影响病人的健康或需要进一步干预)。出血不会被抗体分子增加或会被其最低程
度地增加。
研究,有必要进一步开发一种新的抗凝血酶抗体进行相关的临床研究和应用。本发明即提
供一种亲和力高,对血栓生成具有显著抑制活性的新型凝血酶抗体。
发明内容
SEQ ID NO:7,SEQ ID NO:8和SEQ ID NO:21;和抗体轻链可变区LCDR区序列:SEQ ID NO:
10,SEQ ID NO:11和SEQ ID NO:12;
ID NO:21所示的HCDR1、HCDR2和HCDR3,或与SEQ ID NO:7,SEQ ID NO:8和SEQ ID NO:21具
有至少95%序列同一性的氨基酸序列。
SEQ ID NO:12所示的LCDR1、LCDR2和LCDR3,或与SEQ ID NO:10,SEQ ID NO:11和SEQ ID
NO:12具有至少95%序列同一性的氨基酸序列。
变体的轻链FR区、或者进一步包含鼠源λ链或鼠源λ链变体的轻链FR区;和/或其中所述的凝
血酶抗体或其抗原结合片段的抗体重链可变区进一步包含鼠源IgG1或其变体的重链FR区、
或进一步包含IgG2或其变体的重链FR区、或进一步包含IgG3或其变体的重链FR区。
ID NO:6的轻链可变区序列。
或者鼠源λ链或其变体的轻链恒定区;和/或其中所述的凝血酶抗体或其抗原结合片段进一
步包含鼠源IgG1或其变体的重链FR区、或进一步包含IgG2或其变体的重链FR区、或进一步
包含IgG3或其变体的重链FR区。
和hjh6.1的组合序列及其突变序列;其中所述的人源化抗体或其功能片段包含人种系重链
IGHV3‑23*04的FR1、FR2、FR3区和hjh6.1的FR4区及其突变序列。
ID NO:13具有至少95%序列同一性的氨基酸序列的重链可变区序列;优选与SEQ ID NO:13
的氨基酸序列具有0‑10的氨基酸变化。
选所述回复突变选自R87K,K98R,Q3K和S49A的氨基酸回复突变。
可变区序列,或与SEQ ID NO:22或SEQ ID NO:15具有至少95%序列同一性的氨基酸序列的
重链可变区序列;
NO:28,SEQ ID NO:29,SEQ ID NO:30。
39*01和hjk4.1的组合序列及其突变序列;其中所述的人源化抗体或其功能片段包含人种
系轻链IGKV1‑39*01的FR1、FR2、FR3区和hjk4.1的FR4区及其突变序列。
ID NO:16具有至少95%序列同一性的氨基酸序列的轻链可变区序列;优选与所述SEQ ID
NO:16具有0‑10的氨基酸变化。
选所述回复突变选自Y49S,T69K,K45R,L47I和F71Y的氨基酸回复突变。
变区序列,或与SEQ ID NO:17或SEQ ID NO:18具有至少95%序列同一性的氨基酸序列的轻
链可变区序列。
13、SEQ ID NO:14、SEQ ID NO:15以及与SEQ ID NO:13、SEQ ID NO:14或SEQ ID NO:15具有
至少95%序列同一性的氨基酸序列;和/或(b)轻链可变区序列,所述轻链可变区序列选自
SEQ ID NO:16、SEQ ID NO:17或SEQ ID NO:18以及与SEQ ID NO:16、SEQ ID NO:17或SEQ
ID NO:18具有至少95%序列同一性的氨基酸序列。
链恒定区,优选包含人源IgG4或其变体的重链恒定区,最优选包含SEQ ID NO:19所示的恒
定区;
肽的抗原结合片段。
结合凝血酶的第9、24、60、62、64、66、69、78和113位的残基。
的,其进一步结合凝血酶的第9、24、60、62、64、66、69、78和113位的残基。
或病症优选为血栓性疾病(其包括血栓形成和血栓栓塞);更优选为静脉血栓形成和肺栓
塞、动脉血栓形成、血栓形成引起的中风和末梢动脉形成、动脉粥样硬化疾病、脑动脉病或
末梢动脉病;最优选静脉血栓形成、血栓形成引起的中风和动脉粥样硬化。
引起的中风和末梢动脉形成、动脉粥样硬化疾病、脑动脉病或末梢动脉病。
体施用有效量的抗凝血酶抗体。本发明还提供有效量的拮抗胞外或循环凝血酶的抗凝血酶
抗体在制备药物中的用途,所述药物用于治疗或预防个体的血栓形成和/或至少一种以下
症状:肺栓塞、血栓形成引起的中风和动脉粥样硬化。
附图说明
3200nM时,APTT值的增加也达到28.7秒的峰值;
具体实施方式
通常理解的含义。
同,故其抗原性也不同。据此,可将免疫球蛋白分为五类,或称为免疫球蛋白的同种型,即
IgM、IgD、IgG、IgA和IgE,其相应的重链分别为μ链、δ链、γ链、α链、和ε链。同一类Ig根据其
铰链区氨基酸组成和重链二硫键的数目和位置的差别,又可分为不同的亚类,如IgG可分为
IgG1、IgG2、IgG3、IgG4。轻链通过恒定区的不同分为κ链或λ链。五类Ig中每类Ig都可以有κ
链或λ链。
保守的骨架区(FR)。3个高变区决定抗体的特异性,又称为互补性决定区(CDR)。每条轻链可
变区(LCVR)和重链可变区(HCVR)由3个CDR区4个FR区组成,从氨基端到羧基端依次排列的
顺序为:FR1,CDR1,FR2,CDR2,FR3,CDR3,FR4。轻链的3个CDR区指LCDR1、LCDR2、和LCDR3;重
链的3个CDR区指HCDR1、HCDR2和HCDR3。本发明所述的抗体或抗原结合片段的LCVR区和HCVR
区的CDR氨基酸残基在数量和位置符合已知的Kabat编号规则(LCDR1‑3,HCDE2‑3),或者符
合kabat和chothia的编号规则(HCDR1)。
体的杂交瘤。在本发明一个优选的实施方案中,所述的鼠源凝血酶抗体或其抗原结合片段,
可进一步包含鼠源κ、λ链或其变体的轻链恒定区,或进一步包含鼠源IgG1、IgG2、IgG3或其
变体的重链恒定区。
分泌鼠源性特异性单抗的杂交瘤,然后从鼠杂交瘤细胞中克隆可变区基因,再根据需要克
隆人抗体的恒定区基因,将鼠可变区基因与人恒定区基因连接成嵌合基因后插入表达载体
中,最后在真核系统或原核系统中表达嵌合抗体分子。在本发明一个优选的实施方案中,所
述的凝血酶嵌合抗体的抗体轻链进一步包含人源κ、λ链或其变体的轻链恒定区。所述的凝
血酶嵌合抗体的抗体重链进一步包含人源IgG1、IgG2、IgG3、IgG4或其变体的重链恒定区,
优选包含人源IgG1、IgG2或IgG4重链恒定区,或者使用氨基酸突变(如YTE突变)的IgG1、
IgG2或IgG4变体。
架序列中产生的抗体。可以克服嵌合抗体由于携带大量鼠蛋白成分,从而诱导的异源性反
应。此类构架序列可以从包括种系抗体基因序列的公共DNA数据库或公开的参考文献获得。
如人重链和轻链可变区基因的种系DNA序列可以在“VBase”人种系序列数据库(在因特网
www.mrccpe.com.ac.uk/vbase可获得),以及在Kabat,E.A.等人,1991Sequences of
Proteins of Immunological Interest,第5版中找到。为避免免疫原性下降的同时,引起
的活性下降,可对所述的人抗体可变区框架序列进行最少反向突变或回复突变,以保持活
性。本发明的人源化抗体也包括进一步由噬菌体展示对CDR进行亲和力成熟后的人源化抗
体。在本发明一个优选的实施方案中,所述的凝血酶人源化抗体中鼠的CDR序列选自SEQ ID
NO:7,8,9,10,11或12;人的抗体可变区框架经过设计选择,其中所述抗体轻链可变区上的
轻链FR区序列,来源于人种系轻链IGKV1‑39*01和hjk4.1的组合序列;其中所述抗体重链可
变区上的重链FR区序列,来源于人种系重链IGHV3‑23*04和hjh6.1的组合序列。为避免免疫
原性下降的同时,引起的活性下降,可对所述的人抗体可变区可进行最少反向突变,以保持
活性。
要将此类供体构架氨基酸移植至人源化抗体的构架。来自非人凝血酶抗体或其抗原结合片
段的参与抗原结合的氨基酸残基可通过检查鼠单克隆抗体可变区序列和结构来鉴定。CDR
供体构架中与种系不同的的各残基可被认为是相关的。如果不能确定最接近的种系,那么
可将序列与亚型共有序列或具有高相似性百分数的鼠序列的共有序列相比较。稀有构架残
基被认为可能是体细胞高度突变的结果,从而在结合中起着重要作用。
合功能。术语抗体的“抗原结合片段”中包含的结合片段的实例包括(i)Fab片段,由VL、VH、
CL和CH1结构域组成的单价片段;(ii)F(ab')2片段,包含通过铰链区上的二硫桥连接的两
个Fab片段的二价片段,(iii)由VH和CH1结构域组成的Fd片段;(iv)由抗体的单臂的VH和VL
结构域组成的Fv片段;(v)单结构域或dAb片段(Ward等人,(1989)Nature341:544‑546),其
由VH结构域组成;和(vi)分离的互补决定区(CDR)或(vii)可任选地通过合成的接头连接的
两个或更多个分离的CDR的组合。此外,虽然Fv片段的两个结构域VL和VH由分开的基因编
码,但可使用重组方法,通过合成的接头连接它们,从而使得其能够产生为其中VL和VH区配
对形成单价分子的单个蛋白质链(称为单链Fv(scFv);参见,例如,Bird等人(1988)
Science242:423‑426;和Huston等人(1988)Proc.Natl.Acad.Sci USA85:5879‑5883)。此类
单链抗体也意欲包括在术语抗体的“抗原结合片段”中。使用本领域技术人员已知的常规技
术获得此类抗体片段,并且以与对于完整抗体的方式相同的方式就功用性筛选片段。可通
过重组DNA技术或通过酶促或化学断裂完整免疫球蛋白来产生抗原结合部分。抗体可以是
不同同种型的抗体,例如,IgG(例如,IgG1,IgG2,IgG3或IgG4亚型),IgA1,IgA2,IgD,IgE或
IgM抗体。
构:NH2‑VL‑接头‑VH‑COOH或NH2‑VH‑接头‑VL‑COOH。合适的现有技术接头由重复的GGGGS氨
基酸序列或其变体组成,例如使用1‑4个重复的变体(Holliger等人(1993),
Proc.Natl.Acad.Sci.USA90:6444‑6448)。可用于本发明的其他接头由Alfthan等人
(1995),Protein Eng.8:725‑731,Choi等人(2001),Eur.J.Immuno l.31:94‑106,Hu等人
(1996),Cancer Res.56:3055‑3061,Kipriyanov等人(1999),J.Mol.Biol.293:41‑56和
Roovers等人(2001),Cancer Immunol.描述。
immunological interest.NIH Publication91‑3242)提供。如本文中使用的,CDR的Kabat
定义只应用于轻链可变结构域的CDR1、CDR2和CDR3(CDR L1、CDR L2、CDR L3或L1、L2、L3),
以及重链可变结构域的CDR2和CDR3(CDR H2、CDR H3或H2、H3)。
11,12,13,14或15个连续或非连续的氨基酸。参见,例如,Epitope Mapping Protocols in
Methods in Molecular B iology,第66卷,G.E.Morris,Ed.(1996)。
对预先确定的抗原上的表位的结合。通常,抗体以大约小于10 M,例如大约小于10 M、10 M
‑10
或10 M或更小的亲和力(KD)结合。
体以小于大约10‑7M,例如小于大约10 M、10 M或10 M或更小的解离平衡常数(KD)结合凝
血酶,例如,如使用表面等离子体共振(SPR)技术在BIACORE仪中测定的。
的”。例如,如果启动子或增强子影响编码序列的转录,那么启动子或增强子有效地连接至
所述编码序列。
方案中,载体是病毒载体,其中可将另外的DNA区段连接至病毒基因组中。本文中公开的载
体能够在已引入它们的宿主细胞中自主复制(例如,具有细菌的复制起点的细菌载体和附
加型哺乳动物载体)或可在引入宿主细胞后整合入宿主细胞的基因组,从而随宿主基因组
一起复制(例如,非附加型哺乳动物载体)。
化,并且可以用常规的方法进行氨基酸测序。抗原结合片段同样可以用常规方法制备。发明
所述的抗体或抗原结合片段用基因工程方法在非人源的CDR区加上一个或多个人源FR区。
人FR种系序列可以通过比对IMGT人类抗体可变区种系基因数据库和MOE软件,从
ImMunoGeneTics(IMGT)的网站http://imgt.cines.fr得到,或者从免疫球蛋白杂志,
2001ISBN012441351上获得。
大肠杆菌(Escherichia coli)或沙门氏菌(Salmonella)的菌株;芽孢杆菌科
(Bacillaceae)例如枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis);肺炎球菌(Pneumococcus);链球
菌(Streptococcus)和流感嗜血菌(Haemophilus influenzae)。适当的微生物包括酿酒酵
母(Saccharomyces cerevisiae)和毕赤酵母(Pichia pastoris)。适当的动物宿主细胞系
包括CHO(中国仓鼠卵巢细胞系)和NS0细胞。
地转染CHO细胞。作为一种更推荐的现有技术,哺乳动物类表达系统会导致抗体的糖基化,
特别是在Fc区的高度保守N端位点。通过表达与人凝血酶特异性结合的抗体得到稳定的克
隆。阳性的克隆在生物反应器的无血清培养基中扩大培养以生产抗体。分泌了抗体的培养
液可以用常规技术纯化。比如,用含调整过的缓冲液的A或G Sepharose FF柱进行纯化。洗
去非特异性结合的组分。再用PH梯度法洗脱结合的抗体,用SDS‑PAGE检测抗体片段,收集。
抗体可用常规方法进行过滤浓缩。可溶的混合物和多聚体,也可以用常规方法去除,比如分
子筛、离子交换。得到的产物需立即冷冻,如‑70℃,或者冻干。
的接触。“给予”和“处理”可以指例如治疗、药物代谢动力学、诊断、研究和实验方法。细胞的
处理包括试剂与细胞的接触,以及试剂与流体的接触,其中所述流体与细胞接触。“给予”和
“处理”还意指通过试剂、诊断、结合组合物或通过另一种细胞体外和离体处理例如细胞。
“处理”当应用于人、兽医学或研究受试者时,是指治疗处理、预防或预防性措施,研究和诊
断应用。
通常,在受治疗患者或群体中以有效缓解一种或多种疾病症状的量给予治疗剂,以诱导这
类症状退化或抑制这类症状发展到任何临床右测量的程度。有效缓解任何具体疾病症状的
治疗剂的量(也称作“治疗有效量”)可根据多种因素变化,例如患者的疾病状态、年龄和体
重,以及药物在患者产生需要疗效的能力。通过医生或其它专业卫生保健人士通常用于评
价该症状的严重性或进展状况的任何临床检测方法,可评价疾病症状是否已被减轻。尽管
本发明的实施方案(例如治疗方法或制品)在缓解每个目标疾病症状方面可能无效,但是根
据本领域已知的任何统计学检验方法如Student t检验、卡方检验、依据Mann和Whitney的U
检验、Kruskal‑Wallis检验(H检验)、Jonckheere‑Terpstra检验和Wilcoxon检验确定,其在
统计学显著数目的患者中应当减轻目标疾病症状。
而不改变蛋白的生物学活性。本领域技术人员知晓,一般而言,多肽的非必需区域中的单个
氨基酸置换基本上不改变生物学活性(参见例如Watson等(1987)Molecular Biology of
the Gene,The Benjamin/Cummings Pub.Co.,第224页,(第4版))。另外,结构或功能类似的
氨基酸的置换不大可能破环生物学活性。
待治疗的病症、患者的总体健康情况、给药的方法途径和剂量以及副作用严重性。有效量可
以是避免显著副作用或毒性作用的最大剂量或给药方案。
置都被腺嘌呤占据时,那么所述分子在该位置是同源的。两个序列之间的同源性百分率是
两个序列共有的匹配或同源位置数除以比较的位置数×100的函数。例如,在序列最佳比对
时,如果两个序列中的10个位置有6个匹配或同源,那么两个序列为60%同源;如果两个序
列中的100个位置有95个匹配或同源,那么两个序列为95%同源。一般而言,当比对两个序
列而得到最大的同源性百分率时进行比较。
而不考虑转移数目。还应当理解的是,由于故意或非有意的突变,所有后代在DNA含量方面
不可能精确相同。包括具有与最初转化细胞中筛选的相同的功能或生物学活性的突变后
代。在意指不同名称的情况下,其由上下文清楚可见。
目标区域末端或之外的序列信息,使得可以设计寡核苷酸引物;这些引物在序列方面与待
扩增模板的对应链相同或相似。2个引物的5’末端核苷酸可以与待扩增材料的末端一致。
PCR可用于扩增特定的RNA序列、来自总基因组DNA的特定DNA序列和由总细胞RNA转录的
cDNA、噬菌体或质粒序列等。一般参见Mullis等(1987)Cold Spring Harbor
Symp.Ouant.Biol.51:263;Erlich编辑,(1989)PCR TECHNOLOGY(Stockton Press,N.Y.)。
本文使用的PCR被视为用于扩增核酸测试样品的核酸聚合酶反应法的一个实例,但不是唯
一的实例,所述方法包括使用作为引物的已知核酸和核酸聚合酶,以扩增或产生核酸的特
定部分。
列的抗体重链可变区可以但不必须存在。
物组合物的目的是促进对生物体的给药,利于活性成分的吸收进而发挥生物活性。
手册,分子克隆手册;或按照原料或商品制造厂商所建议的条件。未注明具体来源的试剂,
为市场购买的常规试剂。
(以上凝血酶原蛋白均由本发明设计模版序列),经过一步PCR在3’端带上His或Flag编码序
列后,带His标签的人凝血酶原(h‑prothrombin‑his),带Flag标签的人凝血酶原(h‑
prothrombin‑flag),带His标签的小鼠凝血酶原(m‑prothrombin‑his)和带His标签的食蟹
猕猴凝血酶原(cyno‑prothrombin‑his)分别克隆到pTT5载体上(Biovector,Cat#:
102762),在HEK293E细胞内实现瞬时表达。重组表达得到的凝血酶原(prothrombin)通过初
步纯化和体外激活得到thrombin,并经过进一步纯化,得到的带Flag标签的人凝血酶(h‑
thrombin‑flag)用于免疫,带His标签的人凝血酶(h‑thrombin‑His),带His标签的小鼠凝
血酶(m‑thrombin‑his)和带His标签的食蟹猕猴凝血酶(cyno‑thrombin‑his)用于体外筛
选。
A280读数降至基线,再用PBS+10mM咪唑冲洗层析柱,除去非特异结合的杂蛋白,并收集流出
液,最后用含有300mM咪唑的PBS溶液洗脱目的蛋白,并收集洗脱峰。收集的洗脱液浓缩后用
脱盐柱将样品缓冲液换成PBS溶液,以备后续体外激活和进一步纯化。
A280读数降至基线。用PBS冲洗柱子,冲洗杂蛋白,并收集。用含有100μg/ml 3xFlag多肽的
TBS缓冲液洗脱目的蛋白,并收集,以备后续体外激活和进一步纯化。
和分子排阻色谱法SEC做进一步纯化。
阳离子交换选用缓冲液A为10mM PB,pH6.8缓冲液,缓冲液B为10mM PB,pH6.8,1M NaCl缓冲
液,阴离子交换选用Buffer A为10mM Tris‑HCl,pH8.5缓冲液,缓冲液B为10mM Tris‑HCl,
pH8.5,1M NaCl缓冲液。
到基线。用缓冲液B缓冲液在20个柱体积时间内从0%上升到80%的浓度梯度洗脱,收集各
洗脱峰,经过SDS‑PAGE鉴定目的蛋白所在组分,并进一步通过质谱和肽图验证。
100mM乙酸pH3.0洗脱目的蛋白,用1M Tris‑HCl,pH8.0中和。洗脱样品适当浓缩后,利用PBS
平衡好的凝胶层析Superdex200(GE)进一步纯化,以去除聚体,收集单体峰,分装备用。
级。小鼠购进后,实验室环境饲养1周,12/12小时光/暗周期调节,温度20‑25℃;湿度40‑
60%。将已适应环境的小鼠按以下方案免疫。免疫抗原为带Flag标签的人凝血酶(SEQ ID
NO:1双下划线所示)。
1,抗原与佐剂(Thermo Alum)比例为3:1,50μg/只(初次免疫),25μg/只(加强免疫)。
抗原乳化后进行接种,时间为第0、14、28、42、56天。
在进行脾细胞融合前3天加强免疫,腹膜内(IP)注射50μg/只的生理盐水配制的抗原溶液。
CRL‑8287 )进行融合得到杂交瘤细胞。融合好的杂交瘤细胞以0.5‑1×10/ml的密度用MC
半固体完全培养基(含20%FBS、1×HAT、1×OPI和2%Methyl cellulose的RPMI‑1640培养
基)重悬,分装于35mm细胞培养皿中,37℃,5%CO2孵育7‑9天。融合后第7‑9天,根据细胞克
隆大小,挑取单细胞克隆至加有200μl/well的HT完全培养基(含20%FBS、1×HT和1×OPI的
RPMI‑1640培养基)的96孔细胞培养板中,37℃,5%CO2培养3天进行ELISA检测。
试例3)。阳性孔细胞及时进行扩增冻存保种和二到三次亚克隆直至获得单细胞克隆。
化抗体,供在检测例中使用。
TM
PrimeScript Reverse Transcriptase试剂盒反转录(Takara,Cat No.2680A)。将反转录得
到的cDNA采用mouse Ig‑Primer Set(Novagen,TB326 Rev.B 0503)进行PCR扩增后送测序
公司测序。得到的阳性克隆mAb‑1601的DNA对应的氨基酸序列SEQ ID NO:5和SEQ ID NO:6
所示:
体CH‑1601与猴属的凝血酶的交叉结合活性(见测试例3),与人凝血酶的亲和力(见测试例
6),以及对人凝血酶酶活的影响(见测试例5)。检测结果如下表2和图1所示:
酶解活性。
到相应的人源模板中,形成次序为FR1‑CDR1‑FR2‑CDR2‑FR3‑CDR3‑FR4的可变区序列。其中
氨基酸残基由Kabat编号系统确定并注释。
h1601‑002 SEQ ID NO:14 SEQ ID NO:16
h1601‑003 SEQ ID NO:15 SEQ ID NO:16
h1601‑004 SEQ ID NO:13 SEQ ID NO:17
h1601‑005 SEQ ID NO:14 SEQ ID NO:17
h1601‑006 SEQ ID NO:15 SEQ ID NO:17
h1601‑007 SEQ ID NO:13 SEQ ID NO:18
h1601‑008 SEQ ID NO:14 SEQ ID NO:18
h1601‑009 SEQ ID NO:15 SEQ ID NO:18
体内体外活性检测.
SQEDPEVQFNWYVDGVEVHNAKTKPREEQFNSTYRVVSVLTVLHQDWLNGKEYKCKVSNKGLPSSIEKTISKAKGQP
REPQVYTLPPSQEEMTKNQVSLTCLVKGFYPSDIAVEWESNGQPENNYKTTPPVLDSDGSFFLYSRLTVDKSRWQEG
NVFSCSVMHEALHNHYTQKSLSLSLGK
与表达载体pHr(带信号肽及hIgG4恒定区基因(CH1‑FC/CL)片段)进行同源重组,构建重组
抗体全长表达质粒VH‑CH1‑FC‑pHr/VK‑CL‑pHr。
(CH1‑FC/CL)片段)进行同源重组,构建人源化抗体全长表达质粒VH‑CH1‑FC‑pHr/VK‑CL‑
pHr。
100mM乙酸pH3.0洗脱目的蛋白,用1M Tris‑HCl,pH8.0中和。洗脱样品适当浓缩后,利用PBS
平衡好的凝胶层析Superdex200(GE)进一步纯化,以去除聚体,收集单体峰,分装备用。
的序列。人PPACK‑凝血酶‑FAB复合物经结晶并用于结构分析。获得的结构统计结果如下:分
辨率为Rfactor=23.4%,Rfree=27.2%,不对称单元内有两个复合物,Ramachandran:
favoured=93.5%,异常值=0%。晶体结构显示Fab的LCDR1,LCDR2,LCDR3,HCDR3与凝血酶
紧密结合(图7)。
编号。
KASEDIYNRLA、CDRL2‑GATSLET、CDRL3‑QQYWSTPWT、CDRH3‑DHYHGNSYVFDY(下划线的残基接
触)。CDRL被发现较为重要,其提供抗体上57.3%的隐藏表面积。轻链中的接触残基是:30、
31、32、46、49、50、53、55、91、92、96。
独的噬菌体展示文库。根据CDR的长短,调整每个CDR需要掺入的NNK比例和需要文库的库容
大小,具体方案见表5。
H1 5 50% >2E7
H2 17 20% >1E8
H3 14 20% >1E8
L1 11 30% >1E8
L2 7 50% >1E8
L3 7 50% >1E8
行下一个循环的淘筛。每一轮淘筛将生物素化Thrombin浓度降低2‑5倍。3轮淘筛之后,每个
文库挑取单克隆进行测序验证。发现只有HCDR3有明显的氨基酸富集,根据CDR区氨基酸残
基富集程度,挑选获得部分克隆如aTM‑1、aTM‑2、aTM‑4、aTM‑7,构建全长Ig进行哺乳动物细
胞表达。
aTM‑1 I A Y SEQ ID NO:27 DHYIGASYVFDY(SEQ ID NO:23)
aTM‑2 L N S SEQ ID NO:28 DHYLGNSYVFDS(SEQ ID NO:24)
aTM‑4 L N L SEQ ID NO:29 DHYLGNSYVFDL(SEQ ID NO:25)
aTM‑7 M N T SEQ ID NO:30 DHYMGNSYVFDT(SEQ ID NO:26)
板中的链霉亲和素结合,从而固定到96孔酶标板中,抗体加入后信号的强弱被用于判断抗
体和凝血酶的结合活性,具体实验方法如下。
放置2小时。弃去液体后,加入用PBS稀释的5%脱脂牛奶(光明脱脂奶粉)封闭液200μl/孔,
37℃孵育箱孵育2.5小时或4℃放置过夜(16‑18小时)进行封闭。封闭结束后,弃去封闭液,
并用PBST缓冲液(PH7.4 PBS含0.05%tweeen‑20)洗板5次后,加入50μl/孔用样品稀释液
(PH7.4 PBS含1%BSA)稀释至0.5μg/ml的生物素标记的带His标签的人凝血酶(SEQ ID NO:
2双下划线所示),置37℃孵育箱孵育2小时。孵育结束后,弃去酶标板中的反应液,用PBST洗
板6次后,加入50μl/孔用样品稀释液稀释的不同浓度的本发明凝血酶待测抗体,放于37℃
孵育箱孵育2小时。孵育结束后用PBST洗板5次,加入100μl/孔用样品稀释液稀释的HRP标记
的羊抗人二抗(Jackson Immuno Research,Cat No.109‑035‑003),37℃孵育1小时。用PBST
洗板5次后,加入50μl/孔TMB显色底物(KPL,Cat No.52‑00‑03),于室温孵育10‑15min,加入
50μl/孔1M H2SO4终止反应,用NOVOStar酶标仪在波长450nm处读取吸收值,计算凝血酶抗体
对人凝血酶的结合EC50值。结果如表7所示。
h1601‑005 5.80
h1601‑006 4.45
h1601‑008 1.54
h1601‑009 1.49
(16‑18小时)。弃去液体后,加入用PBS稀释的5%脱脂牛奶(光明脱脂奶粉)封闭液200μl/
孔,37℃孵育箱孵育2.5小时进行封闭。封闭结束后弃去封闭液,并用PBST缓冲液(PH7.4
PBS含0.05%tweeen‑20)洗板5次后,加入50μl/孔用样品稀释液(PH7.4 PBS含1%BSA)梯度
稀释的本发明凝血酶待测抗体,放于37℃孵育箱孵育1小时。孵育结束后用PBST洗板5次,加
入100μl/孔用样品稀释液稀释的HRP标记的羊抗人二抗(Jackson Immuno Research,Cat
No.109‑035‑003),37℃孵育1小时。用PBST洗板5次后,加入50μl/孔TMB显色底物(KPL,Cat
No.52‑00‑03),于室温孵育10‑15min,加入50μl/孔1M H2SO4终止反应,用NOVOStar酶标仪在
波长450nm处读取吸收值,计算凝血酶抗体对人凝血酶原的结合EC50值。
于37℃孵育箱中放置2小时。弃去液体后,加入用PBS稀释的5%脱脂牛奶(光明脱脂奶粉)封
闭液200μl/孔,37℃孵育箱孵育2.5小时或4℃放置过夜(16‑18小时)进行封闭。封闭结束
后,弃去封闭液,并用PBST缓冲液(PH7.4PBS含0.05%tweeen‑20)洗板5次后,加入50μl/孔
用样品稀释液(PH7.4 PBS含1%BSA)稀释至0.5μg/ml的带His标签的食蟹猕猴凝血酶蛋白
(SEQ ID NO:3双下划线所示),置37℃孵育箱孵育2小时。孵育结束后,弃去酶标板中的反应
液,用PBST洗板6次后,加入50μl/孔用样品稀释液稀释的不同浓度本发明凝血酶待测抗体,
放于37℃孵育箱孵育2小时。孵育结束后用PBST洗板5次,加入100μl/孔用样品稀释液稀释
的HRP标记的羊抗人二抗(Jackson Immuno Research,Cat No.109‑035‑003),37℃孵育1小
时。用PBST洗板5次后,加入50μl/孔TMB显色底物(KPL,Cat No.52‑00‑03),于室温孵育10‑
15min,加入50μl/孔1M H2SO4终止反应,用NOVOStar酶标仪在波长450nm处读取吸收值,计算
凝血酶抗体对食蟹猕猴凝血酶的结合EC50值。结果见表8。
芯片表面流经凝血酶抗原带His标签的人凝血酶,利用Biacore仪器实时检测反应信号从而
获得结合和解离曲线,通过拟合得到亲和力数值。在实验中每个循环解离完成后,用人抗捕
获试剂盒里配置的再生溶液将生物芯片洗净再生。结果见表9。
H1601‑009 8.17 ‑‑
度稀释),25μl/孔,也加入此板中。室温孵育30‑60分钟后,用PBS稀释S2228(用于检测凝血
酶活性的底物,吉尔生化(上海)有限公司合成)至浓度为4mM,50μl/孔,加入到上一步骤的
板中。阴性对照为仅加入凝血酶,或仅加入S2228的对照孔。室温孵育30分钟后,用NOVOStar
酶标仪在波长405nm处读取吸收值。结果见图2,其中凝血酶和S2228表示阴性对照孔测出的
OD值,0.625:1,1.25:1,2.5:1,5:1,10:1,20:1表示待测抗体与凝血酶的不同摩尔比时测出
的OD值。
11)。
进行深度麻醉。术前对不同组分别缓慢下肢静脉推注本发明抗体药物及对照药物(药物及
剂量见表12)。以下步骤均在37℃恒温手术台上操作。在腹股沟下手术分离出股动静脉,先
做左侧再做右侧。手术动静脉插管。插管固定好之后,放开动脉夹(放开左侧动脉夹时间为
给药后15分钟,右侧的时间为给药后25分钟)并同时开始计时,血流持续15分钟。用止血钳
或者血管夹夹住插管的两端防止栓子脱落,取出硅胶管放入有生理盐水的培养皿,然后用
手术剪取出带有血栓的促凝线,在擦手纸上两端各吸水3秒,后精密电子称称重,并算出血
栓的净重。
著差异。
在食蟹猴体内的药代动力学行为,评价其药动学特征。
节,温度16‑26℃,相对湿度40‑70%。对食蟹猴进行分组,每组3只。实验当天,每只食蟹猴分
别静脉注射受试药物,给药剂量为3mg/kg,10mg/kg。静脉注射体积为10ml/kg,给药速度2‑
4ml/分钟。