一种促血小板聚集的多肽KM17转让专利

申请号 : CN201710558285.4

文献号 : CN108503693B

文献日 :

基本信息:

PDF:

法律信息:

相似专利:

发明人 : 孟照辉万雯叶雨佳王华炜

申请人 : 昆明医科大学第一附属医院

摘要 :

一种促血小板聚集的多肽KM17。本发明属于医药生物技术领域,具体涉及一种新的具有促进血小板聚集作用的多肽。该多肽是由19个氨基酸组成的多肽KM17,其具有SEQ ID NO:1的多肽的序列,分子量为2168.41 Da,其序列为Leu‑Val‑Asn‑Glu‑Glu‑Ala‑Thr‑Gly‑Gln‑Phe‑His‑Val‑Tyr‑Pro‑Glu‑Leu‑Pro‑Lys‑Pro。该多肽对ADP诱导的血小板聚集有明显的促进作用,可用于探索其与其它血小板激活剂对血小板的作用及相关功能的影响,还可以用于监测现有的抗血小板治疗,并可应用于制备促进血小板聚集、止血及治疗心血管疾病药物等。

权利要求 :

1.一种促血小板聚集的多肽KM17,其特征为:该多肽是由19个氨基酸组成的多肽KM17, 其具有SEQ ID NO:1的多肽的序列,分子量为2168.41 Da,其序列为Leu-Val-Asn-Glu-Glu- Ala-Thr-Gly-Gln-Phe-His-Val-Tyr-Pro-Glu-Leu-Pro-Lys-Pro。

2.一种按权利要求1所述的促血小板聚集的多肽KM17在制备对ADP诱导的血小板聚集、止血有促进作用的制剂中的应用。

3.按权利要求2所述的应用,其特征是:所述多肽为活性成分,并且含有一种或者多种药学上可接受的载体。

说明书 :

一种促血小板聚集的多肽KM17

技术领域

[0001] 本发明属于医药生物技术领域,具体涉及一种新的具有促进血小板聚集作用的多肽。

背景技术

[0002] 心脑血管疾病主要包括急性心肌梗死、脑梗死、肺梗死、缺血性心脏病、脑卒中等常见病,严重威胁人类健康及生命,为我国居民首位死因[1]。血小板活化是心脑血管疾病发生、发展过程中重要的始动因子,而血小板激活、粘附及聚集直至血栓形成是一系列的级联反应,不仅在生理性止血过程中发挥关键作用,同时也参与血栓形成、组织修复等病理过程[2,3]。血小板聚集对于血栓的形成起着核心作用。血小板聚集的诱导剂主要包括:胶原、花生四烯酸、ADP、凝血酶等。
[0003] 1、胶原引起的血小板活化
[0004] 当血管内皮细胞受损或斑块破裂使胶原蛋白暴露时,血小板膜蛋白和暴露的胶原蛋白或活化的vWF结合,是启动血栓形成的关键步骤。血小板表面拥有膜蛋白GPVI和整合素-α2β1两个识别胶原蛋白的特定序列,从而牢固结合胶原蛋白。其中GPVI是胶原信号转导受体,参与整合素-α2β1调节的血小板粘附后的信号转导和血小板活化与聚集[4-7]。胶原与两种膜蛋白的共同作用下,最终激活整合素αⅡbβ3活化途径,引起血小板聚集、释放[8,9]。
[0005] 2、花生四烯酸引起的血小板活化
[0006] 血小板胞内Ca 2+水平升高可引起磷脂酶A2活化,继而花生四烯酸从磷脂膜中游离出来。花生四烯酸在环氧合酶-1作用下合成血栓素A2(TXA2),TXA2与血小板膜上的TXA2受体结合后[10],与特异性的G蛋白偶联受体Gq和G13结合使血小板活化。TXA2不仅是血小板活化和血管平滑肌收缩的强激动剂,它还可以放大由低剂量凝血酶和ADP等引起的血小板活化信号。TXA2与受体结合后激活其下游的PLCβ,引起IP3、DAG、G13以及与这些蛋白相关的信号通路的活化[11],最终引起血小板变形和血小板内颗粒体的释放[12]。
[0007] 3、ADP引起的血小板活化
[0008] ADP是活化血小板中致密颗粒释放的主要成分,其在血小板活化和聚集过程中起着非常重要的作用。ADP受体主要有P2Y1,P2Y12和P2X1。其中,P2Y1是一种G蛋白偶联的跨膜受体,ADP与P2Y1受体结合后,P2Y1受体与Gq蛋白偶联激活磷酯酶C从而导致Ca2+从细胞外流入细胞内,细胞内Ca2+浓度的升高激活了蛋白激酶C引起血小板变形和聚集[13]。P2Y12是一类G蛋白偶联的受体[14],不仅对ADP引起的血小板不可逆聚集非常重要,而且对ADP介导的TXA2的产生至关重要。P2X1蛋白受体为配体门控性离子通道,主要负责由ADP引起的快速钙内流,在血小板聚集中所起的作用比较微弱[15]。
[0009] 4、凝血酶引起的血小板活化
[0010] 凝血酶是最有效的血小板激动剂,其通过与血小板膜表面蛋白酶活化受体(PARs)结合后激活血小板。人的血小板表达PAR-1和PAR-4[16],其中任何一个活化都可引起血小板聚集和颗粒释放[17]。研究发现,PAR-1对低浓度的凝血酶敏感,而PAR-4仅在高浓度凝血酶环境下触发血小板的活化和聚集;并且凝血酶对PAR-4的裂解作用比PAR-1慢20至70倍,因此,PAR-1是凝血酶引起血小板活化最重要的受体[18,19]。研究表明,PAR-1和Gq、G13、Gi/z偶联,PAR-4只和Gq、G13偶联从而使凝血信号与胞内信号通路链接起来,导致PLCβ、PI3K和Ras相似物Rho激酶的活化,引起IP3水解,钙动员以及PKC活化[17,20]。
[0011] 然而,现有抗血小板药物不仅具有出血倾向(脑出血、消化道大出血)等副作用[21],且在临床应用中存在抵抗或者低应答现象,不良缺血事件仍有发生;同时,这些药物作用机制单一,抗血小板作用存在一定局限性:如阿司匹林不可逆地阻断COX-1合成,从而抑制血小板活化、聚集[10,22];氯吡格雷不可逆地抑制ADP与其受体P2Y12结合,抑制ADP诱导的血小板聚集[23];替格瑞洛可逆地与ADP-P2Y12受体相互作用,同样抑制ADP诱导的血小板聚集[24];Vorapaxar和Atopaxar是现处于临床试验阶段的PAR-1抑制剂,可抑制凝血酶诱导的血小板聚集[25,26];阿昔单抗、替罗非班、依替巴肽均属于GPⅡb/Ⅲa受体拮抗剂[27]。临床上,为了增加疗效、减少副作用,多联合使用不同作用机制的抗血小板药物。因此,寻求更安全可靠的新型抗血小板药物具有重要意义。

发明内容

[0012] 本发明的目的是提供一种新的具有促进血小板聚集作用的多肽,该多肽对ADP诱导的血小板聚集有明显的促进作用,可用于探索其与其它血小板激活剂对血小板的作用及相关功能的影响,还可以用于监测现有的抗血小板治疗,并可应用于制备促进血小板聚集、止血及治疗心血管疾病药物等。
[0013] 实现本发明上述目的所采取的技术方案是:该多肽是由19个氨基酸组成的多肽KM17,其具有SEQ ID NO:1的多肽的序列,分子量为2168.41Da,其序列为Leu-Val-Asn-Glu-Glu-Ala-Thr-Gly-Gln-Phe-His-Val-Tyr-Pro-Glu-Leu-Pro-Lys-Pro。合成多肽后,经高效液相色谱法及质谱法技术验证,表明合成的底物为完整的氨基酸序列。
[0014] 本发明所提供的多肽,经测试具有促进ADP诱导的血小板聚集活性:ADP单独作用下,诱导血小板平均聚集率为32%;100μM KM17和ADP共同作用下诱导血小板平均聚集率为53%,促进聚集率为66%。在25-100μM范围内,随着KM17浓度的增加,血小板聚集率逐渐增加,呈现剂量依赖关系。该多肽不限定于促进ADP诱导的血小板聚集,可用于探索其与其它血小板激活剂(肾上腺素,瑞斯托霉素等)对血小板的作用及相关功能的影响,还可以用于监测现有的抗血小板治疗。
[0015] 本发明所提供的多肽可应用在对血小板聚集有促进作用的制剂中。
[0016] 本发明所提供的多肽可应用在制备促进血小板聚集、止血及治疗心血管疾病药物中。
[0017] 本发明所提供的多肽促进血小板聚集、止血及治疗心血管疾病药物,其中的多肽为活性成分,并且含有一种或者多种药学上可接受的载体。
[0018] 本发明所提供的多肽可应用在制备瘢痕形成剂或皮肤病学乳剂中。
[0019] 本发明所提供的多肽的生物学特性能预见其许多应用。
[0020] 本发明所提供的多肽可用于出血性疾病:评估血小板聚集功能,评估现有止血治疗(止血绷带、止血粘着剂等)的有效性。
[0021] 本发明所提供的多肽可用于评估血栓性疾病:评估血小板聚集功能,评价抗血小板治疗(如阿司匹林,氯吡格雷、替格瑞洛等)现在或将来治疗的有效性。
[0022] 本发明可作为瘢痕形成剂或皮肤病学乳剂的用途:某些伤口瘢痕形成或皮肤性疾病的愈合需要血小板的就地迁移、粘附、聚集和活化。
[0023] 本发明涉及一个由19个氨基酸组成的多肽KM17,通过体外人血血小板聚集实验来测定其对血小板聚集活性的作用。实验证明,该多肽对ADP诱导的血小板聚集有明显的促进作用。本发明所涉及的新的多肽KM17序列,迄今尚未见到相关报道。

附图说明

[0024] 下列附图用于说明本发明的具体实施方案,而不用于限定由权利要求书所界定的本发明的发明范围。
[0025] 图1为本发明所提供的多肽的高效液相色谱纯化图:峰值C即为KM17。
[0026] 图2为峰值C(即KM17)的二级质谱图。
[0027] 图3为经光学比浊法检测KM17对凝血酶、ADP、胶原、花生四烯酸诱导的血小板聚集影响的血小板聚集曲线图。富血小板血浆与不同浓度的KM17在37℃下孵育30分钟后,加入ADP(A)、花生四烯酸(B)、胶原(C)、凝血酶(D)诱导剂,并记录血小板聚集曲线(均数,n≥4)。
[0028] 图4为经光学比浊法检测KM17对凝血酶、ADP、胶原、花生四烯酸诱导的血小板聚集的影响的条状图。不同浓度KM17对凝血酶、ADP、胶原、花生四烯酸诱导的血小板聚集的影响(均数±标准误,n≥4)。*(P<;0.05),**(P<;0.01)。

具体实施方式

[0029] 实施例:本发明所提供的多肽KM17人体外促进ADP诱导的人血小板聚集。
[0030] 通过光学比浊法检测来评价KM17对胶原、花生四烯酸、凝血酶、ADP诱导的血小板聚集的影响。
[0031] 从我院血库提供的健康的志愿者签字同意后,收集单采血小板。
[0032] (1)用含有15%DMSO的去离子水稀释多肽,调整多肽终浓度为10mM;在对照实验组中加入等体积的15%DMSO无多肽的去离子水。
[0033] (2)取100μl单采血小板,用300μl改良的Tyrode’s缓冲液(137mM NaCl,27mM KCl,1mM MgCl2,0.42mM NaH2PO4,5.5mM Glucose,5.55mM HEPES,0.25%Bovine Serum Albumin,pH 7.4)稀释血小板,即为富血小板血浆,血小板数目调整为2.5×108个血小板/mL;另外取100μl单采血小板并用300μl Tyrode’s缓冲液稀释血小板后10000rpm,离心10分钟,上清为贫血小板血浆。
[0034] (3)吸取400μl血小板重悬液37℃下预热5min后在上述血小板重悬液中加入不同浓度的KM17(0μM,10μM,50μM,100μM)37℃孵育30min。打开血小板聚集仪,按要求设置好参数,在孵育好的富血小板血浆中放入磁力棒,将带有磁力搅拌棒的血小板反应杯插入机器的检测孔中,将其置于血小板聚集仪测试区调零后加入凝血酶、ADP、胶原、花生四烯酸诱导剂,在37℃、1200rpm条件下观察KM17对不同激活剂引起的血小板聚集的影响,共观察5-10min。每个KM17浓度组重复至少四次,取平均值。根据血小板聚集率记录血小板聚集曲线图和绘制相应的条状图(图3,图4)
[0035] (4)实验数据用SPSS 21.0统计软件进行处理。结果用均数±标准误表示。多组间比较先进行方差齐性检验,方差齐者用单因素方差分析(one-way ANOVA),两两比较用LSD(least-significant difference,即最小显著性差异法)检验;若方差不齐则行Tamhane’s T2检验,两两比较采用t检验。p<;0.05则认为差异具有统计学意义。
[0036] 经血小板聚集实验,该多肽KM17能明显促进ADP诱导的人血小板聚集,并且对胶原、凝血酶、花生四烯酸等引起的血小板聚集无明显的影响。其中,ADP单独作用下,诱导血小板平均聚集率为32%;100μM KM17和ADP共同作用下诱导血小板平均聚集率为53%,促进聚集率为66%(促进聚集率计算方法:[(X-Y)/Y]X 100%,X代表100μM KM17组血小板平均聚集;Y代表空白对照组血小板平均聚集率)。在25-100nM范围内,随着KM17浓度的增加,血小板聚集率逐渐增加,呈现剂量依赖关系。
[0037] 参考文献:
[0038] 1.陈伟伟,高润霖,刘力生,朱曼璐,王文,et al.(2016)《中国心血管病报告2015》概要.中国循环杂志:521-528。
[0039] 2.George JN(2000)Platelets.Lancet 355:1531-1539。
[0040] 3.Jurk K,Kehrel BE(2010)[Pathophysiology and biochemistry of platelets].Internist(Berl)51:1086,1088-1092,1094。
[0041] 4.Coller BS,Beer JH,Scudder LE,Steinberg MH(1989)Collagen-platelet interactions:evidence for a direct interaction of collagen with platelet GPIa/IIa and an indirect interaction with platelet GPIIb/IIIa mediated by adhesive proteins.Blood 74:182-192。
[0042] 5.Moroi M,Jung SM(2004)Platelet glycoprotein VI:its structure and function.Thromb Res114:221-233。
[0043] 6.Puett D,Wasserman BK,Ford JD,Cunningham LW(1973)Collagen-mediated platelet aggregation.Effects of collagen modification involving the protein and carbohydrate moieties.J Clin Invest 52:2495-2506。
[0044] 7.Tsuji M,Ezumi Y,Arai M,Takayama H(1997)A novel association of Fc receptor gamma-chain with glycoprotein VI and their co-expression as a collagen receptor in human platelets.J Biol Chem 272:23528-23531。
[0045] 8.Li Z,Delaney MK,O'Brien KA,Du X(2010)Signaling during platelet adhesion and activation.ArteriosclerThromb Vasc Biol 30:2341-2349。
[0046] 9.Zahid M,Mangin P,Loyau S,Hechler B,Billiald P,et al.(2012)The future of glycoprotein VI as an antithrombotic target.J Thromb Haemost 10:2418-2427。
[0047] 10.Halvorsen S,Andreotti F,ten Berg JM,Cattaneo M,Coccheri S,et al.(2014)Aspirin therapy in primary cardiovascular disease prevention:a position paper of the European Society of Cardiology working group on thrombosis.J Am Coll Cardiol 64:319-327。
[0048] 11.Chakraborty R,Pydi SP,Gleim S,Bhullar RP,Hwa J,et al.(2013)New insights into structural determinants for prostanoid thromboxane A2receptor-and prostacyclin receptor-G protein coupling.Mol Cell Biol 33:184-193。
[0049] 12.Bhavaraju K,Lakhani PR,Dorsam RT,Jin J,HitchcockIS,et al.(2011)G(12/13)signaling pathways substitute for integrin alphaIIbbeta3-signaling for thromboxane generation in platelets.PLoS One 6:e16586。
[0050] 13.Cattaneo M(2005)The P2 receptors and congenital platelet function defects.Semin Thromb Hemost31:168-173。
[0051] 14.Jin J,Kunapuli SP(1998)Coactivation of two different G protein-coupled receptors is essential for ADP-induced platelet aggregation.Proc Natl Acad Sci U S A 95:8070-8074。
[0052] 15.Vial C,Hechler B,Leon C,Cazenave JP,Gachet C(1997)Presence of P2X1purinoceptors in human platelets and megakaryoblastic cell lines.Thromb Haemost78:1500-1504。
[0053] 16.Coughlin SR(1999)How the protease thrombin talks to cells.Proc Natl Acad Sci U S A 96:11023-11027。
[0054] 17.Hua Y,Keep RF,Gu Y,Xi G(2009)Thrombin and brain recovery after intracerebral hemorrhage.Stroke 40:S88-89。
[0055] 18.Martorell L,Martinez-Gonzalez J,Rodriguez C,Gentile M,Calvayrac O,et  al.(2008)Thrombin and  protease-activated receptors(PARs)in atherothrombosis.Thromb Haemost 99:305-315。
[0056] 19.Carrim N,Arthur JF,Hamilton JR,Gardiner EE,Andrews RK,et al.(2015)Thrombin-induced reactive oxygen species generation in platelets:A novel role for protease-activated receptor 4 and GPIbalpha.Redox Biol 6:640-647。
[0057] 20.Sambrano GR,Weiss EJ,Zheng YW,Huang W,Coughlin SR(2001)Role of thrombin signalling in platelets in haemostasis and thrombosis.Nature 413:74-78。
[0058] 21.Geisler T,Gawaz M,Steinhubl SR,Bhatt DL,Storey RF,et al.(2010)Current strategies in antiplatelet therapy--does identification of risk and adjustment of therapy contribute to more effective,personalized medicine in cardiovascular disease Pharmacol Ther 127:95-107。
[0059] 22.Tantry US,Mahla E,Gurbel PA(2009)Aspirin resistance.Prog Cardiovasc Dis 52:141-152.
[0060] 23.Ray S(2014)Clopidogrel resistance:the way forward.Indian Heart J 66:530-534。
[0061] 24.Samstein RM,Josefowicz SZ,Arvey A,Treuting PM,Rudensky AY(2012)Extrathymic generation of regulatory T cells in placental mammals mitigates maternal-fetal conflict.Cell 150:29-38。
[0062] 25.Morrow DA,Braunwald E,Bonaca MP,Ameriso SF,Dalby AJ,et al.(2012)Vorapaxar in the secondary prevention of atherothrombotic events.N Engl J Med366:1404-1413。
[0063] 26.Tricoci P,Huang Z,Held C,Moliterno DJ,Armstrong PW,et al.(2012)Thrombin-receptor antagonist vorapaxar in acute coronary syndromes.N Engl J Med 366:20-33。
[0064] 27.Muniz-Lozano A,Rollini F,Franchi F,Angiolillo DJ(2013)Update on platelet glycoprotein IIb/IIIa inhibitors:recommendations for clinical practice.Ther Adv Cardiovasc Dis 7:197-213。