一种具有聚集诱导发光效应的纳米材料及其应用

摘要

本发明公开一种具有聚集诱导发光效应的纳米材料，及其在制备治疗癌症药物的应用、在药物载体的应用、在细胞成像的应用、在活体成像的应用。本发明基于纳米材料的聚集诱导发光性质，有效地对肿瘤细胞和组织成像，对化合物的抗肿瘤作用进行探究，发现其具有良好的抗肿瘤活性，可以在有效杀伤癌细胞的同时观察药物去向，从而实现诊断治疗的一体化。本发明原料价廉易得，制备方法简单易行，且制备的产物重复性和稳定性良好，具有广阔的应用前景。

权利要求

1.一种纳米材料在制备抗U87和A375药物中的应用，其特征在于，所述纳米材料由单一的化合物自组装而成，导向基团4-(二苯基氨基)苯基之间产生π-π堆积,所述化合物的化学结构式为：其中X原子为硫原子；R基团为醛基-CHO。

2.一种纳米材料在载药体系的应用，其特征在于，所述纳米材料，经功能化修饰，作为药物载体的组分或骨架，通过吸附或包裹的方式运载药物；

所述纳米材料由单一的化合物自组装而成，导向基团4-(二苯基氨基)苯基之间产生π-π堆积,所述化合物的结构式为：其中X原子为硫原子；R基团为醛基-CHO。

说明书

一种具有聚集诱导发光效应的纳米材料及其应用

技术领域

[0001] 本发明属于纳米材料领域，具体涉及了一种具有聚集诱导发光效应的纳米材料及其应用。

背景技术

[0002] 纳米材料技术是近来新兴的一门技术，纳米粒子容易制造，能装载各种药物，易于修饰。此外，纳米粒子还可以通过设计，增加各种具有生物响应性的功能。但是，纳米载药体系也有缺点，例如大部分纳米粒子不能分散在水溶液中，纳米粒子本身不带荧光，难以检测粒子在生物体内的去向。为了解决复上述问题在，人们合成了三类荧光纳米材料：半导体碳量子点，复合荧光纳米粒子和有机小分子聚合或聚集形成的荧光纳米粒子。

[0003] 半导体碳量子点纳米材料因为结构的缘故，只适合于充当探针，或者作为被包埋的对象负载于复合纳米材料中。复合纳米材料。复合荧光材料骨架和荧光物质可以通过物理方式，如静电力作用、空间位阻、或氢键等结合；也可以通过化学方式，即共价键结合。两者都有自身的缺陷，如通过物理结合的纳米体系容易出现染料泄露，共价键作用力更强，使染料不易泄露性但是共价键连接时，往往需要苛刻的条件才能使反应发生，很容易破坏染料分子的结构或荧光性质。

发明内容

[0004] 本发明的首要目的在于提供一种具有聚集诱导发光效应的纳米材料；另一目的在于提供上述纳米材料的应用。本发明的目的通过以下技术方案实现：

[0005] 一种具有聚集诱导发光效应的纳米材料，所述纳米材料由单一的化合物自组装而成，导向基团4-(二苯基氨基)苯基之间产生π-π堆积,所述化合物的化学结构式为：

[0006]

[0007] 其中X原子为硫原子或硒原子；R基团包括醛基-CHO、羧基 -COOH、氰基-CN，酯基-COOC-、苯环 及上述基团的衍生物。

[0008] 所述的纳米材料作为治疗癌症药物的应用。

[0009] 所述的纳米材料在载药体系的应用，所述纳米材料，经功能化修饰，作为药物载体的组分或骨架，通过吸附或包裹的方式运载药物。

[0010] 所述的纳米材料在细胞成像的应用，所述纳米材料作为荧光探针应用于细胞成像。

[0011] 所述的纳米材料在活体成像的应用，所述纳米材料作为荧光探针应用于活体成像。

[0012] 与现有技术相比，本发明具有以下优点及有益效果：

[0013] (1)本发明合成了一种全新的聚集诱导发光(AIE)效应的纳米材料。材料在血浆，DMEM等可以稳定存在，而在细胞内则可以迅速降解。材料自带荧光，不用修饰其他荧光基团或负载其他荧光分子，组分相对单一，可以有效地减少增加组分对纳米材料结构的影响。

[0014] (2)本发明合成的纳米材料与其他纳米材料相比，可以通过相对简便、贴合实际应用的方法制备。

[0015] (3)合成的纳米材料在生物体内具有明亮的绿色荧光性质，作为细胞成像的工具时，在较低的浓度下即可观察到明显的发光。AIE独特的性质，可以使其有效地避免荧光猝灭现象，使荧光的强度大大提高。

[0016] (4)合成的纳米材料具有可增敏化疗、光动力治疗、免疫治疗等其他药物或方法的抗肿瘤作用。

[0017] (5)本发明所得产物的原料廉价易得，合成和纯化步骤可操作性强，可通过优化工艺，适当扩大合成规模，实现药物的商业化和应用。

附图说明

[0018] 图1为实施例1中纳米材料的聚集诱导发光效应性质光谱图。

[0019] 图2为实施例1中纳米材料透射电子显微镜(TEM)图。

[0020] 图3为实施例1中纳米材料粒度折线图。

[0021] 图4为检测例1纳米材料抗肿瘤活性检测细胞存活率柱状图。

[0022] 图5a-5d为检测例2纳米材料在体外细胞模型的成像检测图。

[0023] 图6为检测例3纳米材料用流式细胞仪检测的U87细胞周期分布图。

[0024] 图7为检测例4纳米材料对U87细胞内ROS的折线图。

[0025] 图8为检测例5纳米材料在胞吞抑制剂处理后的U87细胞与正常细胞的细胞形貌对比图。

[0026] 图9为检测例5纳米材料在胞吞抑制剂处理后的U87细胞与正常细胞的存活率柱状图。

[0027] 图10为检测例7的纳米材料为骨架形成的纳米材料载药前后的A375 细胞存活率柱状图。

具体实施方式

[0028] 本发明用下列实施例来进一步说明本发明，但本发明的实施方式并不限于以下实施例。

[0029] 实施例1

[0030] 化合物1A的合成

[0031]

[0032] 将4-甲酰基苯基硼酸(150mg，1.0mmol)的THF(10mL)溶液加至4-溴-7-[4-(二苯基氨基)苯基]-2,1,3-苯并噻二唑(458mg， 1.0mmol)在甲苯(10mL)和2M碳酸钠水溶液(2mL)的混合溶液中。在常温下将四(三苯基膦)钯(1.73mg，0.0015mmol)加入到反应中，温度升高到100℃回流过夜。反应液冷却至室温，低压旋蒸大部分的甲苯和四氢呋喃溶剂，并用20ml的二氯甲烷萃取三次反应液，合并萃取液并用无水硫酸镁干燥，过滤，旋干。通过层析色谱过柱得到纯净的产物(层析液正己烷：二氯甲烷＝4:1Rf＝0.5)为黄色固体(334mg,产率69％)。

[0033] 1H NMR(CDCl3-d,δppm):10.12(s,1H),8.17(d,2H),8.06(d,2H), 7.90(d,2H),13
7.86(d,1H),7.79(d,1H),7.34-7.27(m,4H),7.25-7.178 (m,6H),7.09(t,2H). C NMR(CDCl3-d,δppm):192.5,154.3,153.6, 148.4,147.4,143.8,137.9,136.2,133.8,132.2,
131.6,131.2,130.4, 130.2,129.7,129.4,127.3,126.8,125.2,123.5,122.8.[0034] 合成纳米材料：取2.5mg上述化合物溶解于1mL DMSO中。超声5分钟使其完全溶解，制备成化合物的储备液。储备液的制备不需要无菌条件。在无菌的条件下，用移液枪移取
616μL储备液加入含牛胎儿血清的DMEM中，超声5min使其分散均匀，用去离子水透析(Mw＝
5000kDa)48小时，除去未成球的粒子，便得到较纯净的纳米材料。样品需无菌储存。

[0035] 纳米材料的表征：通过，荧光光谱仪测量AIE性质(图1)，通过透射电子显微镜(TEM)用于表征样品的形貌(图2)，纳米粒度仪检测样品的稳定性，即尺寸大小。

[0036] 实施例2

[0037] 化合物1B的合成

[0038]

[0039] 将对苯甲酸甲酯基苯硼酸(180mg，1.0mmol)的THF(10mL) 溶液加至4-溴-7-[4-(二苯基氨基)苯基]-2,1,3-苯并噻二唑(458mg， 1.0mmol)在甲苯(10mL)和2M碳酸钠水溶液(2mL)的混合溶液中。在常温下将四(三苯基膦)钯(1.73mg，0.0015mmol)加入到反应中，温度升高到100℃回流过夜。反应液冷却至室温，低压旋蒸大部分的甲苯和四氢呋喃溶剂，并用20ml的二氯甲烷萃取三次反应液，合并萃取液并用无水硫酸镁干燥，过滤，旋干。通过层析色谱过柱得到纯净的产物(层析液正己烷：二氯甲烷＝5:1Rf＝0.6)为淡黄色固体(363mg,产率71％)。

[0040] 1H NMR(CDCl3-d,δppm):8.21(d,2H),8.06(d,2H),7.88(d,2H), 7.84(d,1H),7.78(d,1H),7.74-7.70(m,1H),7.54-7.50(m,1H), 7.34-7.26(m,3H),7.25-7.20(m,5H),7.0813
(t,2H),4.43(q,2H),1.43(t, 3H). C NMR(CDCl3-d,δppm):168.1,154.6,151.3,148.4,
147.4, 143.8,137.9,136.2,133.8,132.2,131.6,131.2,130.4,130.2,129.7, 129.4,
127.3,126.8,125.2,123.5,120.7,60.9,14.1.

[0041] 合成纳米材料：取2.5mg上述化合物溶解于1mL DMSO中。超声5分钟使其完全溶解，制备成化合物的储备液。储备液的制备不需要无菌条件。在无菌的条件下，用移液枪移取616μL储备液加入含牛胎儿血清的DMEM中，超声5min使其分散均匀，用去离子水透析(Mw＝
5000kDa)48小时，除去未成球的粒子，便得到较纯净的纳米材料。样品需无菌储存。

[0042] 纳米材料的表征：通过透射电子显微镜(TEM)用于表征样品的形貌，纳米粒度仪检测样品的稳定性，即尺寸大小。

[0043] 实施例3

[0044] 化合物1C的合成

[0045]

[0046] 将(4-苯甲酸甲酯基-7-[4-(二苯基氨基)苯基]-2,1,3-苯并噻二唑513mg，1.0mmol)的THF(10mL)溶液加至过饱和的氢氧化钠的甲醇溶液，室温反应搅拌过夜，低压旋蒸四氢呋喃和甲醇溶剂，用1 N盐酸调节PH至1，加入10ml的蒸馏水，并用10ml的二氯甲烷萃取三次反应液，合并萃取液并用无水硫酸镁干燥，过滤，旋干。通过层析色谱过柱得到纯净的产物(层析液正己烷：二氯甲烷＝1:2Rf＝0.5)为黄色固体(454mg,产率91％)。

[0047] 1H NMR(CDCl3-d,δppm):13.1(s,1H),8.16(d,2H),8.10(d,2H), 8.07-7.93(m,4H),7.41-7.33(m,4H),7.15-7.09(m,8H).13C NMR (CDCl3-d,δppm):167.6,153.8,153.7,
148.1,147.3,141.5,133.1, 130.9,130.7,130.69,130.6,130.2,130.0,129.64,129.60,
127.8,125.1, 124.1,122.6.

[0048] 合成纳米材料：取2.5mg上述化合物溶解于1mL DMSO中。超声5分钟使其完全溶解，制备成化合物的储备液。储备液的制备不需要无菌条件。在无菌的条件下，用移液枪移取616μL储备液加入含牛胎儿血清的DMEM中，超声5min使其分散均匀，用去离子水透析(Mw＝
5000kDa)48小时，除去未成球的粒子，便得到较纯净的纳米材料。样品需无菌储存。

[0049] 纳米材料的表征：通过透射电子显微镜(TEM)用于表征样品的形貌，纳米粒度仪检测样品的稳定性，即尺寸大小。

[0050] 实施例4

[0051] 化合物1D的合成

[0052]

[0053] 将4-甲酰基苯基硼酸(150mg，1.0mmol)的THF(10mL)溶液加至4-溴-7-[4-(二苯基氨基)苯基]-2,1,3-苯并硒二唑(505mg， 1.0mmol)在甲苯(10mL)和2M碳酸钠水溶液(2mL)的混合溶液中。在常温下将四(三苯基膦)钯(1.73mg，0.0015mmol)加入到反应中，温度升高到100℃回流过夜。反应液冷却至室温，低压旋蒸大部分的甲苯和四氢呋喃溶剂，并用20ml的二氯甲烷萃取三次反应液，合并萃取液并用无水硫酸镁干燥，过滤，旋干。通过层析色谱过柱得到纯净的产物(层析液正己烷：二氯甲烷＝4:1Rf＝0.5)为棕黄色个体(344mg,产率65％)。

[0054] 1H NMR(CDCl3-d,δppm):10.10(s,1H),8.05(m,4H),7.80(d,2H), 7.71(d,1H),7.63(d,1H),7.34-7.25(m,5H),7.23-7.16(m,5H),7.07 (t,2H).13C NMR(CDCl3-d,δppm):
192.1,153.9,153.2,147.6,147.1, 141.8,136.9,135.7,132.8,131.6,130.3,129.2,
129.0,128.8,127.6, 127.3,126.1,125.4,124.1,123.1,120.9.

[0055] 合成纳米材料：取2.5mg上述化合物溶解于1mL DMSO中。超声5分钟使其完全溶解，制备成化合物的储备液。储备液的制备不需要无菌条件。在无菌的条件下，用移液枪移取616μL储备液加入含牛胎儿血清的DMEM中，超声5min使其分散均匀，用去离子水透析(Mw＝
5000kDa)48小时，除去未成球的粒子，便得到较纯净的纳米材料。样品需无菌储存。

[0056] 纳米材料的表征：通过透射电子显微镜(TEM)用于表征样品的形貌，纳米粒度仪检测样品的稳定性，即尺寸大小。

[0057] 检测例1

[0058] 纳米材料的抗肿瘤活性

[0059] 本实验建立了体外肿瘤模型，并通过MTT(噻唑蓝)法检测实施例1中纳米材料的抗肿瘤活性。

[0060] 肿瘤模型建立：实验所使用的细胞为：脑星形胶质母细胞瘤细胞(U87)、人脑胶质细胞(CHEM-5)、人恶性黑色素瘤细胞(A375)，在37℃细胞培养箱中培养细胞至对数生长期，经0.25％胰酶(含 0.02％EDTA)消化，计数后，以接种到96孔板中，每孔接种2000 个细胞，培养基体积为100μL。置于培养箱中24h，待细胞贴壁。

[0061] 活性检测：每孔加入用培养基稀释的不同浓度的药物各100μl，每个药物浓度均分三组平行。对照组加入100μL DMEM培养基。每个处理至少铺3个复孔，细胞置于37℃，5％CO2培养24h。细胞经药物作用处理72h后，每孔加入30μl MTT孵育3.5h后抽去每个孔的上清，并再次向每个孔加入150μl DMSO，振荡摇匀10 min，最后，在多功能酶标仪上测定读取570nm处的吸光值，并作图4计算不同细胞不同药物处理组的存活率。

[0062] 细胞的存活率按以下公式计算：存活率＝处理组吸光值/对照组吸光值×100％。

[0063] 结果表明，在药物作用于细胞72小时后，在高浓度下药物显著地抑制了U87和A375的生长，与其相比，正常细胞CHEM-5 的细胞存活率显著高于A375和U87，显示出药物具有一定选择性 (详见图4)。

[0064] 检测例2

[0065] 纳米材料影响肿瘤细胞周期的检测

[0066] 本实验建立了体外肿瘤模型，通过流式细胞术来检测评价实施例1中纳米材料影响肿瘤细胞周期能力。

[0067] 肿瘤模型建立：实验用到的细胞为脑星形胶质母细胞瘤细胞 (U87)、人脑胶质细胞(CHEM-5)、人恶性黑色素瘤细胞(A375)，在37℃细胞培养箱中培养细胞至对数生长期，经0.25％胰酶(含 0.02％EDTA)消化，计数后，接种在6cm培养皿中。接种细胞密度为2×104/ml，培养24h待细胞呈对数生长。

[0068] 细胞损伤检测检测：在药物处理组加入8、16、32μM纳米材料。24h后用0.25％胰酶(含0.02％(m/v)EDTA)将细胞消化，再用PBS洗涤培养皿3次，收集到全部细胞于15ml离心管。用离心机1500r/min离心5min收集细胞。每管用4ml冷冻的70％乙醇重悬，于4℃冰箱中放置固定过夜。第二天用离心机1500r/min离心5min，倒掉上清并用PBS洗涤一次，再次离心收集细胞，最后每管加入500μl 50ug/ml PI(碘化丙啶，购于Sigma公司)染液同时将细胞轻轻吹打分散，然后避光孵育1小时，随后细胞经400目网筛过滤，再Beckman流式细胞仪检测分析染色细胞。每个样品最少收集10000个细胞。最后用MultiCycle软件分析细胞周期各阶段的比例，以DNA含量来反映G0/G1、S、G2/M期细胞数量的比值，亚二倍体Sub-G1峰来表示凋亡细胞比例。

[0069] 实验结果如图5a-5d所示，经低浓度(4μM)的药物处理24h后，细胞周期未发生显著变化。而高浓度的变化很明显，Sub-G1峰从对照组的2.6％上升到处理组的59.1％。Sub-G1峰是细胞凋亡的标志， Sub-G1峰的出现说明了细胞中的DNA发生了断裂，证明纳米材料能诱发细胞DNA损伤，进而杀伤细胞。

[0070] 检测例3

[0071] 纳米材料在肿瘤细胞中的成像能力的检测

[0072] 本实验通过荧光显微镜检测实施例1中纳米材料在细胞中成像能力及成像的位置位置。

[0073] 肿瘤细胞模型建立：U87细胞以5×104cells/mL的密度接种于2 cm培养皿中，加入尼罗红红色荧光探针(5μg/mL)以标记脂滴， DAPI(0.1μg/mL)标记细胞核。去掉培养基，用PBS清洗细胞3 次以去除游离于细胞外的染液。在荧光显微镜下采集荧光信号。脂滴被尼罗红标记而发红色荧光，细胞核被DAPI标记而发蓝色荧光。

[0074] 成像能力检测：加入16μM的纳米材料孵育8小时。在荧光显微镜下采集荧光信号。每隔一定时间采集信号。

[0075] 实验结果(图6)表明，纳米材料在1小时内高效进入肿瘤细胞内，然后逐渐定位在脂滴中，说明了纳米材料进入细胞后主要定位在脂滴中。在这个过程中，绿色荧光并没有与蓝色荧光重叠，证明其进入细胞的作用范围并不包括细胞核。另外，实验发现，在两小时后，细胞中出现了亮度很高的斑点。通过细胞外实验可以证明，浓度越大纳米材料的发光强度越强。此现象可以说明药物在脂滴中实现了富集。随着时间的增加，斑点的数量不断增加，斑点的亮度也不断加强，药物在细胞内累积的量越来越多，成像能力液越来越强。

[0076] 检测例4

[0077] 纳米材料对肿瘤细胞活性氧(ROS)的影响

[0078] 本实验检测实施例1中纳米材料改变肿瘤细胞中ROS数量的能力。

[0079] 模型建立：U87细胞2×104/ml密度接种于96孔板，每孔100μl。待细胞贴壁后，加入DHE探针与细胞共培养2小时。

[0080] 活性氧(ROS)检测：将多余的DHE吸走，加入纳米材料，并于多功能酶标仪中以488nm波长激发，检测525nm波长的荧光强度。结果如图7所示，纳米材料后，细胞内ROS显著上升。ROS 过量产生导致细胞DNA损伤从而引起细胞凋亡。因此本例证明了纳米材料改变细胞内ROS的能力。

[0081] 检测例5

[0082] 纳米材料进入细胞的机制检测

[0083] 本实验探究了实施例1中纳米材料进入细胞的机制，用不同的胞吞抑制剂NaN3/DOG(抑制依赖ATP的主动运输过程)，Dynasore(抑制肌动蛋白介导的胞吞过程)，Nystatin(抑制Cavelin-1 活性，影响小窝蛋白介导的胞吞过程)和Sucrose(抑制网格蛋白介导的胞吞过程)，及4℃低温处理U87细胞，再比较抑制剂处理前后吸收效率比较，以及抑制处理前后的细胞存活率变化，结果如图8、图9所示，4℃低温以及NaN3预处理明显抑制细胞对纳米材料的吸收效率，说明纳米材料通过主动运输的方式进入细胞。对比发现， Dynasore与其他胞吞抑制剂相比，更能有效地抑制药物进细胞的吸收率。说明肌动蛋白介导的胞吞作用是纳米材料进入蛋白质的最主要方式。

[0084] 在16μg/L药物浓度下，将细胞用胞吞抑制剂处理2小时后再加入药物。实验结果对比发现，经4种胞吞抑制剂处理的细胞状态明显好于未加药物的空白对照。未添加胞吞抑制的细胞已呈病态的球形，而经胞吞抑制处理的细胞大都呈现出正常的状态。无论在10X 镜头还是在100X镜头中，经NaN3/DOG和Dynasore处理的荧光强度明显弱于对照组。因此可以证明纳米材料是通过细胞胞吞药物产生的现象。

[0085] 检测例6

[0086] 纳米材料在DMEM及血浆中的稳定性

[0087] 本实验检测对实施例1中纳米材料在人血清和DMEM中的粒径进行长时间监测。

[0088] 检测方法：将纳米材料加入PBS、DMEM培养基、人血浆中，检测粒径的变化情况。

[0089] 纳米粒子在人血浆和培养基的稳定性对纳米粒子是一个重要的指标，粒子的稳定性越高，在生物体环境内越稳定，纳米粒子内负载的药物越不会提前释放，从而降低非目标区域的药物浓度，降低药物的毒副作用。实验结果表明，在72小时的实验时间内，人血清和水中的粒径保持在130纳米以下，证明了本纳米体系能在血液环境中和 DMEM环境中保持良好的稳定性。具有良好的应用前景。

[0090] 检测例7

[0091] 纳米材料载药体系的制备及其性能评价

[0092] 纳米载药体系的制备：

[0093] 纳米载药体系是在纳米材料制备的方法上改进的。与纳米骨架对比，对溶剂的要求有所提高，将纳米材料与需要负载的药物溶解在DMSO中，然后将药物滴加到含有牛胎儿血清的培养基中共沉淀形成纳米球。牛胎儿血清中的蛋白及氨基酸组分能增加纳米体系的稳定性。

[0094] 载药体系性能评价的模型建立方法与检测方法与之前例子一致。

[0095] 实验结果(图10)表明，作用于细胞72小时后，负载了RUPOP 的纳米态药物效果显著高于单独的药物、单独的RuPOP、纳米态的药物与未包裹的RuPOP，证明了我们的药物可以很好地负载药物。

[0096] 本发明的实施方式不限于此，按照本发明的上述内容，利用本领域的普通技术知识和惯用手段，在不脱离本发明上述基本技术思想前提下，本发明还可以做出其它多种形式的修改、替换或变更，均落在本发明权利保护范围之内。