一种大曲中土味素的抑制方法

摘要

本发明公开了一种大曲中土味素的抑制方法，属于微生物技术领域。本发明通过在大曲中添加含有地衣芽孢杆菌(Bacillus licheniformis)、短小芽孢杆菌(Bacillus pumilus)、酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)以及短乳杆菌(Lactobacillus breris)的微生物菌剂，抑制了大曲中可产土臭素的微生物，大大减少了大曲中土味素的含量，使得添加了本发明微生物菌剂获得的大曲中土味素的含量低至3.4μg/kg，与未添加本发明微生物菌剂获得的大曲相比，平均下降了70％左右，下降幅度明显。

权利要求

1.一种能够抑制土味素形成的微生物菌剂，其特征在于，所述微生物菌剂由地衣芽孢杆菌（Bacillus licheniformis）、短小芽孢杆菌（Bacillus pumilus）、酿酒酵母（Saccharomyces cerevisiae）以及短乳杆菌（Lactobacillus breris）组成；所述地衣芽孢杆菌是地衣芽孢杆菌CGMCC No：3963；所述短小芽孢杆菌是短小芽孢杆菌CCTCC No：M2013372；所述酿酒酵母是酿酒酵母CGMCC No：4747；所述短乳杆菌是短乳杆菌CGMCC No：

14385；所述微生物菌剂中，地衣芽孢杆菌、短小芽孢杆菌、酿酒酵母以及短乳杆菌的活菌比为1:1:0.5:0.01。

2.如权利要求1所述的一种能够抑制土味素形成的微生物菌剂，其特征在于，所述微生物菌剂的制备方法为将地衣芽孢杆菌、短小芽孢杆菌、酿酒酵母以及短乳杆菌分别进行培养，得到地衣芽孢杆菌、短小芽孢杆菌、酿酒酵母以及短乳杆菌的菌液；将地衣芽孢杆菌、短小芽孢杆菌、酿酒酵母以及短乳杆菌的菌液分别离心，得到地衣芽孢杆菌、短小芽孢杆菌、酿酒酵母以及短乳杆菌的菌体；将地衣芽孢杆菌、短小芽孢杆菌、酿酒酵母以及短乳杆菌的菌体混合后重悬于保护剂中，得到微生物菌剂；所述保护剂包含100 g/L的脱脂奶粉、30 mL/L的甘油、100 g/L的麦芽糊精、150 g/L的海藻糖以及10 g/L的L-谷氨酸钠。

3.如权利要求2所述的一种能够抑制土味素形成的微生物菌剂，其特征在于，所述地衣芽孢杆菌的培养为挑取地衣芽孢杆菌单菌落接种于培养基中于37℃、220 r/min的条件下培养18 24h；所述培养基的成分包含牛肉膏3 g/L、蛋白胨5 g/L、葡萄糖2.5 g/L以及氯化~钠5 g/L。

4.如权利要求2或3所述的一种能够抑制土味素形成的微生物菌剂，其特征在于，所述短小芽孢杆菌的培养为挑取短小芽孢杆菌单菌落接种于培养基中于37℃、220 r/min的条件下培养18 24h；所述培养基的成分包含牛肉膏3 g/L、蛋白胨5 g/L、葡萄糖2.5 g/L以及~氯化钠5 g/L。

5.如权利要求2或3所述的一种能够抑制土味素形成的微生物菌剂，其特征在于，所述酿酒酵母的培养为挑取酿酒酵母单菌落接种于培养基中于30℃、150 r/min的条件下培养

18 24h；所述培养基的成分包含蛋白胨10 g/L、蔗糖10 g/L、磷酸二氢钾3 g/L、七水硫酸镁~

5 g/L。

6.如权利要求4所述的一种能够抑制土味素形成的微生物菌剂，其特征在于，所述酿酒酵母的培养为挑取酿酒酵母单菌落接种于培养基中于30℃、150 r/min的条件下培养18~

24h；所述培养基的成分包含蛋白胨10 g/L、蔗糖10 g/L、磷酸二氢钾3 g/L、七水硫酸镁5 g/L。

7.一种大曲中土味素的抑制方法，其特征在于，所述方法为使用权利要求1-6任一所述的一种能够抑制土味素形成的微生物菌剂，将权利要求1-6任一所述的一种能够抑制土味素形成的微生物菌剂添加入大曲中。

8.如权利要求7所述的一种大曲中土味素的抑制方法，其特征在于，所述权利要求1-6任一所述的一种能够抑制土味素形成的微生物菌剂在大曲中的添加量占大曲总体积的3~

10%。

9.权利要求1-6任一所述的一种能够抑制土味素形成的微生物菌剂，或权利要7或8所述的一种大曲中土味素的抑制方法在酿酒以及制曲方面的应用。

说明书

一种大曲中土味素的抑制方法

技术领域

[0001] 本发明涉及一种大曲中土味素的抑制方法，属于微生物技术领域。

背景技术

[0002] 白酒是我国特有的一种蒸馏酒，并深得消费者喜爱。其独特的开放式多菌种固态发酵以及固态蒸馏模式赋予白酒独特的香味。但是，白酒中的土臭味使白酒的香气和质量大打折扣，优级品率降低，白酒生产企业每年因此而蒙受多达上亿元的巨大经济损失。

[0003] 现有的包括物理吸附在内的技术手段，虽然能够在一定程度上去除大曲中的土臭味，但此方法不仅耗时费力成本高，且能够同时非特异性地吸附有益香气成分，对白酒的香气和质量带来负面影响。因此，这种方法有重大缺陷且难以大规模应用。

[0004] 已有研究表明，土臭素是白酒中土臭味的化学来源，酿酒大曲中的链霉菌是土臭素的主要产生菌。通过一定手段去除大曲中产土臭素的链霉菌应该是根除白酒中土臭味的基本方法。

[0005] 但是，通过添加化学合成类抗生素来去除大曲中的链霉菌进而防止土臭味产生的方法并不能应用于实际生产过程。这是因为添加抗生素一方面造成食品安全上的巨大风险，另一方面抗生素也能破坏大曲中的有益产酒产香功能微生物的微生态结构，进而影响白酒的香气和质量。因而，急需找到一种能够抑制大曲中土味素形成的方法。

发明内容

[0006] [技术问题]

[0007] 本发明要解决的技术问题是提供一种大曲中土味素的抑制方法。

[0008] [技术方案]

[0009] 为解决上述问题，本发明提供了一种能够抑制土味素形成的微生物菌剂，所述微生物菌剂中含有地衣芽孢杆菌(Bacillus licheniformis)、短小芽孢杆菌(Bacillus pumilus)、酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)以及短乳杆菌(Lactobacillus breris)。

[0010] 在本发明的一种实施方式中，所述地衣芽孢杆菌(Bacillus licheniformis)是地衣芽孢杆菌(Bacillus licheniformis)CGMCC No：3963；所述短小芽孢杆菌(Bacillus pumilus)是短小芽孢杆菌(Bacillus pumilus)CCTCC No：M2013372；所述酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)是酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)CGMCC No：4747；所述短乳杆菌(Lactobacillus breris)是短乳杆菌(Lactobacillus breris)CGMCC No：
14385。所述地衣芽孢杆菌(Bacillus licheniformis)CGMCC No：3963记载于公开号为CN104087526A的专利申请文本中。所述短小芽孢杆菌(Bacillus pumilus)CCTCC No：
M2013372记载于公开号为CN104004693A的专利申请文本中。所述酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)CGMCC No：4747记载于公开号为CN102766586A的专利申请文本中。所述短乳杆菌(Lactobacillus breris)是短乳杆菌(Lactobacillus breris)CGMCC No：14385记载于公开号为CN108034599A的专利申请文本中。

[0011] 在本发明的一种实施方式中，所述微生物菌剂中地衣芽孢杆菌(Bacillus licheniformis)、短小芽孢杆菌(Bacillus pumilus)、酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)以及短乳杆菌(Lactobacillus breris)的含菌量分别为(1×106～1×1010)CFU/mL、(1×106～1×1010)CFU/mL、(1×105～1×108)CFU/mL、(1×105～1×107)CFU/mL。

[0012] 在本发明的一种实施方式中，所述微生物菌剂的制备方法为将地衣芽孢杆菌(Bacillus  licheniformis)、短小芽孢杆菌(Bacillus pumilus)、酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)以及短乳杆菌(Lactobacillus breris)分别进行培养，得到地衣芽孢杆菌(Bacillus licheniformis)、短小芽孢杆菌(Bacillus pumilus)、酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)以及短乳杆菌(Lactobacillus breris)的菌液；将地衣芽孢杆菌(Bacillus licheniformis)、短小芽孢杆菌(Bacillus pumilus)、酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)以及短乳杆菌(Lactobacillus breris)的菌液分别离心，得到地衣芽孢杆菌(Bacillus licheniformis)、短小芽孢杆菌(Bacillus pumilus)、酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)以及短乳杆菌(Lactobacillus breris)的菌体；将地衣芽孢杆菌(Bacillus licheniformis)、短小芽孢杆菌(Bacillus pumilus)、酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)以及短乳杆菌(Lactobacillus breris)的菌体混合后重悬于保护剂中，得到微生物菌剂；所述保护剂包含100g/L的脱脂奶粉、30mL/L的甘油、100g/L的麦芽糊精、150g/L的海藻糖以及10g/L的L-谷氨酸钠。

[0013] 在本发明的一种实施方式中，所述地衣芽孢杆菌(Bacillus licheniformis)的培养为挑取地衣芽孢杆菌(Bacillus licheniformis)单菌落接种于培养基中于37℃、220r/min的条件下培养18～24h；所述培养基的成分包含牛肉膏3g/L、蛋白胨5g/L、葡萄糖2.5g/L以及氯化钠5g/L。

[0014] 在本发明的一种实施方式中，所述短小芽孢杆菌(Bacillus pumilus)的培养为挑取短小芽孢杆菌(Bacillus pumilus)单菌落接种于培养基中于37℃、220r/min的条件下培养18～24h；所述培养基的成分包含牛肉膏3g/L、蛋白胨5g/L、葡萄糖2.5g/L以及氯化钠5g/L。

[0015] 在本发明的一种实施方式中，所述酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)的培养为挑取酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)单菌落接种于培养基中于30℃、150r/min的条件下培养18～24h；所述培养基的成分包含蛋白胨10g/L、蔗糖10g/L、磷酸二氢钾3g/L、七水硫酸镁5g/L。

[0016] 在本发明的一种实施方式中，所述短乳杆菌(Lactobacillus breris)的培养为挑取短乳杆菌(Lactobacillus breris)单菌落接种于培养基中于37℃厌氧培养18～24h；所述培养基的成分包含葡萄糖20g/L、蛋白胨10g/L、牛肉膏10g/L、酵母粉5g/L、乙酸钠5g/L、磷酸二氢钾2g/L、柠檬酸氢二铵2g/L、硫酸镁0.58g/L、硫酸锰0.19g/L以及吐温-80 1mL/L。

[0017] 本发明还提供了一种大曲中土味素的抑制方法，所述方法为使用上述一种能够抑制土味素形成的微生物菌剂，将上述一种能够抑制土味素形成的微生物菌剂添加入大曲中。

[0018] 在本发明的一种实施方式中，上述一种能够抑制土味素形成的微生物菌剂在大曲中的添加量占大曲总体积的3～10％。

[0019] 本发明还提供了上述一种能够抑制土味素形成的微生物菌剂或上述一种大曲中土味素的抑制方法在酿酒以及制曲方面的应用。

[0020] [有益效果]

[0021] 本发明通过在大曲中添加含有地衣芽孢杆菌(Bacillus licheniformis)、短小芽孢杆菌(Bacillus pumilus)、酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)以及短乳杆菌(Lactobacillus breris)的微生物菌剂，抑制了大曲中可产土臭素的微生物，大大减少了大曲中土味素的含量，使得添加了本发明微生物菌剂获得的大曲中土味素的含量低至3.4μg/kg，与未添加本发明微生物菌剂获得的大曲相比，平均下降了70％左右，下降幅度明显。

具体实施方式

[0022] 下面结合具体实施例对本发明进行进一步的阐述。

[0023] 下述实施例中涉及的地衣芽孢杆菌(Bacillus licheniformis)CGMCC No：3963、酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)CGMCC No：4747、短乳杆菌(Lactobacillus breris)CGMCC No：14385以及白色链霉菌(Streptomyces albus)CGMCC No：4206均来自中国普通微生物菌种保藏管理中心(China General Microbiological Culture Collection Center,CGMCC)，短小芽孢杆菌(Bacillus pumilus)CCTCC No：M2013372、解淀粉芽孢杆菌(Bacillus amyloliquefaciens)CCTCC No：M2013368、枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)CCTCC No：M2013373均来自中国典型培养物保藏中心(China Center for Type Culture Collection,CCTCC)；其中，地衣芽孢杆菌(Bacillus licheniformis)CGMCC No：3963记载于公开号为CN104087526A的专利申请文本中，短小芽孢杆菌(Bacillus pumilus)CCTCC No：M2013372记载于公开号为CN104004693A的专利申请文本中，酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)CGMCC No：4747记载于公开号为CN102766586A的专利申请文本中，短乳杆菌(Lactobacillus breris)是短乳杆菌(Lactobacillus breris)CGMCC No：14385记载于公开号为CN108034599A的专利申请文本中，枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)CCTCC No：M2013373记载于公开号为CN104004692A的专利申请文本中，解淀粉芽孢杆菌(Bacillus amyloliquefaciens)CCTCC No：M2013368记载于公开号为CN104073453A的专利申请文本中，白色链霉菌(Streptomyces albus)CGMCC No：4206记载于公开号为CN102181392A的专利申请文本中(上述菌株均已保藏，不需要再次进行用于专利程序的保藏)。

[0024] 下述实施例中涉及的培养基如下：

[0025] 用于培养芽孢杆菌(Bacillus)的培养基的成分包含牛肉膏3g/L、蛋白胨5g/L、葡萄糖2.5g/L以及氯化钠5g/L。

[0026] 用于培养酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)的培养基的成分包含蛋白胨10g/L、蔗糖10g/L、磷酸二氢钾3g/L、七水硫酸镁5g/L。

[0027] 用于培养短乳杆菌(Lactobacillus breris)的培养基的成分包含葡萄糖20g/L、蛋白胨10g/L、牛肉膏10g/L、酵母粉5g/L、乙酸钠5g/L、磷酸二氢钾2g/L、柠檬酸氢二铵2g/L、硫酸镁0.58g/L、硫酸锰0.19g/L以及吐温-80 1mL/L。

[0028] PDA培养基：马铃薯200g/L、葡萄糖20g/L以及琼脂20g/L。

[0029] 下述实施例中涉及的检测方法如下：

[0030] 土味素含量的检测方法：

[0031] 土味素含量的检测方法记载于文献“杜海.中国白酒中一种土霉味物质的发现及其成因研究.江南大学,2009.”的第3.3节中。

[0032] 实施例1

[0033] 具体步骤如下：

[0034] (1)挑取地衣芽孢杆菌(Bacillus licheniformis)CGMCC No：3963单菌落接种于培养基中于37℃、220r/min的条件下培养20h，得到地衣芽孢杆菌(Bacillus licheniformis)CGMCC No：3963菌液；将地衣芽孢杆菌(Bacillus licheniformis)CGMCC 8
No：3963菌液离心后重悬于含有100g/L脱脂奶粉的保护剂中至菌浓度为1×10CFU/mL，得到地衣芽孢杆菌(Bacillus licheniformis)CGMCC No：3963菌悬液；

[0035] 挑取短小芽孢杆菌(Bacillus pumilus)CCTCC No：M2013372单菌落接种于培养基中于37℃、220r/min的条件下培养20h，得到短小芽孢杆菌(Bacillus pumilus)CCTCC No：M2013372菌液；将短小芽孢杆菌(Bacillus pumilus)CCTCC No：M2013372菌液离心后重悬于含有100g/L脱脂奶粉的保护剂中至菌浓度为1×108CFU/mL，得到短小芽孢杆菌(Bacillus pumilus)CCTCC No：M2013372菌悬液；

[0036] 挑取枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)CCTCC No：M2013373单菌落接种于培养基中于37℃、220r/min的条件下培养20h，得到枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)CCTCC No：M2013373菌液；将枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)CCTCC No：M2013373菌液离心后重悬于含有100g/L脱脂奶粉的保护剂中至菌浓度为1×108CFU/mL，得到枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)CCTCC No：M2013373菌悬液；

[0037] 挑取解淀粉芽孢杆菌(Bacillus amyloliquefaciens)CCTCC No：M2013368单菌落接种于培养基中于37℃、220r/min的条件下培养20h，得到解淀粉芽孢杆菌(Bacillus amyloliquefaciens)CCTCC No：M2013368菌液；将解淀粉芽孢杆菌(Bacillus amyloliquefaciens)CCTCC No：M2013368菌液离心后重悬于含有100g/L脱脂奶粉的保护剂中至菌浓度为1×108CFU/mL，得到解淀粉芽孢杆菌(Bacillus amyloliquefaciens)CCTCC No：M2013368菌悬液；

[0038] 挑取酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)CGMCC No：4747单菌落接种于培养基中于30℃、150r/min的条件下培养24h，得到酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)CGMCC No：4747菌液；将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)CGMCC No：4747菌液离心后重悬于含有100g/L脱脂奶粉的保护剂中至菌浓度为1×108CFU/mL，得到酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)CGMCC No：4747菌悬液；

[0039] 挑取短乳杆菌(Lactobacillus breris)CGMCC No：14385单菌落接种于培养基中于37℃厌氧培养18h，得到短乳杆菌(Lactobacillus breris)CGMCC No：14385菌液；将短乳杆菌(Lactobacillus breris)CGMCC No：14385菌液离心后重悬于含有100g/L脱脂奶粉的保护剂中至菌浓度为1×108CFU/mL，得到短乳杆菌(Lactobacillus breris)CGMCC No：14385菌悬液；

[0040] (2)将步骤(1)得到的菌悬液按照不同的方案进行混合，得到微生物菌剂，方案如下：

[0041] 方案一：将地衣芽孢杆菌(Bacillus licheniformis)CGMCC No：3963菌悬液与短小芽孢杆菌(Bacillus pumilus)CCTCC No：M2013372菌悬液按照体积比1:1进行混合，得到微生物菌剂A；

[0042] 方案二：将地衣芽孢杆菌(Bacillus licheniformis)CGMCC No：3963菌悬液、短小芽孢杆菌(Bacillus pumilus)CCTCC No：M2013372菌悬液以及酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)CGMCC No：4747菌悬液按照体积比1:1:0.5进行混合，得到微生物菌剂B；

[0043] 方案三：将地衣芽孢杆菌(Bacillus licheniformis)CGMCC No：3963菌悬液、短小芽孢杆菌(Bacillus pumilus)CCTCC No：M2013372菌悬液以及短乳杆菌(Lactobacillus breris)CGMCC No：14385菌悬液按照体积比1:1:0.01进行混合，得到微生物菌剂C；

[0044] 方案四：将地衣芽孢杆菌(Bacillus licheniformis)CGMCC No：3963菌悬液、短小芽孢杆菌(Bacillus pumilus)CCTCC No：M2013372菌悬液、酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)CGMCC No：4747菌悬液以及短乳杆菌(Lactobacillus breris)CGMCC No：14385菌悬液按照体积比1:1:0.5:0.01进行混合，得到微生物菌剂D；

[0045] 方案五：将地衣芽孢杆菌(Bacillus licheniformis)CGMCC No：3963菌悬液、短小芽孢杆菌(Bacillus pumilus)CCTCC No：M2013372菌悬液、酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)CGMCC No：4747菌悬液以及短乳杆菌(Lactobacillus breris)CGMCC No：14385菌悬液按照体积比1:1:1:0.5进行混合，得到微生物菌剂E；

[0046] 方案六：将枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)CCTCC No：M2013373菌悬液以及解淀粉芽孢杆菌(Bacillus amyloliquefaciens)CCTCC No：M2013368菌悬液按照体积比1:1进行混合，得到微生物菌剂F；

[0047] 方案七：将枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)CCTCC No：M2013373菌悬液、解淀粉芽孢杆菌(Bacillus amyloliquefaciens)CCTCC No：M2013368菌悬液、酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)CGMCC No：4747菌悬液以及短乳杆菌(Lactobacillus breris)CGMCC No：14385菌悬液按照体积比1:1:0.5:0.01进行混合，得到微生物菌剂G；

[0048] 方案八：将枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)CCTCC No：M2013373菌悬液、短小芽孢杆菌(Bacillus pumilus)CCTCC No：M2013372菌悬液、酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)CGMCC No：4747菌悬液以及短乳杆菌(Lactobacillus breris)CGMCC No：14385菌悬液按照体积比1:1:0.5:0.01进行混合，得到微生物菌剂H；

[0049] 方案九：将解淀粉芽孢杆菌(Bacillus amyloliquefaciens)CCTCC No：M2013368菌悬液、短小芽孢杆菌(Bacillus pumilus)CCTCC No：M2013372菌悬液、酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)CGMCC No：4747菌悬液以及短乳杆菌(Lactobacillus breris)CGMCC No：14385菌悬液按照体积比1:1:0.5:0.01进行混合，得到微生物菌剂I；

[0050] 方案十：将地衣芽孢杆菌(Bacillus licheniformis)CGMCC No：3963菌悬液、枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)CCTCC No：M2013373菌悬液、酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)CGMCC No：4747菌悬液以及短乳杆菌(Lactobacillus breris)CGMCC No：14385菌悬液按照体积比1:1:0.5:0.01进行混合，得到微生物菌剂J；

[0051] 方案十一：将地衣芽孢杆菌(Bacillus licheniformis)CGMCC No：3963菌悬液、解淀粉芽孢杆菌(Bacillus amyloliquefaciens)CCTCC No：M2013368菌悬液、酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)CGMCC No：4747菌悬液以及短乳杆菌(Lactobacillus breris)CGMCC No：14385菌悬液按照体积比1:1:0.5:0.01进行混合，得到微生物菌剂K；

[0052] (3)将白色链霉菌(Streptomyces albus)CGMCC No：4206涂布于PDA培养基上于30℃培养48h，将孢子从PDA培养基表面轻轻刮于无菌生理盐水中至孢子浓度为1×108CFU/mL(血球计数板计数)，得到孢子悬液；

[0053] (4)取30g传统中温大曲原料，将水与步骤(3)得到的孢子悬液与传统中温大曲原料混合，使得曲块含水量为43％、含菌量为1×108CFU/kg，得到试验曲块；

[0054] (5)以不添加微生物菌剂的试验曲块为空白对照(记为试验曲块L)，分别将步骤(2)得到的微生物菌剂A～L以3％的接种量接种至试验曲块中，得到试验曲块A～L；

[0055] (6)将试验曲块A～L分别放入平皿中，置于培养箱进行模拟传统中温大曲培养过程，适时调节温度及湿度，培养30d。

[0056] 30d后，检测试验曲块A～L中的土味素含量，检测结果为：试验曲块L中的土味素含量为15.2μg/kg、试验曲块A中的土味素含量为8.7μg/kg、试验曲块B中的土味素含量为6.9μg/kg、试验曲块C中的土味素含量为6.1μg/kg、试验曲块D中的土味素含量为3.4μg/kg、试验曲块E中的土味素含量为7.3μg/kg、试验曲块F中的土味素含量为9.4μg/kg、试验曲块G中的土味素含量为7.9μg/kg、试验曲块H中的土味素含量为7.0μg/kg、试验曲块I中的土味素含量为9.5μg/kg、试验曲块J中的土味素含量为7.2μg/kg、试验曲块K中的土味素含量为6.2μg/kg。

[0057] 虽然本发明已以较佳实施例公开如上，但其并非用以限定本发明，任何熟悉此技术的人，在不脱离本发明的精神和范围内，都可做各种的改动与修饰，因此本发明的保护范围应该以权利要求书所界定的为准。