一种水溶性硫醇化壳聚糖的制备方法和应用转让专利
申请号 : CN201910321066.3
文献号 : CN109988255B
文献日 : 2021-03-30
发明人 : 王彦卿 , 罗强 , 孙世新 , 王莹 , 张红梅 , 费正皓
申请人 : 盐城师范学院
摘要 :
权利要求 :
1.一种水溶性硫醇化壳聚糖的制备方法,其特征在于:反应方程式如式I所示: 式I在一定质量浓度的醋酸水溶液100 mL中加入一定质量的壳聚糖,在不同的催化剂作用下,缓慢滴加一定质量的1‑巯甲基环丙基乙酸/二甲基亚砜溶液20 mL,用物质的量浓度为
0.1 mol/L的氢氧化钠溶液调节pH值,在一定温度下反应一段时间,将混合液装入透析袋中透析,冷冻干燥后得到水溶性硫醇化壳聚糖。
2.根据权利要求1所述的一种水溶性硫醇化壳聚糖的制备方法,其特征在于:所述醋酸水溶液的质量浓度为0.3 0.5%。
~
3.根据权利要求1所述的一种水溶性硫醇化壳聚糖的制备方法,其特征在于:所述壳聚糖和醋酸的质量浓度为0.8 g/100 mL 1.2 g/100 mL。
~
4.根据权利要求1所述的一种水溶性硫醇化壳聚糖的制备方法,其特征在于:用作催化剂的有1‑乙基‑(3‑二甲基氨基丙基)碳二亚胺盐酸盐(EDC•HCl),N‑羟基琥珀酰亚胺(NHS)和二环己基碳二亚胺(DCC),1‑巯甲基环丙基乙酸、EDC•HCl和NHS的质量比为1: 1.2: (0.3
0.5)。
~
5.根据权利要求1所述的一种水溶性硫醇化壳聚糖的制备方法,其特征在于:壳聚糖和
1‑巯甲基环丙基乙酸的质量比为(0.8 1.2):1。
~
6.根据权利要求1所述的一种水溶性硫醇化壳聚糖的制备方法,其特征在于:使用0.1 mol/L的NaOH调节pH至4.5 5.5。
~
7.根据权利要求1所述的一种水溶性硫醇化壳聚糖的制备方法,其特征在于:所述反应温度为20‑80 ℃。
8.根据权利要求1所述的一种水溶性硫醇化壳聚糖的制备方法,其特征在于:所述反应时间为10‑16 h。
说明书 :
一种水溶性硫醇化壳聚糖的制备方法和应用
技术领域
背景技术
基,可以进行如酰胺化、羧基化、醚化、烷基化、酯化等反应,壳聚糖具有良好的生物相容性、
可降解性、及低毒性,被广泛应用于水处理、食品、化妆品、医药保健等方面(Food
chemistry,2018, 254, 217, Journal of Agriculture and Food Chemistry, 2013,
61, 6574),然而壳聚糖结构规整、难溶于水、部分结晶、强烈的分子内氢键导致分子量大于
5000的壳聚糖难溶于水,只能溶解于稀酸溶液中,极大限制了其在各个领域的应用。
Biointerfaces, 2018, 172, 338),目前,壳聚糖作为抗菌剂已经在国内外得到了广泛应
用,但是主要是将壳聚糖与生物制剂或重金属螯合形成复合抗菌剂,水溶性和稳定性差,壳
聚糖的结晶结构被破坏,制备成本高,过程污染大,不能满足当今绿色无毒抗菌剂的要求,
而且大部分结构改性的壳聚糖比表面积较小,无规则的微观结构,很难作为药物载体应用,
因此如何利用壳聚糖广谱的抗菌活性,进行功能化的修饰,制备水溶性和稳定性好的壳聚
糖促进其在药物化学领域中的应用是亟待解决的问题,硫醇化壳聚糖是一种重要的阳离子
硫醇聚合物,水溶性较好,是壳聚糖化学改性的一个研究热点(Journal of Controlled
Release, 2014, 190),硫醇化壳聚糖具有良好的生物学特征,可以在体内被完全降解,且
毒副作用较小,这些原因使得硫醇化壳聚糖在生物医药领域有良好的应用前景。
发明内容
万),在不同的催化剂作用下,缓慢滴加一定质量的1‑巯甲基环丙基乙酸/二甲基亚砜溶液
20 mL,用物质的量浓度为0.1 mol/L的氢氧化钠溶液调节pH值,在一定温度下反应一段时
间,将混合液装入透析袋中透析,冷冻干燥后得到水溶性硫醇化壳聚糖。
为1.0 g/100 mL。
1‑巯甲基环丙基乙酸、EDC•HCl和NHS的质量比为1: 1: (0.3 0.5),其中优选为1:1.2:0.4。
~
1,
且表面结构多孔,微观结构均匀,热稳定性显著提高,可以优良的作为药物载体。
附图说明
具体实施方式
1.2 g EDC•HCl和0.4 g NHS,震荡溶解,将溶解后的1‑巯甲基环丙基乙酸缓慢滴加到壳聚
糖溶液中,用0.1 mol/L的NaOH调节pH至5.0,在20 ℃下反应12 h后得到的溶液装入透析袋
中,透析冷冻干燥得到硫醇化壳聚糖样品,8 h内对大肠杆菌的抑制率为38.55%。
1.2 g EDC•HCl和0.4 g NHS,震荡溶解,将溶解后的1‑巯甲基环丙基乙酸缓慢滴加到壳聚
糖溶液中,用0.1 mol/L的NaOH调节pH为5.0,在20 ℃下反应12h后得到的溶液装入透析袋
中,透析冷冻干燥得到硫醇化壳聚糖样品,8 h内对大肠杆菌的抑制率为30.67%。
1.2 g EDC•HCl和0.4 g NHS,震荡溶解,将溶解后的1‑巯甲基环丙基乙酸缓慢滴加到壳聚
糖溶液中,用0.1 mol/L的NaOH调节pH=5.0,在20 ℃下反应12h后得到的溶液装入透析袋
中,透析冷冻干燥得到硫醇化壳聚糖样品,8 h内对大肠杆菌的抑制率为29.83%。
1.2 g EDC•HCl和0.4 g NHS,震荡溶解,将溶解后的1‑巯甲基环丙基乙酸缓慢滴加到壳聚
糖溶液中,用0.1 mol/L的NaOH调节pH=5.0,在20 ℃下反应12 h后得到的溶液装入透析袋
中,透析冷冻干燥得到硫醇化壳聚糖样品,8 h内对大肠杆菌的抑制率为27.5%。
1.2 g EDC•HCl和0.4 g NHS,震荡溶解,将溶解后的1‑巯甲基环丙基乙酸缓慢滴加到壳聚
糖溶液中,用0.1 mol/L的NaOH调节pH=5.0,在20 ℃下反应12 h后得到的溶液装入透析袋
中,透析冷冻干燥得到硫醇化壳聚糖样品,8 h内对大肠杆菌的抑制率为26.79%。
g EDC•HCl和0.4 g NHS,震荡溶解,将溶解后的1‑巯甲基环丙基乙酸缓慢滴加到壳聚糖溶
液中,用0.1 mol/L的NaOH调节pH=4.5,在20 ℃下反应12 h后得到的溶液装入透析袋中,透
析冷冻干燥得到硫醇化壳聚糖样品,8 h内对大肠杆菌的抑制率为33.72%。
g EDC•HCl和0.4 g NHS,震荡溶解,将溶解后的1‑巯甲基环丙基乙酸缓慢滴加到壳聚糖溶
液中,用0.1 mol/L的NaOH调节pH=5.5,在20 ℃下反应12 h后得到的溶液装入透析袋中,透
析冷冻干燥得到硫醇化壳聚糖样品,8 h内对大肠杆菌的抑制率为34.23%。
1.2 g EDC•HCl和0.4 g NHS,震荡溶解,将溶解后的1‑巯甲基环丙基乙酸缓慢滴加到壳聚
糖溶液中,用0.1 mol/L的NaOH调节pH=5.0,在20 ℃下反应12 h后得到的溶液装入透析袋
中,透析冷冻干燥得到硫醇化壳聚糖样品,8 h内对大肠杆菌的抑制率为24.51%。
g EDC•HCl和0.4 g NHS,震荡溶解,将溶解后的1‑巯甲基环丙基乙酸缓慢滴加到壳聚糖溶
液中,用0.1 mol/L的NaOH调节pH=5.0,在20 ℃下反应12 h后得到的溶液装入透析袋中,透
析冷冻干燥得到硫醇化壳聚糖样品,8 h内对大肠杆菌的抑制率为34.51%。
g EDC•HCl和0.4 g NHS,震荡溶解,将溶解后的1‑巯甲基环丙基乙酸缓慢滴加到壳聚糖溶
液中,用0.1 mol/L的NaOH调节pH=5.0,在20 ℃下反应12 h后得到的溶液装入透析袋中,透
析冷冻干燥得到硫醇化壳聚糖样品,8 h内对大肠杆菌的抑制率为23.80%。
g EDC•HCl和0.4 g NHS,震荡溶解,将溶解后的1‑巯甲基环丙基乙酸缓慢滴加到壳聚糖溶
液中,用0.1 mol/L的NaOH调节pH=5.0,在20 ℃下反应12 h后得到的溶液装入透析袋中,透
析冷冻干燥得到硫醇化壳聚糖样品,8 h内对大肠杆菌的抑制率为26.43%。
1.2 g EDC•HCl和0.4 g NHS,震荡溶解,将溶解后的1‑巯甲基环丙基乙酸缓慢滴加到壳聚
糖溶液中,用0.1 mol/L的NaOH调节pH至5.0,在40 ℃下反应12 h后得到的溶液装入透析袋
中,透析冷冻干燥得到硫醇化壳聚糖样品,8 h内对大肠杆菌的抑制率为18.45%。
1.2 g EDC•HCl和0.4 g NHS,震荡溶解,将溶解后的1‑巯甲基环丙基乙酸缓慢滴加到壳聚
糖溶液中,用0.1 mol/L的NaOH调节pH至5.0,在80 ℃下反应12 h后得到的溶液装入透析袋
中,透析冷冻干燥得到硫醇化壳聚糖样品,8 h内对大肠杆菌的抑制率为20.46%。
1.2 g EDC•HCl和0.4 g NHS,震荡溶解,将溶解后的1‑巯甲基环丙基乙酸缓慢滴加到壳聚
糖溶液中,用0.1 mol/L的NaOH调节pH至5.0,在20 ℃下反应16 h后得到的溶液装入透析袋
中,透析冷冻干燥得到硫醇化壳聚糖样品,8 h内对大肠杆菌的抑制率为25.68%。
1.2 g EDC•HCl和0.3 g NHS,震荡溶解,将溶解后的1‑巯甲基环丙基乙酸缓慢滴加到壳聚
糖溶液中,用0.1 mol/L的NaOH调节pH至5.0,在20 ℃下反应16 h后得到的溶液装入透析袋
中,透析冷冻干燥得到硫醇化壳聚糖样品,8 h内对大肠杆菌的抑制率为23.36%。
1.2 g EDC•HCl和0.24 g NHS,震荡溶解,将溶解后的1‑巯甲基环丙基乙酸缓慢滴加到壳聚
糖溶液中,用0.1 mol/L的NaOH调节pH至5.0,在20 ℃下反应16 h后得到的溶液装入透析袋
中,透析冷冻干燥得到硫醇化壳聚糖样品,8 h内对大肠杆菌的抑制率为29.20%。
6
为10 CFU/mL (OD600=0.05),取其中的20 mL趁热平均分装到4个直径为10 cm的培养皿中,
常温冷却固化,配置pH=5.0的醋酸缓冲溶液,然后分别配置质量浓度为5 mg/L的壳聚糖和
硫醇化壳聚糖溶液,紫外灭菌30 min,另外准备pH=5.0的醋酸缓冲溶液为阴性对照组,只含
有培养基的为空白对照组,取0.1 mL菌液滴加到培养基中间,涂抹均匀,将上述平板放入到
37 ℃恒温培养箱中培养24 h,观察细菌生长情况,
空白对照组 0
阴性对照组 5.02
壳聚糖 6.48
硫醇化壳聚糖 10.86
6
使得菌液浓度为10 CFU/mL (OD600=0.05),在上述3个锥形瓶中分别加入pH=5.0的缓冲溶
液,壳聚糖溶液和硫醇化壳聚糖溶液,充分摇匀,将上述3个锥形瓶放入37 ℃的恒温震荡培
养箱中,每隔2 h取样2 mL,用紫外分光光度计测量600 nm的紫外吸收波长(OD600),OD600表
示菌液的光密度,在8 h内,对于阴性对照组,壳聚糖的抑菌率为14.82%,本发明制备的硫醇
化壳聚糖的抑菌率为38.55%,通过壳聚糖和1‑巯甲基环丙基乙酸的改性,本发明制备的硫
醇化壳聚糖抑菌效果得到明显提高。
糖和硫醇化壳聚糖在不同pH下的溶解度,
硫醇化壳聚糖 99.6 g/100 mL 99.2 g/100 mL 98.7 g/100 mL