使用RHOA显性负型治疗癌症的组合物和方法转让专利
申请号 : CN201880066812.2
文献号 : CN111278443A
文献日 : 2020-06-12
发明人 : A·巴斯 , H·张
申请人 : 丹娜法伯癌症研究院
摘要 :
权利要求 :
1.一种治疗患有CDH1水平降低的癌症的受试者的方法,包括向所述受试者施用治疗有效量的至少一种选自由以下组成的组的试剂:1)编码RHOA显性负多肽或其生物活性片段的核酸;和2)RHOA显性负多肽或其生物活性片段。
2.根据权利要求1所述的方法,其中所述癌症具有CDH1表达的丧失。
3.根据权利要求1或2所述的方法,其中所述癌症正在或已经经历上皮间质转化(EMT)。
4.根据权利要求1-3中任一项所述的方法,其中所述癌症选自由弥漫性胃癌(DGC)、小叶乳腺癌、转移性乳腺癌、转移性肺癌、转移性非小细胞肺癌、结肠癌、胰腺癌、前列腺癌、脑癌和黑素瘤组成的组。
5.根据权利要求1-4中任一项所述的方法,其中所述试剂选自由以下组成的组:(i)RHOA显性负多肽,其在其全长上与选自由SEQ ID NO:1、2和3组成的组的多肽或其生物活性片段至少80%相同;和(ii)编码(i)的RHOA显性负多肽或其生物活性片段的核酸序列,其中所述核酸序列在其全长上与选自由SEQ ID NO:4、5、6、7、8、9、10和11组成的组的核酸序列或其编码所述生物活性片段的部分至少80%相同。
6.根据权利要求1-5中任一项所述的方法,其中所述试剂包括SEQ ID NO:1、2或3的RHOA显性负多肽序列。
7.根据权利要求1-6中任一项所述的方法,其中所述试剂是RHOA显性负多肽或其生物活性片段,并且进一步包括与其融合的异源多肽。
8.根据权利要求7所述的方法,其中所述融合的多肽具有比相应的未融合的RHOA显性负多肽或其生物活性片段更长的半衰期和/或细胞渗透性。
9.根据权利要求7所述的方法,其中所述异源多肽是Fc结构域和/或细胞可渗透肽。
10.根据权利要求1-5中任一项所述的方法,其中所述试剂是包括在表达载体或细胞内的核酸。
11.根据权利要求1-10中任一项所述的方法,进一步包括向所述受试者施用免疫疗法和/或癌症疗法,任选地其中在所述试剂之前、之后或同时施用所述免疫疗法和/或癌症疗法。
12.根据权利要求11所述的方法,其中所述免疫疗法是基于细胞的。
13.根据权利要求11所述的方法,其中,所述免疫疗法包括癌症疫苗和/或病毒。
14.根据权利要求11所述的方法,其中所述免疫疗法抑制免疫检查点。
15.根据权利要求14所述的方法,其中所述免疫检查点选自由CTLA-4、PD-1、VISTA、B7-H2、B7-H3、PD-L1、B7-H4、B7-H6、ICOS、HVEM、PD-L2、CD160、gp49B、PIR-B、KIR家族受体、TIM-
1、TIM-3、TIM-4、LAG-3、GITR、4-IBB、OX-40、BTLA、SIRPα(CD47)、CD48、2B4(CD244)、B7.1、B7.2、ILT-2、ILT-4、TIGIT、HHLA2、嗜乳脂蛋白和A2aR组成的组。
16.根据权利要求11所述的方法,其中所述癌症疗法选自由放射、放射增敏剂和化学疗法组成的组。
17.根据权利要求1-16中任一项所述的方法,其中所述试剂减少癌细胞中的存活或增殖细胞的数量,和/或减小包括癌细胞的肿瘤的体积或大小。
18.根据权利要求1-17中任一项所述的方法,进一步包括向所述受试者施用至少一种另外的用于治疗所述癌症的治疗剂或方案。
19.一种降低CDH1水平降低的癌细胞的存活力或增殖的方法,包括使所述癌细胞与至少一种选自由以下组成的组的试剂接触:1)编码RHOA显性负多肽或其生物活性片段的核酸;和2)RHOA显性负多肽或其生物活性片段。
20.根据权利要求19所述的方法,其中所述癌细胞具有CDH1表达的丧失。
21.根据权利要求19或20所述的方法,其中所述癌细胞正在或已经经历上皮间质转化(EMT)。
22.根据权利要求19-21中任一项所述的方法,其中所述癌细胞获自患有癌症的受试者,所述癌症选自由弥漫性胃癌(DGC)、小叶乳腺癌、转移性乳腺癌、转移性肺癌、转移性非小细胞肺癌、结肠癌、胰腺癌、前列腺癌、脑癌和黑素瘤组成的组。
23.根据权利要求19-22中任一项所述的方法,其中所述试剂选自由以下组成的组:(i)RHOA显性负多肽,其在其全长上与选自由SEQ ID NO:1、2和3组成的组的多肽或其生物活性片段至少80%相同;和(ii)编码(i)的RHOA显性负多肽或其生物活性片段的核酸序列,其中所述核酸序列在其全长上与选自由SEQ ID NO:4、5、6、7、8、9、10和11组成的组的核酸序列或其编码所述生物活性片段的部分至少80%相同。
24.根据权利要求19-23中任一项所述的方法,其中所述试剂包括SEQ ID NO:1、2或3的RHOA显性负多肽序列。
25.根据权利要求19-24中任一项所述的方法,其中所述试剂是RHOA显性负多肽或其生物活性片段,并且进一步包括与其融合的异源多肽。
26.根据权利要求25所述的方法,其中所述融合的多肽具有比相应的未融合的RHOA显性负多肽或其生物活性片段更长的半衰期和/或细胞渗透性。
27.根据权利要求26所述的方法,其中所述异源多肽是Fc结构域和/或细胞可渗透肽。
28.根据权利要求19-23中任一项所述的方法,其中所述试剂是包括在表达载体或细胞内的核酸。
29.根据权利要求19-28中任一项所述的方法,进一步包括使所述癌细胞与免疫疗法和/或癌症疗法接触,任选地其中在所述试剂之前、之后或同时施用所述免疫疗法和/或癌症疗法。
30.根据权利要求29所述的方法,其中所述免疫疗法是基于细胞的。
31.根据权利要求29所述的方法,其中,所述免疫疗法包括癌症疫苗和/或病毒。
32.根据权利要求29所述的方法,其中所述免疫疗法抑制免疫检查点。
33.根据权利要求29所述的方法,其中所述免疫检查点选自由CTLA-4、PD-1、VISTA、B7-H2、B7-H3、PD-L1、B7-H4、B7-H6、ICOS、HVEM、PD-L2、CD160、gp49B、PIR-B、KIR家族受体、TIM-
1、TIM-3、TIM-4、LAG-3、GITR、4-IBB、OX-40、BTLA、SIRPα(CD47)、CD48、2B4(CD244)、B7.1、B7.2、ILT-2、ILT-4、TIGIT、HHLA2、嗜乳脂蛋白和A2aR组成的组。
34.根据权利要求29所述的方法,其中所述癌症疗法选自由放射、放射增敏剂和化学疗法组成的组。
35.一种评估权利要求1的试剂用于治疗受试者中CDH1水平降低的癌症的功效的方法,所述方法包括:a)在第一时间点检测受试者样本中的存活和/或增殖癌细胞的数量;
b)在施用所述试剂后至少一个随后的时间点期间重复步骤a);以及
c)比较在步骤a)和b)中检测到的存活和/或增殖癌细胞的数量,其中与在所述第一时间点所述样本中的量相比,随后的样本中存活和/或增殖癌细胞不存在或数量显著减少,表明所述试剂可以治疗所述受试者的癌症。
36.根据权利要求35所述的方法,其中在所述第一时间点和所述随后的时间点之间,所述受试者已经接受治疗、完成治疗和/或处于癌症缓解中。
37.根据权利要求35或36所述的方法,其中所述第一和/或至少一个随后的样本选自由离体和体内样本组成的组。
38.根据权利要求35-37中任一项所述的方法,其中所述第一和/或至少一个随后的样本是从所述癌症的动物模型获得的。
39.根据权利要求35-38中任一项所述的方法,其中所述第一和/或至少一个随后的样本是从所述受试者获得的单个样本或合并样本的一部分。
40.根据权利要求35-39中任一项所述的方法,其中所述样本包括获自所述受试者的细胞、血清、肿瘤周围组织和/或肿瘤内组织。
41.根据权利要求35-40中任一项所述的方法,进一步包括通过测量选自由以下组成的组的至少一个标准来确定对所述试剂的响应性:临床受益率、直至死亡存活、病理完全缓解率、病理缓解的半定量测量、临床完全缓解、临床部分缓解、临床疾病稳定、无复发存活、无转移存活、无疾病存活、循环肿瘤细胞减少、循环标志物响应和RECIST标准。
42.根据权利要求1-41中任一项所述的方法,其中所述试剂以药学上可接受的制剂施用。
43.根据权利要求1-42中任一项所述的方法,其中所述施用或接触的步骤在体内、离体或体外进行。
44.根据权利要求1-43中任一项所述的方法,其中所述受试者是癌症的动物模型,任选地其中所述动物模型是小鼠模型。
45.根据权利要求1-44中任一项所述的方法,其中所述受试者是哺乳动物。
46.根据权利要求45所述的方法,其中所述哺乳动物是小鼠或人。
47.根据权利要求46所述的方法,其中所述哺乳动物是人。
48.一种基于细胞的测定,用于筛选可降低CDH1水平降低的癌细胞的存活力或增殖的试剂,所述测定包括:a)使所述癌细胞与选自由以下组成的组的测试剂接触:1)编码RHOA突变体或其生物活性片段的核酸;和2)RHOA突变体多肽或其生物活性片段;以及b)确定相对于对照,所述癌细胞的存活力或增殖降低,从而鉴定用于降低所述癌细胞的存活力或增殖的测试剂。
49.根据权利要求48所述的基于细胞的测定,其中所述对照是未与所述测试剂接触的癌细胞。
50.根据权利要求48所述的基于细胞的测定,其中所述对照是与抗癌剂接触的癌细胞。
51.根据权利要求48-50中任一项所述的基于细胞的测定,其中所述癌细胞是从癌症的动物模型或患有癌症的人类患者分离的。
52.根据权利要求48-51中任一项所述的基于细胞的测定,其中所述接触步骤在体内、离体或体外发生。
说明书 :
使用RHOA显性负型治疗癌症的组合物和方法
背景技术
16:9-11;癌症基因组图谱研究网络(Cancer Genome Atlas Research Network)(2014)《自然(Nature)》513:202-209)。尽管胃癌具有显著的异质性,但两种最突出的亚型是肠胃癌
(IGC)和弥漫性胃癌(DGC)。DGC的名称归因于其缺乏细胞内聚、侵入整个基质和差的细胞分化(通常具有印戒细胞形态)的特征。具有遗传形式DGC的家族在CDH1中携带突变,其编码细胞粘附蛋白E-钙粘蛋白(Guilford等人(1998)《自然》392:402-405)。除了遗传性DGC,更加常见的散发形式DGC也与E-钙粘蛋白损失有关,这是通过体细胞突变或启动子超甲基化实
现的。DGC引发典型地在肿瘤抑制因子CDH1丧失之后。EMT癌症与E-钙粘蛋白损失弥漫性胃
癌具有相似的特征。
之间的媒介。与其它GTPase相似,RhoA在无活性的GDP结合构型和与下游效应物如ROCK相互作用的活性GTP结合构型之间循环,这影响肌动蛋白细胞骨架的结构和动力学、细胞迁移、胞质分裂和细胞周期。在各种癌症中都观察到RhoA过度表达,并且RhoA活性与肿瘤发生和
肿瘤细胞侵入有关(Karlsson等人(2009)《生物化学和生物物理学报(Biochim Biophys
Acta.)》,1796:91-98)。然而,仍然需要阐明RHOA突变是否仅减弱RhoA的生理活性,或者可替代地,这些突变是否导致功能的获得。
发明内容
而CDH1表达完整的癌细胞则可以保留。
或其生物活性片段的核酸;和2)RHOA显性负多肽或其生物活性片段。
NO:1、2或3的RHOA显性负多肽序列。在仍另一个实施例中,所述试剂是RHOA显性负多肽或其生物活性片段,并且进一步包括与其融合的异源多肽。在又一个实施例中,融合多肽具有比相应的未融合RHOA显性负多肽或其生物活性片段更长的半衰期和/或细胞渗透性。在另一
个实施例中,异源多肽是Fc结构域和/或细胞可渗透性肽。在另一个实施例中,所述试剂是包括在表达载体或细胞内的核酸。在又一个实施例中,所述方法进一步包括向受试者施用
免疫疗法和/或癌症疗法,任选地其中在所述试剂之前、之后或同时施用免疫疗法和/或癌
症疗法。在另一个实施例中,免疫疗法是基于细胞的。在仍另一个实施例中,免疫疗法包括癌症疫苗和/或病毒。在又一个实施例中,免疫疗法抑制免疫检查点。在另一个实施例中,免疫检查点选自由CTLA-4、PD-1、VISTA、B7-H2、B7-H3、PD-L1、B7-H4、B7-H6、ICOS、HVEM、PD-L2、CD160、gp49B、PIR-B、KIR家族受体、TIM-1、TIM-3、TIM-4、LAG-3、GITR、4-IBB、OX-40、BTLA、SIRPα(CD47)、CD48、2B4(CD244)、B7.1、B7.2、ILT-2、ILT-4、TIGIT、HHLA2、嗜乳脂蛋白和A2aR组成的组。在仍另一个实施例中,癌症疗法选自由放射、放射增敏剂和化学疗法组成的组。在又一个实施例中,所述试剂减少癌症中存活或增殖细胞的数量,和/或减小包括癌细胞的肿瘤的体积或大小。在另一个实施例中,所述方法进一步包括向所述受试者施用至
少一种另外的用于治疗所述癌症的治疗剂或方案。
其生物活性片段的核酸;和2)RHOA显性负多肽或其生物活性片段。
SEQ ID NO:4、5、6、7、8、9、10和11组成的组的核酸序列或其编码生物活性片段的部分至少
80%相同。在另一个实施例中,所述试剂包括SEQ ID NO:1、2或3的RHOA显性负多肽序列。在仍另一个实施例中,所述试剂是RHOA显性负多肽或其生物活性片段,并且进一步包括与其
融合的异源多肽。在又一个实施例中,融合多肽具有比相应的未融合RHOA显性负多肽或其
生物活性片段更长的半衰期和/或细胞渗透性。在另一个实施例中,异源多肽是Fc结构域
和/或细胞可渗透性肽。在仍另一个实施例中,所述试剂是包括在表达载体或细胞内的核
酸。在又一个实施例中,所述方法进一步包括使癌细胞与免疫疗法和/或癌症疗法接触,任选地其中在所述试剂之前、之后或同时施用免疫疗法和/或癌症疗法。在另一个实施例中,免疫治疗包括癌症疫苗和/或病毒。在仍另一个实施例中,免疫疗法抑制免疫检查点。在又一个实施例中,免疫检查点选自由CTLA-4、PD-1、VISTA、B7-H2、B7-H3、PD-L1、B7-H4、B7-H6、ICOS、HVEM、PD-L2、CD160、gp49B、PIR-B、KIR家族受体、TIM-1、TIM-3、TIM-4、LAG-3、GITR、4-IBB、OX-40、BTLA、SIRPα(CD47)、CD48、2B4(CD244)、B7.1、B7.2、ILT-2、ILT-4、TIGIT、HHLA2、嗜乳脂蛋白和A2aR组成的组。在另一个实施例中,癌症疗法选自由放射、放射增敏剂和化学疗法组成的组。
步骤a)和b)中检测到的存活和/或增殖癌细胞的数量,其中与在第一时间点样本中的量相
比,随后的样本中存活和/或增殖癌细胞不存在或数量显著减少,表明所述试剂可以治疗受试者的癌症。
者的细胞、血清、肿瘤周围组织和/或肿瘤内组织。在仍另一个实施例中,所述方法进一步包括通过测量选自由以下组成的组的至少一个标准来确定对试剂的响应性:临床受益率、直
至死亡存活、病理完全缓解率、病理缓解的半定量测量、临床完全缓解、临床部分缓解、临床疾病稳定、无复发存活、无转移存活、无疾病存活、循环肿瘤细胞减少、循环标志物响应和RECIST标准。在又一个实施例中,所述试剂以药学上可接受的制剂施用。在另一个实施例
中,施用或接触的步骤在体内、离体或体外进行。在仍另一个实施例中,受试者是癌症的动物模型,任选地其中动物模型是小鼠模型。在又一个实施例中,受试者是哺乳动物。在另一个实施例中,哺乳动物是小鼠或人。在仍另一个实施例中,哺乳动物是人。
施例中,接触步骤在体内、离体或体外发生。
附图说明
(puro)来选择稳定感染的类器官。然后用或不用他莫昔芬处理细胞以激活Cre来诱导E-钙
粘蛋白损失。RHOA异位表达和E-钙粘蛋白损失通过蛋白质印迹和番茄/GFP颜色转化测定二
者来验证。
稳定感染的细胞。然后将细胞铺板于96孔板中,以用于使用细胞滴度glo测定进行分析。用不同的Dox诱导型RHOA突变病毒感染MCF10A-CDH1-KO细胞,并通过持续1周加入嘌呤霉素来
选择稳定感染的细胞。然后将细胞铺板于具有Dox诱导的96孔板中,以用于细胞滴度glo测
定分析。
RHOA病毒稳定感染细胞。将三百万NUGC4细胞注射到裸鼠的胁腹。2周后,将常规食物换成含Dox的食物以诱导突变RHOA表达。每组中N=3只小鼠。P<0.0001:Ctrl-VS-T19N。
毒稳定感染细胞。将三百万MKN45细胞注射到裸鼠的胁腹。2周后,将常规食物换成含Dox的食物以诱导突变RHOA表达。每组中N=3只小鼠。P<0.0001:Ctrl-VS-T19N。
具体实施方式
中,而CDH1表达完整的癌细胞则可以保留。例如,RHOA T19N显性负型特异性杀死无CDH1的MCF10A细胞,但保留CDH1完整的MCF10A细胞。使用等基因胃类器官模型发现了类似的结果。
例如,RHOA-T19N的异位表达特异性地杀死无CDH1的胃类器官。此外,RHOA-T19N可显著抑制E-钙粘蛋白损失NUGC4和MKN45弥漫性胃细胞系的肿瘤生长。因此,本发明部分涉及使用显
性负RHOA治疗CDH1水平降低的癌症的方法和试剂。
“抗原结合部分”内的结合片段的实例包括:(i)Fab片段,由VL、VH、CL和CH1结构域组成的单价片段;(ii)F(ab')2片段,包含两个在铰链区通过二硫键连接的Fab片段的二价片段;
(iii)由VH和CH1结构域组成的Fd片段;(iv)由抗体单臂的VL和VH结构域组成的Fv片段,(v)由VH结构域组成的dAb片段(Ward等人,(1989)《自然》341:544-546);和(vi)分离的互补决定区(CDR)。此外,尽管Fv片段的两个结构域VL和VH由单独的基因编码,但它们可以使用重组方法通过能够使它们成为单蛋白链的合成接头连接,其中VL和VH区配对以形成单价多肽
(称为单链Fv(scFv);参见例如Bird等人(1988)《科学(Science)》242:423-426;和Huston等人(1988)《美国科学学院学报(Proc.Natl.Acad.Sci.USA)》85:5879-5883;和Osbourn等人
1998《, 自然生物技术(Nature Biotechnology)》16:778)。此类单链抗体也旨在涵盖在术语抗体的“抗原结合部分”内。可以将特异性scFv的任何VH和VL序列连接至人免疫球蛋白恒定区cDNA或基因组序列,以产生编码完整IgG多肽或其它同种型的表达载体。使用蛋白质化学或重组DNA技术,VH和VL也可用于产生免疫球蛋白的Fab、Fv或其它片段。也包括其它形式的单链抗体如双体抗体。双体抗体是二价双特异性抗体,其中VH和VL结构域在单多肽链上表
达,但使用的接头太短而不能在同一条链上的两个结构域之间配对,从而迫使结构域与另
一条链的互补结构域配对并产生两个抗原结合位点(参见例如Holliger,P.等人(1993)《美
国科学学院学报》90:6444-6448;Poljak,R.J.等人(1994)《结构(Structure)》2:1121-
1123)。
疫粘附多肽的实例包括使用链霉亲和素核心区域来制备四聚体scFv多肽(Kipriyanov,
S.M.等人(1995)《人类抗体和杂交瘤(Human Antibodies and Hybridomas)》6:93-101),以及使用半胱氨酸残基、标记肽和C末端多组氨酸标签来制备二价和生物素化的scFv多肽
(Kipriyanov,S.M.等人(1994)《分子免疫学(Mol.Immunol.)》31:1047-1058)。抗体部分如Fab和F(ab')2片段,可以使用完整抗体的常规技术,如分别通过木瓜蛋白酶或胃蛋白酶消
化从完整抗体制备。此外,如本文所述,可以使用标准重组DNA技术获得抗体、抗体部分和免疫粘附多肽。
原表现出单一结合亲和力。
淋巴性方式扩散至身体其它器官有关。当癌细胞侵入并越过相邻组织的正常边界时,就会
发生癌症侵袭,这可以通过测定癌细胞迁移、癌细胞对基底膜的酶破坏等来测量。在一些实施例中,癌症的特定阶段是相关的,并且此类阶段可以包括血管生成、细胞侵袭和/或转移之前和/或之后的时间段。癌细胞通常是实体瘤的形式,但是此类细胞可以单独存在于动物体内,或者可以是非致瘤性癌细胞如白血病细胞。癌症包括但不限于B细胞癌,例如多发性骨髓瘤、华氏巨球蛋白血症、重链病(如例如α重链病、γ重链病和μ重链病)、良性单克隆丙种球蛋白病和免疫细胞淀粉样变、黑素瘤、乳腺癌、肺癌、支气管癌、结肠直肠癌、前列腺癌、胰腺癌、胃癌、卵巢癌、膀胱癌、脑或中枢神经系统癌、周围神经系统癌、食道癌、宫颈癌、子宫或子宫内膜癌、口腔或咽癌、肝癌、肾癌、睾丸癌、胆道癌、小肠或阑尾癌、唾液腺癌、甲状腺癌、肾上腺癌、骨肉瘤、软骨肉瘤、血液组织癌等。适用于本发明涵盖的方法的癌症类型的其它非限制性实例包括人肉瘤和癌,例如,纤维肉瘤、粘肉肉瘤、脂肪肉瘤、软骨肉瘤、成骨肉瘤、脊索瘤、血管肉瘤、内皮肉瘤、淋巴管肉瘤、淋巴管内皮肉瘤、滑膜瘤、间皮瘤、尤因氏肿瘤、平滑肌肉瘤、横纹肌肉瘤、结肠癌、结肠直肠癌、胰腺癌、乳腺癌、卵巢癌、前列腺癌、鳞状细胞癌、基底细胞癌、腺癌、汗腺癌、皮脂腺癌、乳头状癌、乳头状腺癌、囊腺癌、髓样癌、支气管癌、肾细胞癌、肝细胞瘤、胆管癌、肝癌、绒毛膜癌、精原细胞瘤、胚胎癌、维尔姆斯瘤、宫颈癌、骨癌、脑肿瘤、睾丸癌、肺癌、小细胞肺癌、膀胱癌、上皮癌、神经胶质瘤、星形细胞瘤、髓母细胞瘤、颅咽管瘤、室管膜瘤、松果体瘤、血管母细胞瘤、听神经瘤、少突胶质细胞瘤、脑膜瘤、黑素瘤、神经母细胞瘤、视网膜母细胞瘤;白血病、例如急性淋巴细胞性白血病和急性髓细胞性白血病(成髓细胞、早幼粒细胞、粒单核细胞、单核细胞和红白血病);慢性白血病(慢性髓细胞性(粒细胞性)白血病和慢性淋巴细胞性白血病);和真性红细胞增多症、淋巴
瘤(霍奇金氏病和非霍奇金氏病)、多发性骨髓瘤、华氏巨球蛋白血症和重链病。在一些实施例中,通过本发明的方法确定其表型的癌症是上皮癌,例如但不限于膀胱癌、乳腺癌、宫颈癌、结肠癌、妇科癌、肾癌、喉癌、肺癌、口腔癌、头颈癌、卵巢癌、胰腺癌、前列腺癌或皮肤癌。
在其它实施例中,癌症是乳腺癌、前列腺癌、肺癌或结肠癌。在仍其它实施例中,上皮癌是非小细胞肺癌、非乳头状肾细胞癌、宫颈癌、卵巢癌(例如浆液性卵巢癌)或乳腺癌。上皮癌可以以多种其它方式表征,包括但不限于浆液性、子宫内膜样、粘液性、透明细胞、布伦纳
(brenner)或未分化。在一些实施例中,本发明用于治疗、诊断和/或预后黑色素瘤及其亚
型。
性氢键(“碱基配对”),如果所述残基是胸腺嘧啶或尿嘧啶,则第二核酸区域与第一区域反平行。类似地,已知第一核酸链的胞嘧啶残基能够与第二核酸链的残基碱基配对,如果所述残基是鸟嘌呤,则第二核酸链与第一链反平行。如果当两个区域以反平行方式布置时,第一区域的至少一个核苷酸残基能够与第二区域的残基配对,则核酸的第一区域与相同或不同
核酸的第二区域互补。优选地,第一区域包括第一部分,并且第二区域包括第二部分,由此,当第一和第二部分以反平行方式布置时,至少约50%,并且优选至少约75%,至少约90%或至少约95%的第一部分的核苷酸残基能够与第二部分中的核苷酸残基碱基配对。更优选
地,第一部分的所有核苷酸残基都能够与第二部分中的核苷酸残基碱基配对。
者或癌症患者分离的正常组织或细胞,从受试者如正常受试者或癌症患者分离的培养原代
细胞/组织,从癌症患者的同一器官或身体部位获得的相邻正常细胞/组织,从正常受试者
分离的组织或细胞样本,或从保藏处获得的原代细胞/组织。在另一个优选的实施例中,对照可以包括来自任何合适来源的参考标准表达产物水平,包括但不限于管家基因,来自正
常组织(或其它先前分析的对照样本)的表达产物水平范围,来自具有一定结果(例如,存活期为一、二、三、四年等)或接受某种治疗的患者组或患者集的测试样本中的先前确定的表达产物范围。本领域技术人员将理解,此类对照样本和参考标准表达产物水平可以组合使
用以用作本发明方法中的对照。在一个实施例中,对照可包括正常或非癌性细胞/组织样
本。在另一个优选的实施例中,对照可以包括对于患者集如癌症患者集,或者对于接受某种治疗的癌症患者集,或者对于具有一个结果相对于另一个结果的患者集的表达水平。在前
一种情况下,可以将每个患者的特定表达产物水平指定为百分位数的表达水平,或表示为
高于或低于参考标准表达水平的均值或平均值。在另一个优选的实施例中,对照可包括正
常细胞,来自联合化学疗法治疗的患者的细胞和来自患有良性癌症的患者的细胞。在另一
个实施例中,对照还可以包括测量值,例如,与相同群体中管家基因的表达水平相比,群体中特定基因的平均表达水平。此类群体可以包括正常受试者,未经任何治疗(即未接受过治疗)的癌症患者,正在接受疗法的癌症患者或患有良性癌症的患者。在另一个优选的实施例中,对照包括表达产物水平的比率转化,包括但不限于确定测试样本中两个基因的表达产
物水平的比率并将其与参考标准中相同的两个基因的任何合适的比率进行比较;确定测试
样本中两个或更多个基因的表达产物水平,并确定任何合适对照中表达产物水平的差异;
并确定测试样本中两个或更多个基因的表达产物水平,将它们的表达标准化为测试样本中
管家基因的表达,并与任何合适的对照进行比较。在特别优选的实施例中,对照包括与测试样本具有相同谱系和/或类型的对照样本。在另一个实施例中,对照可以包括表达产物水
平,所述表达产物水平被分组为患者样本集内或基于患者样本集如所有癌症患者的百分位
数。在一个实施例中,建立了对照表达产物水平,其中相对于例如特定百分位数的较高或较低的表达产物水平被用作预测结果的基础。在另一个优选的实施例中,使用来自具有已知
结果的癌症对照患者的表达产物水平来建立对照表达产物水平,并将来自测试样本的表达
产物水平与对照表达产物水平进行比较,作为预测结果的基础。如以下数据所证明的,本发明的方法不限于在比较测试样本中的表达产物水平与对照中使用特定的分割点。
断测定。诊断医生和/或治疗干预人员可以解释诊断测定结果以确定治疗策略。类似地,处理替代过程可以应用于其它测定,例如预后测定。
水平可以存储在计算机可读介质上,例如,与微阵列或芯片读取设备结合使用的计算机可
读介质。可以操纵处理基因表达数据以产生基因表达签名。
以及引起癌症的致癌机制。
被相同残基占据,则第一区域与第二区域同源。两个区域之间的同源性根据被相同核苷酸
残基占据的两个区域的核苷酸残基位置的比例表示。举例而言,具有核苷酸序列5'-
ATTGCC-3'的区域和具有核苷酸序列5'-TATGGC-3'的区域具有50%的同源性。优选地,第一区域包括第一部分,并且第二区域包括第二部分,由此,每个部分的核苷酸残基位置的至少约50%,和优选至少约75%,至少约90%,或至少约95%被相同的核苷酸残基占据。更优选地,每个部分的所有核苷酸残基位置都被相同的核苷酸残基占据。
语的范围内。
外随机或位点特异性诱变或通过体内体细胞突变引入的突变)。
PD-1、PD-L1、PD-L2、CTLA4等功能的抗体。
增加所述活动的可能性。
施例中,词语“基本上不含细胞物质”包括具有小于约30%、20%、10%或5%(按干重计)的细胞物质的制剂。当重组产生抗体、多肽、肽或融合蛋白或其片段,例如其生物活性片段时,优选基本上不含培养基,即培养基少于蛋白质制剂体积的约20%,更优选小于约10%,最优选小于约5%。
癌,并且这些中的少数是由于遗传性弥漫性胃癌(HDGC)引起的。HDGC是继承的遗传病况。最常与HDGC相关的基因称为CDH1。CDH1基因的突变(改变)使人发展胃癌和与HDGC相关的其它
癌症的风险增加。包括CTNNA1在内的其它基因可能与HDGC相关。
道内视镜检查和活检。外科手术(例如胃部分切除术或全胃切除术)是最常见的治疗方法,
尤其是在疾病处于早期时。对于更晚期的胃癌,可以使用除外科手术以外的治疗如化学疗
法、放射疗法或这些方法的组合。
己患有浸润性乳腺癌。所有浸润性乳腺癌中约有10%是浸润性小叶癌。
以订购一项特殊的测试,称为E-钙粘蛋白研究。对浸润性小叶癌细胞进行这种突变测试可
以帮助将其与原位小叶癌,小叶中的不是癌症的一组异常细胞区分开来。从I期(最早期)到IV期(最晚期)的规模描述了浸润性小叶癌。分期与肿瘤的大小、淋巴结转移以及是否扩散
到身体其它部位有关。较高的数字表示更晚期的阶段。
胸部和淋巴结。可能的外科手术方法包括乳房肿瘤切除术、乳房切除术、前哨淋巴结清除术和腋窝淋巴结清除术。进行放射治疗的可能方法包括外照射、内部部分乳房照射和外部部
分乳房照射。与侧重于发现浸润性小叶癌(ILC)的区域的局部治疗不同,全身治疗涉及整个身体。治疗如化学疗法、激素疗法和其它靶向疗法用于破坏可能已离开原始肿瘤的任何癌
细胞,并降低浸润性小叶癌复发的风险。可用于治疗浸润性小叶癌的多种化学疗法的仅一
些实例包括阿霉素、表柔比星、环磷酰胺、多西他赛、紫杉酚、卡培他滨、伊沙匹隆、甲氨蝶呤和氟尿嘧啶。激素疗法也称为抗雌激素疗法,通过降低体内雌激素的量或阻止雌激素向乳
腺癌细胞生长发出信号来起作用。存在最常用的两类激素疗法:选择性雌激素受体调节剂
(SERM)和芳香酶抑制剂。其它类型的激素疗法包括雌激素受体下调剂(ERD)和卵巢关闭或
切除。如果浸润性小叶癌为HER2阳性,则可以使用HER2靶向疗法(例如赫赛汀或拉帕替尼)。
与激素疗法和HER2靶向疗法一样,其它靶向疗法也旨在干扰能够使乳腺癌细胞生长和茁壮
成长的特定过程。仅一个实例是阿瓦斯丁(化学名称:贝伐单抗),该药物靶向称为血管内皮生长因子(VEGF)的蛋白质,可防止其刺激新血管的形成和生长。
增强的迁徙能力、侵袭性、增强的抗凋亡性,以及大大增加的ECM组分生产。EMT的完成通过下面的基底膜的降解和间充质细胞的形成来发出信号,所述间充质细胞可以从其起源的上
皮层迁移走。为了启动EMT并使其完成,需要进行多个不同的分子过程。这些包括转录因子的激活,特定细胞表面蛋白的表达,细胞骨架蛋白的重组和表达,ECM降解酶的产生以及特定微小RNA表达的变化。在多种情况下,所涉及的因素也被用作生物标志物来证明细胞通过EMT的传代。E-钙粘蛋白的损失被认为是EMT中的基本事件。EMT对于包括中胚层形成和神经管形成在内的众多发育过程至关重要。EMT还显示在伤口愈合、器官纤维化和癌症进展的转移开始中发生。转移的开始需要入侵,这是由EMT启用的。原发性肿瘤中的癌细胞会失去由E-钙粘蛋白阻抑介导的细胞粘附,并穿透具有增强的侵袭性的基底膜,并通过内渗进入血
流。术语“EMT癌症”是指正在或已经经历EMT过程的任何类型的癌症。EMT癌症包括但不限于弥漫性胃癌、小叶乳腺癌、转移性乳腺癌、转移性肺癌、转移性非小细胞肺癌、结肠癌、胰腺癌、前列腺癌、脑癌和黑素瘤。
蛋白功能的丧失促进了EMT。在间充质细胞、成纤维细胞、癌细胞和神经组织中表达的从E-钙粘蛋白到N-钙粘蛋白的钙粘蛋白转换经常被用来监测EMT的进展。FSP1是与Ca2+结合的
S100蛋白家族的成员。它是一种原型成纤维细胞标志物,用于检测癌症和纤维发生中的
EMT。Snail转录因子是调节EMT的各种信号转导通路共同下游靶标的一个突出实例。
物标志物的表达活性或水平(并且优选为若干对照样本的生物标志物的平均表达水平)高
1.1、1.2、1.3、1.4、1.5、1.6、1.7、1.8、1.9、2.0、2.1、2.2、2.3、2.4、2.5、2.6、2.7、2.8、2.9、
3、3.5、4、4.5、5、5.5、6、6.5、7、7.5、8、8.5、9、9.5、10、10.5、11、12、13、14、15、16、17、18、19、
20倍或更高。生物标志物的“显著较低的表达水平”是指测试样本中的表达水平至少比对照样本(例如来自未患有目标疾病的健康受试者的样本)中的生物标志物的表达水平(并且优
选为若干对照样本的生物标志物的平均表达水平)低1.1、1.2、1.3、1.4、1.5、1.6、1.7、1.8、
1.9、2.0、2.1、2.2、2.3、2.4、2.5、2.6、2.7、2.8、2.9、3、3.5、4、4.5、5、5.5、6、6.5、7、7.5、8、
8.5、9、9.5、10、10.5、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20倍或更高。
临床外观,但与高于该组织癌前病变或癌症发展的正常风险(粘膜白斑、黏膜红斑、
erytroleukoplakia扁平苔藓(苔藓样反应))相关以及任何组织学检查显示细胞异型或发
育异常的病变或区域。
更多,例如30%、40%、50%、60%、70%、80%或更多,至减少2倍、3倍、4倍、5倍、10倍、15倍、
20倍或更多。可以通过在获得耐药性之前与相同的癌症样本或哺乳动物进行比较,或与已
知对治疗处理无耐药性的不同癌症样本或哺乳动物进行比较,来测量反应的减少。一种典
型的对化学疗法的获得性耐药性称为“多药耐药性”。多药耐药性可以由P-糖蛋白介导或可以由其它机制介导,或者当哺乳动物被多药耐药性微生物或微生物组合感染时可发生。对
治疗处理的耐药性的确定是本领域常规的,并且在普通技术人员的技能范围内,例如,可以通过本文描述为“敏化”的细胞增殖测定和细胞死亡测定来测量。在一些实施例中,术语“逆转耐药性”意指在单独的原发癌疗法(例如化学疗法或放射疗法)与未经治疗的肿瘤的肿瘤
体积相比时无法产生统计学上显著的肿瘤体积降低的情况下,使用第二种试剂与原发性癌
症疗法(例如化学疗法或放射疗法)的组合与未经治疗的肿瘤的肿瘤体积相比时能够在统
计学上显著的水平(例如p<0.05)下显著降低肿瘤体积。这通常适用于在未经治疗的肿瘤有
节奏地对数增长时进行的肿瘤体积测量。
常细胞受到癌症疗法(例如化学疗法或放射疗法)的过度伤害的程度。根据本领域对于下文
描述的特定治疗和方法已知的方法测量对治疗处理的敏感性增加或降低,包括但不限于细
胞增殖测定(Tanigawa N,Kern D H,Kikasa Y,Morton D L,《癌症研究(Cancer Res)》
1982;42:2159-2164)、细胞死亡测定(Weisenthal L M,Shoemaker R H,Marsden J A,Dill P L,Baker J A,Moran E M《, 癌症研究》1984;94:161-173;Weisenthal L M,Lippman M E,《癌症治疗报告(Cancer Treat Rep)》1985;69:615-632;Weisenthal L M,In:Kaspers G J L,Pieters R,Twentyman P R,Weisenthal L M,Veerman A J P编辑《白血病和淋巴瘤的耐
药性(Drug Resistance in Leukemia and Lymphoma)》,朗和湾(Langhorne),宾夕法尼亚州:哈伍德学术出版社(Harwood Academic Publishers),1993:415-432;Weisenthal L M,《妇产科研究(Contrib Gynecol Obstet)》1994;19:82-90)。还可以通过测量一段时间(例如,对于人类来说是6个月,对于小鼠是4-6周)内的肿瘤大小减小来测量动物的敏感性或耐药性。如果与在不存在此类组合物或方法的情况下的治疗敏感性或耐药性相比,治疗敏感
性的增加或耐药性的降低为25%或更多,例如30%、40%、50%、60%、70%、80%或更多,至减少2倍、3倍、4倍、5倍、10倍、15倍、20倍或更多,则组合物或方法使对治疗处理的反应敏感。对治疗敏感性或耐药性的确定是本领域常规的,并且在普通技术人员的技能范围内。应当理解,本文描述的用于增强癌症疗法功效的任何方法可以等同地应用于使过度增殖或其
它癌细胞(例如,抗性细胞)对癌症疗法敏感的方法。
Rho蛋白促进肌动蛋白细胞骨架的重组,并调节细胞形状、附着和运动。该基因的过表达与肿瘤细胞增殖和转移有关。已经鉴定出多个选择性剪接的变体。术语“RHOA”旨在包括其片段、变体(例如,等位基因变体)及衍生物。代表性的人RHOA cDNA和人RHOA蛋白序列是本领域公知的,并且可从国家生物技术信息中心(NCBI)公开获得。人RHOA同种型包括最长的同
种型1(NM_001664.3和NP_001655.1)、较短的同种型2(NM_001313941.1和NP_001300870.1;
其与变体1相比区别在于5'UTR但编码相同的蛋白质)、3(NM_001313943.1和NP_
001300872.1;其含有替代的3'编码外显子,与同种型1相比,C末端更短且不同)、4(NM_
001313944.1和NP_001300873.1;其使用3'编码区中的两个替代的框内剪接位点,导致与同种型1相比更短的同种型)、5(NM_001313945.1和NP_001300874.1;其使用5'区域中的替代
剪接位点,并使用下游起始密码子,导致与同种型1相比更短的N末端)、6(NM_001313946.1和NP_001300875.1;其在3'编码区中缺少两个替换的框内外显子,导致与同种型1相比更短的同种型)和7(NM_001313947.1和NP_001300876.1;其在5'编码区缺少替换外显子,导致移码,与同种型1相比更短且C末端不同的同种型)。人类以外的生物体中RHOA直向同源物的核酸和多肽序列是公知的,并且包括例如黑猩猩RHOA(XM_001163851.5和XP_001163851.3)、
狗RHOA(NM_001003273.3和NP_001003273.2)、牛RHOA(NM_176645.3和NP_788818.1)、小鼠
RHOA(NM_001313961.1和NP_001300890.1;NM_001313962.1和NP_001300891.1;以及NM_
016802.5和NP_058082.2),和大鼠RHOA(XM_006243699.1和XP_006243761.1;XM_
006243700.1和XP_006243762.1;以及XM_006243701.1和XP_006243763.1)。
在一些实施例中,它们可以隔离其它GTPase活化蛋白和鸟嘌呤交换因子。这些突变包括但
不限于T19N、G17V和G17E。表2和表3中所示的序列显示了示例性“显性负RhoA”。
白由五个细胞外钙粘蛋白重复序列、一个跨膜区和一个高度保守的胞质尾区构成。蛋白质
的结构-功能关系是公知的。例如,细胞内结构域含有对连环蛋白分子(例如,β-连环蛋白)结合并因此对E-钙粘蛋白功能至关重要的高度磷酸化的区域。该基因的突变与胃癌、乳腺
癌、结肠直肠癌、甲状腺癌和卵巢癌有关。在弥漫型胃癌中已证实外显子8或9的框内跳跃和外显子10的缺失。还证实了外显子7(浸润性乳腺癌)、12和13(子宫内膜癌)和16(卵巢癌)的点突变主要影响E-钙粘蛋白的胞外结构域。表现出CDH1突变的最著名的肿瘤可能是浸润性
小叶乳腺癌和弥漫性胃癌,其中约50%的这些肿瘤受到了影响。已经在多个家族中检测到
CDH1的种系突变,导致具有印戒细胞的弱分化弥漫型腺癌的发展。术语“遗传性弥漫性胃癌(HDGC)综合征”是为了描述受影响的患者而创造的。CDH1基因功能的损失通过增加增殖、侵袭和/或转移来促进癌症进展。该蛋白的胞外域还可以介导细菌与哺乳动物细胞的粘附,并且胞质结构域是内在化所必需的。
NP_004351.1)、较短的同种型2(NM_001317184.1和NP_001304113.1;其与变体1相比在中央编码区缺少替代外显子)、3(NM_001317185.1和NP_001304114.1;其在其5'UTR外显子中使
用替代剪接位点,导致与变体1相比不同的5'UTR和使用下游起始位点)和4(NM_
001317186.1和NP_001304115.1;其在其5'UTR中缺少外显子,导致与变体1相比不同的5'
UTR和使用下游起始位点)。人类以外的生物体中CDH1直向同源物的核酸和多肽序列是公知
的,并且包括例如黑猩猩CDH1(XM_001168150.4和XP_001168150.1;XM_016930064.1和XP_
016785553.1;XM_016930063.1和XP_016785552.1)、猴CDH1(XM_015126485.1和XP_
014981971.1;2.XM_015126486.1和XP_014981972.1)、狗CDH1(NM_001287125.1和NP_
001274054.1)、牛CDH1(NM_001002763.1和NP_001002763.1)、小鼠CDH1(NM_009864.3和NP_
033994.1)和大鼠CDH1(NM_031334.1和NP_112624.1)。
在一些实施例中,转录的多核苷酸是“长链非编码RNA”或“lcRNA”,其被定义为不天然编码翻译蛋白的转录的多核苷酸。lcRNA通常是长于约100个核苷酸的序列,并且可以长达最多
数十碱基,尽管长度定义是便于区分传统小核酸如微小RNA、siRNA和piwi相关RNA的问题。
lcRNA可以与蛋白编码基因(长基因间ncRNA或lincRNA)分开定位,或位于蛋白编码基因附
近或内部(Guttman等人(2009)《自然》458:223-227;Katayama等人(2005)《科学》309:1564-
1566;Kim等人(2010)《自然》465:182-187;De Santa等人(2010)PLoS Biol.8:e1000384)。
宿主基因组一起复制。此外,某些载体能够指导与它们可操作地连接的基因的表达。此类载体在本文中称为“重组表达载体”或简称为“表达载体”。通常,用于重组DNA技术的表达载体通常是质粒的形式。在本说明书中,“质粒”和“载体”可以互换使用,因为质粒是最常用的载体形式。然而,本发明旨在包括此类其它形式的表达载体,如病毒载体(例如,复制缺陷型逆转录病毒、腺病毒和腺相关病毒),其提供等同的功能。
无变应性。在这些条件下,细胞再暴露于相同的抗原(即使再暴露在共刺激多肽的存在下发生)导致不能产生细胞因子,并且因此不能增殖。然而,如果与细胞因子(例如IL-2)一起培养,无变应性T细胞可以增殖。例如,通过ELISA或通过使用指示细胞系的增殖测定测量T淋巴细胞缺乏IL-2产生,也可以观察到T细胞无变应性。可替代地,可以使用报道基因构建体。
例如,无变应性T细胞不能启动IL-2基因转录,该转录由在5'IL-2基因增强子控制下的异源启动子诱导,或者由可在增强子内发现的AP1序列的多聚体诱导(Kang等人(1992)《科学》
257:1134)。
表达,或(5)不在自然界中存在。
地,与本发明相关,“治疗”定义为对患者应用或施用治疗剂,或对来自患者的分离的组织或细胞系应用或施用治疗剂,所述患者具有疾病、疾病症状或发生疾病的倾向。治疗可以减
缓、治愈、痊愈、减轻、缓解、改变、减轻、补救、改良、改善或影响疾病、疾病的症状或对疾病的易感性。
所有生物中产生相同的氨基酸序列(尽管某些生物可以比它们翻译其它序列更有效地翻译
一些序列)。此外,有时,在给定的核苷酸序列中可以发现嘌呤或嘧啶的甲基化变体。此类甲基化不影响三核苷酸密码子和相应氨基酸之间的编码关系。
样地,对于融合蛋白或多肽氨基酸序列,可以从遗传密码推导可编码融合蛋白或多肽的相
应核苷酸序列(由于其冗余性,对于任何给定的氨基酸序列,它将产生多个核酸序列)。因
此,本文中对编码融合蛋白或多肽的核苷酸序列的描述和/或公开应被认为也包括对核苷
酸序列编码的氨基酸序列的描述和/或公开。类似地,本文中融合蛋白或多肽氨基酸序列的描述和/或公开应被认为也包括可以编码氨基酸序列的所有可能的核苷酸序列的描述和/
或公开。
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86%、87%、88%、89%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%、99.5%或更高的同一性。此类多肽可以具有如本文进一步描述的全长多肽的功能,例如减少癌症
中的存活或增殖细胞的数量,和/或减小包含癌细胞的肿瘤的体积或大小。进一步包括具有或不具有信号肽,和/或包括或仅为前蛋白,和/或包括或仅为成熟蛋白的多肽。
全长上具有至少80%、81%、82%、83%、84%、85%、86%、87%、88%、89%、90%、91%、
92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%、99.5%或更高的同一性。此类核酸分子可以具有如本文进一步描述的全长核酸的功能,例如编码减少癌症中存活或增殖细胞的数量
和/或减小包含癌细胞的肿瘤的体积或大小的蛋白质。进一步包括编码具有或不具有信号
肽,和/或包括或仅为前蛋白,和/或包括或仅为成熟蛋白的多肽的核酸。
子可以是单链或双链的,但是优选是双链DNA。“分离的”核酸分子是与存在于核酸天然来源中的其它核酸分子分离的核酸分子。优选地,“分离的”核酸不含天然存在于该核酸来源的生物体的基因组DNA中的该核酸侧翼的序列(即,位于该核酸的5'和3'末端的序列)。例如,在各种实施例中,编码RHOA显性负多肽或其生物活性部分的分离的核酸分子可含有少于约
5kb、4kb、3kb、2kb、1kb、0.5kb或0.1kb的核苷酸序列,其天然位于该核酸来源的细胞(例如,具有RHOA显性负型突变的癌细胞)的基因组DNA中的核酸分子侧翼。此外,“分离的”核酸分子如cDNA分子在通过重组技术生产时可以基本上不含其它细胞物质或培养基,或者在化学
合成时可以不含化学前体或其它化学物质。
A Laboratory Manual.)》第二版,冷泉港实验室(Cold Spring Harbor Laboratory),冷泉港实验室出版社(Cold Spring Harbor Laboratory Press),冷泉港实验室(Cold Spring
Harbor),纽约,1989中所述)。此外,包含SEQ ID NO 4、5、6、7、8、9、10或11的全部或部分的核酸分子,或与SEQ ID NO 4、5、6、7、8、9、10或11中所示的核苷酸序列或其片段至少约
50%,优选至少约60%,更优选至少约70%,再更优选至少约80%,仍更优选至少约90%,和最优选至少约95%或更多(例如,约98%)同源的核苷酸序列可以使用基于SEQ ID NO 4、5、
6、7、8、9、10或11的序列或其片段或同源核苷酸序列设计的寡核苷酸引物,通过聚合酶链反应分离。例如,可以从癌细胞中分离mRNA(即,通过Chirgwin等人(1979)《生物化学
(Biochemistry)》18:5294-5299中的硫氰酸胍提取程序),并且可以使用逆转录酶(即,
Moloney MLV逆转录酶,可从Gibco/BRL,贝塞斯达(Bethesda),马里兰州获得;或AMV逆转录酶,可从美国精工有限公司(Seikagaku America,Inc.),圣彼德斯堡,佛罗里达州获得)制备cDNA。可以基于SEQ ID NO 4、5、6、7、8、9、10或11所示的核苷酸序列或其片段或同源核苷酸序列设计用于PCR扩增的合成寡核苷酸引物。可以根据标准PCR扩增技术,使用cDNA或可
替代地基因组DNA作为模板和合适的寡核苷酸引物扩增本发明的核酸。另外,本发明的核酸可以通过定点诱变技术,使用野生型RHOA的cDNA或基因组DNA为模板,并使用含有目的突变的特异寡核苷酸引物来产生。可以将如此扩增或产生的核酸克隆到适当的载体中,并通过
DNA序列分析进行表征。此外,可以通过标准合成技术,即使用自动DNA合成仪,制备与RHOA显性负突变核苷酸序列相对应的寡核苷酸。
编码RHOA显性负多肽的核酸的水平,即检测RHOA显性负多肽的mRNA水平来鉴定。
具有不同于SEQ ID NO 4-11的序列的核苷酸序列的核酸分子也旨在包含在本发明的范围
内。例如,可以基于人和/或小鼠RHOA显性负突变体的核苷酸序列鉴定黑猩猩或猴RHOA显性负突变体cDNA。
用于测量每种此类生物活性的方法和测定是本领域公知的,并且代表性的非限制性实施例
在以下实例和以上定义中描述。
基,使得蛋白质或其部分减少癌症中存活或增殖细胞的数量和/或减小包括癌细胞的肿瘤
的体积或大小。
94%、95%、96%、97%、98%、99%或更多同源。
负多肽的生物活性的能力。
98%、99%或更多同源,或与SEQ ID NO 1、2或3至少相差1、2、3、5或10个氨基酸,但相差不超过30、20、15个氨基酸的氨基酸序列的蛋白质。在另一个实施例中,编码RHOA显性负多肽的核酸由核酸序列组成,所述核酸序列编码目标全长RHOA显性负多肽片段的长度小于195、
190、185、180、175、170、165、160、155、150、145、140、135、130、125、120、115、110、105、100、
95、90、85、80、75或70个氨基酸的一部分。
RHOA基因中的此类遗传多态性可能存在于群体内的个体之间。如本文所用,术语“基因”和“重组基因”是指包括编码显性负RHOA蛋白(优选哺乳动物,例如人显性负RHOA蛋白)的开放阅读框的核酸分子。此类天然等位基因变异典型地可导致显性负RHOA基因的核苷酸序列的
1-5%的变异。为天然等位基因变异结果并且不改变显性负RHOA的功能活性的任何和所有
此类核苷酸变异和显性负RHOA中的所得氨基酸多态性均旨在包含在本发明的范围内。此
外,编码来自其它物种的显性负RHOA蛋白并且因此具有不同于SEQ ID NO 4-11的序列的核
苷酸序列的核酸分子旨在包含在本发明的范围内。可使用人或小鼠cDNA或其部分基于与本
文公开的人或小鼠显性负RHOA核酸序列的同源性来分离与本发明的人或小鼠显性负RHOA
cDNA的天然等位基因变体和同源物相对应的核酸分子作为在严格杂交条件(如本文所述)
下的根据标准杂交技术的杂交探针。
性负多肽的功能性能力。例如,可以在SEQ ID NO 1、2或3的序列或其片段中进行导致“非必需”氨基酸残基处的氨基酸取代的核苷酸取代。“非必需”氨基酸残基是可以从RHOA显性负多肽的序列(例如,SEQ ID NO 1、2或3的序列或其片段)改变,而不会显著改变RHOA显性负多肽活性的残基,而RHOA显性负多肽活性需要“必需”氨基酸残基。然而,其它氨基酸残基(例如,在小鼠和人之间不保守或仅半保守的氨基酸残基)对于活性可能不是必需的,并且
因此很可能在不改变RHOA显性负多肽活性的情况下进行改变。此外,可对对于与癌细胞存
活力和/或增殖有关的RHOA显性负多肽功能必不可少但对于其它RHOA显性负多肽功能不是
必不可少的氨基酸残基进行改变。
ID NO 1、2或3或其片段不同,但保留本文所述的至少一种RHOA显性负多肽活性。在一个实施例中,分离的核酸分子包括编码蛋白质的核苷酸序列,其中所述蛋白质缺少一个或多个
RHOA显性负多肽结构域。如定义部分中所述,RHOA显性负多肽的构效关系是已知的,使得普通技术人员容易理解可以突变或以其它方式改变区域,同时保留RHOA显性负多肽的至少一
种生物活性。
除以比较的位置数×100的函数。例如,如果两个序列10个中有6个的位置相同,则两个序列是60%同源的或具有60%序列同一性。举例来说,DNA序列ATTGCC和TATGGC享有50%的同源性或序列同一性。通常,当将两个序列比对以给出最大同源性时进行比较。除非另有说明,否则“环出区域”,例如,由序列之一中的缺失或插入引起的那些被计为错配。
对于DNA比对,成对比对参数可以为Htuple=2,空位罚分=5,窗口=4和对角线保存=4。对于蛋白质比对,成对比对参数可以是Ktuple=1,空位罚分=3,窗口=5和对角线保存=5。
Blossom 62矩阵或PAM250矩阵,16、14、12、10、8、6或4的空位权重和1、2、3、4、5或6的长度权重,确定两个氨基酸序列之间的同一性百分比。在另一个优选实施例中,使用GCG软件包(在线可获得)中的GAP程序,使用NWSgapdna.CMP矩阵,40、50、60、70或80的空位权重和1、2、3、
4、5或6的长度权重,确定两个核苷酸序列之间的同一性百分比。在另一个实施例中,使用已并入ALIGN程序(2.0版)(在线可获得)中的E.Meyers和W.Miller的算法(CABIOS,4:11-17
(1989)),使用PAM120重量残留表,12的空位长度罚分和4的空位罚分,确定两个氨基酸或核苷酸序列之间的同一性百分比。
或缺失被引入编码的蛋白质中。可以通过标准技术如定点诱变和PCR介导的诱变,将突变引入SEQ ID NO 4、5、6、7、8、9、10或11或其片段或同源核苷酸序列中。优选地,在一个或多个预测的非必需氨基酸残基上进行保守氨基酸取代。“保守氨基酸取代”是其中氨基酸残基被具有相似侧链的氨基酸残基取代的氨基酸取代。具有相似侧链的氨基酸残基家族已在本领
域中定义。这些家族包括具有碱性侧链(例如赖氨酸、精氨酸、组氨酸)、酸性侧链(例如天冬氨酸、谷氨酸)、不带电荷的极性侧链(例如甘氨酸、天冬酰胺、谷氨酰胺、丝氨酸、苏氨酸、酪氨酸、半胱氨酸)、非极性侧链(例如丙氨酸、缬氨酸、亮氨酸、异亮氨酸、脯氨酸、苯丙氨酸、甲硫氨酸、色氨酸)、bet217-420支化侧链(例如苏氨酸、缬氨酸、异亮氨酸)和芳族侧链(例如酪氨酸、苯丙氨酸、色氨酸、组氨酸)的氨基酸。因此,优选用来自相同侧链家族的另一个氨基酸残基替换RHOA显性负多肽中的预测的非必需氨基酸残基。可替代地,在另一个实施
例中,可以例如通过饱和诱变沿全部或部分RHOA显性负多肽编码序列随机引入突变,并且
可以筛选所得突变体的本文所述的RHOA显性负多肽活性以鉴定保留RHOA显性负多肽活性
的突变体。诱变SEQ ID NO 4、5、6、7、8、9、10或11或其片段后,可以重组表达编码的蛋白质(如本文所述),并且可以使用例如本文所述的测定确定蛋白质的活性。
术进行测量。检测可以涉及基因表达水平(例如,基因组DNA、cDNA、mRNA、蛋白质或酶活性)的定量,或者可替代地,可以是基因表达水平的定性评估,特别是与对照水平相比。从上下文中将清楚检测的水平类型。
离技术来从细胞中纯化RNA(参见,例如,Ausubel等人编辑《, 分子生物学最新方案(Current Protocols in Molecular Biology)》,约翰威立父子出版公司(John Wiley&Sons),纽约
1987-1999)。另外,可以使用本领域技术人员公知的技术容易地处理大量组织样本,诸如例如,Chomczynski的单步RNA分离方法(1989,美国专利第4,843,155号)。
与可以与由检测基因编码的mRNA杂交的核酸分子(探针)接触。核酸探针可以是例如全长
cDNA或其部分,例如长度为至少7、15、30、50、100、250或500个核苷酸并且足以在严格条件下与编码RHOA显性负多肽的mRNA或基因组DNA特异性杂交的寡核苷酸。本文描述了用于本
发明的诊断测定的其它合适的探针。mRNA与探针的杂交表明正在表达RHOA显性负多肽。
TM
固定在固体表面上,并且使mRNA与探针接触,例如,在基因芯片阵列如Affymetrix 基因芯片阵列中。技术人员可以容易地采用已知的mRNA检测方法来检测RHOA显性负mRNA表达水
平。
(Barany,1991《, 美国科学学院学报》,88:189-193)、自我维持的序列复制(Guatelli等人,
1990《, 美国科学学院学报》87:1874-1878)、转录扩增系统(Kwoh等人,1989《,美国科学学院学报》86:1173-1177)、Q-β复制酶(Lizardi等人,1988《生, 物技术(Bio/Technology)》6:
1197)、滚环复制(Lizardi等人,美国专利第5,854,033号)或任何其它核酸扩增方法,然后使用本领域技术人员公知的技术检测扩增的分子。如果此类分子以非常低的数量存在,则
这些检测方案对于核酸分子的检测尤其有用。如本文所用,扩增引物被定义为一对核酸分
子,其可以退火至基因的5'或3'区域(分别为正和负链,反之亦然),并且在其之间含有短区域。通常,扩增引物的长度为约10至30个核苷酸,并且侧接长度为约50至200个核苷酸的区域。在合适的条件下和合适的试剂下,此类引物允许扩增包含侧接有引物的核苷酸序列的
核酸分子。
型表达的管家基因)的表达进行比较来校正绝对的RHOA显性负多肽表达水平,从而标准化
表达水平。用于标准化的合适基因包括管家基因,例如肌动蛋白基因或上皮细胞特异性基
因。该标准化允许比较一个样本例如受试者样本与另一样本例如正常样本或来自不同来源
的样本之间的表达水平。
这些可以包括分析生化方法,例如电泳、毛细管电泳、高效液相色谱法(HPLC)、薄层色谱法(TLC)、超扩散色谱法等,或各种免疫学方法,例如流体或凝胶沉淀反应、免疫扩散(单次或双重)、免疫电泳、放射免疫测定(RIA)、酶联免疫吸附测定(ELISA)、免疫荧光测定、蛋白质印迹等。技术人员可以容易地采用已知的蛋白质/抗体检测方法来确定细胞是否表达RHOA
显性负多肽。
体)。其它载体(例如,非附加型哺乳动物载体)在引入宿主细胞后整合到宿主细胞的基因组中,从而与宿主基因组一起复制。此外,某些载体能够指导与它们可操作地连接的基因的表达。此类载体在本文中称为“表达载体”。通常,用于重组DNA技术的表达载体通常是质粒的形式。在本说明书中,“质粒”和“载体”可以互换使用,因为质粒是最常用的载体形式。然而,本发明旨在包括此类其它形式的表达载体,如病毒载体(例如,复制缺陷型逆转录病毒、腺病毒和腺相关病毒),其提供等同的功能。在一个实施例中,使用包括显性负RHOA核酸分子的腺病毒载体。
待表达的核酸序列可操作地连接。在重组表达载体中,“可操作地连接”旨在意指目标核苷酸序列以允许核苷酸序列(例如,在体外转录/翻译系统中或将载体引入宿主细胞时在宿主
细胞中)表达的方式与调控序列连接。术语“调控序列”旨在包括启动子、增强子和其它表达控制元件(例如,聚腺苷酸化信号)。此类调控序列描述于例如Goeddel;《基因表达技术:酶学方法(Gene Expression Technology:Methods in Enzymology)》185,学术出版社
(Academic Press),圣地亚哥,加利福尼亚州(1990)。调控序列包括在多种类型的宿主细胞中指导核苷酸序列组成型表达的那些序列和仅在某些宿主细胞中指导核苷酸序列表达的
那些序列(例如组织特异性调控序列)。本领域技术人员将理解,表达载体的设计可以取决
于诸如待转化的宿主细胞的选择,期望蛋白质的表达水平等因素。本发明的表达载体可以
引入宿主细胞以由此产生由本文所述的核酸编码的蛋白质或肽,包括融合蛋白或肽。
哺乳动物细胞中表达。合适的宿主细胞在Goeddel《, 基因表达技术:酶学方法》185,学术出版社,圣地亚哥,加利福尼亚州(1990)中进一步讨论。可替代地,重组表达载体可以例如使用T7启动子调控序列和T7聚合酶在体外转录和翻译。
通常向重组蛋白的氨基末端添加多种氨基酸。此类融合载体典型地用于三个目的:1)增加
重组蛋白的表达;2)增加重组蛋白的溶解度;和3)通过在亲和纯化中充当配体来帮助重组
蛋白的纯化。通常,在融合表达载体中,在融合部分和重组蛋白的连接处引入蛋白水解切割位点,以使得在纯化融合蛋白之后能够从融合部分分离重组蛋白。此类酶及其同源识别序
列包括因子Xa、凝血酶和肠激酶。典型的融合表达载体包括pGEX(法玛西亚生物技术公司
(Pharmacia Biotech Inc);Smith,D.B.和Johnson,K.S.(1988)《基因(Gene)》67:31-40)、pMAL(新英格兰实验室(New England Biolabs),Beverly,马萨诸塞州)和pRIT5(法玛西亚,皮斯卡塔韦,新泽西州),其使谷胱甘肽S-转移酶(GST)、麦芽糖E结合蛋白或蛋白A分别与目标重组蛋白融合。在一个实施例中,将显性负RHOA的编码序列克隆到pGEX表达载体中,以产生编码融合蛋白的载体,所述融合蛋白包含从N末端至C末端的GST-凝血酶切割位点显性负
RHOA。融合蛋白可以使用谷胱甘肽-琼脂糖树脂通过亲和色谱法纯化。可以通过用凝血酶切割融合蛋白来回收未与GST融合的重组RHOA显性负多肽。
RNA聚合酶介导的T7 gn10-lac融合启动子的转录(T7 gn1)。该病毒聚合酶由宿主菌株BL21
(DE3)或HMS174(DE3)从在lacUV 5启动子的转录控制下携带T7 gn1基因的常住λ噬菌体供
应。
核酸序列,使得每种氨基酸的单个密码子是大肠杆菌中优先使用的密码子(Wada等人,
(1992)《核酸研究(Nucleic Acids Res.)》20:2111-2118)。本发明的核酸序列的此类改变可以通过标准DNA合成技术来进行。
933-943)、pJRY88(Schultz等人,(1987)《基因》54:113-123)和pYES2(英杰公司
(Invitrogen Corporation),圣地亚哥,加利福尼亚州)。
(1983)《分子和细胞生物学(Mol.Cell Biol.3:2156-2165)》和pVL系列(Lucklow和Summers(1989)《病毒学(Virology)》170:31-39)。
(Kaufman等人(1987)《欧洲分子生物学学会杂志》6:187-195)。当用于哺乳动物细胞时,表达载体的控制功能通常由病毒调控元件提供。例如,常用的启动子衍生自多瘤、腺病毒2、巨细胞病毒和猿猴病毒40。对于用于原核和真核细胞二者的其它合适的表达系统,参见
Sambrook,J.,Fritsh,E.F.和Maniatis,T《.分子克隆:实验室手册》第二版,冷泉港实验室,冷泉港实验室出版社,冷泉港实验室,纽约1989中的第16和17章。
《基因与发展(Genes Dev.)》1:268-277)、淋巴样特异性启动子(Calame和Eaton(1988)《免疫学进展(Adv.Immunol.)》43:235-275),特别是T细胞受体的启动子(Winoto和Baltimore
(1989)《欧洲分子生物学学会杂志》8:729-73)和免疫球蛋白(Banerji等人(1983)《细胞》
33:729-740;Queen和Baltimore(1983)《细胞》33:741-748)、神经元特异性启动子(例如,神经丝启动子;Byrne和Ruddle(1989)《美国科学学院学报》86:5473-5477)、胰腺特异性启动子(Edlund等人(1985)《科学》230:912-916)和乳腺特异性启动子(例如乳清启动子;美国专利第4,873,316号和欧洲申请公开第264,166号)。还包括发育调控的启动子,例如鼠hox启
动子(Kessel和Gruss(1990)《科学》249:374-379)和甲胎蛋白启动子(Campes和Tilghman
(1989)《基因与发展》3:537-546)。
或其片段。可替代地,可以将RHOA显性负多肽或其片段保留在细胞质中,收获并裂解细胞,然后分离蛋白质或蛋白质复合物。可以使用本领域已知的用于纯化蛋白质的技术利用对显
性负性RHOA或其片段的特定表位具有特异性的抗体从细胞培养基、宿主细胞或两者分离
RHOA显性负多肽或其片段,所述技术包括离子交换色谱法、凝胶过滤色谱法、超滤、电泳和免疫亲和纯化。
半衰期和/或细胞渗透性。例如,可以将RHOA显性负多肽融合至细胞可渗透肽,以促进将
RHOA显性负多肽递送至完整细胞。细胞可渗透肽,也称为蛋白质转导结构域(PTD),是带有小肽结构域的可以自由穿越细胞膜的载体。已经鉴定了几种PTD,其允许融合蛋白在称为蛋白转导的过程中有效穿过细胞膜。研究表明,源自HIV TAT蛋白的TAT肽具有将肽或蛋白质
转导到各种细胞中的能力。PTD已用于抗癌策略中,例如,细胞可渗透的Bcl-2结合肽
cpm1285在减慢小鼠中人类骨髓性白血病生长中显示活性。模拟特定的含SH2结构域蛋白的
受体结合位点的细胞可渗透磷酸肽如FGFR730pY是进行癌症研究和细胞信号转导机制研究
的潜在工具。在其它实施例中,根据本领域已知的标准方法,异源标签可以用于纯化目的
(例如,表位标签和FC融合标签)。
或转染到为真核(酵母、禽类、昆虫或哺乳动物)或原核(细菌细胞)的宿主中是标准程序。根据本发明,可以通过微生物手段或组织培养技术,采用类似的程序或其修饰来制备重组的
RHOA显性负多肽或其片段。
括真核裂解物,如兔网织红细胞裂解物、兔卵母细胞裂解物、人细胞裂解物、昆虫细胞裂解物和小麦胚芽提取物。裂解物可从制造商如Promega Corp.,Madison,Wis.;Stratagene,La Jolla,Calif.;Amersham,Arlington Heights,Ill.;和GIBCO/BRL,Grand Island,N.Y.商
业获得。体外翻译系统典型地包含大分子如酶、翻译、起始和延伸因子、化学试剂和核糖体。
另外,可以使用体外转录系统。此类系统典型地至少包含RNA聚合酶全酶、核糖核苷酸和任何必要的转录起始、延伸和终止因子。可以在一锅反应中偶联体外转录和翻译,以从一种或多种分离的DNA产生蛋白质。
成,包括逐步固相合成,通过肽片段的构象辅助的重新连接进行的半合成,克隆的或合成的肽区段的酶促连接以及化学连接。天然化学连接采用两个未保护的肽区段的化学选择性反
应,以产生瞬时硫酯连接的中间体。然后,瞬时硫酯连接的中间体自发地经历重排,以提供在连接位点具有天然肽键的全长连接产物。全长连接产物在化学上与无细胞合成产生的蛋
白质相同。如果允许,全长连接产物可以被重新折叠和/或氧化,以形成天然的含二硫键的蛋白质分子(参见例如,美国专利第6,184,344号和第6,174,530号;和T.W.Muir等人《,生物技术现状(Curr.Opin.Biotech.)》(1993):vol.4,p 420;M.Miller等人《, 科学》(1989):
vol.246,p 1149;A.Wlodawer等人《, 科学》(1989):vol.245,p 616;L.H.Huang等人《,生物化学(Biochemistry)》(1991):vol.30,p 7402;M.Sclmolzer等人《,国际多肽与蛋白质研究杂志(Int.J.Pept.Prot.Res.)》(1992):vol.40,p 180-193;K.Rajarathnam等人《, 科学》(1994):vol.264,p 90;R.E.Offord,“蛋白质工程的化学方法(Chemical Approaches to
Protein Engineering)”《, 蛋白质设计与新疗法和疫苗的开发(Protein Design and the Development of New therapeutics and Vaccines)》,J.B.Hook,G.Poste编辑,(增压器出
版社(Plenum Press),纽约,1990)pp.253-282;C.J.A.Wallace等人,《生物化学杂志
(J.Biol.Chem.)》(1992):vol.267,p 3852;L.Abrahmsen等人《, 生物化学》(1991):vol.30,p 4151;T.K.Chang等人《, 美国科学学院学报》(1994)91:12544-12548;M.Schnlzer等人,《科学》(1992):vol.,3256,p 221;和K.Akaji等人《, 化学药品公告(Chem.Pharm.Bull.)》(东京)(1985)33:184)。
志物包括赋予对药物如G418、潮霉素和甲氨蝶呤的耐药性的那些。编码选择标志物的核酸
可以在与编码显性负RHOA的载体相同的载体上引入宿主细胞,或者可以在单独的载体上引
入。可以通过药物选择来鉴定被引入的核酸稳定转染的细胞(例如,已掺入了选择标志物基因的细胞将存活,而其它细胞死亡)。
方法。在一个实施例中,所述方法包括在合适的培养基中培养本发明的宿主细胞(已向其中引入了编码显性负RHOA的重组表达载体),直到产生RHOA显性负多肽。在另一个实施例中,所述方法进一步包括从培养基或宿主细胞中分离RHOA显性负多肽。
测定设计为鉴定能够减轻选定病症如弥漫性胃癌(DGC)、小叶乳腺癌或其它类型的EMT癌症
的有害症状的试剂或化合物,例如药物、药品等。例如,在一个实施例中,本发明的宿主细胞是受精卵母细胞或胚胎干细胞,其中已引入编码显性负RHOA的序列或其片段。然后,此类宿主细胞可以用于创建其中已将外源显性负RHOA序列引入其基因组的非人转基因动物或其
中内源RHOA序列已被改变的同源重组动物。此类动物可用于研究显性负RHOA或其片段的功
能和/或活性,以及用于鉴定和/或评价显性负RHOA活性的调节剂。如本文所用,“转基因动物”是非人类动物,优选为哺乳动物,更优选为啮齿动物,如大鼠或小鼠,其中动物的一个或多个细胞包括转基因。转基因动物的其它实例包括非人灵长类动物、绵羊、狗、牛、山羊、鸡、两栖动物等。转基因是被整合到细胞的基因组中的外源DNA,转基因动物从其中发育并保留在成熟动物的基因组中,从而指导编码的基因产物在转基因动物的一种或多种细胞类型或
组织中的表达。如本文所用,“同源重组动物”是非人动物,优选为哺乳动物,更优选为小鼠,其中内源RHOA基因已通过内源基因与在动物发育之前引入动物细胞例如动物的胚胎细胞
内的外源DNA分子之间的同源重组而改变。
中发育来产生。可以将人显性负RHOAcDNA序列作为转基因引入非人动物的基因组中。可替
代地,可以将人显性负RHOA基因的非人同源物用作转基因。内含子序列和聚腺苷酸化信号
也可以包括在转基因中以增加转基因的表达效率。可以将组织特异性调控序列可操作地连
接至显性负RHOA转基因,以指导将RHOA显性负多肽表达至特定细胞。通过胚胎操作和显微
注射产生转基因动物(特别是诸如小鼠的动物)的方法已成为本领域的常规方法,并且描述
于例如Leder等人的美国专利第4,736,866号和第4,870,009号,Wagner等人的美国专利第
4,873,191号以及Hogan,B.《, 操作小鼠胚胎(Manipulating the Mouse Embryo)》(冷泉港实验室出版社,冷泉港实验室,纽约,1986)中。类似的方法用于生产其它转基因动物。可以基于显性负RHOA转基因在其基因组中的存在和/或显性负RHOAmRNA在动物的组织或细胞中
的表达来鉴定转基因基础动物。然后可以使用转基因基础动物繁殖带有转基因的其它动
物。而且,带有编码显性负RHOA的转基因的转基因动物可以进一步与带有其它转基因的其
它转基因动物一起繁殖。
显性负RHOA基因的显性负突变在其5'和3'端侧接RHOA基因的额外核酸,以允许同源重组发
生在载体携带的外源显性负RHOA基因和胚胎干细胞中的内源性RHOA基因之间。额外的侧翼
RHOA核酸具有足够的长度以用于与内源基因的成功同源重组。典型地,载体中包括几千个
碱基的侧翼DNA(在5'和3'末端)(参见例如,Thomas,K.R.和Capecchi,M.R.(1987)《细胞》
51:503关于同源重组载体的描述)。将所述载体引入胚胎干细胞系(例如,通过电穿孔),并选择其中引入的显性负RHOA基因与内源RHOA基因同源重组的细胞(参见例如,Li,E.等人
(1992)《细胞》69:915)。然后将选定的细胞注射到动物(例如小鼠)的胚泡中以形成聚集嵌合体(参见例如Bradley,A.,《畸胎瘤和胚胎干细胞:一种实用的方法(Teratocarcinomas and Embryonic Stem Cells:A Practical Approach)》,E.J.Robertson编辑(IRL,牛津,
1987)pp.113-152)。然后可以将嵌合胚胎植入合适的假孕雌性寄养动物中,并使胚胎发育。
在其生殖细胞中带有同源重组DNA的后代可用于繁殖动物,其中动物的所有细胞均通过转
基因的种系传递而含有同源重组DNA。构建同源重组载体和同源重组动物的方法进一步描
述于Bradley(1991)《生物技术最新观点(Current Opinion in Biotechnology)》2:823-
829和PCT国际公开:Le Mouellec等人的第WO 90/11354号;Smithies等人的第WO 91/01140号;Zijlstra等人的第WO 92/0968号;和Berns等人的第WO 93/04169号。
统的说明,参见例如Lakso等人(1992)《美国科学学院学报》89:6232-6236。重组酶系统的另一个实例是酵母酿酒酵母的FLP重组酶系统(O’Gorman等人(1991)《科学》251:1351-1355)。
如果使用cre/loxP重组酶系统调节转基因的表达,则需要含有编码Cre重组酶和选定蛋白
质二者的转基因的动物。可以通过“双”转基因动物的构建来提供此类动物,例如,通过使两只转基因动物交配,一只含有编码选定蛋白质的转基因,另一只含有编码重组酶的转基因。
之,可以分离来自转基因动物的细胞,例如体细胞,并诱导其退出生长周期并进入Go期。然后可以例如通过使用电脉冲将休眠细胞融合至来自分离了所述休眠细胞的相同物种的动
物的去核卵母细胞。然后,培养重建的卵母细胞,使得其发育为桑葚胚或胚泡,然后转移至假孕雌性寄养动物。所述雌性寄养动物所生的后代将是所述动物的克隆,从所述克隆中分
离出细胞,例如体细胞。
列也可以与本文所述的本领域公知的目标RHOA显性负多肽序列或其片段至少50、55、60、
65、70、75、80、85、90、91、92、93、94、95、96、97、98、99或99.5%相同。另外,本文所述的任何RHOA显性负多肽或其片段可以调节(例如降低)一种或多种以下生物活性:癌细胞存活、癌
细胞增殖和肿瘤大小/体积。
或增强全身生物利用度。示例性结构域包括例如谷胱甘肽S-转移酶(GST)、蛋白A、蛋白G、钙调蛋白结合肽、硫氧还蛋白、麦芽糖结合蛋白、HA、myc、聚精氨酸、聚His、聚His-Asp或FLAG融合蛋白和标签。另外的示例性结构域包括改变体内蛋白质定位的结构域,例如信号肽、靶向2I型分泌系统的肽、胞吞结构域、核定位信号等。在各种实施例中,本发明的RHOA显性负多肽可以包含一个或多个异源融合。多肽可以含有相同融合结构域的多个拷贝,或者可以
含有与两个或更多个不同结构域的融合。融合可以发生在多肽的N末端,多肽的C末端或多
肽的N末端和C末端。在本发明的多肽和融合结构域之间包括连接序列,以促进融合蛋白的
构建或优化融合蛋白的蛋白表达或结构限制也在本发明的范围内。在一个实施例中,连接
肽是本文所述的连接肽,例如,至少1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、15、20或更多个氨基酸的连接肽。连接肽可以是例如非结构化重组聚合物(URP),例如长度为9、10、11、12、13、14、15、20个氨基酸的URP,即连接肽具有有限的或缺乏二级结构,例如Chou-Fasman算法。示例性的连接肽包含(例如,由以下组成)氨基酸序列GGGGAGGGG。在另一个实施例中,可以构建多肽以便在本发明的融合多肽和多肽之间包含蛋白酶切割位点,以便在蛋白质表达之后或此后除去
标签。合适的内切蛋白酶的实例包括例如因子Xa和TEV蛋白酶。
(EGFP)、海肾绿色荧光蛋白、GFPmut2、GFPuv4、增强型黄色荧光蛋白(EYFP)、增强型蓝绿色荧光蛋白(ECFP)、增强型蓝色荧光蛋白(EBFP)、来自discosoma的柠檬和红色荧光蛋白
(dsRED)。
其也优选基本上不含培养基,即,培养基小于蛋白质制剂体积的约20%,更优选小于约
10%,并且最优选小于约5%。语言“基本上不含化学前体或其它化学物质”包括RHOA显性负多肽的制剂,其中所述多肽与参与多肽合成的化学前体或其它化学物质分离。在一个实施
例中,词语“基本上不含化学前体或其它化学物质”包括具有少于约30%(以干重计)的非
RHOA显性负多肽化学物质的化学前体,更优选小于约20%的非RHOA显性负多肽化学物质的
化学前体,仍更优选小于约10%的非RHOA显性负多肽化学物质的化学前体,并且最优选小
于约5%的非RHOA显性负多肽化学物质的化学前体的RHOA显性负多肽制剂。在优选的实施
例中,分离的多肽或其生物活性部分缺乏来自衍生有RHOA显性负多肽的同一动物的污染多
肽。典型地,此类多肽通过在非人细胞中重组表达例如人RHOA显性负多肽而产生。
合物形式调节(例如,降低)一种或多种下列生物活性:癌细胞存活、癌细胞增殖和肿瘤大
小/体积。蛋白质的部分优选是如本文所述的生物活性部分。在另一个优选的实施例中,
RHOA显性负多肽具有分别如SEQ ID NO 1、2或3所示的氨基酸序列或其片段,或者具有与如SEQ ID NO 1、2或3所示的氨基酸序列或其片段至少约50%、55%、60%、65%、70%、75%、
80%、85%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%或更高同源的氨基酸序列。在又一个优选的实施例中,RHOA显性负多肽具有由核苷酸序列编码的氨基酸序列,所述核苷酸序列例如在严格条件下与SEQ ID NO 4、5、6、7、8、9、10或11的核苷酸序列或其片段杂交,或者与SEQ ID NO 4、5、6、7、8、9、10或11所示的核苷酸序列或其片段至少约50%,优选至少约60%,更优选至少约70%,还更优选至少约80%,仍更优选至少约90%,并且最优选至少约95%或更高同源的核苷酸序列杂交。本发明优选的RHOA显性负多肽还优选具有
至少一种本文所述的RHOA显性负多肽生物活性。
更少的氨基酸,并且表现出RHOA显性负蛋白的至少一种活性。典型地,生物活性部分(肽,例如长度为例如50、55、60、65、70、75、80、85、90、95、100或更多个氨基酸的肽)包含结构域或基序(例如全长蛋白质减去信号肽)。在一个优选的实施例中,包括一个或多个本文所述结
构域/基序的蛋白质的生物活性部分可以调节(例如降低)一种或多种下列生物活性:癌细
胞存活、癌细胞增殖和肿瘤大小/体积。此外,其中蛋白质的其它区域缺失的其它生物活性部分可以通过重组技术制备,并由本文所述的一种或多种活性评估。优选地,RHOA显性负蛋白的生物活性部分包括一个或多个具有生物活性的选定结构域/基序或其部分。在一个实
施例中,目的显性负RHOA片段由全长显性负RHOA蛋白的一部分组成,其长度小于240、230、
220、210、200、195、190、185、180、175、170、165、160、155、150、145、140、135、130、125、120、
115、110、105、100、95、90、85、80、75或70个氨基酸。
宿主细胞中表达。RHOA显性负蛋白然后可以使用标准蛋白纯化技术通过适当的纯化方案从
细胞中分离。作为重组表达的替代,RHOA显性负蛋白、多肽或肽可以使用标准肽合成技术化学合成。此外,可以例如使用抗RHOA抗体从细胞(例如,携带RHOA显性负突变的癌细胞)中分离天然RHOA显性负蛋白。
端或C-末端融合。例如,在一个实施例中,融合蛋白是显性负RHOA-GST和/或显性负RHOA-Fc融合蛋白,其中显性负RHOA序列分别与GST或Fc序列的N-末端融合。此类融合蛋白可以使用显性负RHOA多肽制备。此类融合蛋白也可以促进重组显性负RHOA的纯化、表达和/或生物利用度。在另一个实施例中,融合蛋白是在其C末端含有异源信号序列的显性负RHOA蛋白。在某些宿主细胞(例如哺乳动物宿主细胞)中,显性负RHOA的表达和/或分泌可通过使用异源
信号序列来增加。
见,例如《,分子生物学最新方案》,Ausubel等人编辑,约翰威立父子出版公司:1992)。此外,多种已经编码融合部分(例如GST多肽)的表达载体是可商购的。可将编码显性负RHOA的核
酸克隆到此类表达载体中,使得融合部分框内连接到RHOA显性负蛋白。
性亚组的同源物对受试者进行治疗,与用显性负RHOA蛋白的天然存在形式进行治疗相比,
在受试者中具有较少的副作用。
文库可通过例如将合成寡核苷酸的混合物酶促连接到基因序列中,使得潜在显性负RHOA序
列的简并组可作为单独多肽表达,或者可替代地作为其中含有显性负RHOA序列组的更大融
合蛋白的组(例如,用于噬菌体展示)表达来产生。有多种方法可用于从简并寡核苷酸序列
产生潜在显性负RHOA同源物的文库。简并基因序列的化学合成可以在自动DNA合成仪中进
行,然后将合成的基因连接到合适的表达载体中。使用基因简并组允许在一个混合物中提
供编码所需的一组潜在显性负RHOA序列的所有序列。合成简并寡核苷酸的方法是本领域已
知的(参见例如,Narang,S.A.(1983)《四面体(Tetrahedron)》39:3;Itakura等人(1984)《生物化学年鉴(Annu.Rev.Biochem.)》53:323;Itakura等人(1984)《科学》198:1056;Ike等人(1983)《核酸研究》11:477)。
列的双链PCR片段,使双链DNA变性,使DNA复性以形成可包括来自不同切口产物的有义/反
义对的双链DNA,通过用S1核酸酶处理从重新形成的双链体中除去单链部分,并将所得片段文库连接到表达载体中。通过这种方法,可以得到编码显性负RHOA蛋白的N-末端、C-末端和各种大小的内部片段的表达文库。
同源物的组合诱变产生的基因文库。最广泛使用的技术,其可经受高通量分析检验,用于筛选大的基因文库,所述文库典型地包括将基因文库克隆到可复制的表达载体中,用得到的
载体文库转化合适的细胞,和在其中检测所需活性促进分离编码其产物被检测的基因的载
体的条件下表达组合基因。递归整体诱变(REM),一种提高文库中功能突变体频率的新技
术,可与筛选测定组合使用,以鉴定显性负RHOA同源物(Arkin和Youvan(1992)《美国科学学院学报》89:7811-7815)。
基于非细胞的测定。
变多肽。
定相对于对照降低的癌细胞的存活力或增殖,从而鉴定降低癌细胞的存活力或增殖的测试
试剂。例如,如本文进一步描述的,可以通过监测细胞数目计数、细胞运动、基质胶测定、诱导与增殖和/或侵袭有关的基因表达等来确定细胞增殖或侵袭。
差异来分析荧光核苷酸类似物N-甲基氨茴酰-GTP(mant-GTP)到RHOA中的摄入。在RHOA存在
下mant-GTP荧光强度的增强表明GTPase摄入了核苷酸。
力。
剂可用于动物模型来确定用所述试剂治疗的功效、毒性或副作用。可替代地,可以在动物模型中使用如本文所述鉴定的试剂来确定此类试剂的作用机理。此外,本发明涉及通过上述
筛选测定鉴定的新型试剂在如本文所述的治疗中的用途。
酸;和2)RHOA显性负多肽或其生物活性片段),或已确定其治疗具有CDH1水平降低的癌症的试剂功效的预期可能性的受试者是哺乳动物(例如小鼠、大鼠、灵长类动物、非人类哺乳动物、家畜如狗、猫、牛、马等),并且优选是人。在另一个实施例中,受试者是癌症的动物模型。
例如,动物模型可以是人源癌症的原位异种移植动物模型。
肽或其生物活性片段的核酸;和2)RHOA显性负多肽或其生物活性片段。预防剂的施用可以
在CDH1水平降低的癌症特征性症状出现之前进行,使得癌症得到预防或替代地延缓其发
展。
肽或其生物活性片段的核酸;和2)RHOA显性负多肽或其生物活性片段。
肽或其生物活性片段。
剂),或选自由以下组成的组的试剂的组合:1)编码RHOA显性负多肽或其生物活性片段的核酸;和2)RHOA显性负多肽或其生物活性片段。
桌上参考手册(Physicians’Desk Reference)(PDR)公开了已用于治疗各种癌症的化学治
疗剂的剂量。这些前述化学治疗药物在治疗上有效的剂量方案和剂量将取决于所治疗的特
定癌症、疾病的程度和本领域技术人员熟悉的其它因素,并且可以由医生确定。
抗肿瘤免疫应答来微调免疫应答。免疫检查点蛋白是本领域公知的,并且包括但不限于
CTLA-4、PD-1、VISTA、B7-H2、B7-H3、PD-L1、B7-H4、B7-H6、2B4、ICOS、HVEM、PD-L2、CD160、gp49B、PIR-B、KIR家族受体、TIM-1、TIM-3、TIM-4、LAG-3、BTLA、SIRPα(CD47)、CD48、2B4(CD244)、B7.1、B7.2、ILT-2、ILT-4、TIGIT和A2aR(例如,参见WO 2012/177624)。一种或多种免疫检查点抑制剂的抑制可以阻断或中和抑制性信号转导,从而上调免疫应答,以便更有
效地治疗癌症。
生剂量放大。它们还可以充当抗癌基因的载体,从而允许它们特异性地递送至肿瘤部位。免疫疗法可包括用于宿主的短期保护的被动免疫,这通过施用针对癌症抗原或疾病抗原的预
先形成的抗体来实现(例如,向肿瘤抗原施用任选与化学治疗剂或毒素连接的单克隆抗
体)。例如,已知抗VEGF和mTOR抑制剂可有效治疗肾细胞癌。免疫疗法也可以专注于使用癌细胞系的细胞毒性淋巴细胞识别的表位。可替代地,反义多核苷酸、核酶、RNA干扰分子、三螺旋多核苷酸等可用于选择性地调节与肿瘤或癌症的发生、发展和/或病理相关的生物分
子。
Inc.));PJ34(Soriano等人(2001)《循环研究(Circ.Res.)》89(8):684-91;Pacher等人
(2002)《英国药理学杂志(Br.J.Pharmacol.)》135(6):1347–1350);3-氨基苯甲酰胺
(Trevigen);4-氨基-1,8-萘二甲酰亚胺;(Trevigen);6(5H)-菲二酮(Trevigen);苯甲酰胺(美国专利参考36,397);和NU1025(Bowman et al.(2001)《英国癌症杂志(Br.J.Cancer)》
84(1):106-12)。作用机理通常与PARP抑制剂结合PARP并降低其活性的能力有关。PARP催化β-烟酰胺腺嘌呤二核苷酸(NAD+)转化为烟酰胺和聚ADP-核糖(PAR)。聚(ADP-核糖)和PARP
均与转录、细胞增殖、基因组稳定性和致癌作用的调节有关(Bouchard V.J.等人《实验血液学(Experimental Hematology)》第31卷,第6期,2003年6月,第446-454(9)页;Herceg Z.;
Wang Z.-Q.《突变研究/诱变的基础和分子机制(Mutation Research/Fundamental and
Molecular Mechanisms of Mutagenesis)》第477卷,第1期,2001年6月2日,第97-110(14)页)。聚(ADP-核糖)聚合酶1(PARP1)是修复DNA单链断裂(SSB)的关键分子(de Murcia等人
(1997)《美国科学学院学报》94:7303-7307;Schreiber等人(2006)《自然评论分子细胞生物学(Nat Rev Mol Cell Biol)》7:517-528;Wang等人(1997)《基因与发展》11:2347-2358)。
通过抑制PARP1功能来阻碍SSB修复诱导DNA双链断裂(DSB),所述DNA双链断裂可触发具有
缺陷同源性指导的DSB修复的癌细胞中的合成致死性(Bryant等人(2005《自然》434:913-
917;Farmer等人(2005)《自然》434:917-921)。前述化学治疗剂的实例是说明性的,而不是限制性的。
为内部疗法或近距离疗法来施用,其中放射源被放置在体内靠近癌细胞或肿瘤块的位置。
还包括使用光动力疗法,其包括施用光敏剂如血卟啉及其衍生物、维替泊芬(BPD-MA)、酞
菁、光敏剂Pc4、脱甲氧基-竹红菌甲素A;和2BA-2-DMHA。
备,热疗可以是局部、区域和全身热疗。热疗几乎总是与其它形式的疗法(例如放射疗法、化学疗法和生物疗法)一起使用,以试图提高其有效性。局部热疗是指施加到很小区域如肿瘤的热量。所述区域可以用来自人体外部设备的针对肿瘤的高频波从外部加热。为了实现内
部加热,可以使用几种类型的无菌探头中的一种,包括细的加热丝或装满温水的空心管;植入的微波天线;和射频电极。在局部热疗中,会加热器官或肢体。产生高能量的磁铁和设备放置在待加热的区域上。在另一种称为灌注的方法中,将患者的一些血液取出,加热,然后泵送(灌注)到内部待加热的区域。全身加热用于治疗已扩散到全身的转移性癌症。可以使
用温水毯、热蜡、感应线圈(如电热毯中的线圈)或热室(类似于大型孵化器)来实现。热疗不会引起放射副作用或并发症的任何明显增加。但是,直接加热到皮肤上的热量会在大约一
半的患者中引起不适或甚至明显的局部疼痛。还会引起水泡,通常会迅速愈合。
破坏癌细胞。在PDT中,将光敏剂注入血液中,并被全身细胞吸收。所述试剂在癌细胞中的保留时间比在正常细胞中的保留时间更长。当治疗的癌细胞暴露于激光下时,光敏剂吸收光
并产生破坏治疗的癌细胞的活性氧。必须谨慎安排光暴露时间,使得在大多数光敏剂离开
健康细胞但仍存在于癌细胞中时发生。PDT中使用的激光可以通过光纤(非常细的玻璃丝)
定向。光纤放置在靠近癌症的位置,以递送适当数量的光。可以将光纤通过支气管镜导入肺以治疗肺癌,或通过内窥镜导入食管中以治疗食道癌。PDT的优点是它对健康组织的损害最小。但是,由于当前使用的激光不能通过超过3厘米的组织(略大于一又八分之一英寸),因此PDT主要用于治疗皮肤上或恰好在皮肤下或内部器官衬里层上的肿瘤。光动力疗法可使
皮肤和眼睛在治疗后6周或更长时间对光敏感。建议患者避免阳光直射和室内明亮至少6
周。如果患者必须去户外,则需要穿着防护服,包括太阳镜。PDT的其它暂时性副作用与特定部位的治疗有关,并且可能包括咳嗽、吞咽困难、腹痛和呼吸痛苦或呼吸短促。1995年12月,美国食品药品监督管理局(FDA)批准了一种称为卟吩姆钠或 的光敏剂,用于缓解
引起阻塞的食道癌症状,以及不能单独用激光令人满意地治疗的食道癌症状。1998年1月,FDA批准卟吩姆钠用于不适合常规肺癌治疗的患者的早期非小细胞肺癌治疗。国家癌症研
究所和其它机构正在支持临床试验(研究),以评价光动力疗法对几种类型的癌症(包括膀
胱癌、脑癌、喉癌和口腔癌)的用途。
织(代替手术刀)。尽管有几种不同的激光,但在医学上仅广泛使用三种:二氧化碳(CO2)激光-这种类型的激光可以去除皮肤表面的薄层而不会穿透更深的层。该技术在治疗尚未深
入皮肤扩散的肿瘤和某些癌前病况时特别有用。作为传统手术刀外科手术的替代,CO2激光还能够切割皮肤。激光以这种方式用于去除皮肤癌。钕:钇铝石榴石(Nd:YAG)激光-该激光发出的光比其它类型激光发出的光可以更深地渗透到组织中,并且可以使得血液迅速凝
结。它可以通过光纤携带到身体较难接近的部位。这种类型的激光有时用于治疗咽喉癌。氩激光-该激光只能穿过组织的浅层,并且因此可用于皮肤病学和眼部外科手术。它也与光敏染料一起在称为光动力疗法(PDT)的程序中用于治疗肿瘤。与标准手术工具相比,激光具有若干优势,包括:激光比手术刀更精确。切口附近的组织受到保护,因为几乎不与周围的皮肤或其它组织接触。激光产生的热量对手术部位进行消毒,从而降低了感染的风险。因为激光的精度允许较小的切口,所以可能需要较少的操作时间。修复时间通常会缩短;由于激光热密封血管,因此出血、肿胀或疤痕更少。激光手术可能不太复杂。例如,使用光纤,可以将激光导向身体部位而不会产生大切口。可以在门诊病人的基础上完成更多程序。激光可以
两种方式用于治疗癌症:通过加热使肿瘤缩小或破坏,或者通过激活破坏癌细胞的化学物
质(称为光敏剂)。在PDT中,光敏剂保留在癌细胞中,并且可以被光刺激以引起杀死癌细胞的反应。CO2和Nd:YAG激光用于缩小或破坏肿瘤。它们可以与内窥镜一起使用,内窥镜是允许医生看到身体的某些区域如膀胱的管。来自某些激光器的光可以通过装有光纤的柔性内
窥镜传输。这允许医生看到并在除了外科手术外无法触及的身体部位处进行工作,因此允
许激光束非常精确地瞄准。激光还可以与低功率显微镜一起使用,从而使医生可以清楚地
看到要治疗的部位。与其它仪器一起使用时,激光系统可以产生直径小至200微米(小于非
常细的线的宽度)的切割区域。激光用于治疗多种类型的癌症。激光手术是声门(声带)癌、宫颈癌、皮肤癌、肺癌、阴道癌、外阴癌和阴茎癌某些阶段的标准治疗。除了用于破坏癌症之外,激光手术还用于帮助缓解癌症引起的症状(姑息治疗)。例如,可以使用激光来缩小或破坏阻塞患者气管(嗓子)的肿瘤,使其更容易呼吸。其有时也用于结直肠癌和肛门癌的缓解。
激光诱导间质热疗(LITT)是激光治疗的最新进展之一。LITT使用与称为热疗的癌症疗法相
同的想法;热量可以通过破坏细胞或剥夺其生存所需的物质来帮助缩小肿瘤。在这种治疗
中,激光指向体内的间隙区域(器官之间的区域)。然后,激光会升高肿瘤的温度,从而损坏或破坏癌细胞。
治疗方案的持续评估,其中通过本发明的方法确定的受试者癌症的表型是确定最佳治疗剂
量和方案的因素。
酸;和2)RHOA显性负多肽或其生物活性片段)涉及癌症例如肿瘤对疗法的任何反应,优选涉及在新辅助或辅助化学疗法开始后肿瘤质量和/或体积的变化。可以在新辅助或辅助情况
下评估肿瘤反应,其中可以将全身干预后的肿瘤大小与通过CT、PET、乳房X线照片、超声或触诊测量的初始大小和尺寸进行比较,并且可以在组织学上估计肿瘤的细胞结构,并与开
始治疗前进行的肿瘤活检的细胞结构进行比较。活检或手术切除后,也可通过肿瘤的卡尺
测量或病理检查来评估反应。可以以定量方式记录反应,例如肿瘤体积或细胞结构的百分
比变化,或使用半定量评分系统如残留的癌症负担(Symmans等人(2007)《临床肿瘤学杂志
(J.Clin.Oncol.)》25:4414-4422)或Miller-Payne评分(Ogston等人(2003)《乳房
(Breast)》(爱丁堡,苏格兰)12:320-327)以定性方式记录反应,如“病理完全缓解”(pCR)、“临床完全缓解”(cCR)、“临床部分缓解”(cPR)、“临床稳定疾病”(cSD)、“临床进行性疾病”(cPD)或其它定性标准。肿瘤反应的评估可以在新辅助或辅助疗法开始后的早期进行,例如在数小时、数天、数周之后或优选在数月之后。反应评估的典型终点是新辅助化学疗法终止后或手术切除残余肿瘤细胞和/或肿瘤床后。
CBR=6个月内CR+PR+SD。在一些实施例中,表1、2和/或3治疗方案中列出的生物标志物的特定调节剂的CBR为至少25%、30%、35%、40%、45%、50%、55%、60%、65%、70%、75%、
80%、85%或更高。
准涉及“存活”,其包括以下所有:直至死亡存活,也称为总体存活(其中所述死亡可能与病因无关或与肿瘤相关);“无复发存活”(其中术语复发应包括局部和远处复发);无转移存活;无疾病存活(其中术语疾病应包括癌症和与其相关的疾病)。所述存活的长度可以通过
参考定义的起点(例如,诊断时间或治疗开始)和终点(例如,死亡、复发或转移)来计算。此外,治疗疗效的标准可以扩展到包括对化学疗法的反应、存活的概率、在给定时间段内转移的概率和肿瘤复发的概率。
确定的生物标志物测量相关。结果测量可能是对新辅助治疗中给出的疗法的病理反应。可
替代地,可以在一段时间内监测癌症疗法(例如,选自由以下组成的组的至少一种试剂:1)编码RHOA显性负多肽或其生物活性片段的核酸;和2)RHOA显性负多肽或其生物活性片段)
后受试者(其生物标志物测量值是已知的)的结果量度,如总体存活和无疾病存活。在某些
实施例中,向每个受试者施用相同剂量的试剂。在相关的实施例中,所施用的剂量是该试剂在本领域中已知的标准剂量。监测受试者的时间段可能会有所不同。例如,可以监测受试者至少2、4、6、8、10、12、14、16、18、20、25、30、35、40、45、50、55或60个月。与癌症疗法(例如,选自由以下组成的组的至少一种试剂:1)编码RHOA显性负多肽或其生物活性片段的核酸;和
2)RHOA显性负多肽或其生物活性片段)的结果相关的生物标志物测量阈值可以使用方法如
实验部分所述的那些确定。
下组成的组的至少一种试剂:1)编码RHOA显性负多肽或其生物活性片段的核酸;和2)RHOA
显性负多肽或其生物活性片段。如以下详细描述的,本发明的药物组合物可以被具体配制
为以固体或液体形式施用,包括适合于以下的那些:(1)口服施用,例如,灌药(水性或非水性溶液或悬浮液)、片剂、大丸剂、粉剂、颗粒剂、糊剂;(2)肠胃外施用,例如通过皮下、肌内或静脉内注射作为例如无菌溶液或悬浮液;(3)局部应用,例如作为应用于皮肤的乳膏、软膏或喷雾剂;(4)阴道内或直肠内,例如作为子宫托、乳膏或泡沫;(5)气雾剂,例如作为含有所述化合物的水性气雾剂、脂质体制剂或固体颗粒。
酸;和2)RHOA显性负多肽或其生物活性片段,所述量有效于产生一些期望的治疗效果,例
如,以合理的收益/风险比减少癌症中存活或增殖的细胞数量,和/或减小包含癌细胞的肿
瘤的体积或大小。
(6)明胶;(7)滑石;(8)赋形剂,如可可脂和栓剂蜡;(9)油,如花生油、棉籽油、红花油、芝麻油、橄榄油、玉米油和大豆油;(10)二醇,如丙二醇;(11)多元醇,如甘油、山梨糖醇、甘露糖醇和聚乙二醇;(12)酯,如油酸乙酯和月桂酸乙酯;(13)琼脂;(14)缓冲剂,如氢氧化镁和氢氧化铝;(15)海藻酸;(16)无热原水;(17)等渗盐水;(18)林格氏液;(19)乙醇;(20)磷酸盐缓冲溶液;和(21)药物制剂中使用的其它无毒相容性物质。
式的治疗剂与合适的有机酸或无机酸单独反应,并分离由此形成的盐来制备。代表性的盐
包括氢溴酸盐、盐酸盐、硫酸盐、硫酸氢盐、磷酸盐、硝酸盐、乙酸盐、戊酸盐、油酸盐、棕榈酸盐、硬脂酸盐、月桂酸盐、苯甲酸盐、乳酸盐、磷酸盐、甲苯磺酸盐、柠檬酸盐、马来酸盐、富马酸盐、琥珀酸盐、酒石酸盐、萘甲酸盐、甲磺酸盐、葡庚糖酸盐、乳糖醛酸盐和月桂基磺酸盐等(参见例如Berge等人(1977)《药物科学杂志(J.Pharm.Sci.)》66:1-19)。
的最终分离和纯化期间原位制备,或通过使纯化的治疗剂以其游离酸形式与合适的碱如药
学上可接受的金属阳离子的氢氧化物、碳酸盐或碳酸氢盐,与氨或与药学上可接受的有机
伯、仲或叔胺分别反应来制备。代表性的碱金属或碱土金属盐包括锂盐、钠盐、钾盐、钙盐、镁盐和铝盐等。可用于形成碱加成盐的代表性有机胺包括乙胺、二乙胺、乙二胺、乙醇胺、二乙醇胺、哌嗪等(参见,例如,Berge等人,同上)。
通常将是产生治疗效果的化合物的量。通常,在百分之一百中,该量将为约1%至约99%的活性成分,优选地约5%至约70%,最优选地约10%至约30%。
类型的固体组合物用作软和硬填充明胶胶囊中的填充剂。
供所需的释放特性的可变比例的羟丙基甲基纤维素,其它聚合物基质,脂质体和/或微球体来提供活性成分在其中的缓慢或受控释放。它们可以通过例如通过细菌截留过滤器过滤或
通过以无菌固体组合物的形式掺入灭菌剂进行灭菌,所述灭菌固体组合物可以在使用前立
即溶于无菌水或某些其它无菌可注射介质中。这些组合物还可以任选地含有遮光剂,并且
可以是仅或优选在胃肠道的某些部分中任选地以延迟方式释放活性成分的组合物。可以使
用的包埋组合物的实例包括聚合物质和蜡。如果合适,活性成分也可以与一种或多种上述
赋形剂呈微囊形式。
聚乙二醇、栓剂蜡或水杨酸盐,并且在室温下为固体,但在体温下为液体,并且因此会在直肠或阴道腔内融化并释放出活性剂。
液。声波喷雾器是优选的,因为它们使试剂暴露于剪切状态最小化,这可能导致化合物的降解。
表面活性剂(吐温、普朗尼克或聚乙二醇)、无毒蛋白如血清白蛋白、脱水山梨糖醇酯、油酸、卵磷脂和氨基酸如甘氨酸、缓冲剂、盐、糖或糖醇。气雾剂通常由等渗溶液制备。
以通过提供速率控制膜或将拟肽在聚合物基质或凝胶中分散来控制此类通量的速率。
稠剂等渗的抗氧化剂、缓冲剂、抑菌剂、溶质。
质,可以控制药物的释放速率。其它可生物降解的聚合物的实例包括聚(原酸酯)和聚(酸
酐)。还可以通过将药物截留在与身体组织相容的脂质体或微乳液中来制备储库型可注射
制剂。
予。
治疗反应,而不会对受试者产生毒性。
Chen等人(1994)《美国科学学院学报》91:3054 3057)来递送至受试者。基因疗法载体的药物制剂可以将基因疗法载体包括在可接受的稀释剂中,或者可以包含缓释基质,其中嵌入
有基因递送载体。可替代地,当完整的基因递送载体可从重组细胞完整产生时,例如逆转录病毒载体,药物制剂可包括一个或多个产生基因递送系统的细胞。
响。所述试剂可以单独施用,或与药学上可接受的载体联合施用。所述试剂还可以作为前药施用,其在体内转化为其活性形式。所述试剂还可以与一种或多种另外的治疗剂组合(例
如,在其之前、之后或与其同时)施用。
多种其它因素,包括但不限于特定治疗剂的药效学特性及其施用方式和途径;所需的治疗
时间进程;哺乳动物的物种;其大小、年龄和总体健康;涉及的特定疾病;疾病的程度或参与程度或严重程度;个别受试者的反应;施用的特定化合物;施用方式;所施用制剂的生物利用度特征;选择的剂量方案;并发治疗的种类;和其它相关情况。
地,可以使用在治疗期间获得的两个或更多个连续的样本而无需治疗前的基线样本。在此
类用途中,将从受试者获得的第一样本用作确定来自患有所述病症的受试者的细胞表达是
增加还是减少的基线。
染,即通过递送“裸”DNA或在与胶体分散系统的复合物中,将DNA构建体递送至细胞。胶体系统包括大分子复合物、纳米胶囊、微球、珠和基于脂质的系统,包括水包油乳液、胶束、混合胶束和脂质体。本发明优选的胶体系统是脂质复合的或脂质体配制的DNA。在前一种方法
中,在配制DNA之前,例如在用脂质配制DNA之前,可以首先通过实验优化含有带有所需DNA构建体的转基因的质粒的表达(例如,将内含子包含在5'非翻译区中,并消除不必要的序
列)(Felgner等人(1995)《纽约科学院年鉴(Ann NY Acad Sci126-139)》。DNA的配制,例如用各种脂质或脂质体材料进行的DNA配制,可以用已知的方法和材料进行,并递送到受体哺乳动物中。参见例如,Canonico等人(1994)《美国呼吸系统细胞和分子生物学杂志(Am J
Respir Cell Mol Biol)》10:24-29;Tsan等人(1995)《美国生理学杂志(Am J Physiol)》
268:L1052-1056;Alton等人(1993)《自然-遗传学(Nat Genet.)》5:135-142和美国专利第
5,679,647号。
中,所述细胞含有窦状毛细血管。另一方面,主动靶向涉及通过将脂质体偶联至特定的配体如单克隆抗体、糖、糖脂或蛋白质或通过改变脂质体的组成或大小来改变脂质体,从而实现靶向器官和细胞类型而非自然定位部位。
的DNA施用于受试者的多个位点(见下文)。
细胞增殖激活的启动子,例如胸苷激酶和胸苷酸合酶启动子。其它优选的启动子包括可被
病毒感染激活的启动子,例如α-和β-干扰素启动子,以及可被激素激活的启动子,例如雌激素。可以使用的其它启动子包括Moloney病毒LTR、CMV启动子和小鼠白蛋白启动子。启动子可以是组成型的或诱导型的。
某些实施例中,与杀死的腺病毒(Curiel等人(1992)《人类基因疗法(Hum.Gene.Ther.)》3:
147-154)连接。可以任选使用的其它媒介物包括DNA-配体(Wu等人(1989)《生物化学杂志》
264:16985-16987)、脂质-DNA组合(Felgner等人(1989)《美国科学学院学报》84:7413-
7417)、脂质体(Wang等人(1987)《美国科学学院学报》84:7851-7855)和微粒(Williams等人(1991)《美国科学学院学报》88:2726-2730)。
考文献中进行了描述,包括例如,Mann等人(1983)《细胞》33:153,Cane和Mulligan(1984)《美国科学学院学报》81:6349,Miller等人(1990)《人类基因疗法(Human Gene Therapy)》
1:5-14,美国专利第4,405,712号、第4,861,719号和第4,980,289号以及PCT申请第WO 89/
02,468号、第WO 89/05,349号和第WO 90/02,806号。多种逆转录病毒基因递送媒介物可用
于本发明,包括例如EP 0,415,731;WO 90/07936;WO 94/03622;WO 93/25698;WO 93/
25234;美国专利第5,219,740号;WO 9311230;WO 9310218;Vile和Hart(1993)《癌症研究(Cancer Res.)》53:3860-3864;Vile和Hart(1993)《癌症研究》53:962-967;Ram等人(1993)《癌症研究》53:83-88;Takamiya等人(1992)《神经科学研究杂志(J.Neurosci.Res.)》33:
493-503;Baba等人(1993)《神经外科杂志(J.Neurosurg.)》79:729-735(美国专利第4,777,
127号、GB 2,200,651、EP 0,345,242和WO91/02805)中描述的那些。
Neurovex的WO 00/08191)、牛痘病毒(Ridgeway(1988)“哺乳动物表达载体”,载于:
Rodriguez RL,Denhardt DT编辑,《载体:分子克隆载体及其用途的调查(Vectors:A
survey of molecular cloning vectors and their uses)》;Stoneham:Butterworth;
Baichwal和Sugden(1986)“源自动物DNA病毒的基因转移载体:转移基因的瞬时和稳定表
达”,载于:Kucherlapati R编辑,《基因转移(Gene transfer)》,纽约:增压器出版社;
Coupar等人(1988)《基因》68:1-10),和几种RNA病毒。优选的病毒包括α病毒、痘病毒、沙粒病毒、牛痘病毒、脊髓灰质炎病毒等。它们为各种哺乳动物细胞提供多种有吸引力的功能
(Friedmann(1989)《科学》244:1275-1281;Ridgeway,1988,同上;Baichwal和Sugden,1986,同上;Coupar等人,1988,同上;Horwich等人(1990)《病毒学杂志(J.Virol.)》64:642-650)。
除DNA序列和/或改变核DNA序列。例如,可以通过定点诱变来改变核DNA序列。
另外,可以根据本领域公知的药理方法(例如,聚乙二醇化、糖基化、寡聚等)来修饰RHOA显性负多肽及其片段,以进一步增强所需的生物活性,例如增加生物利用度和减少蛋白水解
降解。
酶通过口服施用他莫昔芬(西格玛(Sigma),T5648)TAM(1-5mg/0.2ml玉米油,如所示)激活。
Dana-Farber癌症研究所的伦理委员会批准了所有动物研究和程序。
织。洗涤后,将组织放入35mm培养皿中,将培养皿置于生物罩中,并用细剪刀将组织切碎。用
1,000μl移液器加入1ml胶原酶溶液(英杰公司,17100-0017,2mg/ml),并将组织碎片悬浮在溶液中,在细胞培养箱中孵育培养皿,并且每5-10分钟使用1,000μl移液器剧烈移取组织混合物。移液后,使用相显微镜或解剖显微镜检查单个上皮单位(隐窝/凹坑)是否已与较大的组织碎片分离。在50ml离心管中放置70μm细胞过滤器,并使用1000μl移液管将组织混合物通过细胞过滤器过滤。用9ml洗涤介质洗涤过滤器,并将过滤后的细胞悬液转移至15ml离心管中,然后以20x g使管离心5分钟。加入500μl-1ml洗涤介质,并将细胞重悬在管中。将适量的悬浮液转移至1.5ml管(每支管1,000–3,000个完整的上皮单位)中,并以200x g使管离心
5分钟。将管置于冰上并将上皮单位重悬于Matrigel(BD,356234,每管15μl)中。将管和24孔板放在冰上,并使用20μl移液管将15μl细胞-Matrigel悬浮液加入到每个孔的中心,并用移液管尖端小心地铺开。在细胞培养箱中孵育板以聚合Matrigel。将板倒置,以避免上皮单元附着在板表面。向每个孔中加入500μl的50%条件培养基。对于小肠和盲肠,将500μl的50%条件培养基(加入重组Wnt3a(R&D系统,5036-WN-010)(100ng/ml)和R-脊椎蛋白1(R&D系统,
3474-RS-050))(500ng/ml)加入到含有10μM Y27632(R&D系统,1254)和10μM SB431542(R&D系统,1614)的高级DMEM/F-12(英杰公司,12634-010)中。至少每2天更换一次培养基。
悬浮液合并。将管以200x g离心5分钟,然后吸去上清液,剩下约100μl。在200μl胰蛋白酶-EDTA中重悬类器官,并将管在37℃下孵育5分钟。加入1ml洗涤介质,并通过剧烈移液使类器官分解。将管以200g离心5分钟,然后将细胞重悬于250μl慢病毒溶液(由LentiXTM浓缩器
(Clontech,类别#631231)浓缩,含8μg/ml聚凝胺(西格玛,TR-1003),10μM Y27632)。将悬浮液转移到48孔板上的孔中。用石蜡膜密封板,并通过将板在600x g 32℃下离心1小时进行
旋转渗滤。在37℃下孵育板6小时以允许转导。向孔中加入1ml条件培养基,重悬并将悬浮液转移至1.5ml管中。将管以200x g离心5分钟,并将细胞重悬于15μl基质胶中,遵循培养类器官的程序,并选择适当的抗生素。
Institute)的机构动物护理和使用委员会的指导,对所有动物进行饲养和使用。
之后进行。E-钙粘蛋白(CDH1)的减少和/或丧失是浸润性小叶乳腺癌的关键标志,并且靶向CDH1的功能丧失突变存在于50%-60%的浸润性小叶乳腺癌中,并且被认为是一种在匹配
的原位小叶癌中通常观察到的早期事件(McCart Reed等人(2015)《乳腺癌研究(Breast
Cancer Res.)》17:12)。本文证明,小GTPase RHOA显性负型(如T19N、G17V、G17E等)的异位表达导致显著抑制无CDH1细胞(而非具有完整CDH1的细胞)的增殖和诱导细胞死亡。这些结
果通过使用等基因胃类器官模型(有或没有E-钙粘蛋白)和等基因乳房上皮细胞模型(有或
没有E-钙粘蛋白)和具有E-钙粘蛋白损失的NUGC4和MKN45弥散性胃细胞的异种移植瘤生长
模型得到证实。具有上皮间质转化(EMT)、弥漫性胃癌和小叶乳腺癌的癌症相似之处在于E-钙粘蛋白丢失和/或下调。这些发现表明,RHOA显性负型可以用作DGC和小叶乳腺癌以及其
它具有EMT表型的癌症的有效疗法。