一种乙烯诱导的BAHD酰基转移酶ERAT1基因及其应用

摘要

本发明提供了一种乙烯诱导的BAHD酰基转移酶ERAT1基因及其应用。所述乙烯诱导的BAHD酰基转移酶ERAT1基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示。本发明构建了ERAT1基因的RNAi基因沉默载体，并获得了ERAT1基因的RNAi基因沉默株系，该株系在干旱胁迫和盐胁迫的条件下，与野生型株系相比，种子的发芽率降低，幼苗的根长变短；并且ERAT1基因的RNAi基因沉默株系能够参与合成多种香豆酰胺类物质，因此本发明的技术方案为植物中对香豆酰胺类物质的生物合成和抗渗透胁迫育种提供了理论依据和实验基础。

权利要求

1.乙烯诱导BAHD酰基转移酶ERAT1基因在参与植物渗透胁迫响应中的应用，其特征在于，所述ERAT1基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示；所述ERAT1基因的表达受乙烯的诱导调控；所述植物渗透胁迫是盐胁迫和干旱胁迫。

2.权利要求1所述的乙烯诱导BAHD酰基转移酶ERAT1基因在参与植物香豆酰胺类物质的生物合成中的应用，其特征在于，所述香豆酰胺类物质是阿魏酰亚精胺、N‑对香豆酰基腐胺、N'‑对香豆酰基胍丁胺、N‑阿魏酰基胍丁胺、N‑(4'‑O‑糖基)‑对香豆酰胺丁胺、N‑(4'‑O‑糖基)‑阿魏酰胍丁胺、N'‑对香豆酰基腐胺或N‑对香豆酰丁胺。

说明书

一种乙烯诱导的BAHD酰基转移酶ERAT1基因及其应用

技术领域

[0001] 本发明属于生物基因工程领域，具体涉及一种乙烯诱导的BAHD酰基转移酶ERAT1基因及其应用。

背景技术

[0002] 乙烯是一种气态的植物激素，广泛参与植物的种子萌发、器官衰老、果实成熟、叶片脱落及对逆境和病原菌侵染的反应等过程。拟南芥是植物激素分子生物学研究的模式作物，很多植物激素的信号转导途径都是通过对拟南芥的研究来阐明的，这其中也包括乙烯信号转导途径。在拟南芥的乙烯信号转导途径中，植物体内合成的乙烯首先与位于内质网和高尔基体上的乙烯受体结合，正常情况下，乙烯受体与CTR1蛋白结合，协同负调控下游的乙烯反应，从而抑制下游的信号转导和相应基因的表达。当乙烯与其受体结合后，乙烯受体的蛋白质构象发生改变，乙烯受体与CTR1的结合受到抑制后，乙烯受体与下游的正调控因子EIN2结合，从而激活EIN2蛋白。激活后的EIN2蛋白在S645位点发生去磷酸化后，其C端被剪切下来，进入细胞核并且激活下游的EIN3/EILs转录因子，进而导致AP2/ERFs等一系列生长和抗逆等相关基因的表达。尽管目前针对乙烯的信号转导途径的研究较多，但却没有任何有关于乙烯参与酰基转移酶基因表达及调控功能的报道被公开。

发明内容

[0003] 本发明提供了一种乙烯诱导的BAHD酰基转移酶ERAT1基因及其应用。本发明通过多种实验的综合分析获得一种能够编码BAHD酰基转移酶的新基因ERAT1(基因编号为AT2G39980)，并通过实验验证了ERAT1基因具有调控对植物香豆酰胺类物质的生物合成和渗透胁迫响应的功能。

[0004] 为达到解决上述生产问题的目的，本发明采用以下技术方案予以实现：

[0005] 本发明提供了一种乙烯诱导BAHD酰基转移酶ERAT1基因，所述ERAT1基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示。

[0006] 进一步的，所述ERAT1基因的表达受乙烯的诱导调控，并且位于乙烯信号通路的下游。

[0007] 进一步的，所述ERAT1基因在多种组织器官中发挥功能，不存在组织特异性。

[0008] 进一步的，所述ERAT1基因具有参与植物渗透胁迫响应的功能。

[0009] 进一步的，所述ERAT1基因具有参与植物香豆酰胺类物质的生物合成的功能。

[0010] 进一步的，所述ERAT1基因的表达能够受到干旱胁迫和盐胁迫的影响。

[0011] 进一步的，所述ERAT1基因的表达能够影响植株幼苗对逆境的敏感度。

[0012] 本发明还提供了一种基因沉默载体，所述基因沉默载体为pB7GWIWG(II).0，其含有如SEQ ID NO.1所示的ERAT1基因。

[0013] 本发明还提供了一种erat1突变体，所述erat1突变体含有如SEQ ID NO.1所示的ERAT1基因。

[0014] 本发明还提供了乙烯诱导BAHD酰基转移酶ERAT1基因在参与植物渗透胁迫中响应的应用。

[0015] 进一步的，在渗透胁迫条件下，ERAT1基因的RNAi基因沉默株系与野生型株系相比种子发芽率降低。

[0016] 进一步的，在渗透胁迫条件下，ERAT1基因的RNAi基因沉默株系的幼苗与野生型株系相比根长变短。

[0017] 进一步的，所述ERAT1基因的RNAi基因沉默株系的幼苗比成苗更敏感。

[0018] 进一步的，所述植物渗透胁迫包括盐胁迫和干旱胁迫。

[0019] 本发明还提供了乙烯诱导BAHD酰基转移酶ERAT1基因在参与植物香豆酰胺类物质的生物合成中的应用。

[0020] 进一步的，所述ERAT1基因的RNAi基因沉默株系能够合成香豆酰胺类物质。

[0021] 进一步的，所述香豆酰胺类物质包括阿魏酰亚精胺、N‑对香豆酰基腐胺、N′‑对香豆酰基胍丁胺、N‑阿魏酰基胍丁胺、N‑(4′‑O‑糖基)‑对香豆酰胺丁胺、N‑(4′‑O‑糖基)‑阿魏酰胍丁胺、N′‑对香豆酰基腐胺和N‑对香豆酰丁胺。

[0022] 与现有技术相比，本发明的优点和有益技术效果是：

[0023] 1、本发明通过对乙烯突变体ctr1‑8的转录组测序、乙烯信号通路中EIN3转录因子的ChIP‑Seq和ACC处理拟南芥根系的基因芯片分析结果的综合分析，获得并首次确定并公开了一种能够编码乙烯诱导的BAHD酰基转移酶的新基因ERAT1(基因编号为AT2G39980)。

[0024] 2、本发明利用现有的植物基因工程技术，获得了ERAT1基因拟南芥T‑DNA插入突变体erat1和RNAi基因沉默载体及其株系，并通过各项实验证实erat1突变体和RNAi基因沉默株系的幼苗对逆境比成苗更为敏感，干旱和盐胁迫都会影响两种株系幼苗根系的生长，延缓了幼苗根的生长速度且降低植株的发芽率，通过分析erat1突变体和RNAi基因沉默株系渗透胁迫相关基因，从而确定ERAT1基因具有调控植物渗透胁迫的功能。本发明还通过实验证实了erat1突变体和RNAi基因沉默株系参与了植物次生代谢中对香豆酰胺类物质的生成，进而证实了ERAT1基因参与了植物香豆酰胺类物质的生物合成。

[0025] 3、本发明的技术方案为植物中对香豆酰胺类物质的生物合成和抗渗透胁迫育种提供了理论依据和实验基础。

附图说明

[0026] 图1是本发明中综合分析乙烯突变体ctr1‑8的转录组测序、乙烯信号通路中EIN3转录因子的ChIP‑Seq和ACC处理拟南芥根系的基因芯片分析数据的结果。

[0027] 图2是本发明中乙烯生物合成前体ACC处理后ERAT1在野生型拟南芥中表达量的变化结果。

[0028] 图3是本发明中乙烯生物合成前体ACC处理后ERAT1在乙烯不敏感拟南芥突变体中表达量的变化结果。

[0029] 图4是本发明中乙烯生物合成前体ACC处理后ERAT1在乙烯超敏感拟南芥突变体中表达量的变化结果。

[0030] 图5是本发明中ERAT1在拟南芥不同组织器官中的相对表达量结果。

[0031] 图6是本发明中ERAT1在干旱胁迫下的相对表达量结果。

[0032] 图7是本发明ERAT1基因在盐胁迫下的相对表达量结果。

[0033] 图8是本发明中ERAT1在冷胁迫下的的相对表达量结果。

[0034] 图9是本发明中ERAT1在突变体中的相对表达量结果。

[0035] 图10是本发明中野生型拟南芥和erat1突变体在200mM甘露醇处理时的发芽率结果。

[0036] 图11是本发明中野生型拟南芥和erat1突变体在不同浓度甘露醇处理10天时的根长比较结果。

[0037] 图12是本发明中野生型拟南芥和erat1突变体在50mM NaCl处理时的发芽率结果。

[0038] 图13是本发明中野生型拟南芥和erat1突变体在不同浓度NaCl处理6天时的根长比较结果。

[0039] 图14是本发明中erat1突变体经甘露醇模拟干旱处理后HK1基因的表达量变化结果。

[0040] 图15是本发明中erat1突变体经盐处理后RD29A基因的表达量变化结果。

[0041] 图16是本发明中erat1突变体经盐处理后ERF1基因的表达量变化结果。

[0042] 图17是本发明中erat1突变体经盐处理后ERF105基因的表达量变化结果。

[0043] 图18是本发明中ERAT1在RNAi基因沉默株系中的相对表达量结果。L1、L3和L8分别是所筛选的3个独立的纯合的RNAi基因沉默株系。

[0044] 图19是本发明中野生型拟南芥和ERAT1的RNAi基因沉默株系在300mM甘露醇处理时的发芽率结果。

[0045] 图20是本发明中野生型拟南芥和ERAT1的RNAi基因沉默株系在不同浓度甘露醇处理时的根长结果。

[0046] 图21是本发明中野生型拟南芥和ERAT1的RNAi基因沉默株系在150mM NaCl处理时的发芽率结果。

[0047] 图22是本发明中野生型拟南芥和ERAT1的RNAi基因沉默株系在不同浓度NaCl处理时的根长结果。

[0048] 图23是本发明中ERAT1的RNAi基因沉默株系经甘露醇模拟干旱处理后HK1基因的表达量变化结果。

[0049] 图24是本发明中ERAT1的RNAi基因沉默株系经盐处理后ERF105基因的表达量变化结果。

[0050] 其中，a、b、c和d均表示不同字母标注下的个体间差异达到0.05的显著水平。

具体实施方式

[0051] 以下结合附图、附表和具体实施例对本发明的技术方案做进一步详细的说明。

[0052] 下述实施例中的实验方法，如无特殊说明，均为常规方法。下述实施例中所用的材料、试剂、仪器等，如无特殊说明，均为市售商品。以下实施例中的定量试验，均设置三次重复实验，结果取平均值。

[0053] 实施例1：乙烯诱导BAHD酰基转移酶ERAT1的表达

[0054] 1、独立实验的综合分析

[0055] (1)对乙烯通路突变体ctr1‑8的转录组测序结果进行分析，发现有1702个基因的表达量受CTR1的调控；

[0056] (2)下载NCBI上数据号为SRA063695，针对EIN3转录因子的ChIP‑Seq的原始数据；

[0057] (3)下载ArrayExpress上数据号为E‑MEXP‑362，对ACC处理3小时的拟南芥根系进行基因芯片分析时的原始数据；

[0058] (4)综合分析上述三次独立实验的数据，结果如图1所示，发现有25个基因是完全重叠的；

[0059] (5)对上述25个重叠基因进行更进一步的分析发现，存在一个编码BAHD酰基转移酶的未知新基因AT2G39980在这三次独立实验中均受到显著影响。本发明将AT2G39980命名为ERAT1(Ethylene Regulated BAHD AcylTransferase 1)，其核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示。根据上述结果可以推测BAHD酰基转移酶ERAT1基因受乙烯的诱导，并位于乙烯通路EIN3转录因子的下游。

[0060] 2、生物信息学方法分析ERAT1的启动子序列

[0061] (1)通过拟南芥数据库(http：//www.arabidopsis.org)和NCBI数据库(http：//www.ncbi.nlm.nih.gov/guide)，查找BAHD酰基转移酶ERAT1起始密码子ATG上游2000bp的序列；

[0062] (2)使用网络启动子分析网站PlantCARE，分析ERAT1的启动子序列，序列如SEQ ID NO.2所示，ERAT1的启动子序列中含有乙烯响应元件(‑ATTTCAAA‑)，推测ERAT1基因的表达受乙烯的调控。

[0063] 3、qRT‑PCR证明ERAT1的表达受乙烯的调控

[0064] (1)选择野生型拟南芥Col、乙烯不敏感突变体etr1‑1和ein2、乙烯超敏感突变体rte1‑3和rte5作为实验材料。

[0065] (2)将野生型拟南芥Col以及乙烯通路突变体etr1‑1、rte1‑3、ein2和rte5种子在1/2MS培养基上培养2周之后，转入加有100μM ACC的1/2MS液体培养基上，密封光照培养6小时。

[0066] (3)qRT‑PCR检测各个样品中ERAT1在乙烯处理前后的相对表达量的变化，其中检测ERATl基因所用的qRT‑PCR引物序列为：

[0067] AtERAT1‑FP：5’‑TCCCAGACCAAAAGTCAACCC‑3’(SEQ ID NO.3)；

[0068] AtERAT1‑RP：5’‑GGAGAGGAAGGTTAGGGCAC‑3’(SEQ ID NO.4)。

[0069] 实验结果显示，在野生型拟南芥中，ERAT1的表达量因乙烯的处理而显著增加(图2)；在乙烯不敏感突变体etr1‑1和ein2中，ERAT1的表达量在乙烯处理前后无显著变化(图
3)；而在乙烯超敏感突变体rte1‑3和rte5中，ERAT1的表达量在乙烯处理后的增加程度已经超过了野生型拟南芥对照(图4)。综上说明BAHD酰基转移酶ERAT1基因的表达受乙烯的调控，并且位于乙烯信号通路的下游，由此可以进一步的证明乙烯诱导BAHD酰基转移酶ERAT1基因的表达。

[0070] 实施例2：ERAT1突变体对渗透胁迫和香豆酰胺类物质的生物合成的影响

[0071] 1、ERAT1的组织表达模式和渗透胁迫诱导表达模式

[0072] (1)收集野生型拟南芥Col的根、叶、茎、花和果荚，液氮研磨，提取RNA，并反转录成cDNA；qRT‑PCR检测ERAT1在上述组织器官中的相对表达，结果如图5所示，ERAT1在野生型拟南芥Col的根、叶、茎、花和果荚均有表达，说明ERAT1在多种组织器官中发挥功能，不存在组织特异性。

[0073] (2)将野生型拟南芥Col种子在MS培养基上培养2周之后，转入加有200mM甘露醇(模拟干旱)或200mM NaCl的MS液体培养基上，密封光照培养0h、3h、6h、9h、12h和24h，取样。

[0074] qRT‑PCR检测干旱和盐胁迫处理不同时间后，ERAT1表达量的变化趋势。结果显示，ERAT1经甘露醇模拟干旱处理后，表达量不断增加，到6h时达到最高峰，之后短暂下降，但从9h开始出现第二次上升(图6)。而ERAT1经盐胁迫处理后，表达量不断增加，至3h时达到最高峰，之后开始下降，到9h后趋于平稳(图7)。

[0075] (3)将培养2周的野生型拟南芥Col幼苗转入MS液体培养基上。密封后，将表面皿置于冰水混合物中，进行0℃冷处理0h、3h、6h、9h、12h和24h，取样。qRT‑PCR检测冷胁迫处理不同时间后，ERAT1表达量的变化趋势。结果如图8所示，ERAT1经冷处理后，在12h内表达量几乎无明显变化。

[0076] 综上说明ERAT1基因能够参与渗透胁迫(干旱和盐)的响应。

[0077] 2、ERAT1 T‑DNA插入突变体的获得

[0078] (1)从tair网站购买了BAHD酰基转移酶ERAT1的拟南芥T‑DNA插入突变体，突变体SALK号为：SALK_092062。

[0079] (2)RT‑PCR单株检测突变体的纯合性。只存在ERAT1‑LP和ERAT1‑RP扩增条带的个体是野生型的；只存在Lba和ERAT1‑RP扩增条带的个体是该基因T‑DNA插入突变体的纯合个体；既存在ERAT1‑LP和ERAT1‑RP扩增条带，也存在Lba和ERAT1‑RP扩增条带的个体是野生型和T‑DNA插入突变体的杂合个体。结构检测的结果显示，本发明所购买的部分突变体是该基因T‑DNA插入突，变体的杂合个体；再经反复自交鉴定后获得纯合株系，用于后续实验。

[0080] 其中，检测erat1 T‑DNA插入突变体纯合性所用的PCR引物序列为：

[0081] ERAT1‑LP：5’‑TTGCCACTACATCCAAAAAGG‑3’(SEQ ID NO.5)；

[0082] ERAT1‑RP：5’‑GCTTCCCATAGTAACCGAAGC‑3’(SEQ ID NO.6)；

[0083] Lba：5’‑TGGTTCACGTAGTGGGCCATCG‑3’(SEQ ID NO.7)。

[0084] (3)qRT‑PCR检测突变体中ERAT1的相对表达量。提取野生型和erat1 T‑DNA插入突变体的RNA，反转录成cDNA；qRT‑PCR检测突变体中ERAT1的相对表达量，结果如图9显示突变体中ERAT1的表达量相对于野生型明显降低，说明本发明购买的突变体合格，可以在后续实验中使用。

[0085] 3、erat1突变体幼苗对逆境敏感

[0086] 将突变体种子播种到营养土中，发现erat1突变体在土壤中萌发后，便不再生长，最终死亡。将突变体种子播种在较厚的1/2MS培养基上培养三周后，再转移入土壤中，发现可以正常生长。上述结果说明突变体erat1幼苗对逆境比成苗更为敏感。

[0087] 4、erat1突变体对干旱胁迫敏感

[0088] (1)将erat1突变体的种子撒入甘露醇终浓度为200mM的1/2MS培养基上；将种子4℃处理3天后，光照培养6天，每天记录发芽率。结果如图10所示，相比于野生型拟南芥Col，erat1突变体种子在甘露醇模拟干旱胁迫下发芽率降低。

[0089] (2)将erat1突变体的种子撒入1/2MS培养基上，4℃冷处理3天后取出，转入甘露醇终浓度分别为0、100、200、300和400mM的1/2MS培养基上，光照培养，观察并测量根长的变化。结果如图11所示，经过含不同浓度甘露醇的培养基上培养10天后，erat1突变体幼苗的根长明显小于野生型拟南芥，说明干旱胁迫影响了erat1突变体幼苗根系的生长，也说明ERAT1的突变体对干旱胁迫敏感。

[0090] 5、erat1突变体对盐胁迫敏感

[0091] (1)将erat1突变体的种子撒入NaCl终浓度为50mM的1/2MS培养基上；将种子4℃冷处理3天后，光照培养6天，每天记录发芽率。结果如图12所示，相比于野生型拟南芥Col，erat1突变体种子盐胁迫下发芽率明显降低。

[0092] (2)将erat1突变体的种子撒入1/2MS培养基上，4℃冷处理3天后取出，光照培养3天，转入含NaCl终浓度为0、100、200、300和400mM的1/2MS培养基上，光照培养6天，观察并根长的变化。结果如图13所示，经过含不同浓度盐的培养基上培养6天后，erat1突变体幼苗的根长明显小于野生型拟南芥，说明盐胁迫影响了erat1突变体幼苗根系的生长，也说明ERAT1的突变体对盐胁迫敏感。

[0093] 6、qRT‑PCR检测突变体中渗透胁迫相关基因的相对表达量变化

[0094] (1)将培养2周的拟南芥野生型和erat1突变体幼苗转入MS液体培养基上，之后加入200mM甘露醇或者200mM NaCl溶液处理0h、3h、6h、9h、12h、24h、48h和72h，取样提RNA后，反转录成cDNA。

[0095] (3)qRT‑PCR检测渗透胁迫相关基因的表达量变化趋势。结果如图14‑17显示，跟野生型拟南芥COL相比，erat1突变体不论是甘露醇模拟干旱处理后还是NaCl处理后，HK1、RD29A、ERF1和ERF105与渗透胁迫相关基因的表达量都呈下降趋势。综上说明ERAT1基因在植物对渗透胁迫响应中起作用。

[0096] 7、erat1突变体对香豆酰胺类物质的生物合成的影响

[0097] 本发明考虑到突变体erat1幼苗对逆境比成苗更为敏感，因此选择了1/2MS培养基上的两周龄幼苗作为实验材料，来检测ERAT1基因在植物次生代谢中的作用。

[0098] (1)以野生型拟南芥Col为对照，将两周龄的突变体erat1幼苗液氮冷冻，置于干冰中，送样至武汉迈特维尔生物科技有限公司对样品进行广泛靶向代谢组学分析，结果如表1显示，BAHD酰基转移酶ERAT1基因主要涉及对香豆酰胺类物质的生成，说明ERAT1基因在植物对香豆酰胺类物质的生物合成中起作用。

[0099] 表1 BAHD酰基转移酶ERAT1参与对香豆酰胺类物质的生成

[0100]

[0101]

[0102] 实施例3：ERAT1的RNAi基因沉默株系对渗透胁迫和香豆酰胺类物质的生物合成的影响

[0103] 1、获得了ERAT1的RNAi基因沉默株系

[0104] (1)通过Gate‑way克隆的方法构建ERAT1的RNAi载体。设计包括attB接头的引物，克隆ERAT1的CDS全长序列；通过BP重组反应体系将attB‑ERAT1与pDONR221入门载体连接，构建重组质粒pDONR221‑attB‑ERAT1。其中，构建包括attB接头的ERAT1 CDS全长序列的RNAi质粒所用的引物序列为：

[0105] ERAT1FLattb‑F：5’‑GGGGACAAGTTTGTACAAAAAAGCAGGCTATGCCTTCTTTAGAGAAATCTG‑3’(SEQ ID NO.8)；

[0106] ERAT1FLattb‑R：5’‑GGGGACAAGTTTGTACAAGAAAGCTGGGTTTACTTATTAGTCACGTATCGC‑3’(SEQ ID NO.9)；

[0107] (2)将构建的重组质粒pDONR221‑attB‑ERAT1转化大肠杆菌。菌液经PCR和测序验证后，提取阳性菌株质粒。

[0108] 检测ERAT1的RNAi质粒所用的PCR引物序列为：

[0109] ERAT1FL‑F：5’‑ATGCCTTCTTTAGAGAAATCTG‑3’(SEQ ID NO.10)；

[0110] ERAT1FL‑R：5’‑TTACTTATTAGTCACGTATCGC‑3’(SEQ ID NO.11)；

[0111] (3)通过LR重组反应体系将扩增的ERAT1的CDS序列联结到受体载体pB7GWIWG(II).0上，转化进大肠杆菌。菌液PCR验证后，提取阳性菌株质粒，转入农杆菌菌株GV3101中，利用蘸花法转化拟南芥。PCR鉴定后，不断自交获得了3个独立的纯合的ERAT1的RNAi基因沉默株系L‑1、L‑3和L‑8作为实验材料。

[0112] (4)qRT‑PCR检测ERAT1在RNAi基因沉默株系中的相对表达量，结果如图18所示，在ERAT1的RNAi基因沉默株系中，ERAT1的表达量明显降低。

[0113] 2、ERAT1的RNAi基因沉默株系对逆境敏感

[0114] 将ERAT1的RNAi基因沉默株系L‑1、L‑3和L‑8的种子直接播种到营养土中，发现其种子在土壤中萌发后，苗期生长缓慢，瘦弱。将ERAT1的RNAi基因沉默株系种子播种在较厚的1/2MS培养基上培养三周后，再转移入土壤中，发现可以正常生长，由此说明ERAT1的RNAi基因沉默株系的幼苗对逆境比成苗更为敏感。

[0115] 3、ERAT1的RNAi基因沉默株系对干旱胁迫敏感

[0116] (1)将ERAT1的RNAi基因沉默株系L‑1、L‑3和L‑8的种子撒入甘露醇终浓度为300mM的1/2MS培养基上，将种子4℃冷处理3天后，光照培养7天，每天记录发芽率。结果如图19所示，相比于野生型拟南芥Col，ERAT1的RNAi基因沉默株系L‑1、L‑3和L‑8的种子在甘露醇模拟干旱胁迫下发芽率明显降低。

[0117] (2)将ERAT1的RNAi基因沉默株系的种子撒入1/2MS培养基上，4℃冷处理3天，取出，转入甘露醇终浓度分别为0、100、200、300和400mM的1/2MS培养基上，光照培养3天，观察并测量根长的变化。结果如图20所示，经过含不同浓度甘露醇的培养基上培养10天后，RNAi基因沉默株系幼苗的根明显比野生型拟南芥的短，说明干旱胁迫影响RNAi基因沉默株系幼苗根系的生长，也说明ERAT1的RNAi基因沉默株系对干旱胁迫敏感。

[0118] 4、ERAT1的RNAi基因沉默株系对盐胁迫敏感

[0119] (1)将ERAT1的RNAi基因沉默株系L‑1、L‑3和L‑8的种子撒入NaCl终浓度为150mM的1/2MS培养基上。将种子4℃冷处理3天后，光照培养，每天记录发芽率。结果如图21所示，相比于野生型拟南芥Col，ERAT1的RNAi基因沉默株系L‑1、L‑3和L‑8的种子在不同浓度的盐胁迫下发芽率都明显降低。

[0120] (2)将ERAT1的RNAi基因沉默株系的种子撒入1/2MS培养基上，4℃冷处理3天后取出，光照培养3天，转入含NaCl终浓度为0、50、100、150和200mM的1/2MS培养基上，光照培养6天，观察并根长的变化。结果如图22显示，经过含不同浓度盐的培养基上培养6天后，ERAT1的RNAi基因沉默株系幼苗的根明显比野生型拟南芥的短，说明盐胁迫影响了RNAi基因沉默株系幼苗根系的生长，也说明ERAT1的RNAi基因沉默株系对盐胁迫敏感。

[0121] 5、qRT‑PCR检测突变体中渗透胁迫相关基因的相对表达量变化

[0122] (1)将培养2周的拟南芥野生型和ERAT1的RNAi基因沉默株系L‑1、L‑3和L‑8的幼苗转入MS液体培养基上，加入200mM甘露醇或者200mM NaCl溶液处理0h、3h、6h、9h、12h、24h、48h和72h，取样提RNA，反转录成cDNA。

[0123] (2)qRT‑PCR检测渗透胁迫相关基因的表达量变化趋势。结果如图23‑24显示，跟野生型拟南芥COL相比，ERAT1的RNAi基因沉默株系不论是甘露醇模拟干旱处理后还是NaCl处理后，HK1、RD29A、ERF1和ERF105渗透胁迫相关基因的表达量都呈下降趋势。综上说明ERAT1基因在植物对渗透胁迫响应中起作用。

[0124] 6、ERAT1对香豆酰胺类物质的生物合成的影响

[0125] 考虑到ERAT1的RNAi基因沉默株系对逆境比成苗更为敏感，本发明选择了培养基上的两周龄幼苗作为实验材料来检测ERAT1在植物次生代谢中的功能。

[0126] (1)以野生型拟南芥Col为对照，将两周龄的ERAT1的RNAi基因沉默株系L‑1、L‑3和L‑8的幼苗液氮冷冻，置于‑80℃冰箱，备用。

[0127] (2)利用LC‑MS检测ERAT1的RNAi基因沉默株系中对香豆酰胺类物质生成量的差异，结果如表2，验证了BAHD酰基转移酶ERAT1涉及对香豆酰胺类物质的生成，说明ERAT1基因在植物对香豆酰胺类物质的生物合成中起作用。

[0128] 表2BAHD酰基转移酶ERAT1参与对香豆酰胺类物质的生成

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[0130] 以上实施例仅用以说明本发明的技术方案，而非对其进行限制；尽管参照前述实施例对本发明进行了详细的说明，对于本领域的普通技术人员来说，依然可以对前述实施例所记载的技术方案进行修改，或者对其中部分技术特征进行等同替换；而这些修改或替换，并不使相应技术方案的本质脱离本发明所要求保护的技术方案的精神和范围。