一株分泌替加环素单克隆抗体的杂交瘤细胞株及其应用

摘要

一株分泌替加环素单克隆抗体的杂交瘤细胞株及其应用，属于免疫检测技术领域。本发明分泌替加环素单克隆抗体的杂交瘤细胞株ABC03，已保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心CGMCC，保藏日期2019年11月28日，保藏编号CGMCC No.19176。利用该菌株分泌获得的替加环素单克隆抗体用于进行替加环素血药浓度的分析检测。本发明获得的替加环素单克隆抗体细胞株可以用于免疫分析检测，其对替加环素有较好的检测灵敏度和特异性（IC50值为2.3ng/mL、对替加环素类似物交叉率小于10%，交叉率=（替加环素的IC50/类似物的IC50）×100%。

权利要求

1.一株分泌替加环素单克隆抗体的杂交瘤细胞株ABC03，已保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心CGMCC，地址北京市朝阳区北辰西路1号院3号中国科学院微生物研究所，分类命名为单克隆细胞株，保藏日期2019年11月28日，保藏编号CGMCC No.19176。

2.替加环素单克隆抗体，其特征在于：它由权利要求1所述保藏编号为CGMCC No. 

19176的单克隆细胞株ABC03分泌产生。

3.一种替加环素完全抗原，其特征在于：简称为TGC‑NH2‑KLH，分子式如下：

。

4.一种替加环素包被原，其特征在于：简称为TGC‑NH2‑OVA，分子式如下：。

5.权利要求3所述替加环素完全抗原的制备方法，其特征在于：将替加环素半抗原TGC‑NH2溶于无水N，N‑二甲基甲酰胺DMF中，加入HCl冰浴避光反应；加入过量的NaNO2反应得到A液；将钥孔血蓝蛋白KLH用碳酸盐缓冲溶液CBS稀释，得到B液；将A液加入到B液中进行反应，得到反应液；用磷酸盐缓冲液PBS透析反应液，得到替加环素完全抗原TGC‑NH2‑KLH。

6.根据权利要求5所述替加环素完全抗原的制备方法，其特征在于：称取11.42mg替加环素半抗原TGC‑NH2溶于无水N，N‑二甲基甲酰胺DMF中，加入57 μL 1M HCl冰浴避光反应，

30 min后加入过量的NaNO2反应30min，得到A液；将6mg 钥孔血蓝蛋白KLH用0.01M碳酸盐缓冲溶液CBS稀释至3mg/mL，得到B液；将A液加入到B液中进行反应2h，得到反应液；用0.01M磷酸盐缓冲液PBS透析反应液，得到替加环素完全抗原TGC‑NH2‑KLH。

7.权利要求4所述替加环素包被原的制备方法，其特征在于：称取替加环素半抗原TGC‑NH2溶于无水N，N‑二甲基甲酰胺DMF中，加入HCl冰浴避光反应，加入过量的NaNO2反应，得到A液；将鸡卵白蛋白OVA用0.01M碳酸盐缓冲溶液CBS稀释，得到B液；将A液加入到B液中进行反应，得到反应液；用磷酸盐缓冲液PBS透析反应液，得到替加环素包被原TGC‑NH2‑OVA。

8.根据权利要求7所述替加环素包被原的制备方法，其特征在于：称取8.72mg替加环素半抗原TGC‑NH2溶于无水N，N‑二甲基甲酰胺DMF中，加入32 μL 1M HCl冰浴避光反应，30 min后加入过量的NaNO2反应30min，得到A液；将6mg 鸡卵白蛋白OVA用0.01M碳酸盐缓冲溶液CBS稀释至3mg/mL，得到B液；将A液加入到B液中进行反应2h，得到反应液；用0.01M磷酸盐缓冲液PBS透析反应液，得到包被原TGC‑NH2‑OVA。

9.权利要求2所述替加环素单克隆抗体的应用，其特征在于：将其应用于替加环素血药浓度的分析检测。

说明书

一株分泌替加环素单克隆抗体的杂交瘤细胞株及其应用

技术领域

[0001] 本发明涉及一株分泌替加环素单克隆抗体的杂交瘤细胞株及其应用，属于免疫检测技术领域。

背景技术

[0002] 替加环素（tigecycline），是一种静脉给药的广谱甘氨酰环肽类抗生素，属于第三代四环素类抗生素，2005年6月美国FDA批准该药用于成人复杂皮肤及软组织感染和成人复
杂的腹内感染。替加环素是继多西环素、米诺环素、美他环素后开发的新一代四环素类抗生
素。与四环素相比，在中央的骨架的侧链上，在第9位以D环甘氨酰环代替了N‑烷基‑甘氨酰
氨基，使抗菌谱更广，抗菌活性更强，而且使它得以能克服大多数细菌对四环素耐药机制的
产生。但是，TGC通过静脉输注进入人体后分布广泛，将导致体内血浆浓度低，而且此药有增
加总死亡率的风险，因此在使用替加环素时应对血药浓度进行检测。

[0003] 对于替加环素血药浓度的检测，常采用高效液相色谱法、气相色谱法、气相或液相色谱质谱联用法。但这些方法存在样品前处理复杂和检测时间长等不足，不适用于快速检
测，因此，有必要建立一种针对替加环素的高效、快速的检测方法。

[0004] 酶联免疫法(ELISA)是一种极为高效、敏感、快速的检测方法，检测时对样本的前处理简单、纯化步骤少、分析容量大、检测成本低而且操作简便，适用于大量样本的现场快
速检测，因此得到了广泛应用。而使用酶联免疫法检测替加环素的前提是得到对替加环素
具有高特异性和高灵敏度的单克隆抗体，因此，找到一种制备对替加环素具有高特异性和
高灵敏度的单克隆抗体的方法十分关键。

发明内容

[0005] 本发明的目的是克服上述不足之处，提供一株分泌替加环素单克隆抗体的杂交瘤细胞株及其应用。此杂交瘤细胞株分泌的替加环素单克隆抗体对替加环素具有较好的特异
性和检测灵敏度（IC50值为2.3ng/mL），可以用于建立替加环素的免疫学检测方法，检测替加
环素的血药浓度。

[0006] 本发明的技术方案，一株分泌替加环素单克隆抗体的杂交瘤细胞株ABC03，已保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心CGMCC，地址北京市朝阳区北辰西路1号
院3号中国科学院微生物研究所，分类命名为单克隆细胞株，保藏日期2019年11月28日，保
藏编号CGMCC No.19176。

[0007] 本发明提供了上述一株分泌替加环素单克隆抗体的杂交瘤细胞株ABC03的制备方法，包含如下步骤：

[0008] （1）使用替加环素半抗原制备替加环素完全抗原，将获得的替加环素完全抗原制备成含抗原弗氏佐剂与含抗原不完全弗氏佐剂；

[0009] （2）将得到的含抗原弗氏佐剂通过背部皮下注射，注射进入BALB/c小鼠体内进行多次免疫，首次免疫采用含抗原完全弗氏佐剂，加强免疫采用含抗原不完全弗氏佐剂；

[0010] （3）将经过上述免疫过程的小鼠进行采血，通过间接ELISA检测小鼠血清免疫效价和免疫抑制能力，筛选出血清中替加环素抗体含量高的获得免疫的小鼠；

[0011] （4）将筛选出的小鼠用含抗原不完全弗氏佐剂再进行最后一次加强免疫，然后通过腹腔注射进行冲刺免疫，冲刺免疫采用不含弗氏佐剂的替加环素完全抗原进行；

[0012] （5）将进行冲刺免疫后的BALB/c小鼠的脾细胞和骨髓瘤细胞融合，将融合的细胞通过培养基培养，利用间接ELISA检测阳性细胞孔，并进一步利用间接竞争ELISA法测定阳
性细胞孔的抑制效果，通过有限稀释法对有最好抑制的阳性细胞孔进行亚克隆，最终筛选
出获得能分泌替加环素单克隆抗体的杂交瘤细胞株ABC03。

[0013] 在本发明的一种实施方式中，所述步骤（2）、（4）首次免疫与加强免疫之间间隔一个月，加强免疫之间间隔21天，加强免疫与冲刺免疫之间间隔18 21天。
~

[0014] 在本发明的一种实施方式中，所述步骤（2）、（4）首次免疫剂量为100μg/只，加强免疫剂量为50μg/只，冲刺免疫剂量为25μg/只。

[0015] 在本发明的一种实施方式中，所述步骤（2）、（4）的免疫过程，包含1次首次免疫、4次加强免疫和1次冲刺免疫。

[0016] 在本发明的一种实施方式中，所述步骤（3）中的采血为第3次免疫过程结束后第7天进行采血。

[0017] 在本发明的一种实施方式中，所述步骤（5）中的细胞融合是在冲刺免疫结束3天加强后进行。

[0018] 在本发明的一种实施方式中，所述步骤（5）中的细胞融合是通过聚乙二醇（PEG 4000）法进行的。

[0019] 在本发明的一种实施方式中，所述步骤（5）中的培养基为RPMI‑1640培养基。

[0020] 在本发明的一种实施方式中，所述步骤（5）中的亚克隆次数为3次。

[0021] 替加环素单克隆抗体，它由所述保藏编号为CGMCC No.19176的单克隆细胞株ABC03分泌产生。

[0022] 本发明提供了上述替加环素单克隆抗体的制备方法，所述方法为取BALB/c小鼠，腹腔注射石蜡油，再腹腔注射保藏编号为CGMCC No.19176的单克隆细胞株ABC03，注射后收
集腹水，将腹水纯化，将获得的单抗低温保存。

[0023] 在本发明的一种实施方式中，所述方法为取8‑10周龄BALB/c小鼠，每只小鼠腹腔6
注射石蜡油1mL，7天后每只小鼠腹腔注射1×10保藏编号为CGMCC No. 19176的单克隆细
胞株ABC03，从第7天开始收集腹水，将腹水通过辛酸‑硫酸铵法纯化，获得的单抗置于‑20℃
保存。

[0024] 一种替加环素半抗原，其简称为TGC‑NH2，分子式如下：

[0025] 。

[0026] 一种替加环素完全抗原，简称为TGC‑NH2‑KLH，分子式如下：

[0027] 。

[0028] 一种替加环素包被原，简称为TGC‑NH2‑OVA，分子式如下：

[0029] 。

[0030] 本发明还提供了上述替加环素单克隆抗体的应用，将其应用于替加环素血药浓度的分析检测。

[0031] 本发明的有益效果：本发明获得的替加环素单克隆抗体可以用于免疫分析检测，其对替加环素有较好的检测灵敏度和特异性（IC50值为2.3ng/mL、对替加环素类似物交叉率
小于10%，交叉率=（替加环素的IC50/类似物的IC50）×100%。

[0032] 生物材料样品保藏：一株分泌替加环素单克隆抗体的杂交瘤细胞株ABC03，已保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心CGMCC，地址北京市朝阳区北辰西路1号
院3号中国科学院微生物研究所，分类命名为单克隆细胞株，保藏日期2019年11月28日，保
藏编号CGMCC No.19176。

附图说明

[0033] 图1本发明替加环素单克隆抗体对替加环素的抑制标准曲线。

具体实施方式

[0034] 本发明下面的实施例仅作为本发明内容的进一步说明，不能作为本发明的限定内容或范围。下面通过实施例对本发明作进一步说明。

[0035] 以下实施例所述替加环素半抗原购自百灵威科技有限公司，产品为9‑氨基米诺环素盐酸盐（9‑Amino minocycline hydrochloride，95%）。

[0036] 下述实施例中涉及的培养基如下：

[0037] RPMI‑1640培养基（mg/L）：L‑精氨酸290、L‑门冬酰胺50、L‑门冬氨酸20、L‑胱氨酸二盐酸盐65.15、L‑谷氨酸20、甘氨酸10、L‑组氨酸15、L‑羟脯氨酸20、L‑异亮氨酸50、L‑亮氨
酸50、L‑赖氨酸盐酸盐40、L‑甲硫氨酸15、L‑苯丙氨酸15、L‑脯氨酸20、L‑丝氨酸30、L‑苏氨
酸20、L‑色氨酸5、L‑酪氨酸23.19、L‑缬氨酸20、对氨基苯甲酸1、硝酸钙100、无水硫酸镁
48.84、无水磷酸二氢钠676.13、氯化钾400、氯化钠6000、葡萄糖2000、还原谷胱甘肽1、酚红
5、L‑谷氨酰胺300、生物素0.2、D‑泛酸钙0.25、叶酸1、i‑肌醇35、烟酰胺1、氯化胆碱3、盐酸
吡哆醇1、核黄素0.2、盐酸硫胺素1、维生素B12 0.005、碳酸氢钠2000。

[0038] 下述实施例中涉及的试剂如下：

[0039] 碳酸盐缓冲液（CBS）：称取Na2CO3 1.59 g，NaHCO3 2.93 g，分别溶于少量双蒸水后混合，加双蒸水至约800mL混匀，调pH值至9.6，加双蒸水定容至1000mL，4℃贮存备用；

[0040] 磷酸盐缓冲液（PBS）：8.00g NaCl，0.2g KCl，0.2g KH2PO4，2.9g Na2HPO4·12 H2O，溶于800mL纯水中，用NaOH或HCl调pH到7.2～7.4，定容至1000mL；

[0041] PBST：含0.05 %吐温20的PBS；

[0042] 抗体稀释液：PBS 加入 0.1%明胶。

[0043] TMB显色液：A液：Na2HPO4.12H2O 18.43g，柠檬酸 9.33g，纯水定容至1000mL；B液：60mg TMB 溶于100mL乙二醇中。A、B液按体积比5：1混合即为TMB显色液，现用现混。

[0044] 下述实施例中涉及的检测方法如下：

[0045] 替加环素抑制率检测方法：通过棋盘试验选择ic‑ELISA中最合适的抗原和抗体浓度。用碳酸盐缓冲液（CBS）将抗原稀释至0.03，0.1，0.3和1μg/ mL，并用抗体稀释液将抗体
稀释至0.03，0.1，0.3和1μg/ mL。选择最佳工作点后，将替加环素标准品稀释0，0.07，0.21，
0.62，1.85，5.56，16.67和50ng/mL等浓度，按照ic‑ELISA操作步骤，最后用OriginPro 8.5
做图（结果如图1所示），获得替加环素标准抑制曲线，计算IC50。

[0046] 实施例1：替加环素半抗原

[0047] 由于替加环素小分子不具有免疫原性，不能刺激小鼠产生免疫应答，进而产生抗体，因此需通过蛋白连接技术将替加环素偶联到蛋白上，使其获得免疫原性；9‑氨基米诺环
素与替加环素结构相似，并且含有活泼基团NH2，因此以其为替加环素半抗原。

[0048] 本发明替加环素半抗原结构如下：

[0049] ;

[0050] 实施例2：替加环素完全抗原的合成

[0051] 称取11.42mg替加环素半抗原TGC‑NH2溶于无水N，N‑二甲基甲酰胺DMF中，加入57 μL 1M HCl冰浴避光反应，30 min后加入过量的NaNO2反应30min，得到A液；将6mg 钥孔血蓝
蛋白KLH用0.01M碳酸盐缓冲溶液CBS稀释至3mg/mL，得到B液；将A液加入到B液中进行反应
2h，得到反应液；用0.01M磷酸盐缓冲液PBS透析反应液，得到完全抗原TGC‑NH2‑KLH，并通过
紫外吸收扫描方法进行鉴定。

[0052] 实施例3：替加环素包被原的合成

[0053] 称取8.72mg替加环素半抗原TGC‑NH2溶于无水N，N‑二甲基甲酰胺DMF中，加入32 μL 1M HCl冰浴避光反应，30 min后加入过量的NaNO2反应30min，得到A液；将6mg 鸡卵白蛋
白（OVA）用0.01M碳酸盐缓冲溶液CBS稀释至3mg/mL，得到B液；将A液加入到B液中进行反应
2h，得到反应液；用0.01M磷酸盐缓冲液PBS透析反应液，得到包被原TGC‑NH2‑OVA，并通过紫
外吸收扫描方法进行鉴定。

[0054] 实施例4：分泌替加环素单克隆抗体的杂交瘤细胞株的制备

[0055] 1、动物免疫的获得：将替加环素完全抗原与等量弗氏佐剂混合乳化后，对BALB/c小鼠进行颈背部皮下多点注射免疫（冲刺免疫除外）；首次免疫用完全弗氏佐剂，剂量为100
μg/只；多次加强免疫用不完全弗氏佐剂且剂量减半即为50μg/只；冲刺免疫不用佐剂，直接
用生理盐水稀释后腹腔注射，剂量再减半即为25μg/只；首次免疫与第二次加强免疫之间间
隔一个月，多次加强免疫之间间隔21天，冲刺免疫与最后一次加强免疫之间间隔18‑21天；
通过间接竞争酶联免疫法（ic‑ELISA）观测小鼠免疫效果即检测小鼠血清的效价和抑制；

[0056] 2、细胞融合：在冲刺免疫三天后，按照常规PEG（聚乙二醇，分子量为4000）方法进行细胞融合，具体步骤如下：

[0057] a、断尾取血，颈椎脱臼法处死小鼠后，立即放入75%酒精中消毒，浸泡5min左右，无菌操作取出小鼠的脾脏，用注射器的胶头适度研磨并通过200目细胞筛网得到脾细胞悬液，
收集，离心（1200rpm，8min），用RPMI‑1640培养基洗涤脾细胞三次，最后一次离心后，将脾细
胞稀释到一定体积，计数，备用；

[0058] b、收集SP2/0细胞：融合前7‑10天，将SP2/0瘤细胞用含10% FBS（胎牛血清）RPMI‑7
1640 培养基在5% CO2培养箱中，融合前要求SP2/0瘤细胞数量达到（1~4）×10 ，保证融合前
SP2/0瘤细胞处于对数生长期，融合时，收集瘤细胞，悬浮于RPMI‑1640基础培养液中，进行
细胞计数；

[0059] c、融合过程7min：第1min，将1mL的PEG 4000由慢到快滴加到细胞中；第2min，静置；第3min和第4min，在1min内滴加1mL RPMI‑1640培养基；第5min和第6min，在1min内滴加
2mL RPMI‑1640培养基；第7min，每10s滴加1mL的RPMI‑1640培养基；然后37℃温浴5min；离
心（800rpm，8min），弃上清，重悬入含20%胎牛血清、2%的50×HAT的RPMI‑1640筛选培养液
中，按照200μL/孔加到96孔细胞板，置于37℃、5% CO2培养箱中培养；

[0060] 3、细胞筛选与细胞株建立：在细胞融合的第3天对融合细胞进行RPMI‑1640筛选培养液半换液，第5天进行用含20% 胎牛血清，1%的100×HT的RPMI‑1640过渡培养液进行全换
液，在第7天取细胞上清进行筛选；

[0061] 筛选分两步：第一步先用ic‑ELISA法筛选出阳性细胞孔，第二步选用替加环素为标准品，用ic‑ELISA法对阳性细胞进行抑制效果测定；

[0062] 选择对替加环素标准品有较好抑制的细胞孔，采用有限稀释法进行亚克隆，七天后用同样的方法进行检测；

[0063] 按上述方法进行三次亚克隆，最终获得替加环素单克隆抗体细胞株ABC03。

[0064] 实施例5：替加环素单克隆抗体的制备与鉴定

[0065] 取8‑10周龄BALB/c小鼠，每只小鼠腹腔注射无菌石蜡油1mL；7天后每只小鼠腹腔6
注射1×10 替加环素杂交瘤细胞，从第七天开始收集腹水，将腹水通过辛酸‑饱和硫酸铵法
进行抗体纯化；

[0066] 在偏酸条件下，正辛酸可以沉淀腹水中除IgG免疫球蛋白外的其他杂蛋白，然后离心，弃沉淀；再用等量饱和度的硫酸铵溶液沉淀IgG型的单克隆抗体，离心，弃上清，用0.01M
的PBS溶液（pH7.4）溶解后，透析脱盐，最终得到纯化后的单克隆抗体置于‑20℃保存。

[0067] 使用间接竞争ELISA，测得替加环素单克隆抗体的IC50值为2.3ng/mL、对替加环素类似物交叉率小于10%，说明对替加环素有很好的灵敏度，可用于替加环素免疫分析检测。
（交叉率=（替加环素的IC50/类似物的IC50）×100%）。

[0068] 实施例6：替加环素单克隆抗体的应用

[0069] 将杂交瘤细胞株ABC03通过体内腹水制备的单克隆抗体应用于替加环素的ELISA添加回收试验，具体步骤如下：

[0070] （1）将用碳酸盐缓冲液（CBS）稀释好的浓度为0.3μg/mL的包被原包被96孔酶标板，每孔100μL，37℃包被2h后，用PBST洗液洗板三次，每次每孔200μL，每次3min，拍干；

[0071] （2）用含0.2%明胶的CBS进行封闭，每孔200μL，37℃封闭2h，用PBST洗液洗板三次，每次每孔200μL，每次3min，拍干；

[0072] （3）用磷酸盐缓冲液（PBS）分别配置0，0.07，0.21，0.62，1.85，5.56，16.67和50ng/mL的替加环素标准溶液，将标准溶液以及待检测样品提取液，分别加入到已经封闭好的酶
标板中，每孔50μL，每个样品重复3个孔，再每孔加入50μL以1:32000稀释的替加环素单克隆
抗体，37℃反应0.5h后，洗板拍干；

[0073] （4）每孔加入100μL用含0.1%明胶的PBS以1:3000稀释的HRP标记的羊抗鼠IgG二抗，37℃反应0.5h后，洗板拍干；

[0074] （5）每孔加入100μL的TMB显色液，37℃显色15min后，每孔加入50μL 2M的H2SO4终止液，450nm测吸光值；

[0075] 替加环素单克隆抗体对替加环素的抑制标准曲线如图1所示，用ic‑ELISA测定替加环素单克隆抗体的IC50值为2.3ng/mL，说明该抗体对替加环素有较好的灵敏度，可用于替
加环素的免疫分析检测。