IL-2受体复合物及其制备方法与应用

摘要

本发明公开了IL‑2受体复合物及其制备方法与应用。本发明的IL‑2受体复合物是将编码融合蛋白I（SEQ ID NO:1或7）、融合蛋白II（SEQ ID NO:3或9）的核酸序列构建到同一真核表达载体或分别构建到不同真核表达载体上，用所得重组表达载体转染哺乳动物细胞，并从细胞培养上清中分离纯化得到的。本发明利用基因工程技术，通过重组表达及一步亲和层析纯化直接获得IL‑2受体αβγ异源三聚体蛋白，无需体外组装；该异源三聚体蛋白与IL‑2具有高亲和活性，可用于体外研究IL‑2与IL‑2受体的相互作用、免疫动物制备抗体或抗体的体外筛选等。

权利要求

1.IL‑2受体复合物，其特征在于，其是将编码融合蛋白I、融合蛋白II的核酸序列构建到同一真核表达载体或分别构建到不同真核表达载体上，用所得重组表达载体转染哺乳动物细胞，并从细胞培养上清中分离纯化得到的；

所述融合蛋白I是由IL‑2R β亚单位与异源二聚元件1之间通过柔性linker连接而成；

所述融合蛋白II是先将IL‑2R α亚单位与IL‑2R γ亚单位之间先通过柔性linker连接，再与异源二聚元件2之间通过柔性linker连接而成；

其中，所述融合蛋白I、融合蛋白II的C端含有纯化标签；

所述异源二聚元件1为Fc‑Knob，异源二聚元件2为Fc‑Hole；或者，所述异源二聚元件1为Fc‑Hole，异源二聚元件2为Fc‑Knob；或者，所述异源二聚元件1为序列如SEQ ID NO:5所示的亮氨酸拉链，异源二聚元件2为序列如SEQ ID NO:6所示的亮氨酸拉链；或者，所述异源二聚元件1为序列如SEQ ID NO:6所示的亮氨酸拉链，异源二聚元件2为序列如SEQ ID NO:5所示的亮氨酸拉链。

2.根据权利要求1所述的IL‑2受体复合物，其特征在于，所述柔性linker为(GnS)m，其中，n为1‑6之间的整数，m为2‑8之间的整数。

3.根据权利要求2所述的IL‑2受体复合物，其特征在于，所述融合蛋白I是由IL‑2R β亚单位与异源二聚元件1之间通过(G2S)3连接而成；和/或所述融合蛋白II是先将IL‑2R α亚单位与IL‑2R γ亚单位之间先通过(GS)1连接，再与异源二聚元件2之间通过(G2S)3连接而成。

4.根据权利要求1所述的IL‑2受体复合物，其特征在于，所述融合蛋白I由SEQ ID NO:1或7所示的氨基酸序列组成；所述融合蛋白II由SEQ ID NO:3或9所示的氨基酸序列组成。

5.编码权利要求1‑4任一项所述IL‑2受体复合物的核酸分子。

6.含有权利要求5所述核酸分子的生物材料，所述生物材料为重组DNA、表达盒、转座子、质粒载体、病毒载体、工程菌或转基因细胞系。

7.IL‑2受体复合物的制备方法，其特征在于，包括以下步骤：

1）分别构建融合蛋白I、融合蛋白II的重组表达载体；

2）将两个重组表达载体共同转染哺乳动物细胞；

3）从细胞培养上清中分离纯化得到IL‑2受体复合物；

其中，所述融合蛋白I、融合蛋白II同权利要求1‑4任一项所述IL‑2受体复合物中的融合蛋白I、融合蛋白II。

8.根据权利要求7所述的方法，其特征在于，所述重组表达载体的启动子选自EF‑1α启动子、hCMV启动子、SV40晚期启动子；和/或所述重组表达载体的出发载体为pcDNA3.1(+)。

9.根据权利要求7或8所述的方法，其特征在于，所述哺乳动物细胞选自HEK293、CHO、NSO、BHK。

10.权利要求1‑4任一项所述IL‑2受体复合物或按照权利要求7‑9任一项所述方法制备的IL‑2受体复合物在抗IL‑2R抗体筛选中的应用，所述应用为非疾病诊断和治疗目的。

说明书

IL‑2受体复合物及其制备方法与应用

技术领域

[0001] 本发明涉及基因工程领域，具体地说，涉及IL‑2受体复合物及其制备方法与应用。

背景技术

[0002] Interleukin‑2（IL‑2）是最早发现的细胞因子之一，又称为T细胞生长因子（T cell growth factor,TCGF）。1976年NCI肿瘤细胞生物学实验室的RobertGallo，使用PHA刺
激淋巴细胞产生条件培养基培养骨髓细胞，发现其中90%的T细胞长达9个月的生存维持。而
在此之前，原代T细胞无法进行体外培养，是免疫学发展中的瓶颈性技术问题。该支持T细胞
长期生长的物质被称为T细胞生长因子（TCGF），也就是IL‑2。IL‑2对T细胞的增殖、发育、分
化和凋亡具有重要的作用。

[0003] IL‑2的受体interleukin‑2 receptor(IL‑2R)包含α、β和γ三个亚单位。三个亚单位可以组成不同亲和力的受体，其中，单独的α为低亲和力受体，单独存在不参与信号传导，
β和γ组成中等亲和力的受体，下游可以通过JAK传导信号，在α参与的情况下，亲和力增强
为高亲和力受体。IL‑2与其受体特异性结合后，启动Jak‑STAT、MAPK及P13K等多种途径，抑
制凋亡，诱导细胞增殖、分化，产生多种生物学效应。从20世纪90年代起，科研人员开始通过
突变IL‑2和不同受体亚单位的亲和力，或制备针对IL‑2受体的抗体，以达到抗肿瘤或治疗
自身免疫疾病的临床治疗效果。

[0004] 尽管IL‑2Rα、β和γ可形成对IL‑2高亲和力的受体复合物，但α亚单位与β、γ亚单位形成受体复合物时并没有直接接触。根据结构报道，α位于IL‑2的一侧，而β和 γ形成”Y”
形，位于IL‑2的另一侧（Xinquan Wang et al.,2005, Science. 310(5751):1159‑63.）。因
此在没有IL‑2存在时，α、β和γ无法直接形成高亲和力的IL‑2受体复合物。这也限制了针对
IL‑2R αβγ异源三聚体的抗体制备等应用。

发明内容

[0005] 本发明的目的是提供IL‑2受体复合物（IL‑2受体αβγ异源三聚体复合物）及其制备方法与应用。

[0006] 为了实现本发明目的，第一方面，本发明提供一种IL‑2受体复合物，其是将编码融合蛋白I、融合蛋白II的核酸序列构建到同一真核表达载体或分别构建到不同真核表达载
体上，用所得重组表达载体转染哺乳动物细胞，并从细胞培养上清中分离纯化得到的。

[0007] 其中，所述融合蛋白I是由IL‑2R β亚单位或其变体与异源二聚元件1之间通过柔性linker连接而成；

[0008] 所述融合蛋白II是先将IL‑2R α亚单位或其变体与IL‑2R γ亚单位或其变体之间先通过柔性linker连接，再与异源二聚元件2之间通过柔性linker连接而成；

[0009] 任选地，所述融合蛋白I、融合蛋白II的C端含有纯化标签（如抗体Fc标签或其他亲和标签）；

[0010] 其中，所述异源二聚元件1为Fc‑Knob，异源二聚元件2为Fc‑Hole；或者，

[0011] 所述异源二聚元件1为Fc‑Hhole，异源二聚元件2为Fc‑Knob；或者，

[0012] 所述异源二聚元件1为序列如SEQ ID NO:5所示的亮氨酸拉链，异源二聚元件2为序列如SEQ ID NO:6所示的亮氨酸拉链；或者，

[0013] 所述异源二聚元件1为序列如SEQ ID NO:6所示的亮氨酸拉链，异源二聚元件2为序列如SEQ ID NO:5所示的亮氨酸拉链。

[0014] 所述柔性linker为(GnS)m，其中，n为1‑6之间的整数，m为2‑8之间的整数。

[0015] 优选地，所述融合蛋白I是由IL‑2R β亚单位或其变体与异源二聚元件1之间先通过(G2S)3连接而成。

[0016] 优选地，所述融合蛋白II是先将IL‑2R α亚单位或其变体与IL‑2R γ亚单位或其变体之间先通过(GS)1连接，再与异源二聚元件2之间通过(G2S)3连接而成。

[0017] 更优选地，所述融合蛋白I包含如下的氨基酸序列或由其组成：

[0018] i）如SEQ ID NO:1或7所示的氨基酸序列；或

[0019] ii）在i）的N端和/或C端连接标签得到的氨基酸序列；或

[0020] iii）i）或ii）的氨基酸序列经取代、缺失和/或增加一个或多个氨基酸得到的具有相同功能的蛋白。

[0021] 更优选地，所述融合蛋白II包含如下的氨基酸序列或由其组成：

[0022] iv）如SEQ ID NO:3或9所示的氨基酸序列；或

[0023] v）在iv）的N端和/或C端连接标签得到的氨基酸序列；或

[0024] vi）iv）或v）的氨基酸序列经取代、缺失和/或增加一个或多个氨基酸得到的具有相同功能的蛋白。

[0025] 第二方面，本发明提供编码所述IL‑2受体复合物的核酸分子。

[0026] 第三方面，本发明提供含有上述核酸分子的生物材料，所述生物材料包括但不限于重组DNA、表达盒、转座子、质粒载体、病毒载体、工程菌或转基因细胞系。

[0027] 第四方面，本发明提供IL‑2受体复合物的制备方法，包括以下步骤：

[0028] 1）分别构建融合蛋白I、融合蛋白II的重组表达载体；

[0029] 2）将两个重组表达载体共同转染哺乳动物细胞；

[0030] 3）从细胞培养上清中分离纯化得到IL‑2受体复合物。

[0031] 本发明中，所述重组表达载体的启动子可选自EF‑1α（human elongation factor‑1α）启动子、hCMV（human cytomegalovirus）启动子、SV40（Simian vacuolating virus40）
晚期启动子。

[0032] 优选地，所述重组表达载体的出发载体为pcDNA3.1(+)。

[0033] 本发明中，所述哺乳动物细胞可选自中国仓鼠卵巢细胞（Chinese  hamster ovary，CHO），小鼠浆细胞瘤细胞（A non‑Ig secreting, non‑light chain‑synthesizing 
subclone of NS‑1, NSO），幼年仓鼠肾细胞（baby hamster kidney，BHK），人胚肾293细胞
(human embryonic kidney293,HEK293）等，优选HEK293细胞。

[0034] 在本发明的一个具体实施方式中，使用PEI转染试剂将构建好的融合蛋白I重组表达载体和融合蛋白II重组表达载体按照1:1的质量比转染HEK293细胞，进行异源三聚体的
重组表达。

[0035] 本发明利用基因工程方法设计和制备稳定的IL‑2受体αβγ异源三聚体蛋白。如图1所示：先将β亚单位与异源二聚元件Fc‑Knob通过基因工程的方法设计为一条串联的多肽
链，为融合蛋白Ⅰ，将α亚单位、γ亚单位以及异源二聚元件Fc‑Hole通过基因工程的方法设
计为一条串联的多肽链，为融合蛋白Ⅱ，然后再将包含两个融合蛋白的质粒共同转染
HEK293细胞，利用Fc‑Knob和Fc‑Hole异源二聚化的能力，从而获得IL‑2受体αβγ异源三聚
体复合物。

[0036] 第五方面，本发明提供所述IL‑2受体复合物或或按照上述方法制备的IL‑2受体复合物在抗IL‑2R抗体筛选中的应用（含非疾病诊断和治疗目的）。

[0037] 借由上述技术方案，本发明至少具有下列优点及有益效果：

[0038] （一）本发明利用基因工程技术，通过重组表达直接获得IL‑2受体αβγ异源三聚体蛋白，无需体外组装。

[0039] （二）使用HEK293真核表达系统可在短时间内获得大量SDS‑PAGE电泳纯度高达98%以上、HPLC纯度高达90%的异源三聚体蛋白，且与IL‑2有高亲和活性。

[0040] （三）目的蛋白表达和纯化过程操作简单，可重复性高，可实现大规模生产制备。

附图说明

[0041] 图1为本发明较佳实施例中IL‑2R αβγ异源三聚体蛋白设计示意图。

[0042] 图2为表达载体pcDNA3.1图谱。

[0043] 图3为本发明较佳实施例中IL‑2R αβγ异源三聚体蛋白SDS‑PAGE图，其中，泳道1为IL‑2R αβγ异源三聚体蛋白，泳道2为蛋白Marker。

[0044] 图4为本发明较佳实施例中IL‑2R αβγ异源三聚体蛋白HPLC检测结果图。

[0045] 图5为本发明较佳实施例中利用ELISA方法检测IL‑2R αβγ异源三聚体蛋白与interleukin‑2结合活性的检测结果图。

[0046] 图6为本发明较佳实施例中利用SPR技术检测原理示意图。

[0047] 图7A为本发明较佳实施例中利用SPR技术检测IL‑2R αβγ异源三聚体复合物蛋白与IL‑2的结合亲和力结果图。

[0048] 图7B为本发明较佳实施例中利用SPR技术检测IL‑2Rβγ与IL‑2的结合亲和力结果图。

[0049] 图7C为本发明较佳实施例中利用SPR技术检测IL‑2Rα与IL‑2的结合亲和力结果图。

[0050] 图7D为本发明较佳实施例中利用SPR技术检测IL‑2Rβ与IL‑2的结合亲和力结果图。

[0051] 图7E为本发明较佳实施例中利用SPR技术检测IL‑2Rγ与IL‑2的结合亲和力结果图。

[0052] 图8为本发明较佳实施例中IL‑2R αβγ异源三聚体蛋白设计示意图。

[0053] 图9为本发明较佳实施例中IL‑2R αβγ异源三聚体蛋白SDS‑PAGE图，其中，泳道1为IL‑2R αβγ异源三聚体蛋白，泳道2为蛋白Marker。

[0054] 图10为本发明较佳实施例中IL‑2R αβγ异源三聚体蛋白HPLC检测结果图。

[0055] 图11为本发明较佳实施例中利用SPR技术检测IL‑2R αβγ异源三聚体复合物蛋白与IL‑2的结合亲和力结果图。

具体实施方式

[0056] 以下实施例用于说明本发明，但不用来限制本发明的范围。若未特别指明，实施例均按照常规实验条件，如Sambrook等分子克隆实验手册（Sambrook J & Russell DW, 
Molecular Cloning: a Laboratory Manual, 2001），或按照制造厂商说明书建议的条件。

[0057] 实施例1 重组表达载体的构建

[0058] 融合蛋白I重组表达载体pHEK‑B1的构建：由上海生物工程有限公司合成编码氨基酸序列如SEQ ID NO:1的多核苷酸（编码蛋白的氨基酸序列如SEQ ID NO:2所示），并在5’末
端添加限制性内切酶BamH Ⅰ酶切位点、Kozak序列；3’末端添加终止密码子TAA和限制性内
切酶Xho Ⅰ酶切位点。合成产物用限制性内切酶BamH Ⅰ和XhoⅠ双酶切，然后进行琼脂糖凝胶
电泳，切胶回收目的片段。将目的片段分别与同样经限制性内切酶BamHⅠ和XhoⅠ双酶切的
pcDNA3.1(+) (Invitrogen公司，货号：V790‑20)（图2）连接，构建重组真核表达载体pHEK‑
B1，转化大肠杆菌E.coli DH5α，37℃培养16h后挑取单菌落进行质粒提取，将提取后的质粒
用限制性内切酶BamH Ⅰ和XhoⅠ双酶切后进行琼脂糖凝胶电泳鉴定，将阳性克隆送上海生物
工程有限公司进行测序，选择测序正确的克隆进行质粒的放大提取，提取后的质粒无菌过
滤后，‑20℃保存备用。

[0059] 融合蛋白II重组表达载体pHEK‑AG1的构建：由上海生物工程有限公司合成编码氨基酸序列如SEQ ID NO:3的多核苷酸（编码蛋白的氨基酸序列如SEQ ID NO:4所示），并在5’
末端添加限制性内切酶BamH Ⅰ酶切位点、Kozak序列；3’末端添加终止密码子TAA和限制性
内切酶Xho Ⅰ酶切位点。合成产物用限制性内切酶BamH Ⅰ和XhoⅠ双酶切，然后进行琼脂糖凝
胶电泳，切胶回收目的片段。将目的片段分别与同样经限制性内切酶BamHⅠ和XhoⅠ双酶切的
pcDNA3.1(+) (Invitrogen公司，货号：V790‑20)（图2）连接，构建重组真核表达载体pHEK‑
B1，转化大肠杆菌E.coli DH5α，37℃培养16h后挑取单菌落进行质粒提取，将提取后的质粒
用限制性内切酶BamH Ⅰ和XhoⅠ双酶切后进行琼脂糖凝胶电泳鉴定，将阳性克隆送上海生物
工程有限公司进行测序，选择测序正确的克隆进行质粒的放大提取，提取后的质粒无菌过
滤后，‑20℃保存备用。

[0060] 实施例2 重组表达载体转染HEK293细胞并表达IL‑2R αβγ异源三聚体蛋白

[0061] 使用PEI转染试剂将构建好的重组质粒pHEK‑B1和pHEK‑AG1按照1:1的质量比转染6
HEK293细胞，进行异源三聚体的重组表达。转染前一天将HEK293细胞按照1×10/mL传代，
6 6
37℃培养。转染当天进行计数，调整细胞密度为1.8×10‑2.2×10/ml，活率95%以上。

[0062] 根据细胞密度计算转染复合物中各组分的用量：质粒剂量与细胞的数量对应关系6
为1×10cells对应1 ug质粒，PEI剂量与质粒剂量的对应关系为 PEI的质量为DNA质量的3
倍。

[0063] 根据上述计算得到的组分用量配制转染复合物：将25ug浓度为200 ug/mL的重组质粒pHEK‑B1和25ug浓度为200 ug/mL的重组质粒pHEK‑AG1加入CD 293 TGE培养基至0.5 
mL（A液），150 ug浓度为1 mg/mL的PEI转染试剂加入CD 293 TGE培养基至0.5ml（B液），分别
混匀后，将B液缓慢加入至A液中，混匀室温静置10‑15 min后，将转染混合液缓慢滴加入10 
mL HEK293细胞中。37℃，5%CO2，135 rpm培养96 h后，收集上清。所用细胞培养基为CD 293 
TGE培养基（ACRObiosystems公司，货号：CM‑1156‑11）。

[0064] 实施例3 IL‑2R αβγ异源三聚体蛋白的分离纯化

[0065] 使用Protein A亲和层析的方法对实施例2制备的异源三聚体重组蛋白进行分离纯化：4℃，1000g离心30 min收集细胞培养上清，将上清过滤后结合预先用结合缓冲液
（20mM Tris‑HCl，150mM NaCl, pH 8.0）平衡的Protein A层析柱（思拓凡生物工程科技(广
州)有限公司，货号：17543803），然后用洗脱缓冲液（100 mM甘氨酸，150 mM NaCl，pH3.5）洗
脱目标蛋白，收集蛋白洗脱液后加入1/40体积的中和缓冲液（2M Tris‑HCl，pH8.0）进行中
和，并进行SDS‑PAGE（图3）和HPLC分析（图4）。根据SDS‑PAGE结果，纯化后的两条带分别位于
66KDa和116KDa附近，符合蛋白（Ⅰ）和蛋白（Ⅱ）的理论分子量大小，且纯度高达98%以上。根
据HPLC分析结果，异源三聚体复合物纯度高达90%以上。

[0066] 实施例4 IL‑2R αβγ异源三聚体蛋白与IL‑2的结合活性检测

[0067] 本实施例中采用ELISA(酶联免疫吸附测定)方法检测本发明IL‑2R αβγ异源三聚体复合物与IL‑2的结合活性。

[0068] 1、包被：用0.1μg/孔（1μg/ml，100μl/孔）的IL‑2（AcroBiosystems公司，货号：IL2‑H4113）包被96孔板（Corning公司，货号：42592），在4℃包被过夜（或16 h）。IL‑2稀释所用包
被缓冲液为15 mM Na2CO3，35 mM NaHCO3，7.7 mM NaN3，pH9.6。

[0069] 2、洗涤：用每孔300μl的洗涤缓冲液（TBS，0.05%Tween‑20，pH7.4）洗涤孔4次。注：彻底清除洗涤缓冲液很关键。洗完之后通过抽吸除去残留的溶液，并确保其完全干燥。

[0070] 3、封闭：在37℃条件下，每孔用300μl封闭缓冲液（TBS，0.05％Tween‑20，2%BSA，pH7.4）封闭1.5 h。

[0071] 4、洗涤：重复步骤2。

[0072] 5、添加样品：每孔加入100μl 0.0976563‑100 ng/ml实施例3制备的IL‑2R αβγ异源三聚体复合物，37℃孵育1h。样品提前用稀释缓冲液（含有0.05% Tween‑20和0.5% BSA 
的TBS缓冲液，pH7.4）进行稀释。

[0073] 6、洗涤：重复步骤2。

[0074] 7、添加检测抗体：向每个孔中加入100μl anti‑human IgG抗体（Jackson，货号：109‑035‑098），37℃孵育1 h。抗体提前用稀释缓冲液（含有0.05% Tween‑20和0.5% BSA 的
TBS缓冲液，pH7.4）以1:20000比例进行稀释；

[0075] 8、洗涤：重复步骤2。

[0076] 9、添加底物：向各孔中加入200μl底物溶液，37℃孵育20 min。避光。底物溶液配置：在10 ml底物溶液（50 mM Na2HPO4·12H2O，25 mM柠檬酸，pH5.5）中加入8μl 3% H2O2和
100μl 10 mg/ml TMB（BBI Life sciences，货号：A600954）。

[0077] 10、终止反应：向各孔中加入1M硫酸50μl。

[0078] 11、读取OD值：在450 nm处读取OD值，然后OD450‑ODBlank为最终的OD值。其中ODBlank对应的孔为步骤5中不添加样品仅添加等体积稀释缓冲液的测定结果，作为空白对照。

[0079] ELISA检测结果如图5所示，本发明IL‑2R αβγ异源三聚体复合物蛋白与IL‑2结合的EC50值为6.68ng/ml，表明本发明的IL‑2R αβγ异源三聚体复合物蛋白与IL‑2具有很好
的结合活性。

[0080] 实施例5 IL‑2R αβγ异源三聚体蛋白与IL‑2的结合亲和力检测

[0081] 本实施例中采用SPR (Surface plasmon resonance，表面等离子共振)技术比较本发明IL‑2R αβγ异源三聚体蛋白及IL‑2R其他亚单位与IL‑2的结合亲和力。其中，IL‑2R
其他亚单位包括IL‑2Rα（ACRObiosystems，货号：ILA‑H5251）、IL‑2Rβ（ACRObiosystems，货
号：ILB‑H5253）、IL‑2Rγ（ACRObiosystems，货号：ILG‑H5256）、IL‑2Rβγ（ACRObiosystems，
货号：ILG‑H5254）。检测原理如图6所示：

[0082] 1、固定：用CM5芯片（GE公司，货号：BR100530）依照Human Antibody Capture Kit（GE公司，货号：BR‑1008‑39）说明书操作，固定上anti‑human IgG Fc抗体，约9000‑
14000RU。

[0083] 2、配体捕获：用运行缓冲液（10 mM HEPES, 150 mM NaCl, 3 mM EDTA，0.005% Tween‑20，pH7.4）将配体（本发明IL‑2R αβγ或上述IL‑2R其他亚单位）稀释至10μg/ mL，然
后注射至样品通道以10μl/ min的流速达到约800RU的捕获水平，参考通道不需要配体捕获
步骤。

[0084] 3、结合：用相同的运行缓冲液（10 mM HEPES, 150 mM NaCl, 3 mM EDTA，0.005％Tween‑20，pH7.4）将分析物IL‑2蛋白（AcroBiosystems公司，货号：IL2‑H4113）稀释至9种浓
度（200、100、50、25、12.5、6.25、3.13、1.56和0 nM）。设置IL‑2蛋白以30μl/ min的流速注入
参考通道和样品通道中，持续60 s或120 s的结合阶段，然后解离90 s或200 s。 结合与解
离过程全部在运行缓冲液中进行。根据分析物IL‑2的浓度按升序重复8个循环。 依照Human 
Antibody Capture Kit（GE公司，货号：BR‑1008‑39）说明书，每个循环后，应使用3 M氯化镁
完全再生传感器芯片表面。

[0085] 4、芯片再生：依照Human Antibody Capture Kit（GE公司，货号：BR‑1008‑39）说明书，在运行缓冲液（10 mM HEPES, 150 mM NaCl, 3 mM EDTA，0.005% Tween‑20，pH7.4）中
以20μL/ min的流速注入3 M氯化镁，持续30 s来再生CM5芯片。

[0086] 本发明IL‑2R αβγ或上述IL‑2R其他亚单位与IL‑2结合亲和力的结果如图7所示。

[0087] 根据SPR检测结果显示，本发明IL‑2R αβγ异源三聚体复合物蛋白与IL‑2的结合亲和力为0.041 nM（图7A），IL‑2Rβγ、IL‑2Rα及IL‑2Rβ与IL‑2的结合亲和力分别为0.123 
nM （图7B）、10.1 nM （图7C）、337 nM（图7D），IL‑2Rγ与IL‑2 结合<5RU，线性较差，同等条
件下可认为几乎不结合（图7E）。

[0088] 以上结果表明本发明的IL‑2R αβγ蛋白为稳定的IL‑2异源三聚体受体蛋白，与IL‑2R其他亚单位相比，IL‑2R αβγ蛋白与IL‑2的结合亲和力最高。

[0089] 实施例6 IL‑2R αβγ异源三聚体蛋白的制备

[0090] 本实施例中，异源二聚体元件1为亮氨酸拉链1（SEQ ID NO:5），异源二聚元件2为亮氨酸拉链2（SEQ ID NO:6）。其中，亮氨酸拉链1与异亮氨酸拉链2配对使用。IL‑2R β亚单
位或其变体与亮氨酸拉链1或亮氨酸拉链2之间通过柔性linker连接而成，并在C末端添加
抗体Fc标签或其他亲和标签用于蛋白纯化；IL‑2R α亚单位或其变体与IL‑2R γ亚单位或
其变体之间通过柔性linker连接，再与亮氨酸拉链2或亮氨酸拉链1之间通过柔性linker连
接而成，并在C末端添加抗体Fc标签或其他标签用于蛋白纯化。本实施例选择抗体Fc标签。

[0091] 重组表达载体的构建、细胞转染、表达纯化及结合亲和力检测的具体方法同实施例1、2、3和5，仅蛋白序列不同。

[0092] 本实施例中，所用蛋白序列为SEQ ID NO:7（对应的核苷酸序列为SEQ ID NO:8）和SEQ ID NO:9（对应的核苷酸序列为SEQ ID NO:10），分别进行质粒构建（pHEK‑B2和pHEK‑
AG2），然后进行蛋白的表达纯化。

[0093] 该实施例获得的IL‑2R αβγ异源三聚体蛋白，根据SDS‑PAGE结果，两条带分别位于68KDa和120KDa附近，符合蛋白（Ⅰ）和蛋白（Ⅱ）的理论分子量大小，且纯度高达98%以上。
根据HPLC分析结果，异源三聚体复合物纯度高达90%以上，与IL‑2的结合亲和力为0.024 
nM，与实施例3中制备的异源三聚体蛋白结果相似。

[0094] 图8为本实施例中IL‑2R αβγ异源三聚体蛋白设计示意图。

[0095] 图9为本实施例中IL‑2R αβγ异源三聚体蛋白SDS‑PAGE图，其中，泳道1为IL‑2R αβγ异源三聚体蛋白，泳道2为蛋白Marker。

[0096] 图10为本实施例中IL‑2R αβγ异源三聚体蛋白HPLC检测结果图。

[0097] 图11为本实施例中利用SPR技术检测IL‑2R αβγ异源三聚体复合物蛋白与IL‑2的结合亲和力结果图。

[0098] 虽然，上文中已经用一般性说明及具体实施方案对本发明作了详尽的描述，但在本发明基础上，可以对之做一些修改或改进，这对本领域技术人员而言是显而易见的。因
此，在不偏离本发明精神的基础上所做的这些修改或改进，均属于本发明要求保护的范围。