抗人c-Met人鼠嵌合单克隆抗体及其应用

摘要

本发明提供了抗人c‑Met人鼠嵌合单克隆抗体及其应用，属于酶联免疫技术领域，所述靶向c‑Met的人鼠嵌合单克隆抗体的3C36重链可变区、3C36轻链可变区的核苷酸序列依次如SEQ ID No.3和4所示。本发明提供的靶向c‑Met的人鼠嵌合单克隆抗体能够与c‑Met以高亲和力特异性结合，并嵌合了人抗体恒定区，在人体内应用时相比于鼠单克隆抗体可产生更加轻微的免疫排斥反应，提高产品的应用价值。

权利要求

1.抗人c‑Met人鼠嵌合单克隆抗体，其特征在于，所述抗人c‑Met人鼠嵌合单克隆抗体的3C36重链可变区的核苷酸序列如SEQ ID No.3所示，3C36轻链可变区的核苷酸序列如SEQ ID No.4所示。

2.一种重组表达载体，其特征在于，包含权利要求1所述的抗人c‑Met人鼠嵌合单克隆抗体的重链可变区和轻链可变区的核苷酸序列；

所述抗人c‑Met人鼠嵌合单克隆抗体的3C36重链可变区的核苷酸序列如SEQ ID No.3所示，3C36轻链可变区的核苷酸序列如SEQ ID No.4所示。

3.一种宿主细胞，其特征在于，用权利要求2所述的重组表达载体转化得到。

4.一种产生抗人c‑Met人鼠嵌合单克隆抗体的方法，其特征在于，包括：培养权利要求3所述的宿主细胞，从培养物中收集抗人c‑Met人鼠嵌合单克隆抗体。

说明书

抗人c‑Met人鼠嵌合单克隆抗体及其应用

[0001] 本发明是申请号为CN202010795032.0，发明名称为“抗人c‑Met人鼠嵌合单克隆抗体及其应用”，申请日为2020年08月10日的发明专利的分案申请。

技术领域

[0002] 本发明属于酶联免疫技术领域，尤其涉及抗人c‑Met人鼠嵌合单克隆抗体及其应用。

背景技术

[0003] 肝细胞生长因子(hepatocyte growth factor,HGF)是一种多肽生长因子，具有强促分裂、诱导上皮细胞迁移、侵袭以及诱导血管生成等作用，其生物学活性由其受体c‑Met
所介导。C‑Met是一种由C‑Met原癌基因编码的蛋白产物，具有酪氨酸激酶活性，与多种癌基
因产物和调节蛋白相关，参与细胞信息传导、细胞骨架重排的调控，是细胞增殖、分化和运
动的重要因素。目前认为，C‑Met与多种癌的发生和转移密切相关，许多肿瘤病人在其肿瘤
的发生和转移过程中均有C‑Met过度表达和基因扩增。

[0004] HGF和c‑Met在肺癌的形成和演进中起着至关重要的作用，因此，当异常活化的HGF/Met信号通路被阻断时，肿瘤细胞就会出现形态改变、增殖减缓、成瘤性降低、侵袭能力
下降等一系列的变化，提示HGF/c‑Met是一个在肿瘤治疗中有效的分子靶点。

[0005] 单克隆抗体可直接用于人类疾病的诊断、预防、治疗以及免疫机制的研究，为人类恶性肿瘤的免疫诊断与免疫治疗开辟了广阔前景。鼠源抗体能够被人体免疫系统识别，引
起人抗鼠抗体反应，使得单抗药物疗效减弱，并且引起严重的不良反应。嵌合抗体用人源的
抗体产生基因的恒定区序列来代替小鼠相应的抗体基因的恒定区序列，大大的降低了鼠源
抗体产生的免疫原性反应，使抗体的70％成分都是人成分，避免单抗分子被免疫系统当作
异源蛋白而被快速清除，提高单抗药物的药效。

发明内容

[0006] 有鉴于此，本发明的目的在于提供抗人c‑Met人鼠嵌合单克隆抗体及其应用，本发明提供的抗人c‑Met人鼠嵌合单克隆抗体能够与c‑Met以高亲和力特异性结合，并嵌合了人
抗体恒定区，在人体内应用时相比于鼠单克隆抗体可产生更加轻微的免疫排斥反应，提高
产品的应用价值，有机会应用到c‑Met高表达肿瘤疾病的诊断与治疗中。

[0007] 为了实现上述发明目的，本发明提供了以下技术方案：

[0008] 本发明提供了抗人c‑Met人鼠嵌合单克隆抗体，所述抗人c‑Met人鼠嵌合单克隆抗体的1D20重链可变区的核苷酸序列如SEQ ID No.1所示，1D20轻链可变区的核苷酸序列如
SEQ ID No.2所示，3C36重链可变区的核苷酸序列如SEQ ID No.3所示，3C36轻链可变区的
核苷酸序列如SEQ ID No.4所示，3D63重链可变区的核苷酸序列如SEQ ID No.5所示，3D63
轻链可变区的核苷酸序列如SEQ ID No.6所示。

[0009] 优选的，所述1D20重链可变区的氨基酸序列如SEQ ID No.7所示。

[0010] 优选的，所述1D20轻链可变区的氨基酸序列如SEQ ID No.8所示。

[0011] 优选的，所述3C36重链可变区的氨基酸序列如SEQ ID No.9所示。

[0012] 优选的，所述3C36轻链可变区的氨基酸序列如SEQ ID No.10所示。

[0013] 优选的，所述3D63重链可变区的氨基酸序列如SEQ ID No.11所示。

[0014] 优选的，所述3D63轻链可变区的氨基酸序列如SEQ ID No.12所示。

[0015] 本发明还提供了一种重组表达载体，包含上述技术方案所述的抗人c‑Met人鼠嵌合单克隆抗体的重链可变区和/或轻链可变区；

[0016] 所述抗人c‑Met人鼠嵌合单克隆抗体的1D20重链可变区的核苷酸序列如SEQ ID No.1所示，1D20轻链可变区的核苷酸序列如SEQ ID No.2所示，3C36重链可变区的核苷酸序
列如SEQ ID No.3所示，3C36轻链可变区的核苷酸序列如SEQ ID No.4所示，3D63重链可变
区的核苷酸序列如SEQ ID No.5所示，3D63轻链可变区的核苷酸序列如SEQ ID No.6所示。

[0017] 本发明还提供了一种宿主细胞，用上述技术方案所述的重组表达载体转化得到。

[0018] 本发明还提供了一种产生抗人c‑Met人鼠嵌合单克隆抗体的方法，包括：培养上述技术方案所述的宿主细胞，从培养物中收集抗人c‑Met人鼠嵌合单克隆抗体。

[0019] 本发明提供了抗人c‑Met人鼠嵌合单克隆抗体，所述抗人c‑Met人鼠嵌合单克隆抗体的1D20重链可变区的核苷酸序列如SEQ ID No.1所示，1D20轻链可变区的核苷酸序列如
SEQ ID No.2所示，3C36重链可变区的核苷酸序列如SEQ ID No.3所示，3C36轻链可变区的
核苷酸序列如SEQ ID No.4所示，3D63重链可变区的核苷酸序列如SEQ ID No.6所示，3D63
轻链可变区的核苷酸序列如SEQ ID No.6所示。

附图说明

[0020] 图1为不同小鼠免疫后血清效价检测结果；

[0021] 图2为噬菌体展示载体构建；

[0022] 图3为噬菌体ELISA检测结果；

[0023] 图4为3D63人鼠嵌合单克隆抗体载体构建示意图；

[0024] 图5为ProteinA纯化3D63嵌合抗体；

[0025] 图6为SDS‑PAGE检测3D63纯化抗体A为抗体非还原状态B为抗体还原状态；

[0026] 图7为3D63人鼠嵌合单克隆单体WB检测结果。

具体实施方式

[0027] 本发明提供了抗人c‑Met人鼠嵌合单克隆抗体，所述抗人c‑Met人鼠嵌合单克隆抗体的1D20重链可变区的核苷酸序列如SEQ ID No.1所示，1D20轻链可变区的核苷酸序列如
SEQ ID No.2所示，3C36重链可变区的核苷酸序列如SEQ ID No.3所示，3C36轻链可变区的
核苷酸序列如SEQ ID No.4所示，3D63重链可变区的核苷酸序列如SEQ ID No.6所示，3D63
轻链可变区的核苷酸序列如SEQ ID No.6所示。

[0028] 在本发明中，所述1D20重链可变区的核苷酸序列如SEQ ID No.1所示，具体如下：

[0029] GAGGTTCAGCTGCAGCAGTCTGGAGATGATCTGGTAAAGCCTGGGGCCTCAGTGAAGCTGTCCTGCAAGGCTTCTGGTTACTCATTTACTGGCTACTTTATGGACTGGGTGATGCAGAGCCATGGAAAGAGCCTTGAGTGGATT
GGACGTATTAATCCTAACAATGGTGATACTTTTTACAACCAGAAGTTCAAGGGCAAGGCCACATTGACTGTAGACA
AATCCTCTAGTACAGCCCACATGGAGCTCCGGAGCCTGGCATCTGAGGACTCTGCAGTCTATTATTGTGCAAGAAT
GAAGCTAATTGGGTCCTATATGGACTACTGGGGTCAAGGAACCTCAGTCACCGTCTCCTCA。

[0030] 在本发明中，所述1D20重链可变区的氨基酸序列如SEQ ID No.7所示，具体如下所示：

[0031]粗体为CDR。

[0032] 在本发明中，所述1D20轻链可变区的核苷酸序列如SEQ ID No.2所示，具体如下：

[0033] GATATCCAGATGACTCAGACTACATCCTCCCTGTCTGCCTCTCTGGGAGACAGAGTCACCATCAGTTGCAGGGCAAGTCAGGACATTAGCAATTATTTAAACTGGTATCAGCAGAAACCAGATGGAACTGTTAAACTCCTGATC
TACTACACATCAAGATTACACTCAGGAGTCCCATCAAGGTTCAGTGGCAGTGGGTCTGGAACAGATTATTCTCTCA
CCATTAGTAACCTGGAGCAAGAAGATATTGCCACTTACTTTTGCCAACAGGGTAATACGCTATTCACGTTCGGCTC
GGGGACAAAGTTGGAAATAAAATCTAGTGGTGGCGGTGGTTCGGGCGG。

[0034] 在本发明中，所述1D20轻链可变区的氨基酸序列如SEQ ID No.8所示，具体如下：

[0035]粗体为CDR。

[0036] 在本发明中，所述3C36重链可变区的核苷酸序列如SEQ ID No.3所示，具体如下：

[0037] GAGGTCCAGCTGCAGCAGTCTGGACCTGAGCTGGTGAAGCCTGGGGCTTCAGTGAAGCTGTCCTGCAAGGCCTCTGGCTACACCTTCACCAGCTACTGGATACACTGGGTGAAACAGAGACCTGGACAGGGCCTTGAGTGGATT
GGAGAGATTAATCCTAGCAACGGTCATACTTACTACACTGAGAAGTTCAAGATCAAGGCCACAATGACTTTAGACA
AATCCTCCAGCACGGCCTACATGCAACTCAGCAGCCTGACATCTGAGGACTCAGCGGTCTATTTTTGTGGAAGATA
TCCCAAGGGAGGGTATTTCGATGTCTGGGGCGCAGGGACCACGGTCACCGTCTCCTCA。

[0038] 在本发明中，所述所述3C36重链可变区的氨基酸序列如SEQ ID No.9所示，具体如下：

[0039]粗体为CDR。

[0040] 在本发明中，所述3C36轻链可变区的核苷酸序列如SEQ ID No.4所示，具体如下：

[0041] GACATTGTGCTAACTCAGTCTCCAGGCACCCTATCTGTGACTCCAGGAGATAGCGTCAGTCTTTCCTGCAGGGCCAGCCAAAGTATTAGCAGCTACCTACACTGGTATCAACAAAAATCACATGAGTCTCCAAGGCTTCTCATC
AAGTATGCTTCCCAGTCCATCTCTGGGATCCCCTCCAGGTTCAGTGGCAGTGGATCAGGGACAGATTTCACTCTCA
GTATCAACAGTGTGGAGACTGAAGATTTTGGAATGTATTTCTGTCAACAGAGTAAAAGCTGGCCTTTCACGTTCGG
CTCGGGGACAAAGTTGGAAATAAAA。

[0042] 在本发明中，所述3C36轻链可变区的氨基酸序列如SEQ ID No.10所示，具体如下：

[0043]粗体为CDR。

[0044] 在本发明中，所述3D63重链可变区的核苷酸序列如SEQ ID No.5所示，具体如下：

[0045] GAGGTCCAGCTGCAGCAGTCTGGGGCTGAACTGGTGAGGCCTGGGGTCTCAGTGAAGATTTCCTGCAAGGGGTCTGGCTACACATTCACTGATTATGCTATGCACTGGGTAAAGCAGAGTCATGCAAAGAGTCTAGAGTGGATT
GGAGTTAGTAGTAGTTATTATGGTGAGGCTAACTACAACCAGAAGTTCAAGGCCAAGGCCACAATGACTGTAGACA
AATCCTCCAGCACAGCCTATATGGAGCTTGCCGGACTGACATCTGAGGATTCTGCCATCTATTACTGTGTAAGACA
CGACGTGGATGCTATGGACTACTGGGGTCAAGGAACCTCAGTCACCGTCTCCTCA。

[0046] 在本发明中，所述3D63重链可变区的氨基酸序列如SEQ ID No.11所示，具体如下：

[0047]粗体为CDR。

[0048] 在本发明中，所述3D63轻链可变区的核苷酸序列如SEQ ID No.6所示，具体如下：

[0049] GATGTTGTGATGACCCAGACTCCACTCACTTTGTCGGTTACCATTGGACAACCAGCCTCCATCTCTTGCAAGTCAAGTCAGAGCCTCTTAGATAGTGATGGAAAGACATATTTGAATTGGTTGTTACAGAGGCCAGGCCAGTCT
CCAAAGCGCCTAATCTATCTGGTGTCTAAACTGGACTCTGGAGTCCCTGACAGGTTCACTGGCAGTGGATCAGGGA
CAGATTTCACACTGAAAATCAGCAGAGTGGAGGCTGAGGATTTGGGAGTTTATTATTGCTGGCAAGGTACACATTT
TCCTCGGACGTTCGGTGGAGGCACCAAGCTGGAAATCAAATCTAGT。

[0050] 在本发明中，所述3D63轻链可变区的氨基酸序列如SEQ ID No.12所示，具体如下：

[0051]粗体为CDR。

[0052] 本发明还提供了一种重组表达载体，包含上述技术方案所述的抗人c‑Met人鼠嵌合单克隆抗体的重链可变区和/或轻链可变区；

[0053] 所述抗人c‑Met人鼠嵌合单克隆抗体的1D20重链可变区的核苷酸序列如SEQ ID No.1所示，1D20轻链可变区的核苷酸序列如SEQ ID No.2所示，3C36重链可变区的核苷酸序
列如SEQ ID No.3所示，3C36轻链可变区的核苷酸序列如SEQ ID No.4所示，3D63重链可变
区的核苷酸序列如SEQ ID No.5所示，3D63轻链可变区的核苷酸序列如SEQ ID No.6所示。

[0054] 本发明还提供了一种宿主细胞，用上述技术方案所述的重组表达载体转化得到。

[0055] 本发明还提供了一种产生抗人c‑Met人鼠嵌合单克隆抗体的方法，包括：培养上述技术方案所述的宿主细胞，从培养物中收集抗人c‑Met人鼠嵌合单克隆抗体。

[0056] 在本发明中，所述抗人c‑Met人鼠嵌合单克隆抗体的制备方法优选包括以下步骤：

[0057] 1)将所述1D20重链可变区、3C36重链可变区和3D63重链可变区分别经BamHI和XbaI双酶切，得到酶切1D20重链可变区、酶切3C36重链可变区和酶切3D63重链可变区；

[0058] 将质粒载体pcDNA3.1(+)经BamHI和XbaI双酶切，得到线性化质粒载体pcDNA3.1(+)；

[0059] 将所述酶切1D20重链可变区、酶切3C36重链可变区和酶切3D63重链可变区连接到线性化质粒载体pcDNA3.1(+)中，得到重组质粒pcDNA3.1‑H；

[0060] 2)将所述1D20轻链可变区、3C36轻链可变区和3D63轻链可变区分别经BamHI和XbaI双酶切，得到酶切1D20轻链可变区、酶切3C36轻链可变区和酶切3D63轻链可变区；

[0061] 将质粒载体pcDNA3.1/zeo(+)经BamHI和XbaI双酶切，得到线性化质粒载体pcDNA3.1/zeo(+)；

[0062] 将所述酶切1D20轻链可变区、酶切3C36轻链可变区和酶切3D63轻链可变区连接到线性化质粒载体pcDNA3.1/zeo(+)中，得到重组质粒pcDNA3.1/zeo‑L；

[0063] 3)将所述步骤1)得到的重组质粒pcDNA3.1‑H和步骤2)得到的重组质粒pcDNA3.1/zeo‑L转染到293细胞后培养3d以上，利用蛋白A亲和层析纯化，得到抗人c‑Met人鼠嵌合单
克隆抗体。

[0064] 在本发明中，所述重链可变区和轻链可变区的双酶切的体系每80μL分别优选包括：浓度为150ng/μL的目标基因片段15μL、BamHI 2μL、XbaI2μL、10×NEBuffer48μL、10×
BSA 8μL和ddH2O 45μL。在本繁忙中，所述双酶切的条件优选包括：37℃反应过夜。

[0065] 在本发明中，所述质粒载体pcDNA3.1(+)和质粒载体pcDNA3.1/zeo(+)的双酶切体系每80μL分别优选包括：浓度为150ng/μL的线性化质粒载体15μL、BamHI 2μL、XbaI 2μL、10
×NEBuffer 48μL、10×BSA 8μL和ddH2O 45μL。在本发明中，所述双酶切的条件优选包括：
37℃反应过夜。

[0066] 在本发明中，所述连接的体系每25μL优选包括：目标基因片段3μL、线性化质粒载体1μL、10×T4 DNA Ligation Buffer 2.5μL、T4 DNA ligase1μL和ddH2O 17.5μL。在本发
明中，所述连接的条件优选包括：金属浴16℃连接过夜。

[0067] 在本发明中，所述重组质粒pcDNA3.1‑H的质量、重组质粒pcDNA3.1/zeo‑L的质量5
与293细胞的个数比优选为2μg:2μg:1×10 个。在本发明中，所述转染还优选包括，将所述
重组质粒与脂质体混合后再进行转染，所述重组质粒pcDNA3.1‑H的质量的脂质体的体积比
优选为2μg:10μL。本发明对所述转染过程中需要的培养基培养的种类没有限定，采用本领
域常规选用的即可。

[0068] 在本发明中，所述蛋白A亲和层析纯化优选包括：配置ProteinA填料与装柱：1.5g ProteinA‑Sepharose CL‑4B干粉用6‑7mL三蒸水溶解，再用平衡缓冲液浸泡15min，装入层
析柱中。用10倍柱床体积的平衡缓冲液过柱，流速为1mL/min，使流出液体的pH为7.4。

[0069] 下面结合实施例对本发明提供的技术方案进行详细的说明，但是不能把它们理解为对本发明保护范围的限定。

[0070] 实施例1

[0071] 小鼠免疫及效价检测

[0072] 免疫6‑8周雌性Balb/c小鼠5只，每只小鼠每次免疫HIS标签标记的人c‑met胞外抗原(NP_000236)(Met 1‑Thr 932)，剂量为50μg，首次免疫将免疫原与等体积的完全弗氏佐
剂制成乳化剂，腹部皮下多点注射；间隔2～3周取相同剂量免疫原与等体积不完全弗氏佐
剂制成乳化剂，腹部皮下多点注射。于三次免疫后一周取血测定血清效价，效价合格的小鼠
进行加强免疫，加强免疫3天后取小鼠脾脏液氮冻存备用。

[0073] 于末次免疫后一周，经小鼠眶静脉丛取血50～60μL，4℃静置过夜后，离心分离上层血清备检。取适量c‑Met抗原蛋白，用包被缓冲液稀释成5μg/mL，然后用单道移液器在96
孔板每孔中加入100μL，轻拍板子使样品混匀，用保鲜膜封严，4℃下包被过夜；用洗涤液按
200μL/孔洗板1次，扣干酶标板；再用封闭液按300μL/孔封闭酶标板，室温下封闭1小时；用
洗涤液按200μL/孔洗板2次后加样(将经过梯度稀释的样品及样品稀释剂以100μL/孔加
样)，同时加入检测抗体，以100μL/孔加至96孔板内，室温下作用2小时；用洗涤液按200μL/
孔洗板5次，以100μL/孔加入显色液室温放置12min；以50μL/孔加入终止液终止反应；用酶
标仪进行检测：测定波长为450nm，测定结果图1所示。经测定后5只小鼠体内均形成了较高
滴度的靶向c‑Met的抗体，其中小鼠A检测到的抗体效价最高，故选用鼠A用于之后的噬菌体
文库构建。

[0074] 实施例2

[0075] 生物淘选可变区序列

[0076] 从免疫c‑Met胞外抗原的小鼠A脾脏中用trizol法提取总RNA，用鼠抗体scFv基因扩增试剂盒(货号：P001Z)扩增可鼠抗体可变区基因，以一段由多个甘氨酸(Gly)与丝氨酸
(Ser)构成的肽连接物Linker(SEQ ID No.13：SSGGGGSGGGGGGSSRSS)连接抗体重链与轻链
可变区，形成单链抗体基因片段scFv，将scFv单链抗体基因片段克隆到噬菌粒载体
pCANTAB5E中，构建scFv噬菌体展示文库，使单链抗体scFv在噬菌体展示文库中展示表达，
图2为噬菌体展会载体构建示意图。之后经过质粒提取，将噬菌体质粒电转化建库，库容≥
108。随后，用ELISA板包被特异抗原对噬菌体库进行筛选，采用”淘洗‑扩增‑富集”的循环方
式，一般2轮以上得到阳性克隆。通过ELISA实验对挑选的阳性克隆做进一步检测，将ELISA
检测的阳性克隆PCR，酶切分型后送测序，根据测序结果挑选适合的可变区序列，最终确定
1D20、3C36、3D63三株效果最好的克隆株，其ELISA结果如图3所示。检测结果显示，1D20、
3C36、3D63三个克隆株与c‑Met抗原有极强的结合能力，而对对照抗原与细胞裂解液无显著
结合，说明上述三株克隆对c‑Met抗原有很好的特异性靶向功能。

[0077] 实施例3

[0078] 人鼠嵌合单克隆抗体的构建、表达与纯化

[0079] 1 人鼠嵌合单克隆抗体载体构建

[0080] 1.1 载体构建

[0081] 质粒构建过程如图4所示，具体步骤如下：

[0082] 1.1.1 PCR扩增轻链与重链可变基因片段

[0083] 根据人重链信号肽序列与pcDNA3.1(+)表达载体相关信息，设计并合成含有酶切位点BamHI的上游引物SH.R和信号肽序列HHS；根据人轻链信号肽序列和pcDNA3.1/zeo(+)
表达载体相关信息，设计并合成含有酶切位点BamHI的人轻链信号肽上游引物SL.F和信号
肽序列HLS，通过引物设计软件Oligo7的设计得到引物。

[0084] 人IgG重链信号肽(HHS)

[0085] SEQ ID No.14：

[0086] 5'‑atggactggacctggaggatcctcttcttggtggcggccgccacaggcgcgcactcc‑3’；

[0087] SEQ ID No.15：

[0088] SH.F 5’‑CGGGATCC atggactggacc‑3'(BamHI)；

[0089] SEQ ID No.16：

[0090] 人IgG轻链信号肽(HLS)5'‑atgttgccatcacaactcattgggtttctgctgctctgggttccagctagccgcggt‑3'；

[0091] SEQ ID No.17：

[0092] SL.F 5'‑CGGGATCC atgttgccatc‑3'(BamHI)。

[0093] 以已构建完成的重组质粒pCANTAB5E‑3D63scFv为模板，设计引物，以重链可变区引物VH.F和VH.R扩增重链可变区基因片段VH，同样以轻链可变区引物VL.F和VL.R扩增轻链
可变区基因片段VL。

[0094] 重链可变区引物：

[0095] SEQ ID No.18：

[0096] VH.F 5'‑caggcgcgcactccTCTGGGGCTGAACTG‑3'；

[0097] SEQ ID No.19：

[0098] VH.R 5'‑gcccttggtgctagctgaggagacggtgact‑3'；

[0099] 轻链可变区引物：

[0100] SEQ ID No.20：

[0101] VL.F 5'‑cagctagccgcggtGATGTTGTGATGACC‑3'；

[0102] SEQ ID No.21：

[0103] VL.R 5'‑cgccgccaccgtacg tttgatttccagcttg‑3'。

[0104] 按表1所示加入PCR反应体系，并瞬时离心以混匀反应体系：

[0105] 表1 VH与VL基因片段的PCR反应体系

[0106]

[0107]

[0108] PCR反应条件为：94℃5min(循环1次)；94℃1min，65℃1min；72℃1min(循环30次)；72℃10min(循环1次)。分别扩增出VH与VL。

[0109] PCR产物通过琼脂糖凝胶电泳回收。

[0110] 1.1.2 PCR扩增人IgG重链和轻链恒定区基因片段

[0111] 根据人IgG重链和轻链恒定区基因与pcDNA3.1(+)和pcDNA3.1/zeo(+)表达载体相关信息，设计包含酶切位点XbaI的引物扩增恒定区基因片段，通过引物设计软件Oligo7的
设计得到引物。

[0112] 取人外周血淋巴细胞并提取mRNA，经RT‑PCR得到的cDNA。

[0113] 以得到的cDNA为模板，以CH.F和CH.R引物扩增重链恒定区CH；以CL.F和CL.R引物扩增轻链恒定区CL。

[0114] 重链恒定区引物

[0115] SEQ ID No.22：

[0116] CH.F 5'‑gctagcaccaagggcccatcggtc‑3'；

[0117] SEQ ID No.23：

[0118] CH.R 5'‑tgctctagatcatttacccggag‑3'(XbaI)；

[0119] 轻链恒定区引物

[0120] SEQ ID No.24：

[0121] CL.F 5'‑cgtacggtggcggcgccatctg‑3'；

[0122] SEQ ID No.25：

[0123] CL.R 5'‑tgctctagatcatttacccggag‑3'(XbaI)。

[0124] 按表2所示加入PCR反应体系，并瞬时离心以混匀反应体系：

[0125] 表2 CH与CL基因片段的PCR反应体系

[0126]

[0127] PCR反应条件为：94℃5min(循环1次)；94℃1min，65℃1min；72℃1min(循环30次)；72℃10min(循环1次)。分别扩增出CH与CL。

[0128] PCR产物通过琼脂糖凝胶电泳回收。

[0129] 1.1.3 巢式PCR对鼠源抗体可变区与人抗体恒定区的拼接

[0130] 以已合成的重链信号肽HHS与已扩增的重链可变区VH和CH为模板，以SH.F与CH.R为引物，重叠延伸PCR(SOE‑PCR)扩增出全重链基因片段；同样以已合成的轻链信号肽HLS与
已扩增的轻链可变区VL和CL为模板，以SL.F与CL.R为引物，扩增出全轻链基因片段。

[0131] 按表3与表4所示加入PCR反应体系，并瞬时离心以混匀反应体系：

[0132] 表3 重链基因片段的PCR反应体系

[0133]

[0134] 表4 轻链基因片段的PCR反应体系

[0135]

[0136] PCR反应条件为：94℃5min(循环1次)；94℃1min，65℃1min；72℃1min(循环30次)；72℃10min(循环1次)。分别完成嵌合抗体H与L的扩增拼接。

[0137] PCR产物通过琼脂糖凝胶电泳回收。

[0138] 1.1.4 嵌合抗体重链与轻链以及质粒pcDNA3.1(+)与pcDNA3.1(+)/zeo的双酶切

[0139] 根据目的基因片段上下游的限制性内切酶位点BamHI和XbaI，对目的基因进行双酶切反应。以限制性内切酶位点BamHI和XbaI对质粒pcDNA3.1(+)与pcDNA3.1(+)/zeo进行
双酶切以形成线性质粒载体。

[0140] 酶切反应体系如表5，表6所示，加入反应体系后混匀并将其放置于37℃反应过夜。

[0141] 表5 目的基因片段的双酶切反应体系

[0142]

[0143] 表6 质粒载体的双酶切反应体系

[0144]

[0145]

[0146] 将酶切反应产物通过琼脂糖凝胶电泳回收。

[0147] 1.1.5 质粒pcDNA3.1(+)与重链的连接

[0148] 以T4 DNA连接酶，连接回收的重链基因片段及线性化质粒载体pcDNA3.1(+)，目的基因片段与线性化质粒以10:1摩尔比混合，配制25μL反应体系，如表7所示。

[0149] 表7 pcDNA3.1(+)与重链基因片段的连接体系

[0150]

[0151] 1.1.6 质粒pcDNA3.1(+)/zeo与轻链的的连接

[0152] 以T4 DNA连接酶，连接回收的轻链基因片段及线性化质粒载体pcDNA3.1/zeo(+)，目的基因片段与线性化质粒以10:1摩尔比混合，配制25μL反应体系，如表8所示。金属浴16
℃进行过夜连接。

[0153] 表8 pcDNA3.1/zeo(+)与轻链基因片段的连接体系

[0154]

[0155] 2重组质粒的表达

[0156] 转染前一天，将1×105个293细胞接种至6孔板中，用无抗生素细胞生长液培养细胞.细胞生长丰度达90％左右时进行转染，转染前1h更换培养基，加入Opti‑MEM无血清培养
基。重组质粒pcDNA3.1‑H与pcDNA3.1/zeo‑L各2μg与250μl Opti‑MEM混合，并加入10μl脂质
体混合于250μl Opti‑MEM中，静置5min，将两种混合液充分混合，静置20min。将脂质体复合
物加入细胞中，混匀，放37℃培养箱培养5h。将培养基更换为细胞生长液，继续培养3天。

[0157] 3抗体纯化

[0158] 3D63单克隆抗体的亲和层析纯化利用蛋白A亲和层析目的抗体，纯化过程通过AKTA explorer100进行监测。配置ProteinA填料与装柱：1.5gProteinA‑Sepharose CL‑4B
干粉用6‑7mL三蒸水溶解，再用平衡缓冲液浸泡15min，装入层析柱中。用10倍柱床体积的平
衡缓冲液过柱，流速为1mL/min，使流出液体的pH为7.4。取得293细胞上清，经4℃，12000g离
心15min，收集上清。取上清5mL，以平衡缓冲液稀释至50mL，0.45μm滤膜过滤，准备上样。上
样流速为1mL/min。上样后，以10倍柱床体积的平衡缓冲液进行流洗，流速为1mL/min，直至
UV至基线位置。随后用洗脱缓冲液洗脱目标抗体，当观察到基线开始上升，即出现洗脱峰
时，分管收集洗脱液，以中和缓冲液中和至中性。收集洗脱液至洗脱峰回到基线后，继续用
5‑10倍柱床体积的平衡缓冲液平衡柱床，流速调至1mL/min。用10倍柱床体积的三蒸水平衡
柱床，过程如图5所示。Protein A是金黄色葡萄球菌的表面蛋白，可特异结合抗体Fc段的高
亲和力位点，适用于细胞培养上清的单克隆抗体纯化。因此这里选用Protein A亲和层析柱
纯化抗体，通过AKTK explorer100监测纯化进程。之后利用SDS不连续丙烯酰胺凝胶电泳检
测纯化结果，结果如图6所示。泳道M为蛋白Marker；N‑R泳道为非还原状态的完整抗体条带，
在212KD偏上位置；R泳道为还原状态的抗体条带，抗体还原成轻链26KD与重链50KD片段。结
果显示条带非常清晰并单一，证明抗体具有很高的纯度。

[0159] 实施例4

[0160] 人鼠嵌合单克隆抗体Western‑Blot鉴定

[0161] 为了验证所制备的人鼠嵌合抗体是否具备靶向检测c‑Met抗原的能力，通过实施例3中制备纯化出的3D63单克隆抗体进行Western Blot试验验证，试验步骤如下：

[0162] 按表说明书配制好分离胶，在模具中灌入分离胶溶液。在分离胶上轻轻覆盖上一层无水乙醇，使凝胶保持平整，室温静置10～15min。待分离胶与乙醇中间清晰的分界肉眼
可见后，倒掉乙醇，并用吸水纸把残余的乙醇小心吸干。将浓缩胶加至分离胶的上面，直到
达到约玻璃板的顶端，将与玻璃板厚度配套的梳子插入凝胶内，室温静置约15min，直至胶
凝。将玻璃板安放在蛋白垂直电泳槽里，压紧，加入1×MOPS‑SDS电泳液，超过电泳槽外两块
胶的刻度线，检查蛋白垂直电泳槽内是否有漏液现象。取20μLA549细胞蛋白提取样品分别
加至SDS‑PAGE浓缩胶样品孔中，并加入5μL蛋白预染Marker，记录加样顺序。将电泳电源设
定恒压120V进行电泳，电泳约1h，至溴酚蓝指示剂跑至分离胶底部，架子绿色边缘，所需区
段的蛋白Marker条带完全分开为止。根据样品区域胶块大小，剪与胶块大小一致的PVDF膜
及比胶块长宽小1mm的6层滤纸，置于甲醇中6s，迅速转移至电转液中浸泡备用。按照电流由
正极流向负极，膜正胶负的原则，以滤纸‑膜‑胶‑膜的顺序放入半干式碳板转印槽中。根据
公式计算电流I，转膜50min。转膜结束后，取WesternBlot避光黑盒，用5％脱脂奶粉溶液封
闭PVDF膜，置于水平摇床4h。弃脱脂奶粉溶液。利用TBST洗膜，直至无脱脂奶粉溶液。加入纯
化的人鼠嵌合单克隆抗体作为一抗，水平摇床摇晃10min，确保PVDF膜浸入一抗溶液，4℃冰
箱过夜。弃一抗溶液，用TBST溶液洗膜3次，每次水平摇床10min3次。弃TBST溶液。在避光条
件下将二抗溶液倒入WesternBlot避光黑盒，确保PVDF膜浸入二抗溶液，盖紧黑盒，避光摇
床50min。弃二抗溶液。TBST溶液洗膜2次，每次10min。弃TBST溶液。用TBS溶液洗膜1次，水平
摇床5min。扫膜分析，结果如图7所示。H1299为c‑Met阳性细胞株，将其中的c‑Met蛋白用
CRISPR技术敲除掉作为对照细胞，WB结果显示在未敲除的H1299细胞中可检测出一条条带，
并无其他杂带，而敲除后的细胞中未能检到任何明显调大，且未敲除组中检测出的蛋白大
小与c‑Met相符，证实制备的3D63人鼠嵌合抗体可以和c‑Met蛋白特异结合，可用于WB的检
测等实验当中。

[0163] 以上所述仅是本发明的优选实施方式，应当指出，对于本技术领域的普通技术人员来说，在不脱离本发明原理的前提下，还可以做出若干改进和润饰，这些改进和润饰也应
视为本发明的保护范围。

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