一种呋喃甲酰胺基β-咔啉类化合物及其制备方法和应用转让专利
申请号 : CN202011588243.3
文献号 : CN112694476B
文献日 : 2022-03-18
发明人 : 王鸿 , 黄植 , 李亚胜 , 魏斌 , 蔡悦
申请人 : 浙江工业大学
摘要 :
权利要求 :
1.一种式Ⅰ所示呋喃甲酰胺基β‑咔啉类化合物在制备肿瘤细胞增殖抑制剂中的应用:式Ⅰ中R基为单取代或多取代,所述R基为甲氧基、卤素或硝基;所述卤素为氟、氯或溴。
2.如权利要求1所述的应用,其特征在于所述R基为4‑甲氧基、2‑氟基、3‑氟基、4‑氟基、
2‑氯基、3‑氯基、4‑氯基、2‑硝基、3‑硝基、4‑硝基、2,4‑二氟基、2,6‑二氟基、4‑溴基。
3.如权利要求1所述的应用,其特征在于所述呋喃甲酰胺基β‑咔啉类化合物的制备方法包括如下步骤:
(1)式Ⅱ化合物与HCl和NaNO2,0~5℃反应,制备式Ⅲ化合物反应液;向式Ⅲ化合物反应液中加入2‑呋喃甲酸丙酮溶液、氯化铜二水合物水溶液,0~5℃下反应6小时,随后再在室温下反应16小时,纯化分离得到式Ⅳ化合物;
(2)在二氯甲烷和氯化亚砜存在下,式Ⅳ化合物,45℃下回流反应生成式Ⅴ化合物;
(3)在二氯甲烷、三乙胺存在下,式Ⅴ化合物与9H‑吡啶[3,4‑b]吲哚,室温反应结束后,除去反应溶剂,用体积浓度50%乙酸乙酯水溶液萃取后,水相用乙酸乙酯萃取,乙酸乙酯相用饱和食盐水洗涤后无水硫酸钠干燥,以体积比8:1的石油醚/乙酸乙酯为洗脱剂进行硅胶柱层析,收集Rf值为0.3的组分,得到式Ⅰ化合物;
式Ⅱ中R基为单取代或多取代,所述R基为甲氧基、卤素或硝基;所述卤素为氟、氯或溴;
式Ⅲ、Ⅳ和Ⅴ中R同式Ⅱ中R。
4.如权利要求3所述的应用,其特征在于步骤(1)按如下方法进行:将式II化合物加入质量浓度15%的盐酸水溶液,置于冰水混合物中充分搅拌直至对甲氧基苯胺完全溶解,随后在0~5℃下滴加质量浓度30%的亚硝酸钠水溶液,滴加完毕后,搅拌15分钟,获得含Ⅲ化合物的反应液;往含Ⅲ化合物的反应液中加入2‑呋喃甲酸的丙酮溶液和氯化铜二水合物的去离子水溶液,0~5℃下反应6小时,随后再在室温下反应16小时;反应结束后,抽滤,滤饼用水洗涤后再用饱和碳酸氢钠水溶液溶解至pH为7~8,随后加入盐酸酸化直至无固体析出,过滤,收集滤饼,干燥后,得到式Ⅳ化合物;所述盐酸水溶液体积用量以式II化合物重量计为2‑10mL/g;所述亚硝酸钠水溶液体积用量以式II化合物重量计为2‑10mL/g;所述2‑呋喃甲酸与式II化合物重量比为1:0.5‑2.0;所述丙酮体积用量以式II化合物重量计为2‑
10mL/g;所述氯化铜二水合物与式II化合物重量比为0.1‑1.0;所述去离子水体积用量以式II化合物重量计为2‑10mL/g。
5.如权利要求3所述的应用,其特征在于步骤(2)按如下方法进行:将式Ⅳ化合物加入二氯甲烷和氯化亚砜中,在45℃下回流反应2小时后旋蒸除去反应溶剂,得到式Ⅴ化合物;
所述二氯甲烷总体积用量以式Ⅳ化合物重量计为100‑300mL/g;所述氯化亚砜体积用量以式Ⅳ化合物重量计为1‑10mL/g。
6.如权利要求3所述的应用,其特征在于步骤(3)按如下方法进行:加入二氯甲烷溶解步骤(2)全部式Ⅴ化合物,随后缓慢滴加用二氯甲烷和三乙胺溶解的9H‑吡啶[3,4‑b]吲哚,室温下搅拌,TLC监测反应进程,展开剂为体积比为1:1的石油醚/乙酸乙酯,反应结束后旋蒸除去反应溶剂,加入体积浓度50%乙酸乙酯水溶液进行萃取,水相再用乙酸乙酯萃取,取乙酸乙酯相用饱和食盐水洗涤后无水硫酸钠干燥,硅胶柱层析,洗脱剂为体积比8:1的石油醚/乙酸乙酯,收集Rf值为0.3的组分,浓缩至干,得到式I化合物;所述二氯甲烷总体积用量以式Ⅳ化合物重量计为10‑100mL/g;所述三乙胺体积用量以式Ⅳ化合物重量计为0.1‑
1.0mL/g;所述9H‑吡啶[3,4‑b]吲哚与式Ⅳ化合物重量比为1:0.5‑1.5。
7.如权利要求1所述的应用,其特征在于所述肿瘤细胞为A549人非小细胞肺癌细胞、HepG2人肝癌细胞、MCF‑7人乳腺癌细胞、Hala人宫颈癌细胞、Caco‑2人克隆结肠腺癌细胞或HCT‑116人结肠癌细胞。
8.如权利要求1所述的应用,其特征在于所述抑制剂为抗肿瘤药物。
9.如权利要求8所述的应用,其特征在于所述抗肿瘤药物为治疗非小细胞肺癌、肝癌、乳腺癌、宫颈癌、结肠腺癌或结肠癌的药物。
说明书 :
一种呋喃甲酰胺基β‑咔啉类化合物及其制备方法和应用
技术领域
技术背景
被广泛研究,如抗锥虫体和抗利什曼,抗阿尔茨海默病,抗血小板聚集和抗血栓形成、抗帕
金森和作为DYRK1A抑制剂。值得一提的是,β‑咔啉类生物碱具有强大的抗肿瘤活性。β‑咔啉
生物碱存在能够在DNA碱基对之间堆叠的多环芳香族平面药效团,因此可以插入DNA,改变
DNA复制保真度并且影响DNA修复过程中酶的活性。
Ⅰ‑1~Ⅰ‑13。
和HCT‑116人结肠癌细胞等增殖的作用,对癌细胞表现出明显的细胞毒性。
发明内容
人乳腺癌细胞、Hala人宫颈癌细胞、Caco‑2人克隆结肠腺癌细胞和HCT‑116人结肠癌细胞等
恶性肿瘤细胞的细胞增殖有较好的抑制效果,具有较好的抗肿瘤药物的开发利用前景。
再在室温下反应16小时,纯化分离得到式Ⅳ化合物;
取,乙酸乙酯相用饱和食盐水洗涤后无水硫酸钠干燥,以体积比8:1的石油醚/乙酸乙酯为
洗脱剂进行硅胶柱层析,收集Rf值为0.3的组分,得到式Ⅰ化合物;
钠水溶液,滴加完毕后,搅拌15分钟,获得含式Ⅲ化合物的反应液;往含式Ⅲ化合物的反应
液中加入2‑呋喃甲酸的丙酮溶液和氯化铜二水合物的去离子水溶液,0~5℃下反应6小时,
随后再在室温(25‑30℃)下反应16 小时;反应结束后,抽滤,滤饼用水洗涤后再用饱和碳酸
氢钠水溶液溶解至pH 为7~8,随后加入盐酸酸化直至无固体析出,过滤,收集滤饼,干燥
(优选50‑90℃) 后,得到式Ⅳ化合物;所述盐酸水溶液体积用量以式II化合物重量计为2‑
10mL/g,优选5‑6mL/g;所述亚硝酸钠水溶液体积用量以式II化合物重量计为2‑10mL/g,优
选4‑5mL/g;所述2‑呋喃甲酸与式II化合物重量比为1:0.5‑2.0,优选1:1;所述丙酮体积用
量以式II化合物重量计为2‑10mL/g,优选5‑6mL/g;所述氯化铜二水合物与式II化合物重量
比为0.1‑1.0,优选1:0.5;所述去离子水体积用量以式II化合物重量计为2‑10mL/g,优选4‑
5mL/g;
甲烷总体积用量以式Ⅳ化合物重量计为100‑300mL/g,优选 200mL/g;所述氯化亚砜体积用
量以式Ⅳ化合物重量计为1‑10mL/g,优选5mL/g;
(展开剂:石油醚/乙酸乙酯体积比为1/1),反应结束后用旋转蒸发仪除去反应溶剂,加入体
积浓度50%乙酸乙酯水溶液进行萃取,水相再用乙酸乙酯萃取(优选3次),乙酸乙酯相用饱
和食盐水洗涤后无水硫酸钠干燥,硅胶柱层析(洗脱剂为体积比8:1的石油醚/乙酸乙酯),
收集Rf值为0.3的组分,浓缩至干,得到式I化合物;所述二氯甲烷总体积用量以式Ⅳ化合物
重量计为10‑100 mL/g,优选41mL/g;所述三乙胺体积用量式以Ⅳ化合物重量计为0.1‑
1.0mL/g,优选0.5mL/g;所述9H‑吡啶[3,4‑b]吲哚与式Ⅳ化合物重量比为1:0.5‑1.5,优选
1:0.8。
细胞为Hala人宫颈癌细胞时,R为4‑MeO、4‑Cl、 2‑NO2、4‑NO2;肿瘤细胞为Caco‑2人克隆结肠
腺癌细胞时,R为4‑MeO、3‑F、 2,4‑F;肿瘤细胞为HCT‑116人结肠癌细胞时,R为4‑MeO、3‑F、
2‑Cl、4‑Cl、 4‑NO2。
备方法简单,产率较高。所述呋喃甲酰胺基β‑咔啉类化合物在临床上可作为治疗包括非小
细胞肺癌、肝癌、乳腺癌、宫颈癌、结肠腺癌和结肠癌在内的恶性肿瘤药物,拓展了呋喃和咔
啉类结构在肿瘤抑制剂方面的应用前景。
附图说明
具体实施方式
的质量浓度30%的亚硝酸钠水溶液,滴加完毕后,搅拌15分钟,获得含(Ⅲ‑1)化合物的反应
液。往含(Ⅲ‑1)化合物的反应液中加入 5.6g(0.05mol)2‑呋喃甲酸的30ml丙酮溶液和3g氯
化铜二水合物的20mL去离子水溶液,0~5℃下反应6小时,随后再在室温下反应16小时。反
应结束后,抽滤分离出悬浮的固体,滤饼用水洗涤后再用饱和碳酸氢钠水溶液溶解至pH为7
~ 8,随后加入盐酸酸化直至无固体析出,最终过滤,收集滤饼,80℃干燥后,得到棕黄色固
体5.34g,即为5‑(4‑甲氧基苯基)呋喃‑2‑羧酸(Ⅳ‑1),质量产率51.6%。产物无需进一步纯
化,可直接用于下一步反应。
反应溶剂,得到褐色油状物Ⅴ‑1,化合物Ⅴ‑1对水敏感,无需进一步分离纯化;
进程(展开剂:石油醚/乙酸乙酯体积比为1/1)。反应结束后旋蒸除去反应溶剂,加入10mL水
和10mL乙酸乙酯进行萃取,水相再用乙酸乙酯 (10mL)萃取3次,合并乙酸乙酯相,饱和食盐
水洗涤后无水硫酸钠干燥。最后硅胶柱层析(洗脱剂为体积比8:1的石油醚/乙酸乙酯),收
集Rf值为0.3的组分,浓缩至干,得到160mg的黄色固体,即为化合物I‑1,质量产率44.9%,
核磁氢谱见图1,核磁碳谱见图2。
5
Gbico),以1×10/mL密度接种于96孔培养板中,每孔100μL,在37℃、5%CO2饱和湿度的条件
下培养,分为对照组、空白组、实验组。实验组中加入不同的受试化合物,终浓度分别为50μ
M、25μM、5μM、1μM、 0.5μM、0.1μM;空白组给予等体积的PBS,对照组分别加入50μM、25μM、5μ
M、 1μM、0.5μM、0.1μM、0.01μM的多柔比星(dox)和喜树碱(CPT)。培养48h,加入10μL CCK‑8
工作液(购自碧云天生物,上海),放入恒温箱孵育20min后,在酶标仪上于波长450nm处读取
吸光度,计算化合物对细胞增殖的抑制率,结果见表3。
技发展有限公司),每种细胞培养时均按常规方法,在培养基中添加含10%小牛血清,其中
HepG2培养基为1640培养基;MCF‑7培养基为1640培养基;Hala培养基为DMEM培养基(购自
Gibco);Caco‑2培养基为DMEM培养基(购自Gibco);HCT‑116培养基为1640培养基。其他操作
同步骤1,结果见表3所示,表明化合物Ⅰ‑1有较为广谱的抗癌细胞增殖活性,有开发为抗肿
瘤药物的前景。