一种具有ROS响应的水凝胶及其制备方法和应用

摘要

本发明提供了一种具有ROS响应的水凝胶及其制备方法和应用，制备时，以碳二亚胺作为催化剂，将儿茶酚基团接枝在壳聚糖大分子上，提高了壳聚糖的溶解性和粘附性。再以胱胺作为交联剂，让其氨基与儿茶酚基团氧化后形成的苯醌发生迈克尔加成反应形成交联网络，从而形成水凝胶。本发明还包括上述方法制得的具有ROS响应的水凝胶及其应用。其中，胱胺含有的二硫键能够在活性氧的作用下断裂转变为亚磺酸，从而破坏了水凝胶的结构，在产生较多活性氧物质的动脉粥样硬化部位中可发挥智能化释放药物的作用，避免药物在病变部位的突释，有望减少血管内再狭窄的发生、内皮延迟愈合及晚期血栓等风险。

权利要求

1.一种具有ROS响应的水凝胶的制备方法，其特征在于，包括以下步骤：将儿茶酚改性壳聚糖氧化后与胱胺交联，得具有ROS响应的水凝胶；所述儿茶酚改性壳聚糖接枝率为9‑

21%；

其具体步骤为：

（1）将儿茶酚改性壳聚糖加入Tris‑base溶液中，磁力搅拌至完全溶解，然后在冰浴条件下搅拌1‑3h，得中间液；

（2）将胱胺二盐酸盐溶于Tris‑base溶液中，然后在搅拌条件下滴加到步骤（1）所得中间液中，继续搅拌4‑6min，再置于35‑40℃温度下成胶，得具有ROS响应的水凝胶。

2.如权利要求1所述的具有ROS响应的水凝胶的制备方法，其特征在于，步骤（1）和（2）中，儿茶酚改性壳聚糖溶液浓度为0.5‑1wt%，胱胺二盐酸盐溶液终浓度为8wt%。

3.如权利要求1所述的具有ROS响应的水凝胶的制备方法，其特征在于，步骤（1）中，所述儿茶酚改性壳聚糖通过以下方法制备得到：以壳聚糖为原料，碳二亚胺为催化剂，3,4‑ 二羟苯基丙酸 为中间体，然后与壳聚糖氨基反应，得儿茶酚改性壳聚糖。

4.如权利要求3所述的具有ROS响应的水凝胶的制备方法，其特征在于，制备所述儿茶酚改性壳聚糖的具体步骤为：

（1）将壳聚糖加入RO水中，然后加入浓盐酸搅拌至完全溶解，调节pH值至4‑6，得壳聚糖溶液；

（2）将3,4‑二羟苯基丙酸溶于去离子水中，然后滴加到步骤（1）所得壳聚糖溶液中混匀，调节pH值至4‑6，得混合液一；

（3）将碳二亚胺加入RO水与无水乙醇按体积比1:1混合而成的混合液中，然后滴加到步骤（2）所得混合液一中，调节pH值至4‑6后于室温下搅拌4h以上，得混合液二；

（4）将步骤（3）所得混合液二通过pH值为5.5±0.5的RO水中透析24‑36h，且每间隔4h更换一次RO水，冷冻干燥，得儿茶酚改性壳聚糖。

5.如权利要求4所述的具有ROS响应的水凝胶的制备方法，其特征在于，所述壳聚糖和所述碳二亚胺质量摩尔比为0.5:0.325‑1.63g/mmol，所述碳二亚胺和所述3,4‑二羟苯基丙酸摩尔比为0.325‑1.63:0.325‑3.25。

6.如权利要求4所述的具有ROS响应的水凝胶的制备方法，其特征在于，步骤（1）和（2）中，采用1‑2mol/L氢氧化钠溶液与 1‑2mol/L盐酸溶液调节pH值。

7.如权利要求1所述的具有ROS响应的水凝胶的制备方法，其特征在于，所述儿茶酚改性壳聚糖乙酰度大于95%，分子量为5‑19万Da。

8.权利要求1‑7任一项所述的具有ROS响应的水凝胶的制备方法制得的具有ROS响应的水凝胶。

9.权利要求8所述的具有ROS响应的水凝胶在制备在动脉粥样硬化部位微环境中释放药物的凝胶中的应用。

说明书

一种具有ROS响应的水凝胶及其制备方法和应用

技术领域

[0001] 本发明属于心血管治疗技术领域，具体涉及一种具有ROS响应的水凝胶及其制备方法和应用。

背景技术

[0002] 利用环境响应型材料控制药物释放是当下研究的热点，其在靶向纳米载体领域、各种表面涂层领域以及水凝胶等均已经被证明有很好的使用效果。在环境响应型水凝胶的
研究中，其响应方式主要体现在依据周围环境改变而产生的质量、溶胀能力、降解能力的变
化。动脉粥样硬化部位微环境由于炎症存在而导致pH呈弱酸性(≈6.5，正常人体pH＝7.4)
以及含有较多的活性氧物质，这给制备适合于该环境下的智能环境响应型水凝胶提供了基
础。

[0003] 壳聚糖作为一种生物相容性良好的天然高分子材料，已经广泛应用在生物医疗领域，壳聚糖功能众多，尤其是抗菌、抗炎能力，故被选择为本实验的基础材料。然而，较大分
子量的壳聚糖水溶性较差，只能溶于酸性溶液中，这与人体正常pH值偏差较大，可能会对人
体产生副作用；较小分子量的壳聚糖降解速度太快，皆不适合本研究所用。如何在保证壳聚
糖分子量和功能性的前提下，改善其溶解性及粘附性是当下壳聚糖在生物医疗领域着重关
注的问题。

发明内容

[0004] 针对现有技术中存在的上述问题，本发明提供一种具有ROS响应的水凝胶及其制备方法和应用，引入儿茶酚基团，赋予壳聚糖一定的粘附能力，同时起到快速内皮化，预防
再狭窄的作用，有效解决了壳聚糖水溶性差和粘附性差等问题。

[0005] 为实现上述目的，本发明解决其技术问题所采用的技术方案是：提供一种具有ROS响应的水凝胶的制备方法，包括以下步骤：将儿茶酚改性壳聚糖氧化后与胱胺交联，得具有
ROS响应的水凝胶。

[0006] 进一步，具有ROS响应的水凝胶的制备方法，其具体步骤为：

[0007] (1)将儿茶酚改性壳聚糖加入Tris‑base溶液中，磁力搅拌至完全溶解，然后在冰浴条件下搅拌1‑3h，得中间液；

[0008] (2)将胱胺二盐酸盐溶于Tris‑base溶液中，然后在搅拌条件下滴加到步骤(1)所得中间液中，继续搅拌4‑6min，再置于35‑40℃温度下成胶，得具有ROS响应的水凝胶。

[0009] 进一步，步骤(1)和(2)中，儿茶酚改性壳聚糖溶液浓度为0.5‑1wt％，胱胺二盐酸盐溶液终浓度为8wt％。

[0010] 进一步，胱胺二盐酸盐为C4H12N2S2。

[0011] 进一步，Tris‑base溶液使用RO水溶解配置，浓度1.21g/L。

[0012] 进一步，步骤(1)中，儿茶酚改性壳聚糖通过以下方法制备得到：以壳聚糖为原料，碳二亚胺为催化剂，活化羧基为中间体，然后与氨基反应，得儿茶酚改性壳聚糖。

[0013] 进一步，制备儿茶酚改性壳聚糖的具体步骤为：

[0014] (1)将壳聚糖加入RO水中，然后加入浓盐酸搅拌至完全溶解，调节pH值至4‑6，得壳聚糖溶液；

[0015] (2)将3,4‑二羟苯基丙酸溶于去离子水中，然后滴加到步骤(1)所得壳聚糖溶液中混匀，调节pH值至4‑6，得混合液一；

[0016] (3)将碳二亚胺加入RO水与无水乙醇按体积比1:1混合而成的混合液中，然后滴加到步骤(2)所得混合液一中，调节pH值至4‑6后于室温下搅拌4h以上，得混合液二；

[0017] (4)将步骤(3)所得混合液二通过pH值为5.5±0.5的RO水中透析24‑36h，且每间隔4h更换一次RO水，冷冻干燥，得儿茶酚改性壳聚糖。

[0018] 进一步，壳聚糖和碳二亚胺质量摩尔比为0.5:0.325‑1.63g/mmol，碳二亚胺和3,4‑二羟苯基丙酸摩尔比为0.325‑1.63:0.325‑3.25。

[0019] 进一步，儿茶酚改性壳聚糖浓度为1wt％。

[0020] 进一步，步骤(1)和(2)中，采用1‑2mol/L氢氧化钠溶液与1‑2mol/L盐酸溶液调节pH值。

[0021] 进一步，步骤(1)和(2)中，采用1mol/L氢氧化钠溶液与1mol/L盐酸溶液调节pH值。

[0022] 进一步，儿茶酚改性壳聚糖乙酰度大于95％，分子量为5‑19万Da，且接枝率为9‑21％。

[0023] 进一步，儿茶酚改性壳聚糖乙酰度大于95％，分子量为10万Da，且接枝率为12％。

[0024] 上述具有ROS响应的水凝胶的制备方法制得的具有ROS响应的水凝胶。

[0025] 上述具有ROS响应的水凝胶在动脉粥样硬化部位微环境中应用。

[0026] 进一步，水凝胶在动脉粥样硬化部位微环境中具有智能化释放药物的ROS响应性。

[0027] 综上所述，本发明具备以下优点：

[0028] 1、本发明引入儿茶酚基团，赋予壳聚糖一定的粘附能力，同时起到快速内皮化，预防再狭窄的作用，有效解决了壳聚糖水溶性差和粘附性差等问题。一是将壳聚糖在酸性条
件下完全溶解于去离子水中并用氢氧化钠溶液和盐酸溶液调节壳聚糖溶液pH至4‑6，随后
加入3,4‑二羟苯基丙酸溶液，并调节溶液pH至4‑6，最后加入碳二亚胺活化作为催化剂，完
成儿茶酚基团的接枝。通过改变单体与催化剂的添加量，制备不同接枝率的改性壳聚糖样
品，并对其水溶性测试结果的分析，从而筛选出最适宜接枝率的儿茶酚改性壳聚糖，得到了
一种优良的儿茶酚改性壳聚糖的制备方法。二是提供用于治疗心血管类疾病的具有ROS响
应的水凝胶的制备方法，该方法能够制备出在治疗心血管类疾病方面具有潜在优势的水凝
胶；儿茶酚基团在碱性条件下易氧化成为醌或半醌，而苯醌能够与氨基、巯基等发生迈克尔
加成或席夫碱反应。因此，本方法以两端均为氨基的胱胺(Cys)作为交联剂，让氨基与苯醌
发生迈克尔加成反应形成交联网络从而形成水凝胶，其中胱胺含有的二硫键具有氧化还原
响应的能力。通过对溶解条件、成胶方式、C‑CS浓度以及C‑CS接枝率等成胶工艺的探索，以
及对水凝胶氧化还原响应性和溶胀性的测试，得到最优成胶条件和方法。

[0029] 2、制备时，以碳二亚胺作为催化剂，将儿茶酚基团接枝在壳聚糖大分子上，提高了壳聚糖的溶解性和粘附性；再以胱胺作为交联剂，让其氨基与儿茶酚基团氧化后形成的苯
醌发生迈克尔加成反应形成交联网络，从而形成水凝胶，其中，胱胺含有的二硫键具有氧化
还原响应能力，能够在活性氧的作用下断裂转变为亚磺酸，从而破坏了水凝胶的结构，在产
生较多活性氧物质的动脉粥样硬化部位中可发挥智能化释放药物的作用，避免药物在病变
部位的突释，有望减少血管内再狭窄的发生、内皮延迟愈合及晚期血栓等风险。

[0030] 3、儿茶酚改性壳聚糖在保证壳聚糖分子量和良好生物相容性的前提下，改变了壳聚糖水溶性差的缺点，使其能够在更广泛的pH值下溶于水；同时，儿茶酚基团的引入，会赋
予壳聚糖一定的粘附能力，使其能够更长时间的存在于体内，更好的粘附细胞，从而起到快
速内皮化，预防再狭窄的效果，为后面形成水凝胶提供了基础。

[0031] 4、本发明制得的具有ROS响应的水凝胶可应用于低pH值、高氧化应激环境下的动脉粥样硬化部位微环境，解决了药物突释以及药物利用率差的问题，具有能够长效、缓释以
及靶向治疗心血管类疾病的作用。此外，由于使用胱胺作为交联剂，其二硫键不仅仅拥有氧
化还原响应的能力，也能够在体内作为气体信号分子NO的催化剂，催化释放NO来调节动脉
粥样硬化的微环境。该智能化释放药物水凝胶对血管生理具有平衡调控功能，在心血管类
疾病的治疗中，具有潜在的优势。

附图说明

[0032] 图1为儿茶酚改性壳聚糖的合成图；

[0033] 图2为未改性壳聚糖与儿茶酚改性壳聚糖的溶解性对比；

[0034] 图3为儿茶酚改性壳聚糖的紫外分光光谱图；

[0035] 图4为儿茶酚改性壳聚糖在重水中的核磁共振氢谱图；

[0036] 图5为不同成胶工艺制成的水凝胶；

[0037] 图6为C‑CS与C‑CS‑Cys水凝胶的氧化还原能力测试；

[0038] 图7为C‑CS与C‑CS‑Cys凝胶的溶胀情况及溶胀对比；

[0039] 图8为C‑CS、C‑CS‑tris、C‑CS水凝胶及C‑CS‑Cys水凝胶的红外吸收图谱；

[0040] 图9为水凝胶的扫描电子显微镜(SEM)分析。

具体实施方式

[0041] 以下结合附图对本发明的原理和特征进行描述，所举实例只用于解释本发明，并非用于限定本发明的范围。实施例中未注明具体条件者，按照常规条件或制造商建议的条
件进行。所用试剂或仪器未注明生产厂商者，均为可以通过市售购买获得的常规产品。

[0042] 下面结合实施例对本发明进行详细说明。

[0043] 实施例1

[0044] 一种具有ROS响应的水凝胶，其制备方法包括以下步骤：

[0045] (1)将儿茶酚改性壳聚糖加入Tris‑base溶液中，磁力搅拌至完全溶解，然后在冰浴条件下搅拌1h，得中间液；

[0046] (2)将胱胺二盐酸盐溶于Tris‑base溶液中，然后在搅拌条件下滴加到步骤(1)所得中间液中，继续搅拌5min，再置于37℃温度下成胶，得具有ROS响应的水凝胶。

[0047] 儿茶酚改性壳聚糖通过以下方法制备得到：

[0048] (1)将壳聚糖加入RO水中，然后加入浓盐酸搅拌至完全溶解，采用1mol/L氢氧化钠溶液与1mol/L盐酸溶液调节pH值至5，得壳聚糖溶液；

[0049] (2)将3,4‑二羟苯基丙酸溶于去离子水中，然后滴加到步骤(1)所得壳聚糖溶液中混匀，采用1mol/L氢氧化钠溶液与1mol/L盐酸溶液调节pH值至5，得混合液一；

[0050] (3)将碳二亚胺加入RO水与无水乙醇按体积比1:1混合而成的混合液中，然后滴加到步骤(2)所得混合液一中，调节pH值至5后于室温下搅拌5h，得混合液二；

[0051] (4)将步骤(3)所得混合液二通过pH值为5.5的RO水中透析24h，且每间隔4h更换一次RO水，冷冻干燥，得儿茶酚改性壳聚糖。

[0052] 其中，壳聚糖和碳二亚胺质量摩尔比为0.5:0.488g/mmol，碳二亚胺和3,4‑二羟苯基丙酸摩尔比为0.488:0.488。儿茶酚改性壳聚糖乙酰度大于95％，分子量为10万Da，且接
枝率为11.7％。

[0053] 实施例2

[0054] 一种具有ROS响应的水凝胶，其制备方法包括以下步骤：

[0055] (1)将儿茶酚改性壳聚糖加入Tris‑base溶液中，磁力搅拌至完全溶解，然后在冰浴条件下搅拌2h，得中间液；

[0056] (2)将胱胺二盐酸盐溶于Tris‑base溶液中，然后在搅拌条件下滴加到步骤(1)所得中间液中，继续搅拌5min，再置于37℃温度下成胶，得具有ROS响应的水凝胶。

[0057] 儿茶酚改性壳聚糖通过以下方法制备得到：

[0058] (1)将壳聚糖加入RO水中，然后加入浓盐酸搅拌至完全溶解，采用1mol/L氢氧化钠溶液与1mol/L盐酸溶液调节pH值至5，得壳聚糖溶液；

[0059] (2)将3,4‑二羟苯基丙酸溶于去离子水中，然后滴加到步骤(1)所得壳聚糖溶液中混匀，采用1mol/L氢氧化钠溶液与1mol/L盐酸溶液调节pH值至5，得混合液一；

[0060] (3)将碳二亚胺加入RO水与无水乙醇按体积比1:1混合而成的混合液中，然后滴加到步骤(2)所得混合液一中，调节pH值至5后于室温下搅拌5h，得混合液二；

[0061] (4)将步骤(3)所得混合液二通过pH值为5.5的RO水中透析30h，且每间隔4h更换一次RO水，冷冻干燥，得儿茶酚改性壳聚糖。

[0062] 其中，壳聚糖和碳二亚胺质量摩尔比为0.5:0.625g/mmol，碳二亚胺和3,4‑二羟苯基丙酸摩尔比为0.625:0.488。儿茶酚改性壳聚糖乙酰度大于95％，分子量为10万Da，且接
枝率为12.3％。

[0063] 实施例3

[0064] 一种具有ROS响应的水凝胶，其制备方法包括以下步骤：

[0065] (1)将儿茶酚改性壳聚糖加入Tris‑base溶液中，磁力搅拌至完全溶解，然后在冰浴条件下搅拌2h，得中间液；

[0066] (2)将胱胺二盐酸盐溶于Tris‑base溶液中，然后在搅拌条件下滴加到步骤(1)所得中间液中，继续搅拌5min，再置于37℃温度下成胶，得具有ROS响应的水凝胶。

[0067] 儿茶酚改性壳聚糖通过以下方法制备得到：

[0068] (1)将壳聚糖加入RO水中，然后加入浓盐酸搅拌至完全溶解，采用1mol/L氢氧化钠溶液与1mol/L盐酸溶液调节pH值至5，得壳聚糖溶液；

[0069] (2)将3,4‑二羟苯基丙酸溶于去离子水中，然后滴加到步骤(1)所得壳聚糖溶液中混匀，采用1mol/L氢氧化钠溶液与1mol/L盐酸溶液调节pH值至5，得混合液一；

[0070] (3)将碳二亚胺加入RO水与无水乙醇按体积比1:1混合而成的混合液中，然后滴加到步骤(2)所得混合液一中，调节pH值至5后于室温下搅拌5h，得混合液二；

[0071] (4)将步骤(3)所得混合液二通过pH值为5.5的RO水中透析36h，且每间隔4h更换一次RO水，冷冻干燥，得儿茶酚改性壳聚糖。

[0072] 其中，壳聚糖和碳二亚胺质量摩尔比为0.5:1.63g/mmol，碳二亚胺和3,4‑二羟苯基丙酸摩尔比为1.63:3.25。儿茶酚改性壳聚糖乙酰度大于95％，分子量为10万Da，且接枝
率为20.3％。

[0073] 实验例1

[0074] 首先，根据上述实施例中记载的制备方法制备儿茶酚改性壳聚糖，其具体包括以下步骤：

[0075] (1)称量0.5g壳聚糖(CS)溶于20mL RO水中搅拌溶解，搅拌均匀后使用移液枪按照每次20μL向未溶解的壳聚糖溶液中滴加浓盐酸，继续搅拌直至壳聚糖完全溶解，使用1mol/
L NaOH溶液与1mol/L HCl溶液调节壳聚糖溶液的pH保持在4‑6之间；

[0076] (2)称量0.49mmol的3,4‑二羟苯基丙酸溶于3mL去离子水中，剧烈搅拌下使用移液枪或胶头滴管缓慢添加到上述溶液中，继续搅拌溶解并使用1mol/L NaOH溶液与1mol/L 
HCl溶液调整壳聚糖溶液pH保持在4‑6；

[0077] (3)10‑15分钟时，称量碳二亚胺(EDC)0.49mmol溶解于20mL的RO水与无水乙醇(1:1，v/v)的混合溶液中，在剧烈搅拌下缓慢滴加到上述溶液中，调整pH保持在4‑6之间，室温
下剧烈搅拌4小时以上，期间不断测试溶液pH值，保持其稳定在在4‑6之间；

[0078] (4)反应完成后，把壳聚糖溶液装进规格为分子量为8000Da的透析袋，在pH＝5.5左右弱酸性的RO水溶液中透析24‑36小时，期间约4小时更换水溶液一次；

[0079] (5)冷冻干燥并密封于真空干燥箱中保存；

[0080] (6)重复上述步骤，改变单体3,4‑二羟苯基丙酸与催化剂碳二亚胺的比例，制备不同接枝率的改性壳聚糖。具体的不同比例见表1。

[0081] 表1不同配方儿茶酚改性壳聚糖(C‑CS)的接枝率

[0082]  壳聚糖/g EDC/mmol DHPA/mmol 接枝率％
C‑CS 0.5 0.488 0.488 11.7
C‑CS 0.5 0.625 0.488 12.3
C‑CS 0.5 1.63 3.25 20.3
C‑CS 0.5 0.975 0.975 15.4
C‑CS 0.5 0.325 0.325 9.2

[0083] 其次，将上述所得的儿茶酚改性壳聚糖进行水溶性测试，步骤如下：

[0084] (1)称量儿茶酚改性的壳聚糖20mg*2(标记为A，B)以及未改性壳聚糖20mg(标记为C)；

[0085] (2)加入2mL RO水，把试样A，C在磁力搅拌器上搅拌，B静置在室温下；

[0086] (3)一段时间后，观察试样的溶解情况。

[0087] 其结果如图2所示。由图2可知经邻苯二酚改性的壳聚糖能够直接溶于未加酸处理的去离子水中，而未经改性的壳聚糖只能在水中分散形成悬浊液，且静置后有粉末沉在底
部。

[0088] 再次，将样品溶于溶剂中，超声分散均匀，使用移液枪加入到比色皿中，对照比色皿加入等量溶剂后，一起使用紫外分光光度计扫描全谱谱图，观察其吸收峰，根据峰值高低
调整溶液浓度。试验样对照组使用未改性的壳聚糖以及含有儿茶酚基团的多巴胺，并添加
微量稀盐酸来溶剂不易溶于水的未改性壳聚糖。三组样品详细信息如表2所示：

[0089] 表2紫外分光光度计测试的样品信息表

[0090]名称 溶质 溶剂
A 多巴胺 RO水
B 壳聚糖 添加微量稀盐酸的RO水
C 儿茶酚改性壳聚糖 RO水

[0091] 上述紫外分光光谱图如图3所示。图3中，从上到下依次为A、C和B。

[0092] 由图3可知，未改性的壳聚糖在280nm附近没有特征吸收峰，而儿茶酚改性壳聚糖在280nm处出现了与多巴胺一致的特征峰；这一结果表明3,4‑二羟苯基丙酸(DHPA)通过碳
二亚胺(EDC)催化的酰胺化学反应成功接枝到壳聚糖上，由于接枝率较低或溶解度较低，所
以相对纯多巴胺溶液检测出来的紫外分光光度值的谱线峰值相对较低。

[0093] 最后，使用500μL重水(D2O)作为溶剂，溶解10mg干燥的儿茶酚改性壳聚糖样品；使用超声波清洗器与点震仪溶解分散均匀后，转移到核磁管中进行送样检测。其核磁共振氢
谱图如图4所示。

[0094] 由图4可知，位于4.79ppm的是溶剂重水(D2O)的特征峰，位于3.1ppm处的峰属于壳聚糖糖环上C‑2的质子特征峰，位于2.1ppm左右的峰属于未脱乙酰化的甲基(—O＝CH3)的
氢质子特征峰，位于6.60‑6.88ppm附近的峰属于苯环上的氢质子特征峰；根据之前的研究
表明，未改性的壳聚糖在6.60‑6.88ppm处不存在特征峰，由苯环上单个氢质子的峰面积积
分与壳聚糖主链中C‑2上唯一的氢质子的峰面积积分之比可以求出两者氢原子的摩尔数之
比，即邻苯二酚改性壳聚糖的接枝率。由于邻苯二酚基团的苯环上含有3个氢质子，把苯环
的氢质子特征峰峰面积平均分配给每个氢质子后，可以得到壳聚糖的接枝率为12.3％，同
理计算得壳聚糖的脱乙酰度为4％，这与壳聚糖基本信息(脱乙酰度＞95％)相一致。

[0095] 实验例2

[0096] 根据上述实施例中具有ROS响应的水凝胶的制备方法制备具有ROS响应的水凝胶，其具体包括以下步骤：

[0097] (1)称量一定量的儿茶酚改性壳聚糖(C‑CS)，将其置于已经配好的Tris‑base溶液中，磁力搅拌至完全溶解；

[0098] (2)充分搅拌溶解后，继续冰浴搅拌氧化约2h；

[0099] (3)称量一定量的胱胺二盐酸盐(Cys)，溶解于配好的Tris‑base溶液中；

[0100] (4)在剧烈搅拌下，将配好的胱胺溶液缓慢滴加到儿茶酚改性的壳聚糖溶液中，继续搅拌5分钟，使之分散均匀；

[0101] (5)把搅拌均匀的混合溶液放置在一定温度下，直至形成水凝胶；

[0102] (6)对照组滴加不添加胱胺的Tris‑base溶液，重复其他过程形成C‑CS水凝胶；

[0103] (7)使用不同接枝率的改性壳聚糖，重复水凝胶制备过程。

[0104] 根据上述步骤，使用控制变量法对成胶方案进行了最优化的筛选与尝试(样品A‑J)，另设使用RO水代替Tris‑base溶液作为溶剂来测试儿茶酚基团的氧化对成胶的影响(样
品K)；具体方案如表3所示：

[0105] 表3不同成胶方式

[0106] 样品名称 溶解条件 成胶方式 C‑CS浓度 接枝率A 常温搅拌 37℃ 0.5％ 14％
B 常温搅拌 反复冻融 0.5％ 14％
C 冰浴搅拌 室温(约25℃) 0.5％ 14％
D 冰浴搅拌 37℃ 0.5％ 14％
E 冰浴搅拌 37℃ 0.5％ 9％
F 冰浴搅拌 60℃ 0.5％ 9％
G 冰浴搅拌 37℃ 1％ 9％
H 冰浴搅拌 60℃ 1％ 9％
I 冰浴搅拌 37℃ 1％ 5％
J 冰浴搅拌 37℃ 1％ 12％
K(RO水溶剂) 冰浴搅拌 37℃ 1％ 9％
L(不加胱胺) 冰浴搅拌 37℃ 1％ 9％

[0107] 通过表3中不同成胶工艺所得的水凝胶如图5所示。

[0108] 由图5可知，(1)A‑D四组均未成胶，但能够清晰地观察到D组壳聚糖分布更加均匀，根据控制变量条件分析，在改性壳聚糖浓度和接枝率不变的情况下，37℃的成胶方式和冰
浴搅拌的溶解条件更有利于改性壳聚糖的分布。

[0109] (2)E‑H四组对比，37℃的成胶方式更有利于水凝胶的形成。

[0110] (3)G组、I组和J组，在其他条件相同情况下，12％接枝率的改性壳聚糖更有利于水凝胶的形成

[0111] (4)E组和G组进行对比，得出结论1％浓度的改性壳聚糖更有利于水凝胶的形成。

[0112] (5)对照组为K组和L组，将它们分别与G组进行比较，发现未加Tris‑base溶液的壳聚糖不能够成胶，而未加胱胺的壳聚糖只能少量的成胶。

[0113] (6)通常的，加入胱胺形成壳聚糖水凝胶的成胶时间约为1天，未加入胱胺的壳聚糖水凝胶的成胶时间约为3天。

[0114] 综上所述，G组为最佳的成胶工艺，其成胶条件为：使用邻苯二酚接枝率为12％的改性壳聚糖，在冰浴条件下搅拌，在37℃下成胶，最后改性壳聚糖浓度为1wt％。

[0115] 将上述水凝胶加入0.5mL浓度为16％的DTT(二硫苏糖醇，Dithiothreitol)溶液，DTT溶液能够把二硫键还原成硫醇，常用的比例为DTT：二硫键＝1.5:1(物质的量，pH＝8.0‑
9.0)。在另一个装有制备好的C‑CS‑Cys水凝胶的玻璃瓶中加入0.5mL浓度为5％的过氧化氢
溶液(H2O2)，H2O2溶液能够产生大量活性氧，常在体外被用来当做活性氧的替代物质。把添
加了DTT溶液与H2O2溶液的水凝胶玻璃瓶放置在37℃恒温摇床中，每隔4h对玻璃瓶进行旋
转，使水凝胶与添加溶液充分接触，在2h，1D，2D，4D，8D时拍照观察。对照组添加0.5mL RO
水，以及0.5mL浓盐酸来进行对照。其结果如图6所示；a为H2O2溶液，b为DTT溶液2h、1D、2D、
4D及8D时的宏观状态。

[0116] 由图6可知，加入5％过氧化氢溶液及16％DTT溶液的水凝胶结构都受到破坏，并且加入5％过氧化氢溶液的水凝胶结构破坏更为明显，而加入RO水的水凝胶结构无明显变化。
加入5％过氧化氢溶液的水凝胶结构在一天后几乎被完全破坏，加入16％DTT溶液的水凝胶
结构在8天后虽未完全被破坏，但结构疏松，效果明显。由上可知，本发明所得C‑CS‑Cys水凝
胶具有较好的氧化还原能力。此外，加入16％DTT溶液的水凝胶结构瓦解较为缓慢的现象推
测原因，一是由于DTT溶液浓度较低所导致，二是H2O2液具有一定的酸性，水凝胶的体系内的
pH酸性变化使得原本水凝胶网络中的氢键等分子间作用力减弱，从而快速变成溶胶状态。

[0117] 把在玻璃瓶中制备好的圆柱体C‑CS‑Cys水凝胶以及对照组C‑CS水凝胶除去表面的水滴后，使用游标卡尺测量底面直径D0，放置在培养皿中，并用PBS缓冲液浸没,按照规定
的时间(1min，3min，5min，10min，20min，40min，80min，3h，6h，18h，32h，48h，64h，80h，96h
等)使用游标卡尺测量其地面直径变化Di，水凝胶的体积溶胀结果使用溶胀的底面积表示，
按照下式计算：

[0118] λ(s)＝Di2/D02

[0119] 其结果如图7所示。

[0120] 由图7可知，C‑CS水凝胶的溶胀能力要强于C‑CS‑Cys水凝胶。这是由于未加胱胺的的C‑CS水凝胶中只存在氢键和分子间作用力的交联，而加入胱胺后的C‑CS‑Cys水凝胶中由
于迈克尔加成反应，形成了聚合物链间稳定的共价键接；这样的化学交联会使得水凝胶网
状结构的空隙变小，不利于水分子的吸收。

[0121] 使用Nicolet‑5700傅里叶红外光谱仪来测试，通过溴化钾压片法来制备样品，扫‑1 ‑1
描范围为500cm ‑4000cm ，其结果如图8所示。图8中，从上到下依次为C‑CS‑Cys‑
Hydrogel、C‑CS–Hydrogel、C‑CS‑Tris和C‑CS。

[0122] 由图8可知，在3419cm‑1左右出现的峰是‑OH的伸缩振动峰，在1625cm‑1出现的是强‑1 ‑1
峰为C＝O的伸缩振动峰。芳香族C＝C的伸缩振动峰出现在1550cm 左右处，1075cm 处的峰
为壳聚糖中C‑O的典型伸缩振动峰。图中C‑CS，C‑CS‑Tris，C‑CS‑Hydrogel水凝胶的红外光
谱基本一致，说明C‑CS在形成水凝胶的过程中不发生化学反应，只有分子间作用力的物理
‑1
交联。图中2500cm 左右处发现了‑SH的振动峰，初步证明胱胺交联网络的形成，但在制备过
程中，不稳定的二硫键被部分还原成巯基。

[0123] X射线光电子能谱分析：将样品通过“成都e测试”检测(PHI‑5400，Perkin Elmer,USA)，其结果如下表4所示。

[0124] 表4X射线光电子能谱分析结果

[0125] Sample C(％) N(％) O(％) S(％)C‑CS 37.54 7.34 54.38 0.74
C‑CS‑Hydrogel 35.76 6.2 57.17 0.87
C‑CS‑Cys‑Hydrogel 39.06 14.23 35.84 10.85

[0126] 由表4可知，C‑CS、C‑CS水凝胶和本发明所得C‑CS‑Cys水凝胶的元素组成情况；其中，可以明显观察到C‑CS‑Cys水凝胶中的S元素含量有显著地增长，从C‑CS和C‑CS水凝胶中
的0.74％和0.87％提高到了10.85％。这是由于苯醌与胱胺间的迈克尔加成反应，导致了O
元素含量的减少及N元素的增多；以上现象都间接地反映了C‑CS‑Cys水凝胶网络地形成。

[0127] 对所得水凝胶进行扫描电子显微镜(SEM)分析，其结果如图9所示。

[0128] 由图9可知，C‑CS水凝胶中的孔径约100‑200μm，由于成胶时间较长，表面水分子的挥发导致表面网状结构的塌陷。而本发明所得C‑CS‑Cys水凝胶表面看不出明显的网状孔径
结构。并且，C‑CS‑Cys水凝胶冻干前后的力学性能较C‑CS水凝胶差，冻干后的C‑CS‑Cys水凝
胶整体性不好，易碎，可能与成胶速度增加，分子间作用力结合较差有关。

[0129] 虽然结合附图对本发明的具体实施方式进行了详细地描述，但不应理解为对本专利的保护范围的限定。在权利要求书所描述的范围内，本领域技术人员不经创造性劳动即
可作出的各种修改和变形仍属本专利的保护范围。