一种用于塔格糖生产的固定化细胞的制备方法及其应用

摘要

本发明公开了一种生产塔格糖的固定化细胞制备方法及其用于生产塔格糖的方法。其中本发明的固定化枯草芽孢杆菌连续催化反应时，初始产物得率最高可达75%，连续催化65批次后，产物得率仍可维持61%。固定大肠杆菌连续催化反应时，初始产物得率最高可达74%，连续催化65批次后，产物得率仍可维持60%。本发明简化了塔格糖生产中所需酶的分离纯化步骤，提高酶回收利用率，实现了酶的循环使用。本发明的方法具有易于产品分离，生产工艺简单，成本低廉等优点。

权利要求

1.一种用于塔格糖生产的固定化细胞的制备方法，其特征在于，包括下述步骤：通过发酵分别获得表达α‑葡聚糖磷酸化酶、葡萄糖磷酸变位酶、葡萄糖磷酸异构酶、6‑磷酸塔格糖差向异构酶和6‑磷酸塔格糖磷酸酶的大肠杆菌或枯草芽孢杆菌发酵液，将上述发酵液进行混合得发酵混合液；其中，分别表达α‑葡聚糖磷酸化酶、葡萄糖磷酸变位酶、葡萄糖磷酸异构酶、塔格糖6‑磷酸异构酶和塔格糖6‑磷酸磷酸酶的湿菌体的按OD600的比例为（0.1‑10）：（0.1‑10）：（0.1‑10）：（0.1‑10）：（0.1‑10）进行混合；

向所述发酵混合液中加入1‑10% w/v无机土，搅拌均匀；

再向所述发酵混合液中加入0.1‑2% w/v絮凝剂絮凝菌体，随后加入0.05‑3% v/v交联剂交联1‑4 h；

真空过滤后得到滤饼，滤饼用旋转造粒机挤压制粒成长条状，然后经过球形抛丸机截断成长短均匀的颗粒；

获得的颗粒经沸腾干燥后得到用于塔格糖生产的固定化细胞，其中所述沸腾干燥的进风口温度控制在60‑90℃。

2.如权利要求1所述的方法，其特征在于，所述的α‑葡聚糖磷酸化酶、葡萄糖磷酸变位酶、葡萄糖磷酸异构酶、6‑磷酸塔格糖差向异构酶和6‑磷酸塔格糖磷酸酶分别是耐热α‑葡聚糖磷酸化酶、耐热葡萄糖磷酸变位酶、耐热葡萄糖磷酸异构酶、耐热塔格糖6‑磷酸异构酶和耐热塔格糖6‑磷酸磷酸酶。

3.如权利要求2所述的方法，其特征在于，所述耐热是指在40℃以上具有酶的活性。

4.如权利要求3所述的方法，其特征在于，分别表达耐热α‑葡聚糖磷酸化酶、耐热葡萄糖磷酸变位酶、耐热葡萄糖磷酸异构酶、耐热塔格糖6‑磷酸异构酶和耐热塔格糖6‑磷酸磷酸酶的湿菌体的按OD600的比例为（1‑10）：（1‑10）：（1‑10）：（1‑10）：（1‑10）进行混合，且混合后的菌悬液OD600在10‑150之间。

5.如权利要求1所述的方法，其特征在于，所述无机土选自蒙脱土、硅藻土、高岭土或膨润土。

6.如权利要求1所述的方法，其特征在于，所述絮凝剂选自聚乙烯亚胺、壳聚糖、聚二甲基二烯丙基氯化铵、聚丙烯酰胺。

7.如权利要求6所述的方法，其特征在于，所述絮凝剂为聚乙烯亚胺或PDADMAC，且所述聚乙烯亚胺的分子量为600‑70000。

8.如权利要求1所述的方法，其特征在于，所述交联剂选自戊二醛、三羟甲基磷、N,N‑亚甲基双丙烯酰胺或环氧氯丙烷。

9.如权利要求1所述的方法，其特征在于，进一步包括将获得的固定化细胞经过筛分得到形态均匀的固定化细胞的步骤。

10.一种固定化细胞生产塔格糖的方法，其特征在于：利用如权利要求1至9任一项所述方法得到的固定化细胞将淀粉或淀粉衍生物转化为塔格糖。

11.如权利要求10所述的方法，其特征在于，进一步地，反应结束后还包括过滤回收固定化细胞的步骤。

12.如权利要求10所述的方法，其特征在于，其中生物转化反应体系中包含淀粉或淀粉衍生物50‑300 g/L，pH值为5.0‑8.0的缓冲液，10‑50 mM无机磷酸根，3‑7 mM二价镁离子和固定化细胞。

13.如权利要求12所述的方法，其特征在于，所述缓冲液为HEPES缓冲液、磷酸盐缓冲液、Tris缓冲液或醋酸盐缓冲液；所述无机磷酸根可为磷酸钠或磷酸钾。

说明书

一种用于塔格糖生产的固定化细胞的制备方法及其应用

技术领域

[0001] 本发明涉及生物工程技术领域，尤其涉及塔格糖的生产制备领域。

背景技术

[0002] 塔格糖是天然存在的一种稀有单糖，是半乳糖的酮糖形式，果糖的差向异构体。塔格糖的甜味特性与蔗糖相似，提供非常新鲜和纯净的甜度，但热量只有蔗糖的三分之一，被
称为低热量甜味剂。研究表明塔格糖具有低热量、低升糖指数、抗龋齿、抗氧化、益生元、改
善肠道功能、免疫调节、药物前体等重要生理功能特性，可以广泛应用于食品、饮料、医药、
保健等领域，具有巨大的经济价值 (Oh D‑K: Tagatose: properties, applications, 
and biotechnological processes. App. Microbiol. Biotechnol. 2007, 76:1‑8)。

[0003] 中国科学院天津工业生物技术研究所以廉价玉米淀粉、麦芽糊精、蔗糖等为原料，成功建立了塔格糖体外多酶合成新路线，从根本上改变了现有塔格糖的生产工艺
（CN106399427A）。该多酶合成新路径不仅打破了化学法合成塔格糖能耗高，产物复杂，纯化
困难，副反应多，化学污染大的限制；而且突破了生物法合成塔格糖的原料昂贵受限，转化
率低，分离工艺复杂的缺陷。在此基础上，中国科学院天津工业生物技术研究所以廉价玉米
淀粉、纤维素、麦芽糊精、蔗糖等为原料，利用全细胞催化制备塔格糖的方法
（CN107988286A），该工艺减少了多酶纯化工艺步骤，降低了生产成本低和环境污染，提高了
塔格糖产率。中国科学院天津工业生物技术研究所进一步针对食品制剂的安全生产问题进
行改进，提供了一种利用枯草芽孢杆菌全细胞催化高浓度淀粉制备生产高浓度塔格糖的方
法（CN112342179B）。该方法将透性化处理的枯草芽孢杆菌进行固定化，获得固定化全细胞，
然后用于塔格糖的生产，实现了全细胞的循环使用，降低生产成本。但是经过研究分析表明
该方法在制备固定化细胞时仍然存在一些不足：一是该方法在进行固定化前需要经过菌体
收集，菌体重悬以及菌体透性化处理等多个繁琐步骤。二是该方法在透性细胞的基础上进
行制粒固定化，而细胞透性化处理易造成胞内表达的异源蛋白的泄漏，进而在固定化进程
中导致异源蛋白的损失以及酶固定化效率的降低。三是该方法只是通过简单挤压制粒的方
式得到固定化酶颗粒，获得的固定化酶颗粒并非均一的。

[0004] 因此，亟需在此基础上开发一种可简便获得均匀的固定化细胞的方法，既能简化酶的生产工序；又能避免或降低透性细胞在固定化过程中造成的酶的泄漏和损失，提高酶
的固定化效率，实现酶的循环利用，再进一步降低塔格糖的生产成本，实现塔格糖的工业化
生产。

发明内容

[0005] 针对现有的固定化细胞制备塔格糖的方法所存在的问题如酶的生产步骤繁琐、透性化处理造成酶的损失及固定化效率降低、制备得到的固定化酶颗粒度不均匀等问题，本
发明的目的在于提供一种固定化细胞生产塔格糖的方法，简化塔格糖生产过程中酶的生产
步骤，简便塔格糖生产过程中产品和酶的分离纯化，实现多酶的循环使用，降低塔格糖的生
产成本，实现塔格糖的工业化生产。

[0006] 为解决上述技术问题，本发明采用以下技术方案：一种用于塔格糖生产的固定化细胞的制备方法，其特征在于，包括下述步骤：

[0007] 通过发酵分别获得表达α‑葡聚糖磷酸化酶、葡萄糖磷酸变位酶、葡萄糖磷酸异构酶、6‑磷酸塔格糖差向异构酶和6‑磷酸塔格糖磷酸酶的大肠杆菌或枯草芽孢杆菌发酵液大
肠杆菌或枯草芽孢杆菌发酵液，将上述发酵液混合得到发醇混合液；

[0008] 向所述发酵混合液中加入1‑10% w/v无机土，搅拌均匀；

[0009] 再向所述发酵混合液中加入0.1‑2% w/v絮凝剂絮凝菌体，随后加入0.05‑3% v/v交联剂交联1‑4 h；

[0010] 真空过滤后得到滤饼，滤饼用旋转造粒机挤压成长条状，然后采用球形抛丸机将长条状固定化细胞截断成长短均匀的颗粒；

[0011] 获得的颗粒经沸腾干燥后得到用于塔格糖生产的固定化细胞，其中所述沸腾干燥的进风口温度控制在60‑90℃。

[0012] 对于所述发酵液的制备使用本领域已知的方法进行。发酵可使用任何外源蛋白标的培养基，包括但不限于LB培养基、SR培养基、TB培养基等。

[0013] 优选地，所述的α‑葡聚糖磷酸化酶、葡萄糖磷酸变位酶、葡萄糖磷酸异构酶、6‑磷酸塔格糖差向异构酶和6‑磷酸塔格糖磷酸酶分别是耐热α‑葡聚糖磷酸化酶、耐热葡萄糖磷
酸变位酶、耐热葡萄糖磷酸异构酶、耐热塔格糖6‑磷酸异构酶和耐热塔格糖6‑磷酸磷酸酶。

[0014] 具体地，所述耐热α‑葡聚糖磷酸化酶指在40℃以上、45℃以上、50℃以上、55℃以上、60℃以上、65℃以上、70℃以上、75℃以上、或80℃以上具有将淀粉磷酸化为葡萄糖‑1‑
磷酸（G1P）功能的酶。进一步优选地，所述耐热α‑葡聚糖磷酸化酶来源于嗜热微生物，例如
Geobacillus kaustophilus、Geobacillus stearothermophilus、Thermotoga maritima、
Pseudothermotoga thermarum、Thermococcus kodakarensis、Archaeoglobus fulgidus、
Thermoanaerobacter indiensis、Dictyoglomus thermophilum、Caldicellulosiruptor 
kronotskyensis、Clostridium thermocellum、 Caldilinea aerophila、Pyrococcus 
furiosus、Thermus thermophilus、Methanothermobacter marburgensis、Archaeoglobus 
profundus等；或所述耐热α‑葡聚糖磷酸化酶的氨基酸序列与来源于所述嗜热微生物的耐
热α‑葡聚糖磷酸化酶具有至少70%，优选至少80%，更优选至少90%，最优选至少95%的同一
性。更优选地，所述耐热α‑葡聚糖磷酸化酶来源于Thermococcus kodakarensis。

[0015] 具体地，耐热葡萄糖磷酸变位酶指在40℃以上、45℃以上、50℃以上、55℃以上、60℃以上、65℃以上、70℃以上、75℃以上、或80℃以上具有将葡萄糖‑1‑磷酸（G1P）变位为葡
萄糖‑6‑磷酸（G6P）功能的酶。进一步优选地，所述耐热葡萄糖磷酸变位酶来源于嗜热微生
物，例如Geobacillus kaustophilus、Geobacillus stearothermophilus、Thermotoga 
maritima、Pseudothermotoga thermarum、Thermococcus kodakarensis、Archaeoglobus 
fulgidus、Thermoanaerobacter  indiensis、Dictyoglomus thermophilum、
Caldicellulosiruptor kronotskyensis、Clostridium thermocellum、 Caldilinea 
aerophila、Pyrococcus furiosus、Thermus thermophilus、Methanothermobacter 
marburgensis、Archaeoglobus profundus等；或所述耐热葡萄糖磷酸变位酶的氨基酸序列
与来源于所述嗜热微生物的耐热葡萄糖磷酸变位酶具有至少70%，优选至少80%，更优选至
少90%，最优选至少95%的同一性。更优选地，所述耐热葡萄糖磷酸变位酶来源于
Thermococcus kodakarensis。

[0016] 具体地，耐热葡萄糖磷酸异构酶指在40℃以上、45℃以上、50℃以上、55℃以上、60℃以上、65℃以上、70℃以上、75℃以上、或80℃以上具有将葡萄糖‑6‑磷酸（G6P）变位为果
糖‑6‑磷酸（F6P）功能的酶。进一步优选地，所述耐热葡萄糖磷酸异构酶来源于嗜热微生物，
例如Geobacillus kaustophilus、Geobacillus stearothermophilus、Thermotoga 
maritima、Pseudothermotoga thermarum、Thermococcus kodakarensis、Archaeoglobus 
fulgidus、Thermoanaerobacter  indiensis、Dictyoglomus thermophilum、
Caldicellulosiruptor kronotskyensis、 Clostridium thermocellum、Caldilinea 
aerophila、Pyrococcus furiosus、Thermus thermophilus、Methanothermobacter 
marburgensis、Archaeoglobus profundus等；或所述耐热葡萄糖磷酸异构酶的氨基酸序列
与来源于所述嗜热微生物的耐热葡萄糖磷酸异构酶具有至少70%，优选至少80%，更优选至
少90%，最优选至少95%的同一性。更优选地，所述耐热葡萄糖磷酸异构酶来源于Thermus 
thermophilus。

[0017] 具体地，耐热6‑磷酸塔格糖差向异构酶在40℃以上、45℃以上、50℃以上、55℃以上、60℃以上、65℃以上、70℃以上、75℃以上、或80℃以上具有果糖‑6‑磷酸（F6P）异构为塔
格糖‑6‑磷酸（T6P）功能的酶。进一步优选地，所述耐热6‑磷酸塔格糖差向异构酶来源于嗜
热微生物，例如Geobacillus kaustophilus、Geobacillus stearothermophilus、
Thermotoga maritima、Pseudothermotoga thermarum、Thermococcus kodakarensis、
Archaeoglobus  fulgidus、Thermoanaerobacter  indiensis、Dictyoglomus 
thermophilum、Caldicellulosiruptor kronotskyensis、Clostridium thermocellum、 
Caldilinea aerophila、Pyrococcus furiosus、Thermus thermophilus、
Methanothermobacter marburgensis、Archaeoglobus profundus等；或所述耐热6‑磷酸塔
格糖差向异构酶的氨基酸序列与来源于所述嗜热微生物的耐热6‑磷酸塔格糖差向异构酶
具有至少70%，优选至少80%，更优选至少90%，最优选至少95%的同一性。更优选地，所述耐6‑
磷酸塔格糖差向异构酶来源于Thermoanaerobacter indiensis。

[0018] 具体地，所述6‑磷酸塔格糖磷酸酶指在40℃以上、45℃以上、50℃以上、55℃以上、60℃以上、65℃以上、70℃以上、75℃以上、或80℃以上具有塔格糖‑6‑磷酸（T6P）脱掉磷酸
基团为产物塔格糖（Tagatose）功能的酶。进一步优选地，所述6‑磷酸塔格糖磷酸酶来源于
嗜热微生物，例如Geobacillus kaustophilus、Geobacillus stearothermophilus、
Thermotoga maritima、Pseudothermotoga thermarum、Thermococcus kodakarensis、
Archaeoglobus  fulgidus、Thermoanaerobacter  indiensis、Dictyoglomus 
thermophilum、Caldicellulosiruptor kronotskyensis、Clostridium thermocellum、 
Caldilinea aerophila、Pyrococcus furiosus、Thermus thermophilus、
Methanothermobacter marburgensis、Archaeoglobus profundus等；或所述6‑磷酸塔格糖
磷酸酶的氨基酸序列与来源于所述嗜热微生物的6‑磷酸塔格糖磷酸酶具有至少70%，优选
至少80%，更优选至少90%，最优选至少95%的同一性。更优选地，所述6‑磷酸塔格糖磷酸酶来
源于Archaeoglobus fulgidus。

[0019] 进一步优选地，分别表达耐热α‑葡聚糖磷酸化酶、耐热葡萄糖磷酸变位酶、耐热葡萄糖磷酸异构酶、耐热6‑磷酸塔格糖差向异构酶和耐热6‑磷酸塔格糖磷酸酶的湿菌体的按
比例为（0.1‑10）：（0.1‑10）：（0.1‑10）：（0.1‑10）：（0.1‑10）进行混合，且混合后的菌悬液
OD600在10‑150之间。

[0020] 进一步，所述无机土包括但并不限于蒙脱土、硅藻土、高岭土和膨润土等，优选地，所述无机土为硅藻土。

[0021] 进一步，所述絮凝剂包括但并不限于聚乙烯亚胺、壳聚糖、聚二甲基二烯丙基氯化铵（PDADMAC）、聚丙烯酰胺等，优选地，所述絮凝剂为聚乙烯亚胺和PDADMAC，优选地，所述聚
乙烯亚胺的分子量为600‑70000。

[0022] 进一步，所述交联剂包括但不限于戊二醛、三羟甲基磷、N,N‑亚甲基双丙烯酰胺、环氧氯丙烷等，优选地，所述交联剂为戊二醛。

[0023] 所述方法进一步包括将获得的固定化细胞经过筛分得到形态均匀的固定化细胞的步骤。

[0024] 本发明因此还提供一种固定化细胞生产塔格糖的方法，其特征在于：利用上述固定化细胞将淀粉或淀粉衍生物转化为塔格糖。

[0025] 进一步地，反应结束后还包括过滤回收固定化细胞的步骤。

[0026] 在具体实施方式中，其中生物转化反应体系中包含淀粉或淀粉衍生物50‑300 g/L，pH值为5.0‑8.0的缓冲液，10‑50 mM无机磷酸根，3‑7 mM二价镁离子和固定化细胞。

[0027] 进一步，所述缓冲液可为HEPES缓冲液、磷酸盐缓冲液、Tris缓冲液、醋酸盐缓冲液等。所述无机磷酸根可为磷酸钠或磷酸钾。

[0028] 与现有技术相比，本发明具有如下有益效果：所述固定化细胞生产塔格糖的方法，与多酶催化反应相比，不仅简化了酶的生产制备过程，而且克服了多酶与产品的分离困难，
有利于产物塔格糖的分离纯化。所述固定化细胞与反应液可通过简单过滤进行分离，与全
细胞催化反应相比，更加简化了酶与产品的分离，实现酶的重复使用，有利于提高细胞的利
用率，降低塔格糖的生产成本。同时，细胞重复使用，避免了多次发酵产生的环境污染及简
化操作步骤。其中，比较重要之处在于，本发明在制备得到表达酶的发酵液混合后，直接将
发酵混合液用于制粒，省略发酵液菌体收集，菌体重悬及细胞透性化处理的步骤（省去发酵
液菌体回收步骤，简便了固定化过程，提高了过程的可操作性；省去细胞透性化处理步骤）。
而采用发酵混合液直接进行固定化，此时细胞的细胞膜或细胞壁几乎没有破损，经过固定
化处理后表达的酶几乎不会泄漏，因此能够获得较高的酶固定化效率。而对于本发明在固
定化后获得固定化细胞，首先采用旋转挤压制粒机制备出粗细可控的长条，然后用球形抛
丸机将制备得到的长条截短成长度均匀的颗粒，再经过沸腾干燥高温干燥处理颗粒（以达
到细胞透性化处理的目的），筛分后得到粒径均匀的固定化酶颗粒，如此能更有效的用于塔
格糖的生产。其中本发明采用的制粒流程不仅更有利于后面的透性化处理和颗粒的均匀
度，而且更能简化前面的菌体收集步骤（如图1所示本发明固定化细胞的具体流程）。经实验
表明，本发明获得的效果十分显著，本发明的固定化枯草芽孢杆菌连续催化反应时，初始产
物得率最高可达75%，连续催化65批次后，产物得率仍可维持61%。本发明的固定大肠杆菌连
续催化反应时，初始产物得率最高可达74%，连续催化65批次后，产物得率仍可维持60%。

附图说明

[0029] 图1 为本发明固定化细胞的具体流程示意图。

[0030] 图2为实施例3固定化枯草芽孢杆菌生产塔格糖效果。

[0031] 图3为实施例11固定化大肠杆菌生产塔格糖效果。

[0032] 图4为对比例1枯草芽孢杆菌生产塔格糖效果。

[0033] 图5为对比例2大肠杆菌生产塔格糖效果。

具体实施方式

[0034] 为更进一步阐述本发明所采取的技术手段及其效果，以下通过具体实施例来进一步说明本发明的技术方案。但是应理解所述实施例仅是范例性的，不对本发明的范围构成
任何限制。本领域技术人员应该理解的是，在不偏离本发明的精神和范围下可以对本发明
技术方案的细节和形式进行修改或替换，但这些修改或替换均落入本发明的保护范围。

[0035] 实施例1：枯草芽孢杆菌全细胞的制备

[0036] 分别挑取表达耐热α‑葡聚糖磷酸化酶基因、表达耐热葡萄糖磷酸变位酶基因、表达耐热葡萄糖磷酸异构酶基因、表达耐热6‑磷酸塔格糖差向异构酶基因、表达耐热6‑磷酸
塔格糖磷酸酶基因的枯草芽孢杆菌重组工程菌(出发菌选用SCK6，见CN112342179B)，并分
别接种于LB培养基中，37℃振荡过夜培养。将培养物以1%的接种量转接于LB培养基中，37℃
震荡培养过夜，分别获得表达耐热α‑葡聚糖磷酸化酶的枯草芽孢杆菌发酵液、表达耐热葡
萄糖磷酸变位酶的枯草芽孢杆菌发酵液、表达耐热葡萄糖磷酸异构酶的枯草芽孢杆菌发酵
液、表达耐热6‑磷酸塔格糖差向异构酶的枯草芽孢杆菌发酵液、表达耐热6‑磷酸塔格糖磷
酸酶的枯草芽孢杆菌发酵液。

[0037] 实施例2：固定化枯草芽孢杆菌生产塔格糖

[0038] 按照OD600比例1:1:1:1:1将实施例1中制备的表达耐热α‑葡聚糖磷酸化酶的枯草芽孢杆菌发酵液、表达耐热葡萄糖磷酸变位酶的枯草芽孢杆菌发酵液、表达耐热葡萄糖磷
酸异构酶的枯草芽孢杆菌发酵液、表达耐热6‑磷酸塔格糖差向异构酶的枯草芽孢杆菌发酵
液、表达耐热6‑磷酸塔格糖磷酸酶的枯草芽孢杆菌发酵液进行混合，使得OD 600 = 100，向
菌悬液中加入1% w/v蒙脱土，搅拌均匀。随后，加入0.5% w/v分子量为10000的聚乙烯亚胺
水溶液在室温条件下絮凝。然后，加入2% v/v戊二醛水溶液在室温条件下交联2 h。真空过
滤后得到滤饼，滤饼用旋转造粒机挤压制粒成1.0 mm粒径的长条状，然后经过球形抛丸机
o
将长条截断后得到长短均匀的颗粒；获得的固定化细胞颗粒经60C沸腾干燥后得到固定化
细胞。

[0039] 在1L反应体系中，分别加入终浓度为100 g/L淀粉、50 mM磷酸钠缓冲（pH 7.0）以o
及固定化枯草芽孢杆菌，使OD600=20，在70C水浴摇床反应。反应过程中用高效液相色谱分
析塔格糖含量。反应结束后通过简单过滤收集固定化枯草芽孢杆菌，经缓冲液洗涤后进行
下一批次反应。实验结果表明，固定枯草芽孢杆菌连续催化反应时，初始产物得率最高可达
75%，连续催化65批次后，产物得率仍可维持58%。

[0040] 实施例3：固定化枯草芽孢杆菌生产塔格糖

[0041] 按照OD600比例1:1:1:1:1将实施例1中制备的表达耐热α‑葡聚糖磷酸化酶的枯草芽孢杆菌发酵液、表达耐热葡萄糖磷酸变位酶的枯草芽孢杆菌发酵液、表达耐热葡萄糖磷
酸异构酶的枯草芽孢杆菌发酵液、表达耐热6‑磷酸塔格糖差向异构酶的枯草芽孢杆菌发酵
液、表达耐热6‑磷酸塔格糖磷酸酶的枯草芽孢杆菌发酵液进行混合，使得OD 600 = 100，向
菌悬液中加入5% w/v硅藻土，搅拌均匀。随后，加入0.1% w/v分子量为70000的聚乙烯亚胺
水溶液在室温条件下絮凝。然后，加入1% v/v戊二醛水溶液在室温条件下交联2h。真空过滤
后得到滤饼，滤饼用旋转造粒机挤压制粒成3.0 mm粒径的的长条状，然后经过球形抛丸机
o
将长条截断后得到长短均匀的颗粒；获得的固定化细胞颗粒经75C沸腾干燥后得到固定化
细胞。

[0042] 按实施例2的方法进行塔格糖的生产。实验结果如图2所示，结果表明，固定枯草芽孢杆菌连续催化反应时，初始产物得率最高可达75%，连续催化65批次后，产物得率仍可维
持61%。

[0043] 实施例4：固定化枯草芽孢杆菌生产塔格糖

[0044] 按照OD600比例1:1:1:1:1将实施例1中制备的表达耐热α‑葡聚糖磷酸化酶的枯草芽孢杆菌发酵液、表达耐热葡萄糖磷酸变位酶的枯草芽孢杆菌发酵液、表达耐热葡萄糖磷
酸异构酶的枯草芽孢杆菌发酵液、表达耐热6‑磷酸塔格糖差向异构酶的枯草芽孢杆菌发酵
液、表达耐热6‑磷酸塔格糖磷酸酶的枯草芽孢杆菌发酵液进行混合，使得OD 600 = 100左
右，向菌悬液中加入10% w/v硅藻土，搅拌均匀。随后，加入1% w/v聚二甲基二烯丙基氯化铵
PDADMAC水溶液在室温条件下絮凝。然后，加入0.05% v/v戊二醛水溶液在室温条件下交联
3h。真空过滤后得到滤饼，滤饼用旋转造粒机挤压制粒成1.0 mm粒径的长条状，然后经过球
o
形抛丸机将长条截断后得到长短均匀的颗粒；获得的固定化细胞颗粒经90C沸腾干燥后得
到固定化细胞。

[0045] 按实施例2的方法进行塔格糖的生产。实验结果表明，固定枯草芽孢杆菌连续催化反应时，初始产物得率最高可达75%，连续催化65批次后，产物得率仍可维持59%。

[0046] 实施例5：固定化枯草芽孢杆菌生产塔格糖

[0047] 按照OD600比例1:1:1:5:5将实施例1中制备的表达耐热α‑葡聚糖磷酸化酶的枯草芽孢杆菌发酵液、表达耐热葡萄糖磷酸变位酶的枯草芽孢杆菌发酵液、表达耐热葡萄糖磷
酸异构酶的枯草芽孢杆菌发酵液、表达耐热6‑磷酸塔格糖差向异构酶的枯草芽孢杆菌发酵
液、表达耐热6‑磷酸塔格糖磷酸酶的枯草芽孢杆菌发酵液进行混合，使得OD 600 = 100左
右，向菌悬液中加入5% w/v硅藻土，搅拌均匀。随后，加入0.5% w/v分子量为600的聚乙烯亚
胺在室温条件下絮凝。然后，加入0.3% v/v戊二醛水溶液在室温条件下交联3 h。真空过滤
后得到滤饼，滤饼用旋转造粒机挤压制粒成0.4 mm粒径的长条状，然后经过球形抛丸机将
o
长条截断后得到长短均匀的颗粒；获得的固定化细胞颗粒经80C沸腾干燥后得到固定化细
胞。

[0048] 按实施例2的方法进行塔格糖的生产。实验结果表明，固定枯草芽孢杆菌连续催化反应时，初始产物得率最高可达75%，连续催化65批次后，产物得率仍可维持56%。

[0049] 实施例6：固定化枯草芽孢杆菌生产塔格糖

[0050] 按照OD600比例1:1:1:1:1将实施例1中制备的表达耐热α‑葡聚糖磷酸化酶的枯草芽孢杆菌发酵液、表达耐热葡萄糖磷酸变位酶的枯草芽孢杆菌发酵液、表达耐热葡萄糖磷
酸异构酶的枯草芽孢杆菌发酵液、表达耐热6‑磷酸塔格糖差向异构酶的枯草芽孢杆菌发酵
液、表达耐热6‑磷酸塔格糖磷酸酶的枯草芽孢杆菌发酵液进行混合，使得OD 600 = 100左
右，向菌悬液中加入6% w/v硅藻土，搅拌均匀。随后，加入1% w/v分子量为600的聚乙烯亚胺
在室温条件下絮凝。然后，加入1% v/v三羟甲基磷水溶液在室温条件下交联3 h。真空过滤
后得到滤饼，滤饼用旋转造粒机挤压制粒成0.4 mm粒径的长条状，然后经过球形抛丸机将
o
长条截断后得到长短均匀的颗粒；获得的固定化细胞颗粒经80C沸腾干燥后得到固定化细
胞。

[0051] 按实施例2的方法进行塔格糖的生产。实验结果表明，固定枯草芽孢杆菌连续催化反应时，初始产物得率最高可达75%，连续催化65批次后，产物得率仍可维持59%。

[0052] 实施例7：固定化枯草芽孢杆菌生产塔格糖

[0053] 按照OD600比例1:1:1:1:1将实施例1中制备的表达耐热α‑葡聚糖磷酸化酶的枯草芽孢杆菌发酵液、表达耐热葡萄糖磷酸变位酶的枯草芽孢杆菌发酵液、表达耐热葡萄糖磷
酸异构酶的枯草芽孢杆菌发酵液、表达耐热6‑磷酸塔格糖差向异构酶的枯草芽孢杆菌发酵
液、表达耐热6‑磷酸塔格糖磷酸酶的枯草芽孢杆菌发酵液进行混合，使得OD 600 = 100，向
菌悬液中加入3% w/v硅藻土，搅拌均匀。随后，加入0.5% w/v聚丙烯酰胺在室温条件下絮
凝。然后，加入2.0% v/v N,N‑亚甲基双丙烯酰胺水溶液在室温条件下交联3 h。真空过滤后
得到滤饼，滤饼用旋转造粒机挤压制粒成1.0 mm粒径的长条状，然后经过球形抛丸机将长
o
条截断后得到长短均匀的颗粒；获得的固定化细胞颗粒经90 C沸腾干燥后得到固定化细
胞。

[0054] 按实施例2的方法进行塔格糖的生产。实验结果表明，固定枯草芽孢杆菌连续催化反应时，初始产物得率最高可达75%，连续催化65批次后，产物得率仍可维持57%。

[0055] 实施例8：固定化枯草芽孢杆菌生产塔格糖

[0056] 按照OD600比例1:1:1:1:1将实施例1中制备的表达耐热α‑葡聚糖磷酸化酶的枯草芽孢杆菌发酵液、表达耐热葡萄糖磷酸变位酶的枯草芽孢杆菌发酵液、表达耐热葡萄糖磷
酸异构酶的枯草芽孢杆菌发酵液、表达耐热6‑磷酸塔格糖差向异构酶的枯草芽孢杆菌发酵
液、表达耐热6‑磷酸塔格糖磷酸酶的枯草芽孢杆菌发酵液进行混合，使得OD 600 = 100，向
菌悬液中加入1% w/v硅藻土，搅拌均匀。随后，加入0.1% w/v分子量70000的聚乙烯亚胺水
溶液在室温条件下絮凝。然后，加入0.5% v/v 环氧氯丙烷水溶液在室温条件下交联3 h。真
空过滤后得到滤饼，滤饼用旋转造粒机挤压制粒成1.0 mm粒径的长条状，然后经过球形抛
o
丸机将长条截断后得到长短均匀的颗粒；获得的固定化细胞颗粒经75 C沸腾干燥后得到固
定化细胞。

[0057] 按实施例2的方法进行塔格糖的生产。实验结果表明，固定枯草芽孢杆菌连续催化反应时，初始产物得率最高可达75%，连续催化65批次后，产物得率仍可维持58%。

[0058] 实施例9：大肠杆菌全细胞的制备

[0059] 分别挑取表达耐热α‑葡聚糖磷酸化酶基因、表达耐热葡萄糖磷酸变位酶基因、表达耐热葡萄糖磷酸异构酶基因、表达耐热6‑磷酸塔格糖差向异构酶基因、表达耐热6‑磷酸
塔格糖磷酸酶基因的大肠杆菌重组工程菌（出发菌选用BL21(DE3)，见CN107988286B），并分
别接种于LB培养基中，37℃振荡过夜培养。将培养物以1%的接种量转接于LB培养基中，18℃
用IPTG诱导，震荡培养过夜，分别获得表达耐热α‑葡聚糖磷酸化酶的大肠杆菌发酵液、表达
耐热葡萄糖磷酸变位酶的大肠杆菌发酵液、表达耐热葡萄糖磷酸异构酶的大肠杆菌发酵
液、表达耐热6‑磷酸塔格糖差向异构酶的大肠杆菌发酵液、表达耐热6‑磷酸塔格糖磷酸酶
的大肠杆菌发酵液。

[0060] 实施例10：固定化大肠杆菌生产塔格糖

[0061] 按照OD600比例1:1:1:1:1将实施例9中制备的表达耐热α‑葡聚糖磷酸化酶的大肠杆菌发酵液、表达耐热葡萄糖磷酸变位酶的大肠杆菌发酵液、表达耐热葡萄糖磷酸异构酶
的大肠杆菌发酵液、表达耐热6‑磷酸塔格糖差向异构酶的大肠杆菌发酵液、表达耐热6‑磷
酸塔格糖磷酸酶的大肠杆菌发酵液进行混合，使得OD 600 = 100左右，向菌悬液中加入1% 
w/v蒙脱土，搅拌均匀。随后，加入0.5% w/v分子量为10000的聚乙烯亚胺水溶液在室温条件
下絮凝。然后，加入2% v/v戊二醛水溶液在室温条件下交联2h。真空过滤后得到滤饼，滤饼
用旋转造粒机挤压制粒成1.0 mm粒径的长条状，然后经过球形抛丸机截断成长短均匀的颗
o
粒；获得的固定化细胞颗粒经60C沸腾干燥后得到固定化细胞。

[0062] 按实施例2的方法进行塔格糖的生产。实验结果表明，固定大肠杆菌连续催化反应时，初始产物得率最高可达74%，连续催化65批次后，产物得率仍可维持55%。

[0063] 实施例11：固定化大肠杆菌生产塔格糖

[0064] 按照OD600比例1:1:1:1:1将实施例9中制备的表达耐热α‑葡聚糖磷酸化酶的大肠杆菌发酵液、表达耐热葡萄糖磷酸变位酶的大肠杆菌发酵液、表达耐热葡萄糖磷酸异构酶
的大肠杆菌发酵液、表达耐热6‑磷酸塔格糖差向异构酶的大肠杆菌发酵液、表达耐热6‑磷
酸塔格糖磷酸酶的大肠杆菌发酵液进行混合，使得OD 600 = 100，向菌悬液中加入5% w/v
硅藻土，搅拌均匀。随后，加入0.1% w/v分子量为70000的聚乙烯亚胺水溶液在室温条件下
絮凝。然后，加入1% v/v戊二醛水溶液在室温条件下交联2h。真空过滤后得到滤饼，滤饼用
旋转造粒机挤压制粒成3.0 mm粒径的长条状，然后经过球形抛丸机截断成长短均匀的颗
o
粒；获得的固定化细胞颗粒经75C沸腾干燥后得到固定化细胞。

[0065] 按实施例2的方法进行塔格糖的生产。实验结果如图3所示，结果表明，固定大肠杆菌连续催化反应时，初始产物得率最高可达74%，连续催化65批次后，产物得率仍可维持
60%。

[0066] 实施例12：固定化大肠杆菌生产塔格糖

[0067] 按照OD600比例1:1:1:1:1将实施例9中制备的表达耐热α‑葡聚糖磷酸化酶的大肠杆菌发酵液、表达耐热葡萄糖磷酸变位酶的大肠杆菌发酵液、表达耐热葡萄糖磷酸异构酶
的大肠杆菌发酵液、表达耐热6‑磷酸塔格糖差向异构酶的大肠杆菌发酵液、表达耐热6‑磷
酸塔格糖磷酸酶的大肠杆菌发酵液进行混合，使得OD 600 = 100，向菌悬液中加入10% w/v
硅藻土，搅拌均匀。随后，加入1% w/v聚二甲基二烯丙基氯化铵PDADMAC水溶液在室温条件
下絮凝。然后，加入0.5% v/v戊二醛水溶液在室温条件下交联3h。真空过滤后得到滤饼，滤
饼用旋转造粒机挤压制粒成1.0 mm粒径的长条状，然后经过球形抛丸机截断成长短均匀的
o
颗粒；获得的固定化细胞颗粒经90C沸腾干燥后得到固定化细胞。

[0068] 按实施例2的方法进行塔格糖的生产。实验结果表明，固定大肠杆菌连续催化反应时，初始产物得率最高可达74%，连续催化65批次后，产物得率仍可维持57%。

[0069] 实施例13：固定化大肠杆菌生产塔格糖

[0070] 按照OD600比例1:1:1:5:5将实施例9中制备的表达耐热α‑葡聚糖磷酸化酶的大肠杆菌发酵液、表达耐热葡萄糖磷酸变位酶的大肠杆菌发酵液、表达耐热葡萄糖磷酸异构酶
的大肠杆菌发酵液、表达耐热6‑磷酸塔格糖差向异构酶的大肠杆菌发酵液、表达耐热6‑磷
酸塔格糖磷酸酶的大肠杆菌发酵液进行混合，使得OD 600 = 100，向菌悬液中加入4% w/v
硅藻土，搅拌均匀。随后，加入1% w/v分子量为600的聚乙烯亚胺在室温条件下絮凝。然后，
加入0.3% v/v戊二醛水溶液在室温条件下交联3 h。真空过滤后得到滤饼，滤饼用旋转造粒
机挤压制粒成0.4 mm粒径的长条状，然后经过球形抛丸机截断成长短均匀的颗粒；获得的
o
固定化细胞颗粒经80C沸腾干燥后得到固定化细胞。

[0071] 按实施例2的方法进行塔格糖的生产。实验结果表明，固定大肠杆菌连续催化反应时，初始产物得率最高可达74%，连续催化65批次后，产物得率仍可维持58%。

[0072] 实施例14：固定化大肠杆菌生产塔格糖

[0073] 按照OD600比例1:1:1:1:1将实施例9中制备的表达耐热α‑葡聚糖磷酸化酶的大肠杆菌发酵液、表达耐热葡萄糖磷酸变位酶的大肠杆菌发酵液、表达耐热葡萄糖磷酸异构酶
的大肠杆菌发酵液、表达耐热6‑磷酸塔格糖差向异构酶的大肠杆菌发酵液、表达耐热6‑磷
酸塔格糖磷酸酶的大肠杆菌发酵液进行混合，使得OD 600 = 100左右，向菌悬液中加入5% 
w/v硅藻土，搅拌均匀。随后，加入0.8% w/v分子量为10000的聚乙烯亚胺在室温条件下絮
凝。然后，加入0.7% v/v三羟甲基磷水溶液在室温条件下交联2 h。真空过滤后得到滤饼，滤
饼用旋转造粒机挤压制粒成1.0 mm粒径的长条状，然后经过球形抛丸机将长条截断后得到
o
长短均匀的颗粒；获得的固定化细胞颗粒经80C沸腾干燥后得到固定化细胞。

[0074] 按实施例2的方法进行塔格糖的生产。实验结果表明，固定大肠杆菌连续催化反应时，初始产物得率最高可达75%，连续催化65批次后，产物得率仍可维持59%。

[0075] 实施例15：固定化大肠杆菌生产塔格糖

[0076] 按照OD600比例1:1:1:1:1将实施例9中制备的表达耐热α‑葡聚糖磷酸化酶的大肠杆菌发酵液、表达耐热葡萄糖磷酸变位酶的大肠杆菌发酵液、表达耐热葡萄糖磷酸异构酶
的大肠杆菌发酵液、表达耐热6‑磷酸塔格糖差向异构酶的大肠杆菌发酵液、表达耐热6‑磷
酸塔格糖磷酸酶的大肠杆菌发酵液进行混合，使得OD 600 = 100左右，向菌悬液中加入5% 
w/v硅藻土，搅拌均匀。随后，加入0.3% w/v聚丙烯酰胺在室温条件下絮凝。然后，加入1.0% 
v/v N,N‑亚甲基双丙烯酰胺水溶液在室温条件下交联3 h。真空过滤后得到滤饼，滤饼用旋
转造粒机挤压制粒成1.0 mm粒径的长条状，然后经过球形抛丸机将长条截断后得到长短均
o
匀的颗粒；获得的固定化细胞颗粒经90C沸腾干燥后得到固定化细胞。

[0077] 按实施例2的方法进行塔格糖的生产。实验结果表明，固定大肠杆菌连续催化反应时，初始产物得率最高可达75%，连续催化65批次后，产物得率仍可维持57%。

[0078] 实施例16：固定化大肠杆菌生产塔格糖

[0079] 按照OD600比例1:1:1:1:1将实施例9中制备的表达耐热α‑葡聚糖磷酸化酶的大肠杆菌发酵液、表达耐热葡萄糖磷酸变位酶的大肠杆菌发酵液、表达耐热葡萄糖磷酸异构酶
的大肠杆菌发酵液、表达耐热6‑磷酸塔格糖差向异构酶的大肠杆菌发酵液、表达耐热6‑磷
酸塔格糖磷酸酶的大肠杆菌发酵液进行混合，使得OD 600 = 100，向菌悬液中加入2% w/v
硅藻土，搅拌均匀。随后，加入0.2% w/v分子量70000的聚乙烯亚胺水溶液在室温条件下絮
凝。然后，加入1.0% v/v 环氧氯丙烷水溶液在室温条件下交联3 h。真空过滤后得到滤饼，
滤饼用旋转造粒机挤压制粒成1.0 mm粒径的长条状，然后经过球形抛丸机将长条截断后得
到长短均匀的颗粒；获得的固定化细胞颗粒经75℃沸腾干燥后得到固定化细胞。

[0080] 按实施例2的方法进行塔格糖的生产。实验结果表明，固定大肠杆菌连续催化反应时，初始产物得率最高可达75%，连续催化65批次后，产物得率仍可维持55%。

[0081] 对比例1：枯草芽孢杆菌生产塔格糖

[0082] 将实施例1中制备得到的发酵液于5500 rpm离心10 min，弃去上清，分别得到表达耐热α‑葡聚糖磷酸化酶的全细胞、表达耐热葡萄糖磷酸变位酶的全细胞、表达耐热葡萄糖
磷酸异构酶的全细胞、表达耐热6‑磷酸塔格糖差向异构酶的全细胞、表达耐热6‑磷酸塔格
糖磷酸酶的全细胞(出发菌选用SCK6，见CN112342179B)，分别向上述细胞中加入50 mM磷酸
o
钠缓冲液（pH 7.5），重悬菌体至OD 600=200。将重悬的菌体75C热处理90 min。用pH 7.0磷
酸钠缓冲液按照比例1:1:1:1:1将上述全细胞进行混合，使得OD600=200。

[0083] 在1L反应体系中，分别加入终浓度为100 g/L淀粉、50 mM磷酸钠缓冲（pH 7.0）以o
及上述混合的枯草芽孢杆菌 OD 600 = 20，在70 C水浴摇床反应。反应过程中用高效液相
色谱分析塔格糖含量。反应结束后通过离心获得沉淀菌体，经缓冲液洗涤后进行下一批次
反应。实验结果如图4所示，结果表明，固定枯草芽孢杆菌连续催化反应时，初始产物得率最
高可达73%，但连续催化2批次后，产物得率仅剩余20%。

[0084] 对比例2：大肠杆菌生产塔格糖

[0085] 将实施例9中制备得到的发酵液于5500 rpm离心10 min，弃去上清，分别获得表达耐热α‑葡聚糖磷酸化酶的全细胞、表达耐热葡萄糖磷酸变位酶的全细胞、表达耐热葡萄糖
磷酸异构酶的全细胞、表达耐热6‑磷酸塔格糖差向异构酶的全细胞、表达耐热6‑磷酸塔格
糖磷酸酶的全细胞（出发菌选用BL21(DE3)，见CN107988286B），分别向上述细胞中加入50 
o
mM磷酸钠缓冲液（pH 7.5），重悬菌体至OD 600=200。将重悬的菌体75C热处理90 min。用pH 
7.0磷酸钠缓冲液按照比例1:1:1:1:1将上述全细胞进行混合，使得OD600=200。

[0086] 在1L反应体系中，分别加入终浓度为100 g/L淀粉、50 mM磷酸钠缓冲（pH 7.0）以o
及上述混合的大肠杆菌 OD 600 = 20，在70C水浴摇床反应。反应过程中用高效液相色谱
分析塔格糖含量。反应结束后通过离心获得沉淀菌体，经缓冲液洗涤后进行下一批次反应。
实验结果如图5所示，结果表明，大肠杆菌连续催化反应时，初始产物得率最高可达73%，但
连续催化2批次后，产物得率仅剩余15%。

[0087] 对比例3:固定化透性枯草芽孢杆菌生产塔格糖

[0088] 分别挑取表达耐热α‑葡聚糖磷酸化酶基因、表达耐热葡萄糖磷酸变位酶基因、表达耐热葡萄糖磷酸异构酶基因、表达耐热6‑磷酸塔格糖差向异构酶基因、表达耐热6‑磷酸
塔格糖磷酸酶基因的枯草芽孢杆菌重组工程菌(出发菌选用SCK6，见CN112342179B)，并分
别接种于LB培养基中，37℃振荡过夜培养。将培养物以1%的接种量转接于LB培养基中，37℃
震荡培养过夜，5500 rpm离心10 min，弃去上清，分别获得表达耐热α‑葡聚糖磷酸化酶的全
细胞、表达耐热葡萄糖磷酸变位酶的全细胞、表达耐热葡萄糖磷酸异构酶的全细胞、表达耐
热6‑磷酸塔格糖差向异构酶的全细胞、表达耐热6‑磷酸塔格糖磷酸酶的全细胞。分别向上
o
述细胞中加入50 mM磷酸钠缓冲液（pH 7.5），重悬菌体至OD 600=200。将重悬的菌体75 C热
处理90 min。

[0089] 用pH 7.0磷酸钠缓冲液按照比例1:1:1:1:1将上述透性全细胞进行混合，使得OD 600 = 100，向菌悬液中加入5% w/v硅藻土，搅拌均匀。随后，加入0.5% w/v分子量为70000
的聚乙烯亚胺水溶液在室温条件下絮凝。然后，加入0.5% v/v戊二醛水溶液在室温条件下
交联2h。真空过滤后得到滤饼，滤饼用旋转造粒机挤压制粒成0.4 mm粒径的颗粒；获得的固
定化细胞颗粒经30℃干燥后得到固定化细胞。

[0090] 按实施例2的方法进行塔格糖的生产。实验结果表明，固定化透性枯草芽孢杆菌连续催化反应时，初始产物得率最高可达73%，连续催化65批次后，产物得率为43%。

[0091] 对比例4：固定化透性大肠杆菌生产塔格糖

[0092] 分别挑取表达耐热α‑葡聚糖磷酸化酶基因、表达耐热葡萄糖磷酸变位酶基因、表达耐热葡萄糖磷酸异构酶基因、表达耐热6‑磷酸塔格糖差向异构酶基因、表达耐热6‑磷酸
塔格糖磷酸酶基因的大肠杆菌重组工程菌（出发菌选用BL21(DE3)，见CN107988286B），并分
别接种于LB培养基中，37℃振荡过夜培养。将培养物以1%的接种量转接于LB培养基中，18℃ 
IPTG诱导，震荡培养过夜，5500 rpm离心10 min，弃去上清，分别获得表达耐热α‑葡聚糖磷
酸化酶的全细胞、表达耐热葡萄糖磷酸变位酶的全细胞、表达耐热葡萄糖磷酸异构酶的全
细胞、表达耐热6‑磷酸塔格糖差向异构酶的全细胞、表达耐热6‑磷酸塔格糖磷酸酶的全细
胞。分别向上述细胞中加入50 mM磷酸钠缓冲液（pH 7.5），重悬菌体至OD 600=200。将重悬
o
的菌体75C热处理90 min。

[0093] 用pH 7.0磷酸钠缓冲液按照比例1:1:1:1:1将上述透性全细胞进行混合，使得OD600=100，向菌悬液中加入1% w/v硅藻土，搅拌均匀。随后，加入0.5% w/v分子量为70000
的聚乙烯亚胺水溶液在室温条件下絮凝。然后，加入1% v/v戊二醛水溶液在室温条件下交
联2h。真空过滤后得到滤饼，滤饼用旋转造粒机挤压制粒成1.0 mm粒径的颗粒；获得的固定
o
化细胞颗粒经30C干燥后得到固定化细胞。

[0094] 按实施例2的方法进行塔格糖的生产。实验结果表明，固定化透性大肠杆菌连续催化反应时，初始产物得率最高可达72%，连续催化65批次后，产物得率为40%。