蛔甙在制备H.bacteriophora H06线虫产量制剂中的应用转让专利

申请号 : CN202110953233.3

文献号 : CN113826585B

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发明人 : 谷星慧王杰屈玲黄智华曹莉韩日畴李江舟崔永和周文兵刘珏廷

申请人 : 云南省烟草公司玉溪市公司广东省科学院动物研究所

摘要 :

本发明公开了蛔甙在制备促进Heterorhabditis bacteriophora H06感染期线虫产量制剂中的应用。本发明发现,相比于作为对照的无菌PBS,蛔甙能够显著地提高H.bacteriophora H06感染期线虫产量。因此,在线虫大量培养过程中,可以使用蛔甙大幅提升H.bacteriophora H06感染期线虫产量,为商品化生产具有成本优势的H.bacteriophora H06线虫提供了核心技术。

权利要求 :

1.蛔甙在制备提高Heterorhabditis bacteriophora H06线虫产量制剂中的应用,所述的蛔甙,其结构式如式1中任一所示:

2.一种提高H.bacteriophora H06线虫产量的方法,其特征在于,将蛔甙添加到加入相应共生细菌的H.bacteriophora H06线虫培养基中,线虫繁殖后获得更高的感染期线虫产量;所述的蛔甙,其结构式如式1中任一所示;

所述的蛔甙为ascr#1时,其在培养基中的浓度是0.02pM‑0.02nM;所述的蛔甙为ascr#2时,其在培养基中的浓度是0.02nM;所述的蛔甙为ascr#3时,其在培养基中的浓度是

0.02pM‑0.02nM;所述的蛔甙为ascr#5时,其在培养基中的浓度是0.02pM‑0.02nM;所述的蛔甙为ascr#6时,其在培养基中的浓度是0.02nM;所述的蛔甙为ascr#7时,其在培养基中的浓度是0.02pM‑0.02nM;所述的蛔甙为ascr#8时,其在培养基中的浓度是0.02pM‑0.02μM;所述的蛔甙为ascr#9时,其在培养基中的浓度是0.02pM;所述的蛔甙为ascr#11时,其在培养基中的浓度是0.02pM‑0.02nM;所述的蛔甙为ascr#12时,其在培养基中的浓度是0.02pM。

3.根据权利要求2所述的方法,其特征在于,所述的蛔甙为ascr#1、3或7时,其在培养基中的浓度是0.02nM。

4.根据权利要求2所述的方法,其特征在于,所述的蛔甙为ascr#11时,其在培养基中的浓度是0.02pM。

说明书 :

蛔甙在制备H.bacteriophora H06线虫产量制剂中的应用

技术领域

[0001] 本发明属于生物防治领域,具体涉及蛔甙在制备Heterorhabditis bacteriophora H06线虫产量制剂中的应用。

背景技术

[0002] 昆虫病原斯氏线虫属Steinernema和异小杆线虫属Heterorhabditis线虫是业已广泛用于防治农林、牧草、花卉和卫生等领域的害虫的天敌类杀虫制剂。这类线虫以3龄感染期虫态主动搜索寄主昆虫,对非靶标生物和环境安全,可规模化生产。昆虫病原线虫以感染期虫态随寄主食物或从昆虫的自然开口(如肛门、气门)、节间膜进入昆虫体内,随后释放肠腔中携带的Xenorhabdus属(与斯氏线虫Steinernema共生)或Photorhabdus属(与异小杆线虫Heterorhabditis共生)共生细菌致死昆虫。然后线虫利用共生细菌转化寄主体内的营养物质繁殖后代。
[0003] 目前昆虫病原线虫培养方法主要有活体培养(In vivo)和离体培养(In vitro)。活体培养技术是利用昆虫寄主来培养昆虫病原线虫,目前主要使用的是大蜡螟幼虫Galleria mellonella幼虫。离体培养主要包括固体培养和液体培养。固体培养是在含有海绵填充剂的培养基中加入单一共生细菌和无菌线虫构建的。液体培养主要是应用发酵罐系统培养昆虫病原线虫。不论是使用固体还是液体培养方法,昆虫病原线虫商业化培养的技术关键是如何获得高产量的线虫和降低线虫成本。
[0004] 线形动物普遍存在的蛔甙类Ascarosides信息物质在调节线虫的聚集、趋避、交配、多尔态(Dauer)形成及扩散传播等行为中发挥了重要作用。本发明发现,蛔甙可提高H.bacteriophora H06线虫的产量。

发明内容

[0005] 本发明的第一个目的是提供蛔甙在提高H.bacteriophora H06线虫产量中的应用。
[0006] 本发明通过实验发现,蛔甙能提高昆虫病原H.bacteriophora H06线虫的产量。
[0007] 因此,本发明提供蛔甙在制备提高昆虫病原H.bacteriophora H06产量制剂中的应用(即蛔甙在提高H.bacteriophora H06线虫产量中的应用),所述的蛔甙,其结构式如式1中ascr#1、ascr#2、ascr#3、ascr#5、ascr#6、ascr#7、ascr#8、ascr#9、ascr#10、ascr#11、ascr#12所示任一种:
[0008]
[0009]
[0010] 本发明的第二个目的是提供一种提高H.bacteriophora H06线虫产量的方法,是将蛔甙添加到加入Photorhabdus luminescens H06共生细菌的H.bacteriophora H06线虫培养基中,促进线虫繁殖从而获得更高的线虫产量。
[0011] 所述蛔甙的结构式如式1中ascr#1、ascr#2、ascr#3、ascr#5、ascr#6、ascr#7、ascr#8、ascr#9、ascr#10、ascr#11、ascr#12所示任一种。
[0012] 优选,所述的蛔甙为ascr#1时,其在培养基中的浓度是0.02pM‑0.02nM;所述的蛔甙为ascr#2时,其在培养基中的浓度是0.02nM;所述的蛔甙为ascr#3时,其在培养基中的浓度是0.02pM‑0.02nM;所述的蛔甙为ascr#5时,其在培养基中的浓度是0.02pM‑0.02nM;所述的蛔甙为ascr#6时,其在培养基中的浓度是0.02nM;所述的蛔甙为ascr#7时,其在培养基中的浓度是0.02pM‑0.02nM;所述的蛔甙为ascr#8时,其在培养基中的浓度是0.02pM‑0.02μM;所述的蛔甙为ascr#9时,其在培养基中的浓度是0.02pM;所述的蛔甙为ascr#11时,其在培养基中的浓度是0.02pM‑0.02nM;所述的蛔甙为ascr#12时,其在培养基中的浓度是0.02pM。
[0013] 进一步优选,所述的蛔甙为ascr#1、3、7时,其在培养基中的浓度是0.02nM。
[0014] 进一步优选,所述的蛔甙为ascr#11时,其在培养基中的浓度是0.02pM。
[0015] 本发明发现,相比于PBS对照组,蛔甙显著地提高H.bacteriophora H06感染期线虫产量。因此,可以将蛔甙用于提高H.bacteriophora H06感染期线虫产量,获得具有价格竞争力的H.bacteriophora H06线虫。

具体实施方式

[0016] 以下实施例是对本发明的进一步说明,而不是对本发明的限制。
[0017] 实施例1:
[0018] 一、实验材料
[0019] 1、蛔甙:包括11种人工合成的蛔甙,代号分别为ascr#1、ascr#2、ascr#3、ascr#5、ascr#6、ascr#7、ascr#8、ascr#9、ascr#10、ascr#11、ascr#12,其结构式分列如下:
[0020]
[0021]
[0022] 分别将11种蛔甙以无菌PBS溶解至0.5μM、0.5nM、0.5pM,再稀释至一定浓度,以一定的量加入线虫培养基中,使培养基中的浓度分别为0.02μM、0.02nM、0.02pM。
[0023] 二、实验方法:
[0024] 1、单菌Photorhabdus luminescens H06培养的H.bacteriophora H06:将常规固体培养基培养的H.bacteriophora H06线虫经清洗后,用无菌PBS缓冲液清洗三次后,以无菌PBS配制成10μl含50感染期线虫的浓度(5000感染期线虫/mL),装入250ml三角瓶中(装50ml线虫悬液),置于9‑13℃保存备用。
[0025] 2、Photorhabdus luminescens H06共生菌液的培养:以LB(121℃灭菌30min)于25℃,120rpm摇床中培养H.bacteriophora H06线虫的共生细菌(P.luminescens)至菌液浓度OD600值为0.2。
[0026] 3、线虫培养基制备:于无菌48孔板中,每个孔中加入0.3ml高压灭菌的强化营养肉汤培养基(LA:按质量分数计,包括1.6%营养肉汤,1%玉米油和1.2%琼脂,其余为纯净水),冷却后使用。
[0027] 4、共生细菌接种:于加入LA培养基的培养板中每孔加入20μL已培养好且无污染的共生菌液在28℃条件下培养3天。
[0028] 5、感染期线虫接种和蛔甙加入:于LA培养基且添加共生菌的情况下,以10μl的量加入约50条感染期线虫到孔中。再分别加入10μl不同浓度的蛔甙(均匀喷洒在整个孔中),使培养基中的浓度分别为0.02μM、0.02nM、0.02pM。以加入等体积无菌PBS为对照。每个处理设置4个孔的重复。
[0029] 6、线虫产量计数:将平板以封口膜封口后,放置25℃下黑暗培养。15d后,于平板中分批加入5ml无菌PBS,清洗其中的线虫到新的无菌平板中(直径=9cm),转移到15ml的离心管中进行定容和取样,混匀后取样计数感染期线虫数量和其它龄期线虫(如母虫、非感染期线虫)数量。
[0030] 结果如表1所示:
[0031] 表1:蛔甙对H.bacteriophora H06感染期线虫产量(条数/孔)的影响(15天)[0032]
[0033] 注:表中大写字母表示同一处理下不同浓度之间的显著性差异;小写字母表示同一浓度下不同处理之间的显著性差异。表中数据经过方差分析后可知:0.02μM:F=13.375,df=14,30,p=0.000;0.02nM:F=20.216,df=14,30,p=0.000;0.02pM:F=11.114,df=14,30,p=0.000。
[0034] 从表1可以看出,与无菌PBS对照组相比,11种蛔甙均能提升H.bacteriophora H06线虫产量,特别是所述的蛔甙为ascr#1、ascr#2、ascr#3、ascr#5、ascr#6、ascr#7、ascr#8、ascr#9、ascr#11、ascr#12时,能显著地提高H.bacteriophora H06线虫的产量,最高产量是浓度为0.02nM的ascr#1(比对照产量高出约2.6倍)。