一种靶向AHRR基因的sgRNA组合及其应用

摘要

本发明提供了一种靶向AHRR基因的sgRNA组合及其应用，所述靶向AHRR基因的sgRNA组合包括sgRNA1和/或sgRNA2，所述sgRNA1包括SEQ ID No.1所示的核酸序列，所述sgRNA2包括SEQ ID No.2所示的核酸序列。本发明还提供了一种AHRR基因编辑系统、一种重组细胞及其构建方法和一种肥胖动物模型的构建方法，通过基因编辑及筛选，得到的敲除了AHRR基因的纯合子小鼠具有典型的肥胖体征，体型更大、体重更重，体内脂肪含量也更高，可以用于降糖、降脂相关药物的筛选中，应用价值极其广泛。

权利要求

1.一种靶向AHRR基因的sgRNA组合，其特征在于，所述靶向AHRR基因的sgRNA组合包括sgRNA1和sgRNA2，所述sgRNA1为SEQ ID No.1所示的核酸序列，所述sgRNA2为SEQ ID No.2所示的核酸序列。

2.一种AHRR基因编辑系统，其特征在于，所述AHRR基因编辑系统包括权利要求1所述的靶向AHRR基因的sgRNA组合；

所述AHRR基因编辑系统还包括Cas9；

所述Cas9包括Cas9核酸酶或Cas9核酸酶的mRNA。

3.根据权利要求2所述的AHRR基因编辑系统，其特征在于，所述Cas9为Cas9核酸酶的mRNA。

4.一种含有权利要求1所述的靶向AHRR基因的sgRNA组合的重组细胞的构建方法，其特征在于，所述构建方法包括：将权利要求2或3所述的AHRR基因编辑系统导入受精卵细胞的细胞核内，得到所述重组细胞。

5.根据权利要求4所述的构建方法，其特征在于，所述导入包括显微注射。

6.一种肥胖动物模型的构建方法，其特征在于，所述肥胖动物模型的构建方法包括：将权利要求2或3所述的AHRR基因编辑系统导入哺乳动物受精卵细胞的细胞核内，得到重组细胞；

将所述重组细胞移植入代孕母体，获得的F0代与野生型交配，得到F1代杂合子；

将所述F1代杂合子自交，获得的F2代纯合子即为所述肥胖动物模型。

7.根据权利要求6所述的肥胖动物模型的构建方法，其特征在于，所述AHRR基因编辑系统的制备方法包括：对Cas9核酸酶基因进行体外转录，得到所述Cas9核酸酶的mRNA；

将所述Cas9核酸酶的mRNA与权利要求1所述的靶向AHRR基因的sgRNA组合混合，得到所述AHRR基因编辑系统。

8.根据权利要求7所述的肥胖动物模型的构建方法，其特征在于，所述哺乳动物为小鼠。

9.根据权利要求8所述的肥胖动物模型的构建方法，其特征在于，所述小鼠为C57BL/6小鼠。

10.根据权利要求6 9任一项所述的肥胖动物模型的构建方法，其特征在于，所述F0代、~F1代杂合子和F2代纯合子利用PCR扩增和测序进行鉴定；

所述PCR扩增的正向引物的序列为SEQ ID No.3所示的核酸序列；

所述PCR扩增的反向引物的序列为SEQ ID No.4 5之一所示的核酸序列。

~

11.根据权利要求10所述的肥胖动物模型的构建方法，其特征在于，所述肥胖动物模型的构建方法包括以下步骤：（1）体外转录Cas9核酸酶基因的mRNA，与权利要求1所述的靶向AHRR基因的sgRNA组合混合，得到AHRR基因编辑系统；

对C57BL/6小鼠进行促排卵，体外受精后，培养受精卵；

（2）将所述AHRR基因编辑系统显微注射入C57BL/6小鼠受精卵细胞的细胞核内，得到重组细胞；

（3）对所述重组细胞进行体外培养，并转移到代孕母鼠体内；

（4）提取出生小鼠尾部组织的DNA，使用SEQ ID No.3 5进行PCR扩增，并对扩增产物进~行测序鉴定，挑选AHRR基因缺失的小鼠作为F0代；

（5）将所述F0代与野生型C57BL/6小鼠交配，得到F1代杂合子小鼠；

（6）将所得F1代杂合子小鼠自交，使用SEQ ID No.3 5进行PCR扩增，并对扩增产物测序~鉴定，筛选出F2代AHRR基因敲除的纯合子C57BL/6小鼠，即所述的肥胖动物模型。

12.权利要求1所述的靶向AHRR基因的sgRNA组合、权利要求2或3所述的AHRR基因编辑系统、权利要求4或5所述的重组细胞的构建方法或权利要求6 11任一项所述的肥胖动物模~型的构建方法中的任意一种在筛选降脂降糖药物和/或评价降脂降糖药物效果中的应用。

说明书

一种靶向AHRR基因的sgRNA组合及其应用

技术领域

[0001] 本发明属于基因编辑技术领域，尤其涉及一种靶向AHRR基因的sgRNA组合及其应用。

背景技术

[0002] 随着人们饮食结构和生活方式的改变，肥胖已成为当下全球共同面临的重要健康问题。肥胖是一种复杂的代谢系统疾病，可以引起相关的代谢紊乱及病症，如心脑血管疾病、脂代谢紊乱、胰岛素抵抗、II型糖尿病和代谢综合征等。临床中以单纯性肥胖为主，其特征为没有明显神经、内分泌系统形态及功能的改变，但伴有脂质、糖代谢过程障碍。

[0003] 研究肥胖的发展机制、探索其治疗方法是指导制定肥胖预防和治疗策略的前提。肥胖的发病原因有多种，其机制的研究涉及许多生物学途径，因此，建立基于不同生物学机制的肥胖动物模型的方法，对阐明肥胖发病机制有重要的临床意义。目前，常见的动物肥胖模型的构建方法包括通过食物(高脂饲料)、内分泌(去卵巢或注射胰岛素)、下丘脑(谷氨酸钠或金硫葡萄糖)和遗传等因素进行诱导。CN107156505A公开了一种大鼠肥胖模型饲料，包括玉米25～30份、小麦15～20份、黄豆粕20～25份、小麦面筋蛋白5～12份、鱼粉3～10份、猪油10～25份、酵母水解物2.9～9份、石粉0.8～1.2份、磷酸氢钙1～2份、复合矿物质0.5～1份、复合维生素0.1～0.5份、蛋氨酸0.1～0.2份和赖氨酸0.1～0.2份。通过对原料进行合理的配比，该饲料营养物质丰富，适口性较好，且通过调节体内微生态菌群的状态，促进大鼠对蛋白等营养物质的吸收，使大鼠体重增加，提高了肥胖模型构建的成功率。然而，通过进食来使大鼠的体重增加，受季节、环境及个体差异的影响较大，重复性较差，肥胖表型也并非稳定存在且无法遗传给后代，局限性较大。

[0004] 目前，肥胖动物模型的构建方法普遍存在造模条件繁琐、周期长、肥胖表型稳定性差、缺乏统一的造模标准且难以满足肥胖不同发病机制的研究需求，如何提供一种构建条件简单、周期短、肥胖表型稳定且可复制性强的肥胖模型的构建方法，已成为亟待解决的问题。

发明内容

[0005] 针对现有技术的不足和实际需求，本发明提供一种靶向AHRR基因的sgRNA组合及其应用，所述靶向AHRR基因的sgRNA组合特异性强，脱靶率低，配合Cas9核酸酶的mRNA，可实现AHRR基因的大片段敲除，突变效率高，基因型可稳定存在，应用价值高。

[0006] 为达此目的，本发明采用如下技术方案：

[0007] 第一方面，本发明提供了一种靶向AHRR基因的sgRNA组合，所述靶向AHRR基因的sgRNA组合包括sgRNA1和/或sgRNA2，所述sgRNA1包括SEQ ID No.1所示的核酸序列，所述sgRNA2包括SEQ ID No.2所示的核酸序列。

[0008] SEQ ID No.1：GGAGATNTCGCCAAGTNCATGGG；

[0009] SEQ ID No.2：GGCACACTANCGTNATTATTGG；

[0010] 其中，N代表A、T、C或G中的任意一种。

[0011] 本发明中，sgRNA1和sgRNA2特异性靶向AHRR基因中的内含子序列，其中sgRNA1靶向AHRR基因的内含子5，sgRNA2靶向AHRR基因的内含子8，二者相互配合，可以降低脱靶率，特异性较高。

[0012] 第二方面，本发明提供了一种AHRR基因编辑系统，所述AHRR基因编辑系统包括第一方面所述的靶向AHRR基因的sgRNA组合。

[0013] 本发明中，通过将靶向AHRR基因的sgRNA组合结合使用，配合Cas9，所述AHRR基因编辑系统仅对AHRR基因进行编辑，脱靶率较低，可以避免非特异性的基因编辑；所述靶向AHRR基因的sgRNA组合在基因组中的距离较远，可以实现对AHRR基因的大片段敲除，基因编辑效率极高。

[0014] 优选地，所述AHRR基因编辑系统还包括Cas9。

[0015] 优选地，所述Cas9包括Cas9核酸酶和/或Cas9核酸酶的mRNA，优选为Cas9核酸酶的mRNA。

[0016] 第三方面，本发明提供了一种重组细胞，所述重组细胞含有第一方面所述的靶向AHRR基因的sgRNA组合。

[0017] 本发明中，通过对细胞的AHRR基因进行编辑，所述重组细胞可以通过细胞分裂的方式将突变的基因型传递给子代细胞，实现了基因突变的稳定性及可遗传性，降低了筛选的工作量，应用价值更为广泛。

[0018] 优选地，所述重组细胞含有第二方面所述的AHRR基因编辑系统。

[0019] 优选地，所述重组细胞为经过第二方面所述的AHRR基因编辑系统编辑后，基因组中敲除了AHRR基因的受精卵细胞。

[0020] 第四方面，本发明提供了一种第三方面所述的重组细胞的构建方法，所述构建方法包括：

[0021] 将第二方面所述的AHRR基因编辑系统导入受精卵细胞的细胞核内，得到所述重组细胞。

[0022] 本发明中，将所述的AHRR基因编辑系统直接导入受精卵细胞的细胞核内，避免了sgRNA1、sgRNA2和Cas9核酸酶的mRNA只能在细胞分裂、核膜消失时对基因组进行编辑的弊端，提高了基因编辑的效率；选取受精卵细胞用于构建重组细胞，可以降低嵌合体出现的概率，保证有义突变可以传递给子代，降低后期筛选的工作量。

[0023] 优选地，所述导入包括显微注射。

[0024] 第五方面，本发明提供了一种肥胖动物模型的构建方法，所述肥胖动物模型的构建方法包括：

[0025] 将第二方面所述的AHRR基因编辑系统导入哺乳动物受精卵细胞的细胞核内，得到重组细胞；

[0026] 将所述重组细胞移植入代孕母体，获得的F0代与野生型交配，得到F1代杂合子；

[0027] 将所述F1代杂合子自交，获得的F2代纯合子即为所述肥胖动物模型。

[0028] 本发明中，所述肥胖动物模型的构建方法操作简单，成功率高，相关领域的技术人员很容易掌握，可以在相关的实验室中完成；筛选得到纯合子后，仅需对纯合子进行持续的自交，即可使突变的基因型稳定遗传，无需再次筛选，十分方便，也为相关的研究创造了便利的条件。

[0029] 优选地，所述AHRR基因编辑系统的制备方法包括：

[0030] 对Cas9核酸酶基因进行体外转录，得到所述Cas9核酸酶的mRNA；

[0031] 将所述Cas9核酸酶的mRNA与第一方面所述的靶向AHRR基因的sgRNA组合混合，得到所述AHRR基因编辑系统。

[0032] 优选地，所述哺乳动物包括小鼠、大鼠、兔、猪或食蟹猴中的任意一种。

[0033] 优选地，所述哺乳动物为小鼠，优选为C57BL/6小鼠。

[0034] 优选地，所述F0代、F1代杂合子和F2代纯合子利用PCR扩增和测序进行鉴定。

[0035] 优选地，所述PCR扩增的正向引物的序列包括SEQ ID No.3所示的核酸序列；

[0036] 优选地，所述PCR扩增的反向引物的序列包括SEQ ID No.4～5之一所示的核酸序列。

[0037] SEQ ID No.3：CAGAGCTTATCCACAAAGTCACC；

[0038] SEQ ID No.4：GCACCTCCAAAGAATATACAAGCAG；

[0039] SEQ ID No.5：CTGCAAAGGCTGACATGAAGG。

[0040] 作为优选技术方案，本发明所述肥胖动物模型的构建方法，具体包括以下步骤：

[0041] (1)体外转录Cas9核酸酶基因的mRNA，与靶向AHRR基因的sgRNA组合混合，得到AHRR基因编辑系统；

[0042] 对C57BL/6小鼠进行促排卵，体外受精后，培养受精卵；

[0043] (2)将所述AHRR基因编辑系统显微注射入C57BL/6小鼠受精卵细胞的细胞核内，得到重组细胞；

[0044] (3)对所述重组细胞进行体外培养，并转移到代孕母鼠体内；

[0045] (4)提取出生小鼠尾部组织的DNA，使用SEQ ID No.3～5进行PCR扩增，并对扩增产物进行测序鉴定，挑选AHRR基因缺失的小鼠作为F0代；

[0046] (5)将所述F0代与野生型C57BL/6小鼠交配，得到F1代杂合子小鼠；

[0047] (6)将所得F1代杂合子小鼠自交，使用SEQ ID No.3～5进行PCR扩增，并对扩增产物测序鉴定，筛选出F2代AHRR基因敲除的纯合子C57BL/6小鼠，即所述的肥胖动物模型。

[0048] 第六方面，本发明提供了第一方面所述的靶向AHRR基因的sgRNA组合、第二方面所述的AHRR基因编辑系统、第三方面所述的重组细胞、第四方面所述的重组细胞的构建方法或第五方面所述的肥胖动物模型的构建方法中的任意一种或至少两种的组合在筛选降脂降糖药物和/或评价降脂降糖药物效果中的应用。

[0049] 本发明中，所述靶向AHRR基因的sgRNA组合和基因编辑系统特异性高，脱靶率低；所述重组细胞和重组细胞的构建方法提高了基因编辑的效率，降低了筛选的工作量；所述肥胖动物模型的构建方法技术成熟，操作简单，突变后的基因型可稳定存在，重复性较强，且受外界环境因素的影响较小，适合应用于相关的机制研究及药物筛选中，应用价值极其广泛。

[0050] 相比于现有技术，本发明具有如下有益效果：

[0051] (1)本发明所述靶向AHRR基因的sgRNA组合和AHRR基因编辑系统特异性好，脱靶率低，可以实现对AHRR基因的大片段敲除，基因编辑效率高；通过将AHRR基因编辑系统直接导入受精卵细胞的细胞核内，构建的重组细胞可以通过细胞分裂的方式将突变的基因型传递给子代细胞，实现了基因突变的稳定性及可遗传性，降低了筛选的工作量；

[0052] (2)本发明通过敲除AHRR基因，建立了一种肥胖动物模型的构建方法，通过CRISPR/Cas9系统对AHRR基因进行编辑，实现了大片段的敲除，提高了基因编辑的效率；所采用的技术十分成熟，操作简单，成功率高，具有较好的重复性；构建得到的AHRR基因敲除的纯合子小鼠缺失了基因组中5451bp的片段，体型、体重和脂肪重量明显高于野生型小鼠，具有明显的肥胖表型，且受外界环境因素的影响较小，表型稳定，耗时较短，在相关药物筛选及科学研究中具有广泛的应用价值。

附图说明

[0053] 图1为本发明实施例4中基因敲除小鼠的筛选的原理图；

[0054] 图2A为本发明实施例5中野生型小鼠的SEQ ID No.3/SEQ ID No.4扩增产物的琼脂糖凝胶电泳图片，泳道1为DS10000 DNA marker，泳道2为野生型小鼠的AHRR基因的扩增产物；

[0055] 图2B为本发明实施例5中野生型小鼠的SEQ ID No.3/SEQ ID No.5扩增产物的琼脂糖凝胶电泳图片，泳道1为DL2000 DNA marker，泳道2为野生型小鼠的AHRR基因的扩增产物；

[0056] 图3A为本发明实施例5中AHRR基因敲除纯合子小鼠的SEQ ID No.3/SEQ ID No.4扩增产物的琼脂糖凝胶电泳图片，泳道1～4为AHRR基因敲除纯合子小鼠的AHRR基因的扩增产物，泳道5为DL2000 DNA marker；

[0057] 图3B为本发明实施例5中AHRR基因敲除纯合子小鼠的SEQ ID No.3/SEQ ID No.5扩增产物的琼脂糖凝胶电泳图片，泳道1～4为AHRR基因敲除纯合子小鼠的AHRR基因的扩增产物，泳道5为DL2000 DNA marker；

[0058] 图4A为本发明实施例6中AHRR基因敲除纯合子小鼠和野生型小鼠的外观对比图片(比例尺＝4cm)；

[0059] 图4B为本发明实施例6中AHRR基因敲除纯合子小鼠和野生型小鼠的体重的统计结果图片；

[0060] 图4C为本发明实施例6中AHRR基因敲除纯合子小鼠和野生型小鼠的棕色脂肪重量的统计结果图片。

具体实施方式

[0061] 为进一步阐述本发明所采取的技术手段及其效果，以下结合实施例和附图对本发明作进一步地说明。可以理解的是，此处所描述的具体实施方式仅仅用于解释本发明，而非对本发明的限定。

[0062] 实施例中未注明具体技术或条件者，按照本领域内的文献所描述的技术或条件，或者按照产品说明书进行。所用试剂或仪器未注明生产厂商者，均为可通过正规渠道商购获得的常规产品。

[0063] 材料：

[0064] 体外转录试剂盒购自英茂盛业生物科技有限公司(Inovogen Tech)；

[0065] PCR扩增试剂购自TOYOBO公司；

[0066] 基因组DNA提取试剂盒购自TaKaRa公司；

[0067] 无水乙醇购自广州化学试剂厂；

[0068] C57BL/6小鼠来自赛业模式生物研究中心(太仓)有限公司；

[0069] 小鼠饲料购自武汉市万千佳兴生物科技有限公司；

[0070] 小鼠的饲养条件为：

[0071] 在温度为25℃、湿度为50％、气流速度为0.2m/s、噪音为50dB(A)、无菌等级为7级的无菌环境中进行饲养，光照时间为10h/天，每2天喂食一次，提供足够的饲料供小鼠自由取食，平均每只小鼠的进食量为3～7g/天。

[0072] 实施例1

[0073] 本实施例提供一种靶向AHRR基因的sgRNA组合，所述靶向AHRR基因的sgRNA组合包括sgRNA1和sgRNA2，所述sgRNA1包括SEQ ID No.1所示的核酸序列，所述sgRNA2包括SEQ ID No.2所示的核酸序列。

[0074] SEQ ID No.1：GGAGATNTCGCCAAGTNCATGGG；

[0075] SEQ ID No.2：GGCACATCTANCGTNATTATTGG；

[0076] 其中，N代表A、T、C或G中的任意一种。

[0077] 所述sgRNA1特异性靶向AHRR基因的内含子5，所述sgRNA2特异性靶向AHRR基因的内含子8，特异性好，脱靶率低，应用价值广泛。

[0078] 实施例2

[0079] 本实施例提供一种AHRR基因编辑系统，所述AHRR基因编辑系统包括靶向AHRR基因的sgRNA组合sgRNA1和sgRNA2以及Cas9核酸酶的mRNA。

[0080] 所述AHRR基因编辑系统具有敲除基因组中AHRR基因的能力，通过sgRNA组合的配合，可以降低脱靶率，降低非特异性编辑的概率，且具有大片段敲除的能力，编辑效率更高；选用Cas9核酸酶的mRNA，对细胞的毒害作用较小，编辑后的个体更容易存活，降低筛选工作的难度。

[0081] 实施例3

[0082] 本实施例提供一种重组细胞，所述重组细胞为经过实施例2中的AHRR基因编辑系统编辑后，基因组中AHRR基因发生突变的C57BL/6小鼠的受精卵细胞。

[0083] 所述重组细胞通过如下方法进行构建：

[0084] (1)体外转录Cas9核酸酶基因的mRNA，与靶向AHRR基因的sgRNA组合混合，得到AHRR基因编辑系统；

[0085] 对C57BL/6小鼠进行促排卵，体外受精后，培养受精卵；

[0086] (2)将所述AHRR基因编辑系统显微注射入C57BL/6小鼠受精卵细胞的细胞核内，得到重组细胞。

[0087] 通过将sgRNA1、sgRNA2和Cas9核酸酶的mRNA直接注射入受精卵细胞的细胞核中，提高了基因编辑的效率；选取受精卵构建重组细胞，有义突变可以通过细胞分裂进行遗传，降低了嵌合体出现的概率，编辑后的基因型可以遗传给子代，减小了筛选的工作量。

[0088] 实施例4

[0089] 本实施例将实施例3中构建的重组细胞移植到代孕母鼠的体内，构建肥胖动物模型，具体步骤如下：

[0090] (1)将实施例3所得的重组细胞进行体外培养，并转移到代孕母鼠的体内；

[0091] (2)提取出生小鼠尾部组织的DNA，使用SEQ ID No.3～5进行PCR扩增，并对扩增产物进行测序鉴定，挑选AHRR基因缺失的小鼠作为F0代；

[0092] DNA提取的具体步骤如下：

[0093] a.剪取3mm小鼠尾巴置于离心管中，加入180μL缓冲液GL、20μL蛋白酶K和10μL RNase A；

[0094] b.将离心管在56℃孵育过夜；

[0095] c.将离心管在12000rpm下离心2min，去除杂质；

[0096] d.混合，加入200μL Buffer GB和200μL无水乙醇；

[0097] e.将离心柱放在收集管中，将样品转移至离心柱中，在12000rpm下离心，弃滤液；

[0098] f.向离心柱中加入500μL Buffer WA，在12000rpm下离心1min，弃滤液；

[0099] g.向离心柱中加入700μL Buffer WB，在12000rpm下离心1min，弃滤液；

[0100] h.重复步骤g 1次；

[0101] i.将离心柱放在收集管中，在12000rpm下离心2min；

[0102] j.将离心柱放入一个新的1.5mL离心管中，加入100μL无菌水于柱膜中心，静置5min；

[0103] k.在12000rpm下离心2min，洗脱DNA；

[0104] l.收集DNA并进行检测。

[0105] PCR扩增的体系如表1所示：

[0106] 表1

[0107]组分 体积(μL)
正向引物 1
反向引物 1
PCR酶 1
模板 1
2×缓冲液 25
dNTPs(浓度为2mM) 10
水 11
总体积 50

[0108] 其中，正向引物的序列为SEQ ID No.3所示的核酸序列，反向引物的序列为SEQ ID No.4～5之一所示的核酸序列。

[0109] SEQ ID No.3：CAGAGCTTATCCACAAAGTCACC；

[0110] SEQ ID No.4：GCACCTCCAAAGAATATACAAGCAG；

[0111] SEQ ID No.5：CTGCAAAGGCTGACATGAAGG。

[0112] 正向引物的序列为SEQ ID No.3、反向引物的序列为SEQ ID No.4时扩增的程序如下：

[0113] 预变性：95℃孵育3min；

[0114] 循环扩增：95℃孵育15s；55℃孵育15s；68℃孵育420s；

[0115] 延伸：68℃孵育5min；

[0116] 循环的次数为35次。

[0117] 扩增产物在4℃下保存。

[0118] 正向引物的序列为SEQ ID No.3、反向引物的序列为SEQ ID No.5时扩增的程序如下：

[0119] 预变性：95℃孵育3min；

[0120] 循环扩增：95℃孵育15s；55℃孵育15s；68℃孵育30s；

[0121] 延伸：68℃孵育5min；

[0122] 循环的次数为35次。

[0123] 扩增产物在4℃下保存。

[0124] (3)将所述F0代与野生型C57BL/6小鼠交配，得到F1代杂合子小鼠；

[0125] (4)将所得F1代杂合子小鼠自交，采用步骤(2)中的体系与程序，使用SEQ ID No.3～5进行PCR扩增，并对扩增产物测序鉴定，筛选出F2代AHRR基因敲除的纯合子C57BL/6小鼠，即所述的肥胖动物模型。

[0126] 所述基因敲除小鼠的筛选的原理如图1所示：

[0127] 野生型小鼠的SEQ ID No.3/SEQ ID No.4扩增产物的大小为6425bp，若编辑后缺失了部分基因片段，则扩增产物片段的大小减小；因此野生型小鼠的SEQ ID No.3/SEQ ID No.4扩增产物的大小为6425bp，基因敲除纯合子小鼠的SEQ ID No.3/SEQ ID No.4的扩增产物小于6425bp，杂合子小鼠的SEQ ID No.3/SEQ ID No.4扩增产物中同时含有两条带；

[0128] 野生型小鼠的SEQ ID No.3/SEQ ID No.5扩增产物的大小为400bp，若编辑后缺失了部分基因片段，则缺失了部分基因片段的基因敲除纯合子小鼠无对应的扩增产物；因此野生型小鼠的SEQ ID No.3/SEQ ID No.5扩增产物的大小为400bp，基因敲除纯合子小鼠使用SEQ ID No.3/SEQ ID No.5无扩增产物，杂合子小鼠的SEQ ID No.3/SEQ ID No.5扩增产物的大小为400bp，但条带亮度较野生型小鼠弱。

[0129] 通过上述方法，本实施例成功构建了AHRR基因敲除的纯合子C57BL/6小鼠，即所述的肥胖动物模型。经测序鉴定，敲除片段为13号染色体上的74278006～74283456区域，长度为5451bp，并且在敲除的片段后插入了长度为7bp的片段。具体敲除的序列如SEQ ID No.6所示。

[0130] SEQ ID No.6：

[0131] gctactactcacaggacagacaatagtgttaacaaacacaggctagcccttctcacccagaaatccgatataagtgaactaaaatatcccataataaaagtgaactttagtgtaagtaaaaagttcaaggtcaaaagacaatattttatttggctgttctgagttttcatttctacgtagtgacctttcttttcctatgtgactggttactttttccttggtttcttttgcagagacctcttcctttacctgttgcataaacgtttccaaagattttgacttaacttctcgcgtggcaggtgttcctcttggctcatatgtcttccactacaacctataagggaaaagactcctaagcagctatacctcagtctctctcctaagcgccagagagggagacaggacatttccaactggtggtctgaaagcatcttcaatatgagcaaaacttgctcagcatttgccacctaaacatgttcctcttccggtttttctggaaaaacagtaattccatctactcaggtaccaaatcgtcaatgtctccagttggagagatttcttggactcttccctctgtgtgactccctgcctgccccactctgataattacatctgccagttctgccttctaaaatctatccagcaatcctcccagtttatccccacagtggtggtctaccttgctttaggtcctttccaccttttaccaggaccagtttctaatgattctgtttctccgtcttgcctcctatgcacaccaatttattgtccatgctgtagagaaagaaaactttttgaaagataatctgatcatgccacttgttggccccatagtaccctgagacactctcttcacaccacgctgtgattgaaggttttcctctctgtccgactcagcagtgccgactcagcagtgccgtactgtggatgactttgagccttcttaccactgtatccccagggcctaacacattagtgctgtgtgctaataaagacttgttgatcaaaggagtgaaactactttaatttaaatactttgttcttttaaaaatagaacataggagggtcaacataagagtaatctattttgtgagacaaagagagtacactgtttacattctatctattctataatgttttcttgtctaatgaattagaatacatacttttgaaaataaaaatatatttgtgaggtatcatttaatactagtgccacttacagttctagtctgcaaacaaatattttgttttaaacctctgaaattagtaacgtgtgactgagccttgtattctgttgctcaaatgagcattattttaacatttaaaatatatctcttacaattgtattattcttagttatggagatttttaattgaattatcataagcattatgaatcaacattttatttatttatttattttgagatggagtcttgctctgtcgcccaggctggagtgcagtggcatggtctcagctcactgcaacctctgcctcccaggttcaagcgatgctcttgcctcagactcctgagtagctggtactacaggtgtacaccaccatgcccagctaatttttgtaattttagtagagatgggttttgccatgttggccaggctgttctagaagtcctgacctcagatgatcctcccacgtcagcctcccaaagagctaggattacaggtgtaagccaatgtgtccaatcctatttttatatattctttaatgatgaatctatgttctatcaaaatacaattccttattgtctttaataattccattaaaaccacaaattttatattagtagttaattttaccatttaggatatgaccaacactcaaatctagttattcttaggcagaatgagagaaagtagaaagactgaagatattattattccataccttttatataacccagctttgatggatgtatggataaaatgaagccagaagcaaaggaaggagaatgatgtcacaaagacacgataaagatcccatggcggccgggtgcagtggctcacgcctgtaatcccagcactttgggaagcagaggtgggtggatcacaaggtcatgagatcgagaccatcctgtccaacatggtgaaaccccgtctctattaaaaatacaaaaattagctgggcgtggtggcacacacttgtagtcccagccacttgggaggctgaggcaggagaatcacttgaacctgggaggcagaggttgcagtgagccgagatcgtgccactgtactcctctagcctggcgacagagtgagactccatctcaaaacaaacaaacaaacaaacaaacaaaaccaatggcatctttaactttgcactgtcattgataatttatatgctaacacaaacagaattatgaaacacaactcatttagttatttatttaaatgaggtaataatggataggtttagaagtcttttctaaatataggaaaaaagatcaacttatttttaattgataggtttagaagtcttttctaaatataggaaaaaagatcaactgttttttaaataaaaataaggtaaaacttttaaaacaaaatttgttcaactatgtacagaatggttgcctacattccaatcattgtaaatcttaagcatgtgtgtctaaacagtaactctccatgataggttaaaatgactctcttccccattgatgaaaataagtgctacacctgcaaaacattttgttaccaatccaaattttttgttttccttgttggaggtggcactgaaacatgcttgtctgcataggcaggtgatgcttgctgcatccccccagtcaggaccaatgaccccttcagtgctgctgtagcaacctgcatagagctcgctcagggctttcctattacgtattattttatatgctggatatgtgtgaatgaggctgtctctcccaccagatttaggactccttgctgtcttcatttgtacacagcacccattacattcaaagagctgtgtgccaaacaagcactcaagagcagcctatttaattttatttaatgattaatgcttttggtccacatcttctcactggcttctaacaaaattttagtagactatggagaaagaccactctatgttaattaaagccttaaaaacagattaaagtctcttgctctctcattactttaccgtccctgaagggctgatgctgaacaggtaggtactgctgggtagacatgcataggagcacggttccagtgaagagagaagactcgtaggttatcagcaaactagtctgagaccagatataaggaaaagcataggctcgagagaaaccagagtttcaatcctggctctactgctttcctaatacctgcccatgtccacgtgccctaaccttgctcctttccagggatttacatgtgtgatgagtatatgtaaagcactcgaagaggtatgtttgtgttcaaaggtaaaaaagaaaacctgagattcacacaagtagtttgtctaagttcactaacaagttaggggccaaagagattgaaacttttgtctctggacttcaagtttggtgatatttctattatattttctaatgtctcagcagttaccaatatagctcatattcatgagctatttgatcaggacttacaaacaacttacggggagaggatttttccttgaaaaatgtcagtgtgctcttaaatgatttattatcttggcatcactaagcactatgctttatctaacaaggaacctagatgggggggtctgaaatggagctttatgtggaatgagctatttaattaatgaatacagatgtgaagtcatgaacagcagcactcactcgtctgaagttaagatctagcaaccacaagcacctgcgaacaaaaggccaccaggatgcacagctgtcacaaagcccctgattttctttgtaggaatatcctcaaaccacttcagaatctcatccagtaaatgaagatgaagattcaaattagaagcaagaaatactggaatagcagcaagaaatgatgaggcaagtaagaaagtgagaaaagacagaatctgcaatcatttaggatcgctatgtgtggaggggcgtgtgtacatatgtgtgtgtgcattccaaatatgtaatcaaatataattaatggaataaacatgtaatagtatttgatattaattacagagacttcattcatcaagagaaaaattattaaataatgtgtggtttcataaaggtagggaagatcatactctggaaaccattaaatcagaattgcttaatatttttaagtgtctatatgaataaacttccttaatgtacaaaattcagatatgaataattcctaagaaatgtgactaccttaagtttactaatttttaaggttagaggtgtatggctttcatatgaattaaaatgaatattatacaggattacctactgggcctcacaaatttatcagagaacagtatgtcaattggggatagaaaatatttccagattcatttgaacagactatttttacatattgtaattcctttgcaaaaaaaatttgattttatctttattttgccttttaaaaaattcatcattaaattgtaatattctgcagaacactgataatgtcagtgtcattgttccattttaatgtcatgtcatacatactgttagagttctagtttctcttcagaccctcttctagactagacccaacatctggttctggtgcaccatctagtggctgtaggaatcactgatgcctgaatgttacttgcttttactgcattgtagaaattactagagcatttattttttagaaaatagtgagaattctaaaaggcaaaaccaaattcacaaaattattttcttctaaaattcaaatgcaaatcagttaataagcaatagaactcttaacgtgagggaatccatagtgcataattgttttgtatagcacatatttaaatgaccatattaatttaaatggcaatgcatactcatttaagtactaatatttatttgtgaatatgcatatttatttaaatactctgtaaactgcttcatgtacagagacccacaatttagacagtggatataaataattaacctgctgacaataatgtgtatgtgatggctgagatatattttttcctttttttgacatgccttaaatgattaagcacaagcaggcattaataaactcattcaaaaatacttggtcacatcttcgtgttattatctaaactgtacactcatgaaaatatacttatttttaatttagaaaggcactcctcagcatttctttttctattctaaattctttgctaatatctagaaaatgtacctctttcaaatacctacaaatatgtttaagttactaagttgtaaataaaaagatgactgatcaggtacttatatggtacaaaaagatgaagcattaaaggcaaaattaactttctcaaagcaagtttctca。

[0132] 具体插入的序列如SEQ ID No.7所示。

[0133] SEQ ID No.7：CCTAACG。

[0134] 实施例5

[0135] 本实施例对实施例4筛选得到的AHRR基因敲除的纯合子C57BL/6小鼠进行PCR验证，扩增的体系和方法与实施例4相同，同时使用野生型小鼠进行相同的检测作为对照。

[0136] 鉴定的原理为：

[0137] 野生型小鼠的SEQ ID No.3/SEQ ID No.4扩增产物的大小为6425bp，若编辑后缺失了部分基因片段，则扩增产物片段的大小减小；因此野生型小鼠的SEQ ID No.3/SEQ ID No.4扩增产物的大小为6425bp，基因敲除纯合子小鼠的SEQ ID No.3/SEQ ID No.4扩增产物的大小为981bp；

[0138] 野生型小鼠的SEQ ID No.3/SEQ ID No.5扩增产物的大小为400bp，若编辑后缺失了部分基因片段，则缺失了部分基因片段的基因敲除纯合子小鼠无对应的扩增产物；因此野生型小鼠的SEQ ID No.3/SEQ ID No.5扩增产物的大小为400bp，基因敲除纯合子小鼠使用SEQ ID No.3/SEQ ID No.5无扩增产物。

[0139] 野生型小鼠的SEQ ID No.3/SEQ ID No.4扩增产物的琼脂糖凝胶电泳图片如图2A所示，野生型小鼠的SEQ ID No.3/SEQ ID No.5扩增产物的琼脂糖凝胶电泳图片如图2B所示；

[0140] AHRR基因敲除纯合子小鼠的SEQ ID No.3/SEQ ID No.4扩增产物的琼脂糖凝胶电泳图片如图3A所示，AHRR基因敲除纯合子小鼠的SEQ ID No.3/SEQ ID No.5扩增产物的琼脂糖凝胶电泳图片如图3B所示。

[0141] 由图2A、图2B、图3A和图3B可知，野生型小鼠的SEQ ID No.3/SEQ ID No.4扩增产物的大小为6425bp，而基因敲除纯合子小鼠的SEQ ID No.3/SEQ ID No.4扩增产物的大小为981bp；野生型小鼠的SEQ ID No.3/SEQ ID No.5扩增产物的大小为400bp，而基因敲除纯合子小鼠使用SEQ ID No.3/SEQ ID No.5无扩增产物，实验结果与预期相符，表明所得的纯合子突变体小鼠确实为AHRR基因敲除的纯合子小鼠。

[0142] 实施例6

[0143] 本实施例对实施例4筛选得到的AHRR基因敲除的纯合子C57BL/6小鼠进行肥胖表型的鉴定。

[0144] 将野生型C57BL/6小鼠和AHRR基因敲除的纯合子C57BL/6小鼠在相同的条件下进行饲养，8个月后，对小鼠的体重及脂肪重量进行统计学分析。

[0145] 图4A为AHRR基因敲除纯合子小鼠和野生型小鼠的外观对比图片，从图片可以明显看出，敲除AHRR基因的突变体纯合子小鼠的体型更大，体内脂肪含量较多，较为肥胖。

[0146] 随后，分别称取AHRR基因敲除纯合子小鼠和野生型小鼠的体重，并进行统计，结果如图4B所示。由图4B可知，AHRR基因敲除小鼠与野生型小鼠的体重呈现显著性差异，突变体小鼠的体重更重。

[0147] 断颈处死小鼠后，对小鼠进行解剖，取出小鼠体内的棕色脂肪进行称重，统计结果如图4C所示。由图4C可知，AHRR基因敲除的突变体小鼠的棕色脂肪重量明显高于野生型小鼠，并具有统计学意义。

[0148] 综合图4A、图4B和图4C，可知AHRR基因敲除的纯合子C57BL/6小鼠的外观、体重及体内棕色脂肪重量均显著高于野生型小鼠，具有明显的肥胖表型，表明本发明所述的肥胖动物模型的构建方法科学合理，真实可信。

[0149] 综上所述，本发明通过合成靶向AHRR基因的sgRNA组合，与Cas9核酸酶的mRNA组成了AHRR基因编辑系统；将所述AHRR基因编辑系统显微注射入C57BL/6小鼠受精卵的细胞核内，成功构建了重组细胞；再将重组细胞转移到代孕母鼠的体内，对出生的小鼠进行鉴定及筛选，成功筛选到了AHRR基因敲除的纯合子小鼠。所述基因突变纯合子小鼠的外观、体重及脂肪重量均明显高于野生型小鼠，可用于降糖、降脂相关药物的筛选中；所述肥胖动物模型的构建方法技术成熟，效率极高，用时较短，且降低了筛选的工作量，具有广泛的应用价值。

[0150] 申请人声明，本发明通过上述实施例来说明本发明的详细方法，但本发明并不局限于上述详细方法，即不意味着本发明必须依赖上述详细方法才能实施。所属技术领域的技术人员应该明了，对本发明的任何改进，对本发明产品各原料的等效替换及辅助成分的添加、具体方式的选择等，均落在本发明的保护范围和公开范围之内。