[0001] 相关申请的交叉引用

[0002] 本申请要求于2017年1月24日提交的美国临时申请号62/450,045和于2017年11月9日提交的美国临时申请号62/583,763的优先权，其各自的内容通过引用以其全文特此并入本文。

[0003] 节肢动物昆虫在人类环境中普遍存在，并且已经利用多种手段试图控制这些有害生物的侵染。对有害生物控制策略的需求正在增加。因此，本领域需要控制农业昆虫有害生物的新方法和组合物。

[0004] 本文披露了用于调节用于农业的昆虫的适合度的组合物和方法。该组合物包括药剂，该药剂改变寄宿于宿主中的一种或多种微生物的水平、活性或代谢，该改变导致宿主的适合度的调节。

[0005] 在一个方面，本文提供了降低农业昆虫有害生物的适合度的方法，该方法包括向该农业昆虫有害生物递送抗微生物肽，该抗微生物肽与以下的一种或多种具有至少90％序列同一性(例如，至少90％、92％、94％、96％、98％、或100％序列同一性)：杀菌肽(SEQ ID NO：82)、蜂毒素、copsin、果蝇抗真菌肽(SEQ ID NO：93)、皮离蛋白(SEQ ID NO：81)、果蝇抗菌肽(SEQ ID NO：83)、家蚕抗菌肽(SEQ ID NO：84)、无锡亚肽(SEQ ID NO：85)、蜜蜂肽(SEQ ID NO：86)、蜜蜂抗菌肽(SEQ ID NO：87)、猪抗菌肽(SEQ ID NO：88)、吲哚力西丁(SEQ ID NO：89)、抗菌肽(SEQ ID NO：90)、速普肽(SEQ ID NO：91)、或防御素(SEQ ID NO：92)。

[0006] 在一些实施例中，该递送可以包括递送该抗微生物肽至农业昆虫有害生物生长、生活、繁殖、进食或侵染的至少一个生境。

[0007] 在上述实施例的任一个中，该递送可以包括将该抗微生物肽喷洒在农作物上。

[0008] 在上述实施例的任一个中，可以将该抗微生物肽作为昆虫可食用组合物进行递送，用于被农业昆虫有害生物摄取。

[0009] 在上述实施例的任一个中，该抗微生物肽可与农业上可接受的载体一起配制为液体、固体、气溶胶、膏剂、凝胶、或气体组合物。

[0010] 在上述实施例的任一个中，该农业昆虫有害生物可以是蚜虫。

[0011] 在另一个方面，本文提供了组合物，该组合物包括抗微生物肽，该抗微生物肽与以下的一种或多种具有至少90％序列同一性(例如，至少90％、92％、94％、96％、98％、或100％序列同一性)：杀菌肽(SEQ ID NO：82)、蜂毒素、copsin、果蝇抗真菌肽(drosomycin)(SEQ ID NO：93)、皮离蛋白(SEQ ID NO：81)、果蝇抗菌肽(andropin)(SEQ ID NO：83)、家蚕抗菌肽(SEQ ID NO：84)、无锡亚肽(SEQ ID NO：85)、蜜蜂肽(abaecin)(SEQ ID NO：86)、蜜蜂抗菌肽(apidaecin)(SEQ ID NO：87)、猪抗菌肽(SEQ ID  NO：88)、吲哚力西丁
(indolicidin)(SEQ ID NO：89)、抗菌肽(SEQ ID NO：90)、速普肽(SEQ ID NO：91)、或防御素(SEQ ID NO：92)，将该组合物配制用于靶向在昆虫中的微生物。

[0012] 在第二方面的一些实施例中，该抗微生物肽在组合物中的浓度可以是约0.1ng/g至约100mg/g(约0.1ng/g至约1ng/g、约1ng/g至约10ng/g、约10ng/g至约100ng/g、约100ng/g至约1000ng/g、约1mg/g至约10mg/g、约10mg/g至约100mg/g)或者约0.1ng/mL至约100mg/mL(约0.1ng/mL至约1ng/mL、约1ng/mL至约10ng/mL、约10ng/mL至约100ng/mL、约100ng/mL至约1000ng/mL、约1mg/mL至约10mg/mL、约10mg/mL至约100mg/mL)。

[0013] 在第二方面的一些实施例中，该抗微生物肽可以进一步包括靶向结构域。

[0014] 在第二方面的一些实施例中，该抗微生物肽可以进一步包括细胞穿透肽。

[0015] 在另一个方面，该组合物包括改变寄宿于昆虫宿主中的一种或多种微生物的水平、活性或代谢的药剂，该改变导致该昆虫宿主的适合度降低。

[0016] 在上述组合物的任一个的一些实施例中，该一种或多种微生物可以是寄宿于宿主中的细菌或真菌。在一些实施例中，寄宿于宿主中的细菌是选自下组的至少一种，该组由以下组成：暂定属物种(Candidatus spp)、布赫纳氏菌属物种(Buchenera spp)、布拉特杆菌属物种(Blattabacterium spp)、鲍曼属物种(Baumania spp)、威格尔斯沃思氏菌属物种(Wigglesworthia spp)、沃尔巴克氏体属物种(Wolbachia spp)、立克次体属物种(Rickettsia spp)、东方体属物种(Orientia spp)、伴突属物种(Sodalis spp)、伯克霍尔德氏菌属物种(Burkholderia spp)、贪铜菌属物种(Cupriavidus spp)、弗兰克氏菌属物种(Frankia spp)、中华根瘤菌属物种(Snirhizobium spp)、链球菌属物种(Streptococcus spp)、沃廉菌属物种(Wolinella spp)、木杆菌属物种(Xylella spp)、欧氏杆菌属物种(Erwinia spp)、农杆菌属物种(Agrobacterium spp)、芽孢杆菌属物种(Bacillus spp)、类芽孢杆菌属物种(Paenibacillus spp)、链霉菌属物种(Streptomyces spp)、微球菌属物种(Micrococcus spp)、棒状杆菌属物种(Corynebacterium spp)、醋杆菌属物种
(Acetobacter spp)、蓝细菌属物种(Cyanobacteria spp)、沙门氏菌属物种(Salmonella spp)、红球菌属物种(Rhodococcus spp)、假单胞菌属物种(Pseudomonas spp)、乳杆菌属物种(Lactobacillus spp)、肠球菌属物种(Enterococcus spp)、产碱杆菌属物种
(Alcaligenes spp)、克雷伯氏菌属物种(Klebsiella spp)、类芽孢杆菌属物种
(Paenibacillus  spp)、节杆菌属物种(Arthrobacter spp)、棒状杆菌属物种
(Corynebacterium spp)、短杆菌属物种(Brevibacterium spp)、栖热菌属物种(Thermus spp)、假单胞菌属物种(Pseudomonas spp)、梭菌属物种(Clostridium spp)、以及埃希氏杆菌属物种(Escherichia spp)。在一些实施例中，寄宿于宿主中的真菌是选自下组的至少一种，该组由以下组成：假丝酵母属(Candida)、梅奇酵母属(Metschnikowia)、德巴利酵母属(Debaromyces)、Starmerella、毕赤酵母属(Pichia)、隐球菌属(Cryptococcus)、南极假丝酵母属(Pseudozyma)、Symbiotaphrina bucneri、Symbiotaphrina kochii、休哈塔假丝酵母(Scheffersomyces shehatae)、树干毕赤酵母(Scheffersomyces stipites)、隐球菌属(Cryptococcus)、毛孢子菌属(Trichosporon)、Amylostereum areolatum、香柱菌属物种(Epichloe spp)、松果毕赤酵母(Pichia pinus)、荚膜汉逊酵母(Hansenula capsulate)、Daldinia decipien、长喙壳属物种(Ceratocystis spp)、长喙壳菌属物种(Ophiostoma spp)、以及Attamyces bromatificus。在某些实施例中，该细菌是布赫纳氏菌属物种
(Buchnera spp.)，(例如，蚜虫布赫纳氏菌(Buchnera aphidcola)，一种蚜虫的内共生体)。

[0017] 在上述组合物的任一个中，该药剂(下文中也可称为调节剂)可以改变寄宿于宿主中的微生物的生长、分裂、生存力、代谢、和/或寿命。在上述实施例的任一个中，该调节剂可以降低寄宿于宿主中的一种或多种微生物的生存力。在一些实施例中，该调节剂增加寄宿于宿主中的一种或多种微生物的生长或生存力。

[0018] 在上述实施例的任一个中，该调节剂是噬菌体、多肽、小分子、抗生素、细菌、或其任何组合。

[0019] 在一些实施例中，该噬菌体结合寄宿于宿主中的细菌上的细胞表面蛋白。在一些实施例中，该噬菌体对寄宿于宿主中的细菌具有毒性。在一些实施例中，该噬菌体是选自下组的至少一种，该组由以下组成：肌尾噬菌体科(Myoviridae)、长尾噬菌体科(Siphoviridae)、短尾噬菌体科(Podoviridae)、脂毛噬菌体科(Lipothrixviridae)、古噬菌体科(Rudiviridae)、Ampullaviridae、Bicaudaviridae、Clavaviridae、覆盖噬菌体科(Corticoviridae)、囊状噬菌科(Cystoviridae)、纺锤形噬菌体科(Fuselloviridae)、Gluboloviridae、滴状病毒科(Guttaviridae)、丝状噬菌体科(Inoviridae)、光滑噬菌体科(Leviviridae)、微小噬菌体科(Microviridae)、芽生噬菌体科(Plasmaviridae)、以及复层病毒科(Tectiviridae)。

[0020] 在一些实施例中，该多肽是细菌素、R-型细菌素、根瘤富含半胱氨酸肽(nodule C-rich peptide)、抗微生物肽、溶素、或含菌细胞调节肽中的至少一种。

[0021] 在一些实施例中，该小分子是代谢物。

[0022] 在一些实施例中，该抗生素是广谱抗生素。在替代性实施例中，该抗生素是窄谱抗生素(例如，利福平)。

[0023] 在一些实施例中，该调节剂是天然存在的细菌。在一些实施例中，该细菌是选自下组的至少一种，该组由以下组成：Bartonella apis、Parasaccharibacter apium、Frischella perrara、Snodgrassella alvi、Gilliamela apicola、双歧杆菌属物种
(Bifidobacterium spp)、以及乳杆菌属物种(Lactobacillus spp)。在一些实施例中，该细菌是选自下组的至少一种，该组由以下组成：暂定属物种(Candidatus spp)、布赫纳氏菌属物种(Buchenera spp)、布拉特杆菌属物种(Blattabacterium spp)、鲍曼属物种(Baumania spp)、威格尔斯沃思氏菌属物种(Wigglesworthia spp)、沃尔巴克氏体属物种(Wolbachia spp)、立克次体属物种(Rickettsia spp)、东方体属物种(Orientia spp)、伴突属物种(Sodalis spp)、伯克霍尔德氏菌属物种(Burkholderia spp)、贪铜菌属物种(Cupriavidus spp)、弗兰克氏菌属物种(Frankia spp)、中华根瘤菌属物种(Snirhizobium spp)、链球菌属物种(Streptococcus spp)、沃廉菌属物种(Wolinella spp)、木杆菌属物种(Xylella spp)、欧氏杆菌属物种(Erwinia spp)、农杆菌属物种(Agrobacterium spp)、芽孢杆菌属物种(Bacillus spp)、类芽孢杆菌属物种(Paenibacillus spp)、链霉菌属物种
(Streptomyces spp)、微球菌属物种(Micrococcus  spp)、棒状杆菌属物种
(Corynebacterium  spp)、醋杆菌属物种(Acetobacter  spp)、蓝细菌属物种
(Cyanobacteria spp)、沙门氏菌属物种(Salmonella spp)、红球菌属物种(Rhodococcus spp)、假单胞菌属物种(Pseudomonas spp)、乳杆菌属物种(Lactobacillus spp)、肠球菌属物种(Enterococcus spp)、产碱杆菌属物种(Alcaligenes spp)、克雷伯氏菌属物种
(Klebsiella  spp)、类芽孢杆菌属物种(Paenibacillus  spp)、节杆菌属物种
(Arthrobacter spp)、棒状杆菌属物种(Corynebacterium spp)、短杆菌属物种
(Brevibacterium spp)、栖热菌属物种(Thermus spp)、假单胞菌属物种(Pseudomonas spp)、梭菌属物种(Clostridium spp)、以及埃希氏杆菌属物种(Escherichia spp)。

[0024] 在上述组合物的任一个中，宿主适合度可以通过宿主的存活、繁殖、或代谢来测量。在上述实施例的任一个中，该调节剂可以通过增加宿主的杀有害生物易感性(例如，对表12中列出的杀有害生物剂的易感性)来调节宿主的适合度。在一些实施例中，该调节剂通过增加宿主的杀有害生物易感性来调节宿主的适合度。在一些实施例中，该杀有害生物易感性是杀细菌易感性或杀真菌易感性。在一些实施例中，该杀有害生物易感性是杀昆虫易感性。

[0025] 在上述组合物的任一个中，该组合物可以包括多种不同的调节剂。在一些实施例中，该组合物包括调节剂和杀有害生物剂(例如，表12中列出的杀有害生物剂)。在一些实施例中，该杀有害生物剂是杀细菌剂或杀真菌剂。在一些实施例中，该杀有害生物剂是杀昆虫剂。

[0026] 在上述组合物的任一个中，该组合物可以包括调节剂和提高作物生长的药剂。

[0027] 在上述组合物的任一个中，该调节剂可以连接至第二部分。在一些实施例中，该第二部分是调节剂。

[0028] 在上述组合物的任一个中，该调节剂可以连接至靶向结构域。在一些实施例中，该靶向结构域将调节剂靶向宿主中的靶位点。在一些实施例中，该靶向结构域将调节剂靶向寄宿于宿主中的一种或多种微生物。

[0029] 在上述组合物的任一个中，该调节剂可以包括失活的前序列(pre-sequence或pro-sequence)，从而形成前体调节剂。在一些实施例中，该前体调节剂在宿主中转化为活性形式。

[0030] 在上述组合物的任一个中，该调节剂可以包括接头。在一些实施例中，该接头是可裂解接头。

[0031] 在上述组合物的任一个中，该组合物可以进一步包括载体。在一些情况下，该载体可以是农业上可接受的载体。

[0032] 在上述组合物的任一个中，该组合物可以进一步包括宿主诱饵、粘性剂、或其组合。在一些实施例中，该宿主诱饵是可食用药剂和/或化学引诱剂。

[0033] 在上述组合物的任一个中，该组合物可以是处于有效调节宿主适合度的剂量。

[0034] 在上述组合物的任一个中，可以将该组合物配制用于向寄生于宿主的肠中的微生物进行递送。

[0035] 在上述组合物的任一个中，可以将该组合物配制用于向寄生于宿主的含菌细胞中和/或宿主的肠中的微生物进行递送。在一些实施例中，可以将该组合物配制用于向植物进行递送。在一些实施例中，可以将该组合物配制用于在宿主进食站中使用。

[0036] 在上述组合物的任一个中，可以将该组合物配制为液体、粉剂、粒剂或纳米颗粒。在一些实施例中，将该组合物配制为选自下组的一种，该组由以下组成：脂质体、聚合物、细菌分泌肽、以及合成纳米胶囊。在一些实施例中，该合成纳米胶囊向宿主中的靶位点递送组合物。在一些实施例中，该靶位点是宿主的肠。在一些实施例中，该靶位点是宿主中的含菌细胞。

[0037] 在又另一方面，本文还提供了包括上述组合物的任一个的宿主。在一些实施例中，该宿主是昆虫。在一些实施例中，该昆虫是属于以下的物种：鞘翅目(Coleoptera)、双翅目(Diptera)、半翅目(Hemiptera)、鳞翅目、直翅目(Orthoptera)、缨翅目(Thysanoptera)或蜱螨目(Acarina)。在一些实施例中，该昆虫是甲虫、象鼻虫、蝇、蚜虫、粉虱、叶蝉(leafhopper)、介壳虫、蛾、蝴蝶、蚱蜢、蟋蟀、蓟马、或螨(mite)。在某些实施例中，该昆虫是蚜虫。

[0038] 在另外的方面，本文还提供了用于调节宿主的适合度的系统，该系统包含靶向宿主的适合度所需的微生物的调节剂，其中该系统对于调节该宿主的适合度是有效的，并且其中该宿主是昆虫。该调节剂可以包括本文所述的组合物的任一个。在一些实施例中，将该调节剂配制为粉剂。在一些实施例中，将该调节剂配制为溶剂。在一些实施例中，将该调节剂配制为浓缩物。在一些实施例中，将该调节剂配制为稀释剂。在一些实施例中，通过将先前组合物的任一个与载体组合来制备该调节剂用于递送。

[0039] 在又另外的方面，本文还提供了使用本文所述的组合物的任一个来调节昆虫的适合度的方法。在一个情况下，调节昆虫宿主的适合度的方法包括向宿主递送如先前权利要求中任一项所述的组合物，其中该调节剂靶向寄宿于宿主中的一种或多种微生物，从而调节宿主的适合度。在另一个情况下，调节昆虫宿主中的微生物多样性的方法包括向宿主递送如先前权利要求中任一项所述的组合物，其中该调节剂靶向寄宿于宿主中的一种或多种微生物，从而调节宿主中的微生物多样性。

[0040] 在上述方法的任一个的一些实施例中，该调节剂可以改变寄宿于宿主中的一种或多种微生物的水平。在上述方法的任一个的一些实施例中，该调节剂可以改变寄宿于宿主中的一种或多种微生物的功能。在一些实施例中，该一种或多种微生物可以是细菌和/或真菌。在一些实施例中，该一种或多种微生物是宿主适合度所需的。在一些实施例中，该一种或多种微生物是宿主存活所需的。

[0041] 在上述方法的任一个的一些实施例中，递送步骤可以包括以足以影响一种或多种微生物的剂量和时间来提供调节剂，从而调节宿主中的微生物多样性。在一些实施例中，该递送步骤包括将先前组合物的任一个局部施用至植物。在一些实施例中，该递送步骤包括通过基因工程化的植物来提供调节剂。在一些实施例中，该递送步骤包括将调节剂作为食物提供给宿主。在一些实施例中，该递送步骤包括提供携带调节剂的宿主。在一些实施例中，携带调节剂的宿主可以将调节剂传播给一种或多种另外的宿主。

[0042] 在上述方法的任一个的一些实施例中，该组合物可以有效增加宿主对杀有害生物剂(例如，表12中列出的杀有害生物剂)的敏感性。在一些实施例中，在递送调节剂之前，宿主对杀有害生物剂具有抗性。在一些实施例中，该杀有害生物剂是化感剂。在一些实施例中，该化感剂是咖啡因、大豆半胱氨酸蛋白酶抑制剂(soyacystatin)N、单萜类、二萜酸、或酚类化合物。在一些实施例中，该组合物对于选择性地杀死宿主是有效的。在一些实施例中，该组合物对于降低宿主适合度是有效的。在一些实施例中，该组合物对于降低宿主中必需氨基酸和/或维生素的产量是有效的。

[0043] 在上述方法的任一个的一些实施例中，该宿主是昆虫。在一些实施例中，该昆虫是属于以下的物种：鞘翅目(Coleoptera)、双翅目(Diptera)、半翅目(Hemiptera)、鳞翅目、直翅目(Orthoptera)、缨翅目(Thysanoptera)或蜱螨目(Acarina)。在一些实施例中，该昆虫是甲虫、象鼻虫、蝇、蚜虫、粉虱、叶蝉(leafhopper)、介壳虫、蛾、蝴蝶、蚱蜢、蟋蟀、蓟马、或螨(mite)。在某些实施例中，该昆虫是蚜虫。

[0044] 在上述方法中的任一种的一些实施例中，该递送步骤包括将先前组合物的任一个递送至植物。在一些实施例中，该植物是农作物。在一些实施例中，该作物在递送时是未收获的作物。在一些实施例中，该作物在递送时是已收获的作物。在一些实施例中，该作物包含已收获的水果或蔬菜。在一些实施例中，该组合物以有效增加作物生长的量和持续时间递送。在一些实施例中，该作物包括玉米、大豆或小麦植物。

[0045] 在另外的方面，本文还提供了筛选测定以鉴定调节宿主适合度的调节剂。在一个情况下，鉴定调节宿主适合度的调节剂的筛选测定包括以下步骤：(a)将可能寄宿于宿主中的微生物暴露于一种或多种候选调节剂下，和(b)鉴定降低宿主适合度的调节剂。

[0046] 在筛选测定的一些实施例中，该调节剂是寄宿于宿主中的微生物。在一些实施例中，该微生物是细菌。在一些实施例中，当寄宿于宿主中时，该细菌降低宿主适合度。在筛选测定的一些实施例中，该调节剂影响降解化感物质的微生物。在一些实施例中，该调节剂是噬菌体、抗生素、或测试化合物。在一些实施例中，该抗生素是特美汀、利福平或阿奇霉素。

[0047] 在筛选测定的一些实施例中，该宿主可以是无脊椎动物。在一些实施例中，该无脊椎动物是昆虫。在一些实施例中，该昆虫是蚜虫。在一些实施例中，该昆虫是蚊子。在一些实施例中，该昆虫是蟋蟀。

[0048] 在筛选测定的上述实施例的任一个中，宿主适合度可以通过调节宿主微生物区系来调节。

[0049] 定义

[0050] 如本文所用的，术语“细菌素”是指具有抗微生物特性的肽或多肽。天然存在的细菌素是由某些原核生物产生的，并且对抗与生产菌株相关的生物，但不针对生产菌株本身。本文所预期的细菌素包括但不限于天然存在的细菌素(如由细菌产生的细菌素)及其衍生物(如工程化的细菌素、重组表达的细菌素、以及化学合成的细菌素)。在一些情况下，该细菌素是本文所述的细菌素的功能活性变体。在一些情况下，该细菌素的变体例如在指定区域或整个序列上与本文所述的细菌素或天然存在的细菌素的序列具有至少70％、71％、
72％、73％、74％、75％、76％、77％、78％、79％、80％、81％、82％、83％、84％、85％、86％、
87％、88％、89％、90％、91％、92％、93％、94％、95％、96％、97％、98％、或99％同一性。

[0051] 如本文所用的，术语“含菌细胞”是指在某些昆虫中发现的特化细胞，其中细胞内细菌具有共生细菌的特性。

[0052] 如本文所用的，术语“有效量”是指足以影响以下所列举的结果的调节剂(例如，噬菌体、溶素、细菌素、小分子、或抗生素)或组合物(包括所述药剂)的量：例如，降低或减少宿主生物(例如，昆虫)的适合度；达到靶宿主内调节剂浓度的靶水平(例如，预定或阈值水平)；达到靶宿主肠道内调节剂浓度的靶水平(例如，预定或阈值水平)；达到靶宿主含菌细胞内调节剂浓度的靶水平(例如，预定或阈值水平)；调节靶宿主中一种或多种微生物(例如，内共生体)的水平或活性。

[0053] 如本文所用的，术语“适合度”是指宿主生物存活、生长和/或产生存活后代的能力。生物的适合度可以通过一个或多个参数来测量，包括但不限于寿限、繁殖速率、迁移、体重、以及代谢速率。适合度可以另外基于活性(例如，咬人动物或人)或疾病传播(例如，媒介-媒介传播或媒介-动物传播)的测量值来测量。

[0054] 如本文所用的，术语“肠”是指宿主肠的任何部分，包括宿主的前肠、中肠、或后肠。

[0055] 如本文所用的，术语“宿主”是指携带寄宿微生物(例如，内源微生物、内共生微生物(例如，原生或次生内共生体)、共栖生物、和/或致病微生物)的生物(例如，昆虫)。

[0056] 如本文所用的，“降低宿主适合度”或“减少宿主适合度”是指由于给予调节剂而对宿主生理学或所述宿主进行的任何活动的任何破坏，包括但不限于以下所希望作用的任何一种或多种：(1)使宿主的群体降低约10％、20％、30％、40％、50％、60％、70％、80％、90％、95％、99％、100％或更多；(2)使宿主(例如，昆虫)的繁殖速率降低约10％、20％、30％、
40％、50％、60％、70％、80％、90％、95％、99％、100％或更多；(3)使宿主(例如，昆虫)的迁移降低约10％、20％、30％、40％、50％、60％、70％、80％、90％、95％、99％、100％或更多；
(4)使宿主(例如，昆虫)的体重降低约10％、20％、30％、40％、50％、60％、70％、80％、90％、
95％、99％、100％或更多；(5)使宿主(例如，昆虫)的代谢速率或活性降低约10％、20％、
30％、40％、50％、60％、70％、80％、90％、95％、99％、100％或更多；或(6)使宿主(例如，昆虫)对植物的侵染降低约10％、20％、30％、40％、50％、60％、70％、80％、90％、95％、99％、
100％或更多。相比于未给予调节剂的宿主生物，可以确定宿主适合度的降低。

[0057] 术语“昆虫”包括在任何发育阶段(即，未成熟昆虫和成虫昆虫)的属于节肢动物门以及属于昆虫纲(Insecta)或蛛形纲(Arachnida)的任何生物。

[0058] 如本文所用的，“溶素”(也称为内溶素、自溶素、胞壁质水解酶、肽聚糖水解酶、或细胞壁水解酶)是指可以通过裂解细菌细胞壁中的肽聚糖来溶解细菌的水解酶。本文所预期的溶素包括但不限于天然存在的溶素(如由噬菌体产生的溶素、由细菌产生的溶素)及其衍生物(如工程化的溶素、重组表达的溶素、以及化学合成的溶素)。细菌素的功能活性变体可以例如在指定区域或整个序列上与包括任何本文所述的合成的、重组的或天然衍生的细菌素的序列具有至少70％、71％、72％、73％、74％、75％、76％、77％、78％、79％、80％、81％、82％、83％、84％、85％、86％、87％、88％、89％、90％、91％、92％、93％、94％、95％、
96％、97％、98％、或99％同一性。

[0059] 如本文所用的，术语“微生物”是指细菌或真菌。微生物可以是指寄宿于宿主生物(例如，内源性微生物、内共生微生物(例如，原生或次生内共生体))的微生物或者对宿主为外源的微生物，包括那些可充当调节剂的微生物。如本文所用的，术语“靶微生物”是指寄宿于宿主中的并且直接或间接地受调节剂影响的微生物。

[0060] 如本文所用的，该术语“药剂”或“调节剂”是指能够改变寄宿于宿主生物(例如，昆虫)中的微生物的水平和/或功能，并且从而调节(例如，降低)宿主生物(例如，昆虫)的适合度的药剂。

[0061] 如本文所用的，术语“杀有害生物剂(pesticide或pesticidal agent)”是指可用于控制农业有害生物、环境有害生物、和家养/家居有害生物，如昆虫、真菌、细菌、和病毒的物质。术语“杀有害生物剂”被理解为涵盖天然存在的或合成的杀昆虫剂(杀幼虫剂或杀成虫剂(adulticides)、昆虫生长调节剂、杀螨剂(杀螨药)、杀线虫剂、杀外寄生物药、杀细菌剂、杀真菌剂、或除草剂(可用于农业以控制或改变植物生长的物质)。杀有害生物剂(pesticide或pesticidal agent)的另外的实例列于表12中。在一些情况下，该杀有害生物剂是化感物质。如本文所用的，“化感物质”或“化感剂”是由生物产生的物质，该生物可以影响另一种生物(例如，宿主昆虫)的生理功能(例如，萌发、生长、存活或繁殖)。

[0062] 如本文所用的，术语“肽”、“蛋白质”或“多肽”涵盖天然或非天然存在的氨基酸(D-或L-氨基酸)的任何链，无论长度(例如，至少2、3、4、5、6、7、10、12、14、16、18、20、25、30、40、50、100或更多个氨基酸)、存在或不存在翻译后修饰(例如，糖基化或磷酸化)、或存在例如与肽共价连接的一个或多个非氨基酰基基团(例如，糖、脂质等)，并且包括例如天然蛋白、合成的或重组的多肽和肽、杂交分子、类肽或模拟肽。

[0063] 如本文所用的，两个序列之间的“百分比同一性”通过BLAST 2.0算法(描述于Altschul等人，(1990)J.Mol.Biol.[分子生物学杂志]215：403-410)确定。用于进行BLAST分析的软件可通过美国国家生物技术信息中心(National Center for Biotechnology Information)公开获得。

[0064] 如本文所用的，术语“细菌噬菌体”或“噬菌体”是指在细菌中感染和复制的病毒。细菌噬菌体在将它们的基因组注射进入细胞质后在细菌内进行复制，并使用导致细菌细胞溶解的裂解性周期或使细菌细胞保持完整的溶原性(非裂解性)周期进行复制。噬菌体可以是天然存在的噬菌体分离物，或工程化的噬菌体，包括媒介或编码部分噬菌体基因组(例如，包括在宿主细菌内进行噬菌体生命周期所必需的至少所有的必需基因)或完整噬菌体基因组的核酸。

[0065] 如本文所用的，术语“植物”是指整株植物、植物器官、植物组织、种子、植物细胞、种子、以及它们的子代。植物细胞包括但不限于来自种子、悬浮培养物、胚、分生组织区域、愈伤组织、叶、根、枝、配子体、孢子体、花粉、以及小孢子的细胞。植物部分包括分化的和未分化的组织，包括但不限于以下：根、茎、枝、叶、花粉、种子、肿瘤组织、以及各种形式的细胞和培养物(例如，单细胞、原生质体、胚、以及愈伤组织)。植物组织可以在植物中或在植物器官、组织或细胞培养物中。此外，植物可以被基因工程化以产生例如本文所述的方法或组合物中的调节剂的任一个的异源蛋白或RNA。

[0066] 从以下详细说明以及权利要求中，本发明的其他特征和优点将会是显而易见的。

[0067] 附图翻译

[0068] 附图旨在说明本发明的一个或多个特征、方面或实施例，而非旨在进行限制。

[0069] 图1A-1G显示了不同抗生素递送系统的图像。通过植物递送(图1A)、叶涂层递送(图1B)、显微注射递送(图1C)、局部递送(图1D)、叶灌注和切割递送(图1E)、叶灌注和通过植物递送(图1F)、以及喷洒植物和蚜虫两者和通过植物递送的组合处理(图1G)，用不同的治疗溶液处理第一龄LSR-1蚜虫。

[0070] 图2A-2C显示了通过植物递送、用以下三种不同条件处理的第一龄LSR-1蚜虫中在利福平处理期间蚜虫发育的延迟：不含必需氨基酸的人工饲料(仅AD)，含有100μg/ml利福平但不含必需氨基酸的人工饲料(AD+Rif)，以及含有100μg/ml利福平和必需氨基酸的人工饲料(AD+Rif+EAA)。图2A是显示在每个发育阶段的活蚜虫百分比的一系列图(样品大小＝33只蚜虫/组)。图2B显示了来自每个在第12天进行的处理的代表性图像。比例尺2.5mm。图
2C显示了来自蚜虫体的面积测量值，这些测量值显示了利福平处理的显著作用。将必需氨基酸添加回来可部分挽救发育缺陷。

[0071] 图3显示了利福平处理导致蚜虫死亡。每天监测通过植物递送用不含必需氨基酸的人工饲料(仅AD)、含有100ug/ml利福平但不含必需氨基酸的人工饲料(AD+Rif)以及含有100ug/ml利福平和(AD+Rif+EAA)的人工饲料处理的LSR-1蚜虫的存活。括号中的数字代表每组中的蚜虫数量。通过对数秩检验确定统计学显著性，并确定以下统计学显著差异：仅AD对比AD+Rif，p＜0.0001；以及AD+Rif对比AD+Rif+EAA，p＝0.017。

[0072] 图4是显示利福平处理导致蚜虫繁殖丧失的图。通过植物递送，用不含必需氨基酸的人工饲料(仅AD)、含有100ug/ml利福平但不含必需氨基酸的人工饲料(AD+Rif)以及含有100ug/ml利福平和(AD+Rif+EAA)的人工饲料处理第一龄LSR-1蚜虫，并测量蚜虫到达成虫期后每天产生的后代的数量。显示了蚜虫到达成虫期后每天产生的后代的平均数±S.D.。

[0073] 图5是显示利福平处理消除内共生布赫纳氏菌(Buchnera)的图。在处理后7天确定不同条件下的共生体效价。从蚜虫中提取DNA并进行qPCR以确定布赫纳氏菌DNA与蚜虫DNA的比率。显示了每组3只蚜虫的布赫纳氏菌DNA与蚜虫DNA的平均比率±SD。使用单因素方差分析(one-way-ANOVA)，随后通过图基事后检验法(Tukey’s Post-Test)确定统计学显著差异；*，p＜0.05。

[0074] 图6A和6B显示了通过叶涂层递送的利福平处理延迟了蚜虫发育。通过用100μl的以下两种不同溶液涂覆叶来处理第一龄eNASCO蚜虫：溶剂对照(0.025％Silwet L-77)和50μg/ml利福平。图6A是显示随时间推移每种条件下的发育阶段的一系列图。显示了在每个发育阶段的活蚜虫百分比(样品大小＝20只蚜虫/组)。图6B是显示来自蚜虫体的面积测量值的图，这些测量值显示了涂覆有利福平的叶对蚜虫大小的显著作用。使用单因素方差分析(one-way-ANOVA)，随后通过图基事后检验法(Tukey’s Post-Test)确定统计学显著差异；*，p＜0.05。

[0075] 图7显示了通过叶涂层递送的利福平处理导致蚜虫死亡。每天监测通过用100μl的以下两种不同溶液涂覆叶来处理的eNASCO蚜虫的存活：溶剂对照(Silwet L-77)和50μg/ml利福平。处理影响蚜虫的存活率。

[0076] 图8显示了通过叶涂层递送的利福平处理消除内共生布赫纳氏菌。在处理后6天确定两种条件下的共生体效价。从蚜虫中提取DNA并进行qPCR以确定布赫纳氏菌DNA与蚜虫DNA的比率。显示了布赫纳氏菌DNA与蚜虫DNA的平均比率±SD。使用单因素方差分析(one-way-ANOVA)，随后通过图基事后检验法(Tukey’s Post-Test)确定统计学显著差异；*，p＜0.05。

[0077] 图9是显示通过显微注射的利福平处理消除内共生布赫纳氏菌的图。在指定条件下注射后4天确定共生体效价。对照样品是溶剂：前面描述的0.025％Silwet L-77。从蚜虫中提取DNA并进行qPCR以确定布赫纳氏菌DNA与蚜虫DNA的比率。显示了布赫纳氏菌DNA与蚜虫DNA的平均比率±SD。使用单因素方差分析(one-way-ANOVA)，随后通过图基事后检验法(Tukey’s Post-Test)确定统计学显著差异；*，p＜0.05。

[0078] 图10是显示通过局部处理递送的利福平处理消除内共生布赫纳氏菌的图。用以下喷雾后3天确定共生体效价：溶剂(silwet L-77)或在溶剂中稀释的利福平溶液。从蚜虫中提取DNA并进行qPCR以确定布赫纳氏菌DNA与蚜虫DNA的比率。显示了布赫纳氏菌DNA与蚜虫DNA的平均比率±SD。使用单因素方差分析(one-way-ANOVA)，随后通过图基事后检验法(Tukey’s Post-Test)确定统计学显著差异；*，p＜0.05。

[0079] 图11显示了一组图，这些图证明将第1龄和第2龄LSR-1蚜虫放置在用水加食用色素或在水加食用色素中的50μg/ml利福平灌注的叶上。随时间推移测量每种条件下的发育阶段。显示了在每个发育阶段的活蚜虫百分比(样品大小＝74-81只蚜虫/组)。

[0080] 图12显示了证明第1龄和第2龄LSR-1蚜虫的存活的图，这些蚜虫被放置在用水加食用色素或在水加食用色素中的50μg/ml利福平灌注的叶上。括号中的数字代表每组中的蚜虫数量。通过对数秩检验确定统计学显著性。

[0081] 图13显示了证明用水和食用色素、或利福平加水和食用色素灌注的叶在处理后8天确定的共生体效价的图。从蚜虫中提取DNA并进行qPCR以确定布赫纳氏菌DNA与蚜虫DNA的比率。显示了布赫纳氏菌DNA与蚜虫DNA的平均比率±SD。框中的数字指示实验组的中位数。

[0082] 图14显示了一组图，这些图证明通过叶注射和通过植物用水加食用色素或水加食用色素中100μg/ml利福平处理的第1龄和第2龄LSR-1蚜虫。随时间推移测量每种条件下的发育阶段。显示了在每个发育阶段的活蚜虫百分比(样品大小＝49-50只蚜虫/组)。

[0083] 图15是证明第1龄和第2龄LSR-1蚜虫的存活的图，这些蚜虫被放置在用水加食用色素或在水加食用色素中的100μg/ml利福平灌注和处理的叶上。括号中的数字代表每组中的蚜虫数量。进行对数秩检验并确定组间没有统计学显著差异。

[0084] 图16A和16B是显示在以用水和食用色素或利福平加水和食用色素灌注和处理的叶为食的蚜虫中，在处理后6天(16A)和8天(16B)确定的共生体效价的图。从蚜虫中提取DNA并进行qPCR以确定布赫纳氏菌DNA与蚜虫DNA的比率。显示了布赫纳氏菌DNA与蚜虫DNA的平均比率±SD。框中的数字指示实验组的中位数。

[0085] 图17是一组图，这些图显示用对照溶液(水和Silwet L-77)或含有100μg/ml利福平处理的组合来处理第1龄和第2龄LSR-1蚜虫。随时间推移测量每种条件下的发育阶段。显示了在每个发育阶段的活蚜虫百分比(样品大小＝76-80只蚜虫/组)。

[0086] 图18是显示用含有利福平的处理组合的对照溶液来处理第1龄和第2龄LSR-1蚜虫的图。括号中的数字代表每组中的蚜虫数量。进行对数秩检验并确定组间没有统计学显著差异。

[0087] 图19是显示用对照或利福平溶液处理后7天确定的共生体效价的图。从蚜虫中提取DNA并进行qPCR以确定布赫纳氏菌DNA与蚜虫DNA的比率。显示了布赫纳氏菌DNA与蚜虫DNA的平均比率±SD。框中的数字指示实验组的中位数。通过t检验确定统计学显著差异。

[0088] 图20是显示壳聚糖递送系统的图像。如图所示，通过叶灌注递送和通过植物递送，用治疗溶液处理豌豆长管蚜(A.pisum)蚜虫。

[0089] 图21是一组图，这些图显示壳聚糖处理导致蚜虫发育延迟。用对照溶液(水)和在水中的300ug/ml壳聚糖通过植物递送和叶灌注递送来处理第一龄和第二龄豌豆长管蚜蚜虫。在整个实验过程中监测发育阶段。显示了每个处理组在每个发育阶段(第1龄、第2龄、第3龄、第4龄、第5龄、或代表繁殖第5龄的5R)的蚜虫百分比。

[0090] 图22是显示用壳聚糖处理后昆虫存活降低的图。通过植物递送和叶灌注递送，仅用水或壳聚糖溶液处理第一龄和第二龄豌豆长管蚜蚜虫，并且在实验过程中每天监测存活。括号中的数字代表处理组中的蚜虫总数。

[0091] 图23是显示用壳聚糖处理减少了内共生布赫纳氏菌的图。用水或在水中的300ug/ml壳聚糖通过植物递送和叶灌注递送来处理第一龄和第二龄豌豆长管蚜蚜虫。在处理后8天，从蚜虫中提取DNA并进行qPCR以确定布赫纳氏菌DNA与蚜虫DNA的比率。显示了每组6只蚜虫的布赫纳氏菌DNA与蚜虫DNA的平均比率±SD。每组的中位数值显示在框中。

[0092] 图24是一组图，这些图显示用乳链菌肽处理导致蚜虫发育延迟。通过叶注射递送和通过植物递送，用水(对照)或者1.6mg/ml或7mg/ml乳链菌肽处理第一龄和第二龄LSR-2豌豆长管蚜蚜虫，并且随时间推移测量发育。显示了在指定时间点的每个生命阶段(第1龄、第2龄、第3龄、第4龄、第5龄、或5R龄(繁殖第5龄))的蚜虫百分比。N＝56-59只蚜虫/组。

[0093] 图25是显示用乳链菌肽处理后昆虫存活的剂量依赖性降低的图。通过叶注射递送和通过植物递送，用水(对照)或者1.6mg/ml或7mg/ml乳链菌肽处理第一龄和第二龄LSR-1豌豆长管蚜蚜虫，并且随时间推移监测存活。括号中的数字指示每组中的蚜虫数量。通过对数秩(Mantel-Cox)检验确定统计学显著差异。

[0094] 图26是显示用乳链菌肽处理减少了内共生布赫纳氏菌的图。通过叶注射递送和通过植物递送，用水(对照)或1.6mg/ml乳链菌肽处理第一龄和第二龄LSR-1豌豆长管蚜蚜虫，并且在处理后八天从选择的蚜虫中提取DNA并用于qPCR以确定布赫纳氏菌拷贝数。显示了每种处理的布赫纳氏菌/蚜虫的平均比率+/-SEM。每个实验组上方框中的数字指示该组的中位数值。每个数据点代表单个蚜虫。

[0095] 图27是一组图，这些图显示用乙酰丙酸处理导致蚜虫发育延迟。通过叶注射递送和通过植物递送，用水(对照)或者0.03％或0.3％乙酰丙酸处理第一龄和第二龄eNASCO豌豆长管蚜蚜虫，并且随时间推移测量发育。显示了在指定时间点的每个生命阶段(第1龄、第2龄、第3龄、第4龄和第5龄)的蚜虫百分比。N＝57-59只蚜虫/组。

[0096] 图28是显示用乙酰丙酸处理后昆虫存活降低的图。通过叶注射递送和通过植物递送，用水(对照)或者0.03％或0.3％乙酰丙酸处理第一龄和第二龄eNASCO豌豆长管蚜蚜虫，并且随时间推移监测存活。N＝57-59只蚜虫/组。通过对数秩(Mantel-Cox)检验确定统计学显著差异；**，p＜0.01。

[0097] 图29是一组图，这些图显示用乙酰丙酸处理减少了内共生布赫纳氏菌。通过叶注射递送和通过植物递送，用水(对照)或者0.03％或0.3％乙酰丙酸处理第一龄和第二龄eNASCO豌豆长管蚜蚜虫，并且在处理后七天和八天从选择的蚜虫中提取DNA并用于qPCR以确定布赫纳氏菌拷贝数。显示了每种处理的布赫纳氏菌/蚜虫的平均比率+/-SEM。通过单因素方差分析(One-Way ANOVA)与邓尼特多重比较检验(Dunnett’s Multiple Comparison Test)确定统计学显著差异；*，p＜0.05。每个数据点代表单个蚜虫。

[0098] 图30A和30B显示了证明棉酚处理导致蚜虫发育延迟的图。通过植物递送，用不含必需氨基酸的人工饲料(仅AD)和含有不同浓度的棉酚(0.05％，0.25％和0.5％)但不含必需氨基酸的人工饲料处理第一龄和第二龄豌豆长管蚜蚜虫。在整个实验过程中监测发育阶段。图30A是一系列图，这些图显示了每个处理组在每个发育阶段(第1龄、第2龄、第3龄、第4龄、第5龄、或代表繁殖第5龄的5R)的蚜虫平均数。在指定时间，对蚜虫进行成像，并使用Image J确定它们的大小。图30B是显示人工饲料处理的(对照)或棉酚处理的蚜虫的平均蚜虫面积±SD的图。使用单因素方差分析(One-WayANOVA)，随后通过图基事后检验法(Tukey’s post-test)确定统计学显著性。*，p＜0.05。**，p＜0.01。

[0099] 图31是显示用化感物质棉酚处理后蚜虫存活的剂量依赖性降低的图。通过植物递送，用不含必需氨基酸的人工饲料(AD无EAA)，含有0.5％棉酚乙酸但不含必需氨基酸的人工饲料(0.5％棉酚)，含有0.25％棉酚乙酸但不含必需氨基酸的人工饲料(0.25％棉酚)，以及含有0.05％棉酚乙酸但不含必需氨基酸的人工饲料(0.05％棉酚)处理第一龄和第二龄豌豆长管蚜蚜虫，并且在实验过程中每天监测存活。括号中的数字代表每组中蚜虫的必需氨基酸数量。通过对数秩检验确定统计学显著差异，并且AD无EAA和0.5％棉酚具有显著差异，p＝0.0002。

[0100] 图32A和32B是两张显示用0.25％棉酚处理导致繁殖力降低的图。通过植物递送，用不含必需氨基酸的人工饲料(AD5-2无EAA)，或含有0.25％棉酚乙酸但不含必需氨基酸的人工饲料(AD5-2无EAA+0.25％棉酚)处理第一龄和第二龄豌豆长管蚜蚜虫，并且在整个实验过程中确定繁殖力。图32A显示了测量蚜虫开始产生后代的平均天数±SD，以及棉酚处理延迟了后代的产生。图32B显示了测量在蚜虫成为繁殖成虫后产生的后代的平均数±SD，以及棉酚处理导致产生的后代数量降低。每个数据点代表一只蚜虫。

[0101] 图33是显示用不同浓度的棉酚处理减少了内共生布赫纳氏菌的图。通过植物递送，用不含必需氨基酸的人工饲料(对照)或者含有0.5％、0.25％、或0.05％棉酚但不含必需氨基酸的人工饲料处理第一龄和第二龄豌豆长管蚜蚜虫。在处理后5天或13天，从蚜虫中提取DNA并进行qPCR以确定布赫纳氏菌DNA与蚜虫DNA的比率。显示了每组2-6只蚜虫的布赫纳氏菌DNA与蚜虫DNA的平均比率±SD。通过非配对t检验确定统计学显著差异；*，p＜0.05。

[0102] 图34是显示棉酚的显微注射导致蚜虫中布赫纳氏菌水平降低的图。用20nl的不含必需氨基酸的人工饲料(AD)或含有0.05％棉酚但不含必需氨基酸的人工饲料(棉酚(0.05％))注射豌豆长管蚜LSR-1蚜虫＜第3龄期(蛹(nymphs))。注射后三天，从蚜虫中提取DNA并通过qPCR评估布赫纳氏菌水平。显示了布赫纳氏菌/蚜虫DNA的平均比率±SD。每个数据点代表一只蚜虫。

[0103] 图35是一组图，这些图显示反式-肉桂醛处理导致蚜虫发育延迟。通过植物递送，用水和含有不同浓度的反式-肉桂醛(TC、0.05％、0.5％和5％)的水处理第一龄和第二龄豌豆长管蚜蚜虫。在整个实验过程中监测发育阶段。显示了每个处理组在每个发育阶段(第1龄、第2龄、第3龄、第4龄、第5龄、或代表繁殖第5龄的5R)的蚜虫平均数。N＝40-49只蚜虫/实验组。

[0104] 图36是显示用天然抗微生物反式-肉桂醛处理后存活的剂量依赖性降低的图。通过植物递送，用水和含有不同浓度的反式-肉桂醛(TC、0.05％、0.5％和5％)的水处理第一龄和第二龄豌豆长管蚜蚜虫。在整个治疗过程中监测存活。通过对数秩检验确定统计学显著差异。N＝40-49只蚜虫/组。

[0105] 图37是显示用不同浓度的反式-肉桂醛处理减少了内共生布赫纳氏菌的图。通过植物递送，用水和含有不同浓度的反式-肉桂醛(0.05％、0.5％和5％)的水处理第一龄和第二龄豌豆长管蚜蚜虫。在处理后3天，从蚜虫中提取DNA并进行qPCR以确定布赫纳氏菌DNA与蚜虫DNA的比率。显示了每组2-11只蚜虫的布赫纳氏菌DNA与蚜虫DNA的平均比率±SD。每个处理组的中位数显示在数据点上方的框中。通过非配对t检验确定统计学显著差异；*，p＜0.05。水对照和0.5％反式-肉桂醛组之间存在统计学显著差异。

[0106] 图38是一组图，这些图显示用蝎肽Uy192处理导致蚜虫发育延迟。通过植物递送和叶灌注递送，用对照溶液(水)和在水中的100ug/ml Uy192处理第一龄和第二龄豌豆长管蚜蚜虫。a)在整个实验过程中监测发育阶段。显示了每个处理组在每个发育阶段(第1龄、第2龄、第3龄、第4龄、第5龄、或代表繁殖第5龄的SR)的蚜虫百分比。

[0107] 图39是显示用蝎AMP Uy192处理后昆虫存活降低的图。通过植物递送和叶灌注递送，仅用水或Uy192溶液处理第一龄和第二龄豌豆长管蚜蚜虫，并且在实验过程中每天监测存活。括号中的数字代表处理组中的蚜虫总数。

[0108] 图40是显示用Uy192处理减少了内共生布赫纳氏菌的图。通过植物递送和叶灌注递送，用水或在水中的100ug/ml Uy192处理第一龄和第二龄豌豆长管蚜蚜虫，在处理后8天，从蚜虫中提取DNA并进行qPCR以确定布赫纳氏菌DNA与蚜虫DNA的比率。显示了每组2-6只蚜虫的布赫纳氏菌DNA与蚜虫DNA的平均比率±SD。每组的中位数值显示在框中。

[0109] 图41是显示用蝎肽D10和D3显微注射的蚜虫存活降低的图。用水(对照)或用100ng的蝎肽D3或D10显微注射LSR-1豌豆长管蚜蚜虫。注射后，将蚜虫释放到蚕豆叶上，并在整个实验过程中监测存活。括号中的数字指示每个实验处理组中的蚜虫数量。

[0110] 图42是显示用蝎肽D3和D10注射后内共生体效价降低的图。用水(对照)或用100ng的蝎肽D3或D10显微注射LSR-1豌豆长管蚜蚜虫。注射后，将蚜虫释放到蚕豆叶上，并且在处理后5天，从剩余的活蚜虫中提取DNA并进行qPCR以确定布赫纳氏菌与蚜虫DNA的比率。显示了每个处理组的平均值±SD。N＝2-9只蚜虫/组。每个处理组上方框中的数字代表数据集的中位数。

[0111] 图43是显示用蝎AMP混合物处理后昆虫存活降低的图。通过叶灌注递送和通过植物递送，用蝎肽混合物(Uy17、D3、UyCt3和D10各自40μg/ml)处理第一龄和第二龄eNASCO蚜虫，并且在实验过程中监测存活。括号中的数字代表每个处理组中的蚜虫数量。

[0112] 图44是一组图，这些图显示用与细胞穿透肽融合的蝎肽处理导致蚜虫发育延迟。通过叶注射递送和通过植物递送，用水(对照)或100μg/ml Uy192+CPP+FAM处理第一龄LSR-
2豌豆长管蚜蚜虫，并且随时间推移测量发育。显示了在指定时间点的每个生命阶段(第1龄、第2龄、第3龄、第4龄、第5龄、或5R龄(繁殖第5龄))的蚜虫百分比。N＝90只蚜虫/组。

[0113] 图45是显示用与细胞穿透肽融合的蝎肽处理蚜虫增加了死亡率的图。通过叶注射递送和通过植物递送，用水或在水中的100μg/ml UY192+CPP+FAM(肽)处理第一龄LSR-1豌豆长管蚜蚜虫。随时间推移监测存活。括号中的数字指示每组中的蚜虫数量。通过对数秩(Mantel-Cox)检验确定统计学显著差异，并且两个实验组之间存在显著差异(p＝0.0036)。

[0114] 图46是显示用Uy192+CPP+FAM处理减少了内共生布赫纳氏菌的图。通过叶注射递送和通过植物递送，用水或在水中的100μg/ml Uy192+CPP+FAM(肽)处理第一龄LSR-1豌豆长管蚜蚜虫。在处理后五天从选择的蚜虫中提取DNA并用于qPCR以确定布赫纳氏菌拷贝数。显示了每种处理的布赫纳氏菌/蚜虫的平均比率+/-SEM。每个实验组上方框中的数字指示该组的中位数值。每个数据点代表单个蚜虫。通过学生T检验确定统计学显著差异；****，p＜0.0001。

[0115] 图47是一组图像，这些图像显示Uy192+CPP+FAM渗透的含菌细胞膜。从蚜虫中切开含菌细胞，并与250ug/ml的Uy192+CPP+FAM肽一起孵育30分钟。在洗涤和成像时，可以在含菌细胞内观察到大量Uy192+CPP+FAM。

[0116] 图48A和图48B是一组图，这些图显示泛醇处理延迟了蚜虫发育。通过植物递送，用以下三种不同条件处理第一龄和第二龄eNASCO蚜虫：不含必需氨基酸的人工饲料(AD无EAA)，含有10uM泛醇但不含必需氨基酸的人工饲料(10uM泛醇)，以及含有100uM泛醇但不含必需氨基酸的人工饲料(100uM泛醇)，含有100uM泛醇但不含必需氨基酸的人工饲料，以及含有10uM泛醇但不含必需氨基酸的人工饲料。图48A显示了随时间推移监测每种条件下的发育阶段。图48B显示了来自蚜虫体的相对面积测量值，这些测量值显示了泛醇处理的显著作用。

[0117] 图49是显示用泛醇处理增加了蚜虫死亡率的图。每天监测通过植物递送用不含必需氨基酸的人工饲料或含有10或100uM泛醇但不含必需氨基酸的人工饲料处理的eNASCO蚜虫的存活。括号中的数字代表每组中的蚜虫数量。

[0118] 图50A、50B和50C是一组图，这些图显示泛醇处理导致繁殖丧失。通过植物递送，用不含必需氨基酸的人工饲料或者含有10或100uM泛醇但不含必需氨基酸的人工饲料处理第一龄和第二龄eNASCO蚜虫。图50A显示了存活至成熟和繁殖的蚜虫的分数。图50B显示了每组中的蚜虫开始繁殖的平均天数。显示了蚜虫开始繁殖的平均天数±SD。图50C显示了蚜虫开始繁殖后每天产生的后代的平均数。显示了后代/天的平均数±SD。

[0119] 图51是显示泛醇处理不影响内共生布赫纳氏菌的图。在处理后8天确定不同条件下的共生体效价。从蚜虫中提取DNA并进行qPCR以确定布赫纳氏菌DNA与蚜虫DNA的比率。显示了每组6只蚜虫的布赫纳氏菌DNA与蚜虫DNA的平均比率±SD。

[0120] 图52是一组图，这些图显示通过植物递送的泛醇处理不影响蚜虫发育。通过用100μl的以下两种不同溶液涂覆叶来处理第一龄eNASCO蚜虫：溶剂对照(0.025％Silwet L-77)和10uM泛醇，并且随时间推移测量每种条件下的发育阶段。显示了在每个发育阶段的活蚜虫百分比(样品大小＝20只蚜虫/组)。

[0121] 图53是显示通过叶涂层递送的泛醇处理导致蚜虫死亡的图。每天监测通过用100μl的以下两种不同溶液涂覆叶来处理的eNASCO蚜虫的存活：溶剂对照(Silwet L-77)和10uM泛醇。处理影响蚜虫的存活率。样品大小＝20只蚜虫/组。对数秩(Mantel Cox)检验用于确定组间是否存在统计学显著差异，并鉴定两组之间存在显著差异(p＝0.0019)。

[0122] 图54A和54B是一组图，这些图显示用氨基酸类似物的混合物处理延迟了蚜虫发育。通过叶灌注递送和通过植物递送，用水或在水中的氨基酸类似物的混合物(AA混合物)处理第一龄LSR-1蚜虫。图54A显示了随时间推移测量每种条件下的发育阶段。显示了在每个发育阶段的活蚜虫百分比。图54B显示了来自蚜虫体的面积测量值，这些测量值显示了用氨基酸类似物混合物(AA混合物)处理的显著作用。使用学生T检验确定统计学显著差异；****，p＜0.0001。

[0123] 图55是显示用氨基酸类似物的混合物处理消除了内共生布赫纳氏菌的图。在处理后6天确定不同条件下的共生体效价。从蚜虫中提取DNA并进行qPCR以确定布赫纳氏菌DNA与蚜虫DNA的比率。显示了每组19-20只蚜虫的布赫纳氏菌DNA与蚜虫DNA的平均比率±SD。每个数据点代表个体蚜虫。使用学生T检验确定统计学显著差异；*，p＜0.05。

[0124] 图56A和56B是一组图，这些图显示用三种药剂的组合处理延迟了蚜虫发育。通过叶灌注递送和通过植物递送，用水或在水中的三种药剂的组合(Pep-Rif-壳聚糖)处理第一龄LSR-1蚜虫。图56A显示了随时间推移测量每种条件下的发育阶段。显示了在每个发育阶段的活蚜虫百分比。图56B显示了来自蚜虫体的面积测量值，这些测量值显示了用三种处理的组合(Pep-Rif-壳聚糖)处理的显著作用。使用学生T检验确定统计学显著差异；****，p＜0.0001。

[0125] 图57是显示用肽、抗生素和天然抗微生物剂的组合处理增加了蚜虫死亡率的图。用水或三种处理的组合(Pep-Rif-壳聚糖)处理LSR-1蚜虫，并在处理后每天监测存活。

[0126] 图58是显示用肽、抗生素和天然抗微生物剂的组合处理消除了内共生布赫纳氏菌的图。在处理后6天确定不同条件下的共生体效价。从蚜虫中提取DNA并进行qPCR以确定布赫纳氏菌DNA与蚜虫DNA的比率。显示了每组20-21只蚜虫的布赫纳氏菌DNA与蚜虫DNA的平均比率±SD。每个数据点代表个体蚜虫。

[0127] 图59A和59B是一组图像，这些图像显示环丙沙星涂覆和渗透的玉米籽粒。将玉米籽粒浸泡在水中(无抗生素)或在水中的指定浓度的环丙沙星中，并且测试全籽粒或籽粒以确定它们是否能抑制大肠杆菌(E.coli)DH5α的生长。图59A显示了在浸泡在无抗生素的水中的玉米籽粒存在下的细菌生长，以及图59B显示了当将已经浸泡在抗生素中的全籽粒或半籽粒放置于铺满大肠杆菌的板上时，细菌生长的抑制。

[0128] 图60是显示用环丙沙星(250ug/ml或2.5mg/ml)处理成年玉米象(S.zeamais)象鼻虫或用水处理模拟的图。在处理18天后，从象鼻虫中分离基因组DNA，并通过qPCR确定米象属(Sitophilus)原生内共生体的量。显示了每个组的平均值±SEM。每个数据点代表一只象鼻虫。在数据集的上方列出了每组的中位数。

[0129] 图61A和61B是显示用环丙沙星处理后的象鼻虫发育的图。图61A显示了从一个重复中去除成虫后25天切开的单个玉米籽粒，每个初始玉米籽粒用水(对照)或环丙沙星(250ug/ml或2.5mg/ml)浸泡/涂覆，并且检查幼虫、蛹或几乎完全发育的(成虫)象鼻虫的存在。显示了从每个处理组的籽粒中发现的每个生命阶段的百分比。在每个数据集上方指示了从每个处理组的籽粒中发现的后代的总数。图61B显示了从对照(水)和2.5mg/ml环丙沙星处理组的玉米籽粒中切开的后代分离的基因组DNA，并且进行qPCR以测量存在的米象属(Sitophilus)原生内共生体的量。显示了每个组的平均值±SD。通过非配对t检验确定统计学显著差异；***，p≤0.001。

[0130] 图62A和62B是显示去除交配对后(处理后7天)，对模拟处理(水)的或者用250ug/ml或2.5mg/ml环丙沙星处理的玉米籽粒的两个剩余重复进行监测后代的出现的图。图62A显示了随时间推移每个处理组新出现的象鼻虫的平均数±SD。图62B显示了去除交配对后，在第43天每个处理组出现的象鼻虫的平均数±SEM。

[0131] 图63是一组图，这些图显示利福平和强力霉素处理导致螨死亡率。每天监测未经处理的棉红蜘蛛(two-spotted spider mites)以及用250μg/ml利福平和在0.025％Silwet L-77中的500μg/ml强力霉素处理的螨的存活。

[0132] 图64是一组图，这些图显示了细菌呼吸的海马通量测定(Seahorse flux assay)结果。如在方法中所述的，细菌生长至对数生长期并加载到海马(Seahorse)XFe96板中，用于氧消耗率(OCR)和细胞外酸化率(ECAR)的时间测量。大约20分钟后将处理物注射入孔中，并监测细菌以检测生长变化。利福平＝100μg/mL；氯霉素＝25μg/mL；噬菌体(针对大肠杆菌为T7，以及针对黏质沙雷氏菌(S.marcescens)为ΦSmVL-C1)是在SM缓冲液中以1∶2或1∶100稀释的裂解物。每条线上的标记仅作为每条线对应的条件的指标提供，并不指示数据点[0133] 图65是显示针对黏质沙雷氏菌的噬菌体降低了蝇(fly)死亡率的图。用黏质沙雷氏菌针刺的蝇都在一天内死亡，而用黏质沙雷氏菌和噬菌体针刺的相当大部分的蝇在处理后存活了五天。几乎所有未经处理的对照蝇无论如何都存活至实验结束。使用对数秩检验来比较统计学显著性的曲线，星号表示p＜0.0001。

[0134] 本文提供了用于农业有害生物控制的方法和组合物，例如，用于改变寄宿于宿主昆虫(例如农业有害生物)中的一种或多种微生物的水平、活性或代谢，该改变导致该宿主的适合度的降低。本发明的特征在于组合物，该组合物包括调节剂(例如，噬菌体、肽、小分子、抗生素、或其组合)，该调节剂能以对宿主不利的方式改变宿主的微生物区系。通过破坏微生物水平、微生物活性、微生物代谢和/或微生物多样性，本文所述的调节剂可降低各种昆虫的适合度，这些昆虫被认为是农业有害生物。

[0135] 本文所述的方法和组合物部分基于实例，这些实例说明了如何可以使用不同的药剂，例如分离的天然噬菌体、抗生素(例如，利福平、土霉素、环丙沙星、强力霉素、或其组合)、抗微生物肽(AMP，例如，多粘菌素B、蜂毒素、杀菌肽A、果蝇菌素、或蝎肽)、化感物质(例如，棉酚乙酸)、或天然抗微生物化合物(例如，反式-肉桂醛、壳聚糖、丙酸、乙酰丙酸、或乳链菌肽)靶向昆虫宿主(例如，蚜虫中的内共生布赫纳氏菌属(Buchnera))中的共生微生物以通过改变这些宿主内的微生物的水平、活性或代谢来降低这些宿主的适合度。利福平、土霉素、环丙沙星和强力霉素是抗生素的代表性实例，并且其他抗生素可用于本发明。相似地，多粘菌素B、蜂毒素、杀菌肽A、果蝇菌素或蝎肽是可用于本发明的AMP的代表性实例。此外，棉酚乙酸是可用于本发明的小分子的代表性实例。另外地，反式-肉桂醛、壳聚糖、丙酸、乙酰丙酸或乳链菌肽是可用的天然抗微生物化合物的代表性实例。在此基础上，本披露描述了改变寄宿于宿主中的一种或多种微生物的水平、活性或代谢的药剂的使用的多种不同方法，该改变导致该宿主适合度的降低。

[0136] I.宿主

[0137] i.昆虫

[0138] 本文提供的任何方法和组合物中的任一种的宿主可以是属于被认为是有害生物的节肢动物门的任何生物，例如农业有害生物，包括本文所述的任何节肢动物。如本文所用的，该术语“有害生物”是指对植物或其他生物造成损害，或在其他方面对人，例如人类农业方法或产品不利的昆虫。如本文所用的，该术语“昆虫”描述任何昆虫，意指任何属于动物界的生物，更具体的属于节肢动物门，以及昆虫纲或蛛形纲。

[0139] 在一些情况下，该昆虫可属于以下目：蜱螨目(Acari)、蜘蛛目(Araneae)、虱目(Anoplura)、鞘翅目(Coleoptera)、弹尾目(Collembola)、革翅目(Dermaptera)、网翅目(Dictyoptera)、双尾目(Diplura)、双翅目(Diptera)(例如，斑翅果蝇(spotted-wing Drosophila))、纺足目(Embioptera)、蜉蝣目(Ephemeroptera)、蛩蠊目(Grylloblatodea)、半翅目(Hemiptera)(例如，蚜虫、温室白粉虱)、同翅目(Homoptera)、膜翅目(Hymenoptera)、等翅目(Isoptera)、鳞翅目、食毛目(Mallophaga)、长翅目(Mecoptera)、脉翅目(Neuroptera)、蜻蜓目(Odonata)、直翅目(Orthoptera)、竹节虫目(Phasmida)、襀翅目(Plecoptera)、原尾目(Protura)、啮虫目(Psocoptera)、蚤目(Siphonaptera)、虱目(Siphunculata)、缨尾目(Thysanura)、捻翅目(Strepsiptera)、缨翅目(Thysanoptera)、毛翅目(Trichoptera)、或缺翅目。

[0140] 在一些情况下，该昆虫来自蛛形纲(Arachnida)，例如，粉螨属物种(Acarus spp.)、柑橘瘤瘿螨(Aceria sheldoni)、刺皮节蜱属物种(Aculops spp.)、刺瘿螨属物种(Aculus spp.)、花蜱属物种(Amblyomma  spp.)、山楂叶螨(Amphitetranychus 
viennensis)、锐缘蜱属物种(Argas spp.)、牛蜱属物种(Boophilus spp.)、短须螨属物种(Brevipalpus spp.)、草苔藓(Bryobia graminum)、苜蓿苔螨(Bryobia praetiosa)、刺尾蝎属物种(Centruroides spp.)、足螨属物种(Chorioptes spp.)、鸡皮刺螨(Dermanyssus gallinae)、屋尘螨(Dermatophagoides pteronyssinus)、粉尘螨(Dermatophagoides farinae)、革蜱属物种(Dermacentor spp.)、始叶螨属物种(Eotetranychus spp.)、枣叶锈螨(Epitrimerus pyri)、真叶螨属物种(Eutetranychus spp.)、瘿螨属物种(Eriophyes spp.)、家食甜螨(Glycyphagus domesticus)、赤足地螨(Halotydeus destructor)、跗线螨属物种(Hemitarsonemus spp.)、璃眼蜱属物种(Hyalomma spp.)、硬蜱属物种(Ixodes spp.)、寇蛛属物种(Latrodectus  spp.)、斜蛛属物种(Loxosceles spp.)、
Metatetranychus属物种、秋收恙螨(Neutrombicula autumnalis)、奴合撒属物种
(Nuphersa spp.)、小爪螨属物种(Oligonychus spp.)、钝缘蜱属物种(Ornithodoros spp.)、禽刺螨属物种(Ornithonyssus spp.)、全爪螨属物种(Panonychus spp.)、柑橘锈螨(Phyllocoptruta oleivora)、侧多食跗线螨(Polyphagotarsonemus latus)、螨属物种(Psoroptes spp.)、扇头蜱属物种(Rhipicephalus spp.)、根螨属物种(Rhizoglyphus spp.)、疥螨属物种(Sarcoptes spp.)、中东金蝎(Scorpio maurus)、狭跗线螨属物种(Steneotarsonemus spp.)、稻细螨(Steneotarsonemus spinki)、跗线属物种(Tarsonemus spp.)、四爪螨属物种(Tetranychus spp.)、阿氏真恙螨(Trombicula alfreddugesi)、Vaejovis属物种、Vasates lycopersici。

[0141] 在一些情况下，该昆虫来自唇足纲(Chilopoda)，例如，地蜈蚣属物种(Geophilus spp.)、蚰蜒属物种(Scutigera spp.)。

[0142] 在一些情况下，该昆虫来自弹尾目(Collembola)，例如，乳草长蝽(Onychiurus armatus)。

[0143] 在一些情况下，该昆虫来自倍足纲(Diplopoda)，例如，千足虫(Blaniulus guttulatus)；来自昆虫纲，例如，来自蜚蠊目(Blattodea)，例如，亚洲蟑螂(Blattella asahinai)、德国小蠊(Blatella germanica)、东方蜚蠊(Blatta orientalis)、马德拉蜚蠊(Leucophaea maderae)、古巴蠊属物种(Panchlora spp.)、木蠊属物种(Periplaneta spp.)、大蠊属物种(Periplaneta spp.)、棕带蟑螂(Supella longipalpa)。

[0144] 在一些情况下，该昆虫来自鞘翅目(Coleoptera)，例如，条纹南瓜甲虫(Acalymma vittatum)、大豆象(Acanthoscelides obtectus)、喙丽金龟属物种(Adoretus spp.)、桤木叶甲(Agelastica alni)、叩甲属物种(Agriotes spp.)、黑菌虫(Alphitobius diaperinus)、马铃薯鳃金龟(Amphimallon solstitialis)、家具窃蠹(Anobium 
punctatum)、星天牛属物种(Anoplophora spp.)、花象属物种(Anthonomus spp.)、圆皮蠹属物种(Anthrenus spp.)、长喙小象属物种(Apion spp.)、甘蔗金龟属物种(Apogonia spp.)、隐食甲属物种(Atomaria spp.)、毛皮蠹属物种(Attagenus spp.)、锥胸豆象
(Bruchidius obtectus)、豆象属物种(Bruchus spp.)、龟金花虫属物种(Cassida spp.)、豆叶甲(Cerotoma trifurcata)、龟象属物种(Ceutorrhynchus spp.)、凹胫跳甲属物种(Chaetocnema spp.)、Cleonus mendicus、宽胸叩头虫属物种(Conoderus spp.)、根颈象属物种(Cosmopolites spp.)、新西兰草金龟(Costelytra zealandica)、Ctenicera属物种、象鼻虫属物种(Curculio spp.)、锈赤扁谷盗(Cryptolestes ferrugineus)、杨干隐喙象(Cryptorhynchus lapathi)、细枝象属物种(Cylindrocopturus spp.)、皮蠹属物种
(Dermestes spp.)、条叶甲属物种(Diabrotica spp.)(例如，玉米根虫)、蛀野螟属物种(Dichocrocis spp.)、水稻铁甲(Dicladispa armigera)、Diloboderus属物种、植食瓢虫属物种(Epilachna spp.)、毛跳甲属物种(Epitrix spp.)、钻孔虫属物种(Faustinus spp.)、裸蛛甲(Gibbium psylloides)、阔角谷盗(Gnathocerus cornutus)、菜心螟(Hellula undalis)、黑异爪蔗金龟(Heteronychus arator)、Heteronyx属物种、优雅海拉莫法种蝇(Hylamorpha elegans)、北美家天牛(Hylotrupes bajulus)、苜蓿叶象甲(Hypera 
postica)、蓝绿象(Hypomeces squamosus)、咪小蠹属物种(Hypothenemus spp.)、甘蔗大褐齿爪鳃金龟(Lachnosterna consanguinea)、烟草甲(Lasioderma serricorne)、长头谷盗(Latheticus oryzae)、波缘薪甲属物种(Lathridius spp.)、合爪负泥虫属物种(Lema spp.)、马铃薯叶甲(Leptinotarsa decemlineata)、银潜蛾属物种(Leucoptera spp.)、稻水象甲(Lissorhoptrus oryzophilus)、筒喙象属物种(Lixus spp.)、Luperodes属物种、粉蠹属物种(Lyctus spp.)、Megascelis属物种、梳爪叩头虫属物种(Melanotus spp.)、油菜花露尾甲(Meligethes aeneus)、鳃角金龟属物种(Melolontha spp.)、Migdolus属物种、墨天牛属物种(Monochamus spp.)、象甲(Naupactus xanthographus)、郭公虫属物种
(Necrobia spp.)、黄蛛甲(Niptus hololeucus)、二疣犀甲(Oryctes rhinoceros)、锯谷盗(Oryzaephilus surinamensis)、Oryzaphagus oryzae、耳象属物种(Otiorrhynchus 
spp.)、小青花金龟(Oxycetonia jucunda)、辣根猿叶甲(Phaedon cochleariae)、鳃角金龟属物种(Phyllophaga spp.)、鳃金龟(Phyllophaga helleri)、条跳甲属物种(Phyllotreta spp.)、日本金龟子(Popillia japonica)、安第斯马铃薯象属(Premnotrypes)、大谷蠹(Prostephanus truncatus)、蚤跳甲属物种(Psylliodes spp.)、蛛甲属物种(Ptinus spp.)、暗色瓢虫(Rhizobius ventralis)、谷蠹(Rhizopertha dominica)、米象属
(Sitophilus)、米象(Sitophilus oryzae)、尖隐喙象属物种(Sphenophorus spp.)、药材甲(Stegobium paniceum)、茎干象属物种(Sternechus spp.)、宽幅天牛属物种(Symphyletes spp)、纤毛象属物种(Tanymecus spp.)、黄粉虫(Tenebrio  molitor)、大谷盗
(Tenebrioides mauretanicus)、拟谷盗属物种(Tribolium spp.)、斑皮蠹属物种
(Trogoderma spp.)、籽象属物种(Tychius spp.)、脊虎天牛属物种(Xylotrechus spp.)、距步甲属物种(Zabrus spp.)；

[0145] 来自双翅目(Diptera)，例如，伊蚊属物种(Aedes spp.)、潜蝇属物种(Agromyza spp.)、实蝇属物种(Anastrepha spp.)、按蚊属物种(Anopheles spp.)、波瘿蚊属物种(Asphondylia spp.)、果实蝇属物种(Bactrocera spp.)、花园毛蚊(Bibio hortulanus)、绿头丽蝇(Calliphora erythrocephala)、红头丽蝇(Calliphora vicina)、地中海实蝇(Ceratitis capitata)、摇蚊属物种(Chironomus spp.)、金蝇属物种(Chrysomyia spp.)、斑虻属物种(Chrysops spp.)、高额麻虻(Chrysozona  pluvialis)、锥蝇属物种(Cochliomyia spp.)、康瘿蚊属物种(Contarinia spp.)、噬人瘤蝇(Cordylobia 
anthropophaga)、Cricotopus sylvestris、库蚊属物种(Culex spp.)、库蠓属物种
(Culicoides spp.)、脉毛蚊属物种(Culiseta spp.)、黄蝇属物种(Cuterebra spp.)、油橄榄实蝇(Dacus oleae)、瘿蚊属物种(Dasyneura spp.)、地种蝇属物种(Delia spp.)、人皮蝇(Dermatobia hominis)、果蝇属物种(Drosophila spp.)、稻象甲属物种(Echinocnemus spp.)、厕蝇属物种(Fannia spp.)、胃蝇属物种(Gasterophilus spp.)、舌蝇属物种
(Glossina spp.)、麻虻属物种(Haematopota spp.)、毛眼水蝇属物种(Hydrellia spp.)、大麦水蝇(Hydrellia griseola)、种蝇属物种(Hylemya spp.)、虱蝇属物种(Hippobosca spp.)、牛皮蝇属物种(Hypoderma spp.)、斑潜蝇属物种(Liriomyza spp.)、绿蝇属物种(Lucilia spp.)、罗岭属物种(Lutzomyia spp.)、曼蚊属物种(Mansonia spp.)、蝇属物种(Musca spp.)(例如，家蝇(Musca domestica))、狂蝇属物种(Oestrus spp.)、瑞典杆蝇(Oscinella frit)、Paratanytarsus属物种、Paralauterborniella subcincta、泉蝇属物种(Pegomyia spp.)、白蛉属物种(Phlebotomus spp.)、草种蝇属物种(Phorbia spp.)、伏蝇属物种(Phormia spp.)、酪蝇(Piophila casei)、原螺纹属物种(Prodiplosis spp.)、胡萝卜茎蝇(Psila rosae)、绕实蝇属物种(Rhagoletis spp.)、麻蝇属物种(Sarcophaga spp.)、蚋属物种(Simulium spp.)、螫蝇属物种(Stomoxys spp.)、虻属物种(Tabanus spp.)、根斑蝇属物种(Tetanops spp.)、大蚊属物种(Tipula spp.)。

[0146] 在一些情况下，该昆虫来自异翅亚目(Heteroptera)，例如，南瓜缘蝽(Anasa tristis)、拟丽蝽属物种(Antestiopsis spp.)、Boisea属物种、土长蝽属物种(Blissus spp.)、俊盲蝽属物种(Calocoris spp.)、斑腿微刺盲蝽(Campylomma livida)、异背长蝽属物种(Cavelerius spp.)、臭虫属物种(Cimex spp.)、白辨麦寄蝇属物种(Collaria spp.)、Creontiades dilutus、胡椒缘蝽(Dasynus piperis)、Dichelops furcatus、厚氏长棒网蝽(Diconocoris hewetti)、棉红蝽属物种(Dysdercus spp.)、美洲蝽属物种(Euschistus spp.)、扁盾蝽属物种(Eurygaster spp.)、刺盲蝽属物种(Heliopeltis spp.)、棉红蝽(Horcias nobilellus)、稻缘蝽属物种(Leptocorisa spp.)、稻缘椿象(Leptocorisa varicornis)、北美叶足缘蝽(Leptoglossus phyllopus)、草盲蝽属物种(Lygus spp.)、蔗黑长蝽(Macropes excavatus)、盲蝽科(Miridae)、金光绿盲蝽(Monalonion atratum)、绿蝽属物种(Nezara spp.)、稻蝽属物种(Oebalus spp.)、蝽科(Pentomidae)、方背皮蝽(Piesma quadrata)、壁蝽属物种(Piezodorus spp.)、杂盲蝽属物种(Psallus spp.)、Pseudacysta persea、红猎蝽属物种(Rhodnius spp.)、可可褐盲蝽(Sahlbergella singularis)、Scaptocoris castanea、黑蝽属物种(Scotinophora spp.)、梨冠网蝽
(Stephanitis nashi)、Tibraca属物种、锥猎蝽属物种(Triatoma spp.)。

[0147] 在一些情况下，该昆虫来自同翅目(Homoptera)，例如，贝氏相思羞木虱(Acizzia acaciaebaileyanae)、多多萘虱(Acizzia dodonaeae)、木虱(Acizzia uncatoides)、长头蝗(Acrida turrita)、无网长管蚜属物种(Acyrthosipon spp.)、Acrogonia属物种、Aeneolamia属物种、垫刃线虫属物种(Agonoscena spp.)、欧洲甘蓝粉虱(Aleyrodes 
proletella)、甘蔗穴粉虱(Aleurolobus barodensis)、软毛粉虱(Aleurothrixus 
floccosus)、植莲木风(Allocaridara malayensis)、芒果叶蝉属物种(Amrasca spp.)、李蓟圆尾蚜(Anuraphis cardui)、肾圆盾蚧属物种(Aonidiella  spp.)、梨矮蚜
(Aphanostigma pini)、蚜虫属物种(例如，棉蚜(Aphis gossypii))、葡萄叶蜂(Arboridia apicalis)、Arytainilla属物种、小圆盾蚧属物种(Aspidiella spp.)、圆盾蚧属物种(Aspidiotus spp.)、Atanus属物种、茄沟无网蚜(Aulacorthum solani)、烟粉虱(Bemisia tabaci)、Blastopsylla occidentalis、Boreioglycaspis melaleucae、杏圆尾蚜
(Brachycaudus helichrysi)、微管蚜属物种(Brachycolus spp.)、甘蓝蚜(Brevicoryne brassicae)、喀木虱属物种(Cacopsylla spp.)、美加椴卡丽叶甲(Calligypora 
marginata)、红头大叶蝉(Carneocephalafulgida)、甘蔗绵蚜(Ceratovacuna lanigera)、沫蝉科(Cercopidae)、蜡蚧属物种(Ceroplastes spp.)、Chaetosiphon fragaefolii、蔗黄雪盾蚧(Chionaspis tegalensis)、茶绿叶蝉(Chlorita onukii)、台湾大蝗(Chondracris rosea)、核桃黑斑蚜(Chromaphis juglandicola)、褐圆蚧(Chrysomphalus ficus)、
Cicadulina mbila、Coccomytilus halli、Coccus属物种、茶藨隐瘤蚜(Cryptomyzus ribis)、Cryptoneossa属物种、梳木虱属物种(Ctenarytaina spp.)、叶蝉属物种(Dalbulus spp.)、柑橘粉虱(Dialeurodes citri)、柑橘木虱(Diaphorina citri)、盾蚧属物种
(Diaspis spp.)、履绵蚧属物种(Drosicha spp.)、西圆尾蚜属物种(Dysaphis spp.)、粉蚧属物种(Dysmicoccus spp.)、小绿叶蝉属物种(Empoasca spp.)、绵蚜属物种(Eriosoma spp.)、斑叶蝉属物种(Erythroneura spp.)、Eucalyptolyma属物种、褐木虱属物种
(Euphyllura spp.)、Euscelis bilobatus、拂粉蚧属物种(Ferrisia spp.)、咖啡荒粉蚧(Geococcus coffeae)、Glycaspis属物种、银合欢木虱(Heteropsylla cubana)、颊木虱(Heteropsylla spinulosa)、琉璃叶蝉(Homalodisca coagulata)、草翅叶蝉(Homalodisca vitripennis)、桃大尾蚜(Hyalopterus arundinis)、吹绵蚧属物种(Icerya spp.)、片角叶蝉属物种(Idiocerus spp.)、扁喙叶蝉属物种(Idioscopus spp.)、灰飞虱(Laodelphax striatellus)、蜡蚧属物种(Lecanium spp.)、牡蛎蚧属物种(Lepidosaphes spp.)、萝卜蚜(Lipaphis erysimi)、长管蚜属物种(Macrosiphum spp.)、二点二叉叶蝉(Macrosteles fascifrons)、Mahanarva属物种、高粱蚜(Melanaphis sacchari)、Metcalfiella属物种、麦无网长管蚜(Metopolophium dirhodum)、黑缘平翅斑蚜(Monellia costalis)、
Monelliopsis pecanis、瘤蚜属物种(Myzus spp.)、黑茶藨子长管蚜(Nasonovia 
ribisnigri)、黑尾叶蝉属物种(Nephotettix spp.)、Nettigoniclla spectra、褐飞虱(Nilaparvata lugens)、Oncometopia属物种、延长旌介壳虫(Orthezia praelonga)、中华稻蝗(Oxya chinensis)、Pachypsylla属物种、杨梅粉蝨(Parabemisia myricae)、木虱属物种(Paratrioza spp.)、片盾蚧属物种(Parlatoria spp.)、天疱疮属物种(Pemphigus spp.)、玉米花翅飞虱(peregrinus maidis)、绵粉蚧属物种(Phenacoccus spp.)、杨平翅绵蚜(Phloeomyzus passerinii)、忽布疣额蚜(Phorodon humuli)、根瘤蚜属物种
(Phylloxera spp.)、苏铁褐点并盾蚧(Pinnaspis aspidistrae)、臀纹粉蚧属物种
(Planococcus spp.)、黄色普罗皮拉(Prosopidopsylla flava)、梨形原绵腊蚧
(Protopulvinaria pyriformis)、桑白盾蚧(Pseudaulacaspis pentagona)、粉蚧属物种(Pseudococcus spp.)、Psyllopsis属物种、木虱属物种(Psylla spp.)、金小蜂属物种(Pteromalus spp.)、Pyrilla属物种、齿盾蚧属物种(Quadraspidiotus spp.)、Quesada gigas、平刺粉蚧属物种(Rastrococcus spp.)、缢管蚜属物种(Rhopalosiphum spp.)、黑盔蚧属物种(Saissetia spp.)、葡萄带叶蝉(Scaphoideus titanus)、麦二叉蚜(Schizaphis graminum)、刺盾蚧(Selenaspidus articulatus)、长唇基飞虱属物种(Sogata spp.)、白背飞虱(Sogatella furcifera)、Sogatodes属物种、非替那角蝉(Stictocephala festina)、烟粉虱(Siphoninus phillyreae)、Tenalaphara malayensis、Tetragonocephela属物种、Tinocallis caryaefoliae、广胸沫蝉属物种(Tomaspis spp.)、Toxoptera属物种、温室粉虱(Trialeurodes  vaporariorum)、个木虱属物种(Trioza spp.)、小叶蝉属物种
(Typhlocyba spp.)、矢尖盾蚧属物种(Unaspis spp.)、葡萄根瘤蚜(Viteus vitifolii)、么叶蝉属物种(Zygina spp.)；

[0148] 来自膜翅目(Hymenoptera)，例如，顶切叶蚊属物种(Acromyrmex spp.)、叶蜂属物种(Athalia spp.)、南美切叶蚊属物种(Atta spp.)、松叶蜂属物种(Diprion spp.)、实叶蜂属物种(Hoplocampa spp.)、毛蚊属物种(Lasius spp.)、小黄家蚊(Monomorium pharaonis)、树蜂属物种(Sirex spp.)、红火蚊(Solenopsis invicta)、蚊属物种
(Tapinoma spp.)、大树蜂属物种(Urocerus spp.)、胡蜂属物种(Vespa spp.)、黑树蜂属物种(Xeris spp.)。

[0149] 在一些情况下，该昆虫来自等足目(Isopoda)，例如，鼠妇(Armadillidium vulgare)、栉水虱潮虫(Oniscus asellus)、球鼠妇(Porcellio scaber)。

[0150] 在一些情况下，该昆虫来自等翅目(Isoptera)，例如，乳白蚁属物种(Contarinia spp.)、Cornitermes cumulans、堆砂白蚁属物种(Cryptotermes spp.)、楹白蚁属物种(Incisitermes spp.)、稻麦小白蚁(Microtermes obesi)、土白蚁属物种(Odontotermes spp.)、散白蚁属物种(Reticulitermes spp)。

[0151] 在一些情况下，该昆虫来自鳞翅目(Lepidoptera)，例如，小蜡螟(Achroia grisella)、桑剑纹夜蛾(Acronicta major)、褐带卷蛾属物种(Adoxophyes spp.)、白纹伊蚊(Aedia leucomelas)、地夜蛾属物种(Agrotis spp.)、阿拉巴马属物种(Alabama spp.)、脐橙螟(Amyelois transitella)、条麦蛾属物种(Anarsia spp.)、干煞夜蛾属物种
(Anticarsia spp.)、Argyroploce属物种、甘蓝夜蛾(Barathra brassicae)、禾弄蝶(Borbo cinnara)、棉潜蛾(Bucculatrix thurberiella)、松尺蠖(Bupaluspiniarius)、干夜蛾属物种(Busseola spp.)、Cacoecia属物种、茶细蛾(Caloptilia theivora)、烟卷蛾(Capua reticulana)、苹果蠹蛾(Carpocapsa pomonella)、桃小食心虫(Carposina niponensis)、冬尺蛾(Cheimatobia brumata)、禾草螟属物种(Chilo spp.)、卷蛾属物种(Choristoneura spp.)、葡萄果蠹蛾(Clysia ambiguella)、Cnaphalocerus属物种、稻纵卷叶螟
(Cnaphalocrocis medinalis)、云卷蛾属物种(Cnephasia spp.)、蒂蛀虫属物种
(Conopomorpha spp.)、球颈象属物种(Conotrachelus spp.)、Copitarsia属物种、小卷蛾属物种(Cydia spp.)、Dalaca noctuides、绢野螟属物种(Diaphania spp.)、蔗螟
(Diatraea saccharalis)、钻夜蛾属物种(Earias spp.)、Ecdytolopha aurantium、
Elasmopalpus lignosellus、甘薯杆螟(Eldana saccharina)、粉斑螟属物种(Ephestia spp.)、叶小卷蛾属物种(Epinotia spp.)、苹果褐卷蛾(Epiphyas postvittana)、荚斑螟属物种(Etiella spp.)、Eulia属物种、女贞细卷蛾(Eupoecilia ambiguella)、毒蛾属物种(Euproctis spp.)、切夜蛾属物种(Euxoa spp.)、脏切叶蛾属物种(Feltia spp.)、大蜡螟(Galleria mellonella)、细蛾属物种(Gracillaria spp.)、小食心虫属物种(Grapholitha spp.)、甘蔗螟属物种(Hedylepta spp.)、铃夜蛾属物种(Helicoverpa spp.)、实夜蛾属物种(Heliothis spp.)、褐家蛾(Hofmannophila pseudospretella)、同斑螟属物种
(Homoeosoma spp.)、长卷蛾属物种(Homona spp.)、苹果巢蛾(Hyponomeuta padella)、柿举肢蛾(Kakivoriaflavofasciata)、夜蛾属物种(Laphygma spp.)、梨小食心虫
(Laspeyresia molesta)、茄黄斑螟(Leucinodes orbonalis)、银潜蛾属物种(Leucoptera spp.)、紫藤潜叶细蛾属物种(Lithocolletis spp.)、绿果冬夜蛾(Lithophane 
antennata)、花翅小蛾属物种(Lobesia spp.)、豆白隆切根虫(Loxagrotis albicosta)、毒蛾属物种(Lymantria spp.)、潜蛾属物种(Lyonetia spp.)、天幕毛虫(Malacosoma 
neustria)、豆荚野螟(Maruca testulalis)、甘蓝夜蛾(Mamstra brassicae)、稻暮眼蝶(Melanitis leda)、毛胫夜蛾属物种(Mocis spp.)、Monopis obviella、粘虫(Mythimna separata)、橡长角蛾(Nemapogon cloacellus)、水螟属物种(Nymphula spp.)、Oiketicus属物种、Oria属物种、瘤丛螟属物种(Orthaga spp.)、秆野螟属物种(Ostrinia spp.)、负泥虫(Oulema oryzae)、小眼夜蛾(Panolisflammea)、稻弄蝶属物种(Parnara spp.)、红铃虫属物种(Pectinophora spp.)、潜叶蛾属物种(Perileucoptera spp.)、茄麦蛾属物种
(Phthorimaea spp.)、柑橘潜叶蛾(Phyllocnistis citrella)、小潜细蛾属物种
(Phyllonorycter spp.)、粉蝶属物种(Pieris spp.)、荷兰石竹小卷蛾(Platynota 
stultana)、印度谷螟(Plodia interpunctella)、金翅夜蛾属物种(Plusia spp.)、小菜蛾(Plutella xylostella)、小白巢蛾属物种(Prays spp.)、斜纹夜蛾属物种(Prodenia spp.)、烟草天蛾属物种(Protoparce spp.)、拟粘液蛾属物种(Pseudaletia spp.)、一星黏虫(Pseudaletia unipuncta)、大豆夜蛾(Pseudoplusia includens)、玉米螟(Pyrausta nubilalis)、Rachiplusia nu、禾螟属物种(Schoenobius spp.)、白禾螟属物种
(Scirpophaga spp.)、稻白螟(Scirpophaga innotata)、Scotia segetum、蛀茎夜蛾属物种(Sesamia spp.)、大螟(Sesamia inferens)、长须卷蛾属物种(Sparganothis spp.)、夜蛾属物种(Spodoptera spp.)、Spodoptera praefica、展足蛾属物种(Stathmopoda spp.)、花生麦蛾(Stomopteryx subsecivella)、透翅蛾属物种(Synanthedon spp.)、安第斯马铃薯块茎蛾(Tecia solanivora)、Thermesia gemmatalis、木塞谷蛾(Tinea cloacella)、袋谷蛾(Tinea pellionella)、幕谷蛾(Tineola bisselliella)、卷叶蛾属物种(Tortrix 
spp.)、毛毡衣蛾(Trichophaga tapetzella)、粉夜蛾属物种(Trichoplusia spp.)、三化螟(Tryporyza incertulas)、番茄斑潜蝇(Tuta absoluta)、灰蝶属物种(Virachola spp.)。

[0152] 在一些情况下，该昆虫来自以下目：直翅目(Orthoptera)或跳跃目(Saltatoria)，例如，家蟋蟀(Acheta domesticus)、Dichroplus属物种、蝼蛄属物种(Gryllotalpa spp.)、蔗蝗属物种(Hieroglyphus spp.)、飞蝗属物种(Locusta spp.)、黑蝗属物种(Melanoplus spp.)、Schistocerca gregaria。

[0153] 在一些情况下，该昆虫来自虱目(Phthiraptera)，例如，毛虱属物种(Damalinia spp.)、血虱属物种(Haematopinus spp.)、毛虱属物种(Linognathus spp.)、虱属物种(Pediculus spp.)、阴虱(Ptiruspubis)、毛虱属物种(Trichodectes spp.)。

[0154] 在一些情况下，该昆虫来自啮虫目(Psocoptera)，例如，Lepinatus属物种、书虱属物种(Liposcelis spp)。

[0155] 在一些情况下，该昆虫来自蚤目(Siphonaptera)，例如，角叶蚤属物种(Ceratophyllus spp.)、栉首蚤属物种(Ctenocephalides spp.)、致痒蚤(Pulex 
irritans)、穿皮潜蚤(Tunga penetrans)、Xenopsylla cheopsis。

[0156] 在一些情况下，该昆虫来自缨翅目(Thysanoptera)，例如，玉米黄呆蓟马(Anaphothrips obscurus)、稻蓟马(Baliothrips  biformis)、鲜食葡萄镰蓟马
(Drepanothrips reuteri)、Enneothrips flavens、花蓟马属物种(Frankliniella spp.)、阳蓟马属物种(Heliothrips spp.)、温室条蓟马(Hercinothrips femoralis)、腹钩蓟马(Rhipiphorothrips cruentatus)、硬蓟马属物种(Scirtothrips spp.)、Taeniothrips cardamomi、蓟马属物种(Thrips spp)。

[0157] 在一些情况下，该昆虫来自衣鱼目(Zygentoma)(＝缨尾目(Thysanura))，例如，毛衣鱼属物种(Ctenolepisma spp.)、家衣鱼(Lepisma saccharina)、盗火虫(Lepismodes inquilinus)、小灶衣鱼(Thermobia domestica)。

[0158] 在一些情况下，该昆虫来自综合纲(Symphyla)，例如，小幺蚰属物种(Scutigerella spp)。

[0159] 在一些情况下，该昆虫是螨，包括但不限于跗线螨，如Phytonemus pallidus、侧多食跗线螨(Polyphagotarsonemus latus)、Tarsonemus bilobatus等；真足螨，如白菜螨(Penthaleus erythrocephalus)、叶爪螨(Penthaleus major)等；叶螨，如真棍小爪螨(Oligonychus shinkaji)、桔全爪螨(Panonychus citri)、桑全爪螨(Panonychus mori)、苹果全爪螨(Panonychus ulmi)、神泽氏叶螨(Tetranychus kanzawai)、二斑叶螨(Tetranychus urticae)等；瘿螨，如茶尖叶节蜱(Acaphylla theavagrans)、曲瘿螨
(Aceria tulipae)、番茄刺皮瘿螨(Aculops lycopersici)、皮氏刺皮瘿螨(Aculops 
pelekassi)、苹果刺锈螨(Aculus schlechtendali)、Eriophyes chibaensis、柑橘锈螨(Phyllocoptruta oleivora)等；粉螨，如罗宾根螨(Rhizoglyphus robini)、腐食酪螨(Tyrophagus putrescentiae)、三叶螨(Tyrophagus similis)等；蜂窝螨，如大蜂螨
(Varroa jacobsoni)、狄斯瓦螨(Varroa destructor)等；蜱亚目，如微小牛蜱(Boophilus microplus)、血红扇头蜱(Rhipicephalus sanguineus)、长角血蜱(Haemaphysalis 
longicornis)、褐黄血蜱(Haemophysalis flava)、铃头血蜱(Haemophysalis 
campanulata)、卵形硬蜱(Ixodes ovatus)、全沟硬蜱(Ixodes persulcatus)、花蜱属物种(Amblyomma spp.)、革蜱属物种(Dermacentor spp.)等；肉食螨科(Cheyletidae)，如Cheyletiella yasguri、布氏姬螯螨(Cheyletiella blakei)等；蠕形螨科(Demodicidae)，如犬蠕形螨(Demodex canis)、猫蠕形螨(Demodex cati)等；痒螨科(Psoroptidae)，如羊痒螨(Psoroptes ovis)等；Scarcoptidae，如人疥螨(Sarcoptes scabiei)、猫耳螨
(Notoedres cati)、膝螨属物种(Knemidocoptes spp.)等。

[0160] 在某些情况下，该昆虫是蚜虫。在某些情况下，该昆虫是象鼻虫。在某些情况下，该昆虫是棉红蜘蛛(two-spotted spider mite)。在某些情况下，该昆虫是草地夜蛾(fall army worm)。在某些情况下，该昆虫是瓦螨(Varroa mite)(例如，感染蜂的瓦螨)。

[0161] ii.宿主适合度

[0162] 本文提供的方法和组合物可用于降低本文所述的任何宿主的适合度。适合度的降低可能是由于寄宿于宿主中的微生物的任何改变，其中这些改变是给予调节剂的结果并且对宿主具有不利的作用。

[0163] 在一些情况下，由于给予调节剂，宿主适合度的降低可表现为宿主生理学的恶化或下降(例如，健康或存活降低)。在一些情况下，生物的适合度可通过一种或多种参数来测量，这些参数包括但不限于相比于没有被给予调节剂的宿主生物的繁殖速率、寿限、迁移、繁殖力、体重、代谢速率或活性、或存活。例如，本文提供的方法或组合物可有效降低宿主的总体健康或降低宿主的总体存活。在一些情况下，相对于参考水平(例如，在未接受调节剂的宿主中找到的水平)，宿主的降低的存活是约2％、5％、10％、20％、30％、40％、50％、60％、70％、80％、90％、100％、或大于100％。在一些情况下，相比于没有被给予调节剂的宿主生物，方法和组合物有效降低了宿主繁殖(例如，繁殖速率)。在一些情况下，相对于参考水平(例如，在未接受调节剂的宿主中找到的水平)，方法和组合物有效使其他的生理参数(如迁移、体重、寿限、繁殖力、或代谢速率)降低约2％、5％、10％、20％、30％、40％、50％、
60％、70％、80％、90％、100％、或大于100％。

[0164] 在一些情况下，相比于没有被给予调节剂的宿主生物，宿主适合度降低可表现为在该宿主中一种或多种营养物(例如，维生素、碳水化合物类、氨基酸、或多肽)产量的降低。在一些情况下，相对于参考水平(例如，在未接受调节剂的宿主中找到的水平)，本文提供的方法或组合物可有效使宿主中的营养物(例如，维生素、碳水化合物类、氨基酸、或多肽)的产量降低约2％、5％、10％、20％、30％、40％、50％、60％、70％、80％、90％、100％、或大于
100％。在一些情况下，相比于没有被给予调节剂的宿主生物，本文提供的方法或组合物可通过降低由宿主中的一种或多种微生物(例如，内共生体)产生的营养物的产量来降低宿主中的营养物。

[0165] 在一些情况下，相比于没有被给予调节剂的宿主生物，宿主适合度的降低可表现为宿主对杀有害生物剂(例如，表12中列出的杀有害生物剂)的敏感性的提高和/或宿主对杀有害生物剂(例如，表12中列出的杀有害生物剂)的抗性的降低。在一些情况下，相对于参考水平(例如，在未接受调节剂的宿主中找到的水平)，本文提供的方法或组合物可有效使宿主对杀有害生物剂(例如，表12中列出的杀有害生物剂)的敏感性提高约2％、5％、10％、20％、30％、40％、50％、60％、70％、80％、90％、100％、或大于100％。该杀有害生物剂可以是本领域已知的任何杀有害生物剂，包括杀昆虫剂。在一些情况下，本文提供的方法和组合物可通过降低宿主将杀有害生物剂代谢或降解为可用底物的能力来提高宿主对杀有害生物剂(例如，表12中列出的杀有害生物剂)的敏感性。

[0166] 在一些情况下，相比于没有被给予调节剂的宿主生物，宿主适合度的降低可表现为宿主对化感剂的敏感性的提高和/或宿主对化感剂的抗性的降低。在一些情况下，相对于参考水平(例如，在未接受调节剂的宿主中找到的水平)，本文提供的方法或组合物可有效使宿主对化感剂的抗性降低约2％、5％、10％、20％、30％、40％、50％、60％、70％、80％、90％、100％、或大于100％。在一些情况下，该化感剂是咖啡因、大豆半胱氨酸蛋白酶抑制剂N、单萜类、二萜酸、或酚类化合物。在一些情况下，相比于没有被给予调节剂的宿主生物，本文提供的方法或组合物可通过降低宿主将化感剂代谢或降解为可用底物的能力来提高宿主对化感剂的敏感性。

[0167] 在一些情况下，相比于没有被给予调节剂的宿主生物，本文提供的方法或组合物可有效降低宿主对寄生虫或病原体(例如，真菌病原体、细菌病原体或病毒病原体，或者寄生虫)的抗性。在一些情况下，相对于参考水平(例如，在未接受调节剂的宿主中找到的水平)，本文提供的方法或组合物可有效使宿主对病原体或寄生物(例如，真菌病原体、细菌病原体或病毒病原体；或者寄生螨)的抗性降低约2％、5％、10％、20％、30％、40％、50％、60％、70％、80％、90％、100％、或大于100％。

[0168] 在一些情况下，相比于没有被给予调节剂的宿主生物，宿主适合度降低可表现为其他适合度的不足，如对某些环境因素(例如，高温或低温耐受性)的降低的耐受性、在某些生境中降低的存活能力、或降低的维持某种饲料的能力。在一些情况下，本文提供的方法或组合物可以本文所述的任何多种方式有效降低宿主适合度。此外，该调节剂可在任何数量的宿主纲、目、科、属、或物种(例如，1个宿主物种、2个、3个、4个、5个、6个、7个、8个、9个、10个、15个、20个、30个、40个、50个、60个、70个、80个、90个、100个、150个、200个、200个、250个、500个、或更多个宿主物种)中降低宿主适合度。在一些情况下，该调节剂作用于单一宿主纲、目、科、属、或物种。

[0169] 可以使用本领域的任何标准方法来评估宿主适合度。在一些情况下，可以通过评估个体宿主来评估宿主适合度。可替代地，可以通过评估宿主群体来评估宿主适合度。例如，宿主适合度降低可表现为与其他昆虫的成功竞争的降低，从而导致宿主群体的规模的减小。

[0170] iii.农业中的宿主昆虫

[0171] 通过减少有害昆虫的适合度，本文提供的调节剂可以有效促进典型地受到所述宿主损害的植物的生长。可以使用本文所述的任何配制品和递送方法，以有效降低宿主适合度并且从而有益于植物，例如，增强作物生长、提高作物产量、降低有害生物侵染、和/或减少对植物的损害的量和持续时间，将调节剂递送至植物。这可能涉及或可能不涉及将调节剂直接施用于植物。例如，在原生宿主生境不同于植物生长的区域的情况下，可将调节剂施用于原生宿主生境、感兴趣的植物、或二者的组合。

[0172] 在一些情况下，该植物可以是农业粮食作物，如谷物、谷粒、豆类、水果、或蔬菜作物，或非粮食作物，例如，草类、开花植物、棉花、干草、大麻。在收获谷物、谷粒、豆类、水果、蔬菜、或其他作物之前或之后的任何时间，可以将本文所述的组合物递送至作物。作物产量是通常用于作物植物的测量值，并且通常以公吨/公顷(或千克每公顷)计量。作物产量还可以指植物的实际种子产生。在一些情况下，与参考水平(例如，没有被给予调节剂的作物)相比，该调节剂可有效使作物产量提高(例如，提高每公顷谷物、谷粒、豆类、水果、或蔬菜的公吨和/或增加种子产生)约2％、5％、10％、20％、30％、40％、50％、60％、70％、80％、90％、100％、或更多。

[0173] 在一些情况下，该植物(例如，作物)可能处于被有害生物侵染(例如，昆虫侵染)的风险中或可能已经被有害生物侵染。通过减少侵染植物的昆虫的适合度，本文所述的方法和组合物可用于减少或预防在此类作物中的有害生物侵染。在一些情况下，与参考水平(例如，没有被给予调节剂的作物)相比，该调节剂可有效使作物侵染减少(例如，减少侵染的植物的数量、减小有害生物群体规模、减少对植物的损害)约2％、5％、10％、20％、30％、40％、50％、60％、70％、80％、90％、100％、或更多。在其他情况下，与参考水平(例如，没有被给予调节剂的作物)相比，该调节剂可有效预防作物侵染可能性或将该可能性降低约2％、5％、
10％、20％、30％、40％、50％、60％、70％、80％、90％、100％、或更多。

[0174] 任何合适的植物组织可受益于本文所述的组合物和方法，包括但不限于体细胞胚、花粉、叶、茎、愈伤组织、匍匐茎、微块茎(microtuber)和枝。本文所述的方法可以包括对以下被子植物和裸子植物的处理，如刺槐、苜蓿、苹果树、杏树、朝鲜蓟、白蜡树、芦笋、鳄梨、香蕉、大麦、豆类、甜菜、桦树、山毛榉、黑莓、蓝莓、西兰花、孢子甘蓝、卷心菜、油菜、哈密瓜、胡萝卜、木薯、菜花、雪松、谷物、芹菜、板栗、樱桃、白菜、柑橘、小柑橘、三叶草、咖啡、玉米、棉花、针叶树、豇豆、黄瓜、柏树、茄子、榆树、欧洲菊苣、桉树、蚕豆、茴香、无花果、冷杉、水果和坚果树、天竺葵、葡萄、葡萄柚、花生、鹅莓、桉木、铁杉、大麻、山胡桃木、羽衣甘蓝、奇异果、甘蓝、落叶松、生菜、韭葱、柠檬、酸橙、刺槐、松树、铁线蕨、玉蜀黍、芒果、枫树、甜瓜、小米、蘑菇、芥末、坚果、橡木、燕麦、秋葵、洋葱、橙子、观赏植物或花卉或树木、番木瓜、棕榈、香菜、欧洲防风草、豌豆、桃树、花生、梨树、peat、辣椒、柿子、木豆、松树、菠萝、芭蕉、李子树、石榴树、马铃薯、南瓜、菊苣、萝卜、油菜籽、覆盆子、水稻、黑麦、高粱、黄桦柳、黄豆、菠菜、云杉、瓜类蔬菜、草莓、甜菜、甘蔗、向日葵、甘薯、甜玉米、柑橘、茶、烟草、番茄、树木、黑小麦、草皮草、萝卜、藤本植物、核桃、水田芥、西瓜、小麦、山药、红豆杉、和西葫芦。

[0175] II.靶微生物

[0176] 本文所述的调节剂靶向的微生物可以包括寄宿于宿主体内或体表的任何微生物，包括但不限于本文所述的任何细菌和/或真菌。寄宿于宿主中的微生物可以包括，例如，共生微生物(例如，为宿主提供有益的营养物或酶的内共生微生物)、共栖微生物、致病微生物、或寄生微生物。内共生微生物可以是原生内共生体或次生内共生体。共生微生物(例如，细菌或真菌)可以是宿主的专性共生体或宿主的兼性共生体。寄宿于宿主中的微生物可以通过任何传播方式获得，包括垂直传播、水平传播或多个传播源。

[0177] i.细菌

[0178] 可根据本文提供的方法和组合物靶向的示例性细菌包括但不限于，致病杆菌属物种(Xenorhabdus spp)；发光杆菌属物种(Photorhabdus spp)；Candidatus属物种；蚜虫布赫纳氏菌；布拉特杆菌属物种(Blattabacterium spp)；鲍曼属物种(Baumania spp)；威格尔斯沃思氏菌属物种(Wigglesworthia spp)；沃尔巴克氏体属物种(Wolbachia spp)；立克次体属物种(Rickettsia spp)；东方体属物种(Orientia spp.)；伴突属物种(Sodalis spp)；伯克霍尔德氏菌属物种(Burkholderia spp)；贪铜菌属物种(Cupriavidus spp)；弗兰克氏菌属物种(Frankia spp)；中华根瘤菌属物种(Snirhizobium spp)；链球菌属物种(Streptococcus spp)；沃廉菌属物种(Wolinella spp)；木杆菌属物种(Xylella spp)(例如，叶缘焦枯病菌(Xylella fastidiosa))；欧氏杆菌属物种(Erwinia spp)；农杆菌属物种(Agrobacterium spp.)；芽孢杆菌属物种(Bacillus spp)；Commensalibacter属物种(例如，Commensalibacter intestine)；类芽孢杆菌属物种(Paenibacillus spp)；链霉菌属物种(Streptomyces spp)；微球菌属物种(Micrococcus spp)；棒状杆菌属物种(Corynebacterium spp)；醋杆菌属物种(Acetobacter spp)(例如，果实醋杆菌
(Acetobacter pomorum))；蓝细菌属物种(Cyanobacteria spp)；沙门氏菌属物种
(Salmonella spp)；红球菌属物种(Rhodococcus spp)；假单胞菌属物种(Pseudomonas spp)；乳杆菌属物种(Lactobacillus spp)(例如，植物乳杆菌(Lactobacillus 
plantarum))；溶杆菌属物种(Lysobacter spp.)；草螺菌属物种(Herbaspirillum spp)；肠球菌属物种(Enterococcus spp)；葡糖杆菌属物种(Gluconobacter spp)(例如，
Gluconobacter morbifer)；产碱杆菌属物种(Alcaligenes spp)；Hamiltonella属物种；克雷伯氏菌属物种(Klebsiella spp)；类芽孢杆菌属物种(Paenibacillus spp)；沙雷氏菌属物种(Serratia spp.)；节杆菌属物种(Arthrobacter spp)；固氮菌属物种(Azotobacter spp.)；棒状杆菌属物种(Corynebacterium spp)；短杆菌属物种(Brevibacterium spp)；
Regiella属物种(例如，Regiella insecticola)；栖热菌属物种(Thermus spp)；假单胞菌属物种(Pseudomonas spp)；梭菌属物种(Clostridium spp)；被孢霉属物种(Mortierella spp.)(例如，长被孢霉(Mortierella elongata))和埃希氏杆菌属物种(Escherichia 
spp.)。在一些情况下，被调节剂靶向的细菌可以是可以从昆虫传播到植物的细菌，包括但不限于细菌性植物病原体(例如，农杆菌属物种(Agrobacterium spp.))。本文提供的方法和组合物可靶向的细菌的非限制性实例示出于表1中。在一些情况下，调节剂靶向的细菌的
16S rRNA序列与表1中列出的序列具有至少50％、60％、70％、80％、85％、90％、95％、97％、
99％、99.9％、或100％同一性。

[0179] 表1：靶细菌和宿主昆虫的实例

[0180]

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[0230]

[0231]

[0232]

[0233] 本文所述的组合物或方法可以靶向任何数量的细菌物种。例如，在一些情况下，该调节剂可以靶向单一细菌物种。在一些情况下，该调节剂可以靶向至少约1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、15、20、30、40、50、60、70、80、90、100、150、200、250、500、或更多种不同的细菌物种中的任一者。在一些情况下，该调节剂可以靶向约1至约5、约5至约10、约10至约20、约20至约50、约50至约100、约100至约200、约200至约500、约10至约50、约5至约20、或约10至约100种不同的细菌物种中的任一者。在一些情况下，该调节剂可以靶向至少约1、2、3、4、5、6、7、
8、9、10、15、20、30、40、50、60、70、80、90、100、或更多种细菌的门、纲、目、科或属中的任一者。

[0234] 在一些情况下，相比于没有被给予调节剂的宿主生物，该调节剂可使宿主中一种或多种细菌(例如，致病细菌、产生毒素的细菌)的群体增加至少约10％、20％、30％、40％、50％、60％、70％、80％、90％或更多中的任一者。在一些情况下，相比于没有被给予调节剂的宿主生物，该调节剂可使宿主中一种或多种细菌(例如，共生细菌、降解杀有害生物剂的细菌(例如降解表12中列出的杀有害生物剂中的细菌))的群体减少至少约10％、20％、
30％、40％、50％、60％、70％、80％、90％或更多中的任一者。在一些情况下，该调节剂可根除该宿主中的细菌(例如，共生细菌、降解杀有害生物剂的细菌)的群体。在一些情况下，相比于没有被给予调节剂的宿主生物，调节剂可使宿主中一种或多种致病细菌的水平提高至少约10％、20％、30％、40％、50％、60％、70％、80％、90％或更多中的任一者和/或使宿主中一种或多种共生细菌的水平降低至少约10％、20％、30％、40％、50％、60％、70％、80％、
90％或更多中的任一者。

[0235] 在一些情况下，该调节剂可以改变宿主的细菌多样性和/或细菌组成。在一些情况下，相比于没有被给予调节剂的宿主生物，调节剂可使宿主中的细菌多样性相对于起始多样性增加至少约10％、20％、30％、40％、50％、60％、70％、80％、90％或更多中的任一者。在一些情况下，相比于没有被给予调节剂的宿主生物，调节剂可使宿主中的细菌多样性相对于起始多样性减少至少约10％、20％、30％、40％、50％、60％、70％、80％、90％或更多中的任一者。

[0236] 在一些情况下，该调节剂可以改变一种或多种细菌细胞的功能、活性、生长、和/或分化。例如，该调节剂可以改变细菌中一种或多种基因的表达。在一些情况下，该调节剂可以改变细菌中一种或多种蛋白质的功能。在一些情况下，该调节剂可以改变细菌中一种或多种细胞结构(例如，细胞壁、外膜或内膜)的功能。在一些情况下，该调节剂可以杀死(例如，裂解)细菌。

[0237] 靶细菌可以寄宿于昆虫的一个或多个部分中。此外，靶细菌可以是细胞内或细胞外的。在一些情况下，细菌可以寄宿于宿主肠内或肠表的一个或多个部分中，该肠包括例如，前肠、中肠和/或后肠。在一些情况下，细菌作为细胞内细菌寄宿于宿主昆虫的细胞内。在一些情况下，细菌寄宿于宿主昆虫的含菌细胞。

[0238] 可以通过本领域已知的任何方法(如微阵列、聚合酶链式反应(PCR)、实时PCR、流式细胞术、荧光显微镜法、透射电子显微术、荧光原位杂交技术(例如FISH)、分光光度计法、基质辅助激光解析电离-质谱法(MALDI-MS)、以及DNA测序)确定宿主中细菌的群体的改变。在一些情况下，对用调节剂处理的宿主样品进行测序(例如，通过16S rRNA或rDNA的宏基因组测序)以确定在递送或给予调节剂后宿主的微生物组。在一些情况下，还对未接受调节剂的宿主样品进行测序以提供参考。

[0239] ii.真菌

[0240] 根据本文提供的方法和组合物可靶向的示例性真菌包括但不限于：Amylostereum areolatum、香柱菌属物种(Epichloe spp)、松果毕赤酵母(Pichia pinus)、荚膜汉逊酵母(Hansenula capsulate)、Daldinia decipien、长喙壳属物种(Ceratocystis spp)、长喙壳菌属物种(Ophiostoma spp)、以及Attamyces bromatificus。昆虫中发现的酵母和酵母样共生体的非限制性实例包括假丝酵母属(Candida)、梅奇酵母属(Metschnikowia)、德巴利酵母属(Debaromyces)、休哈塔假丝酵母(Scheffersomyces shehatae)和树干毕赤酵母(Scheffersomyces stipites)、Starmerella、毕赤酵母属(Pichia)、毛孢子菌属(Trichosporon)、隐球菌属(Cryptococcus)、南极假丝酵母属(Pseudozyma)，以及来自盘菌亚门(subphylum Pezizomycotina)的酵母样共生体(例如，Symbiotaphrina bucneri和Symbiotaphrina kochii)。本文的方法和组合物可靶向的酵母的非限制性实例列于表2中。

[0241] 表2：昆虫中酵母的实例

[0242]

[0243]

[0244]

[0245]

[0246]

[0247]

[0248]

[0249]

[0250]

[0251] 本文所述的组合物或方法可以靶向任何数量的真菌物种。例如，在一些情况下，该调节剂可以靶向单一真菌物种。在一些情况下，该调节剂可以靶向至少约1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、15、20、30、40、50、60、70、80、90、100、150、200、250、500、或更多种不同的真菌物种中的任一者。在一些情况下，该调节剂可以靶向约1至约5、约5至约10、约10至约20、约20至约50、约50至约100、约100至约200、约200至约500、约10至约50、约5至约20、或约10至约100种不同的真菌物种中的任一者。在一些情况下，该调节剂可以靶向至少约1、2、3、4、5、6、7、
8、9、10、15、20、30、40、50、60、70、80、90、100、或更多种真菌的门、纲、目、科或属中的任一者。

[0252] 在一些情况下，相比于没有被给予调节剂的宿主生物，该调节剂可使宿主中一种或多种真菌(例如，致病真菌或寄生真菌)的群体增加至少约10％、20％、30％、40％、50％、60％、70％、80％、90％或更多中的任一者。在一些情况下，相比于没有被给予调节剂的宿主生物，该调节剂可使宿主中一种或多种真菌(例如，共生真菌)的群体减少至少约10％、
20％、30％、40％、50％、60％、70％、80％、90％或更多中的任一者。在一些情况下，该调节剂可以根除宿主中的真菌(例如，共生真菌)的群体。在一些情况下，相比于没有被给予调节剂的宿主生物，该调节剂可使宿主中一种或多种共生真菌的水平提高至少约10％、20％、
30％、40％、50％、60％、70％、80％、90％或更多中的任一者和/或可使宿主中一种或多种共生真菌的水平降低至少约10％、20％、30％、40％、50％、60％、70％、80％、90％或更多中的任一者。

[0253] 在一些情况下，该调节剂可以改变宿主的真菌多样性和/或真菌组成。在一些情况下，相比于没有被给予调节剂的宿主生物，该调节剂可使宿主中的真菌多样性相对于起始多样性增加至少约10％、20％、30％、40％、50％、60％、70％、80％、90％或更多中的任一者。在一些情况下，相比于没有被给予调节剂的宿主生物，该调节剂可使宿主中的真菌多样性相对于起始多样性减少至少约10％、20％、30％、40％、50％、60％、70％、80％、90％或更多中的任一者。

[0254] 在一些情况下，该调节剂可以改变一种或多种真菌的功能、活性、生长、和/或分化。例如，该调节剂可以改变真菌中一种或多种基因的表达。在一些情况下，该调节剂可以改变真菌中一种或多种蛋白质的功能。在一些情况下，该调节剂可以改变真菌中一种或多种细胞组分的功能。在一些情况下，该调节剂可以杀死真菌。

[0255] 此外，靶真菌可以寄宿于昆虫的一个或多个部分中。在一些情况下，真菌可以寄宿于昆虫肠内或肠表的一个或多个部分中，该肠包括例如，前肠、中肠和/或后肠。在一些情况下，真菌在细胞外生活在宿主的血淋巴、脂肪体或在特化结构中。

[0256] 可以通过本领域已知的任何方法(如微阵列、聚合酶链式反应(PCR)、实时PCR、流式细胞术、荧光显微镜法、透射电子显微术、荧光原位杂交技术(例如FISH)、分光光度计法、基质辅助激光解析电离-质谱法(MALDI-MS)、以及DNA测序)确定宿主中真菌的群体的改变。在一些情况下，对用调节剂处理的宿主样品进行测序(例如，通过宏基因组测序)以确定在递送或给予调节剂后宿主的微生物组。在一些情况下，还对未接受调节剂的宿主样品进行测序以提供参考。

[0257] III.调节剂

[0258] 本文提供的方法和组合物的调节剂可以包括噬菌体、多肽、小分子、抗生素、次生代谢物、细菌、真菌、或其任何组合。

[0259] i.噬菌体

[0260] 本文所述的调节剂可以包括噬菌体(例如，裂解性噬菌体或非裂解性噬菌体)。在一些情况下，有效浓度的本文所述的任何噬菌体可以改变寄宿于本文所述的宿主(例如，蚜虫)中的一种或多种微生物(如本文所述的，例如布赫纳氏菌属物种(Buchnera spp.))的水平、活性或代谢，该调节导致该宿主的适合度降低(例如，如本文概述的)。在一些情况下，该调节剂包括选自以下目的至少一种噬菌体：复层病毒科(Tectiviridae)、肌尾噬菌体科(Myoviridae)、长尾噬菌体科(Siphoviridae)、短尾噬菌体科(Podoviridae)、有尾噬菌体目(Caudovirales)、脂毛噬菌体科(Lipothrixviridae)、古噬菌体科(Rudiviridae)、或线状病毒目(Ligamenvirales)。在一些情况下，该组合物包括选自以下科的至少一种噬菌体：肌尾噬菌体科(Myoviridae)、长尾噬菌体科(Siphoviridae)、短尾噬菌体科
(Podoviridae)、脂毛噬菌体科(Lipothrixviridae)、古噬菌体科(Rudiviridae)、
Ampullaviridae、Bicaudaviridae、Clavaviridae、覆盖噬菌体科(Corticoviridae)、囊状噬菌科(Cystoviridae)、纺锤形噬菌体科(Fuselloviridae)、Gluboloviridae、滴状病毒科(Guttaviridae)、丝状噬菌体科(Inoviridae)、光滑噬菌体科(Leviviridae)、微小噬菌体科(Microviridae)、芽生噬菌体科(Plasmaviridae)、和复层病毒科(Tectiviridae)。在本方法和组合物中有用的噬菌体的另外的非限制性实例列于表3中。

[0261] 表3：噬菌体和靶细菌的实例

[0262]

[0263]

[0264]

[0265] 在一些情况下，调节剂包括裂解性噬菌体。因此，在将裂解性噬菌体递送至寄宿于宿主的细菌细胞后，该噬菌体引起靶细菌细胞中的裂解。在一些情况下，该裂解性噬菌体靶向并杀死寄宿于宿主昆虫的细菌以降低宿主的适合度。可替代地或另外地，该调节剂的噬菌体可以是非裂解性噬菌体(也称为溶原性噬菌体或温和噬菌体)。因此，在将非裂解性噬菌体递送至寄宿于宿主的细菌细胞后，该细菌细胞可保持存活并能够稳定地维持噬菌体基因组中编码的基因的表达。在一些情况下，非裂解性噬菌体用于改变寄宿于宿主昆虫中细菌中的基因表达以降低宿主的适合度。在一些情况下，该调节剂包括裂解性噬菌体和非裂解性噬菌体的混合物。

[0266] 在某些情况下，该噬菌体是天然存在的噬菌体。例如，天然存在的噬菌体可以分离自具有不同噬菌体的混合物的环境样品。可以使用本领域已知的方法分离天然存在的噬菌体，以分离、纯化和鉴定靶向特定微生物(例如昆虫宿主中的细菌内共生体，例如蚜虫中的布赫纳氏菌属物种(Buchnera spp.))的噬菌体。可替代地，在某些情况下，该噬菌体可以是基于天然存在的噬菌体工程化的。

[0267] 本文所述的调节剂可包括具有窄的或宽的细菌靶范围的噬菌体。在一些情况下，该噬菌体具有窄的细菌靶范围。在一些情况下，该噬菌体是具有大的细菌靶范围的混杂的噬菌体。例如，该混杂的噬菌体可以靶向寄宿于宿主的至少约5、10、20、30、40、50、或更多中的任一者的细菌。具有窄细菌靶范围的噬菌体可靶向宿主中的特异性细菌菌株，而不影响该宿主中另一种细菌，例如非靶向的细菌。例如，该噬菌体可以靶向不超过寄宿于宿主的约50、40、30、20、10、8、6、4、2、或1中的任一者的细菌。

[0268] 本文所述的组合物可以包括任何数量的噬菌体，如至少约1、2、3、4、5、10、15、20、30、40、50、100或更多个噬菌体中的任一者。在一些情况下，该组合物包括来自一个或多个(例如，2、3、4、5、6、7、8、9、10、或多种噬菌体)科，一个或多个目(例如，2、3、4、5、6、7、8、9、
10、或多种噬菌体)，或一个或多个物种(例如，1、2、3、4、5、10、15、20、30、40、50、100、或多种噬菌体)的噬菌体。包括一种或多种噬菌体的组合物在本文中也称为“噬菌体混合物”。噬菌体混合物是有用的，因为它们允许靶向更广泛的细菌的宿主范围。此外，它们允许每种细菌菌株(即亚种)被多个正交噬菌体靶向，从而防止或显著延迟抗性的发作。在一些情况下，混合物包括靶向一种细菌物种的多种噬菌体。在一些情况下，混合物包括靶向多种细菌物种的多种噬菌体。在一些情况下，单噬菌体“混合物”包括靶向物种内的许多菌株的单个混杂的噬菌体(即具有大宿主范围的噬菌体)。

[0269] 本文所述的调节剂中噬菌体的合适浓度取决于如功效、存活率、噬菌体的可传递性、组合物中不同噬菌体的数量和/或溶素类型、配制品和组合物的施用方法等因素。在一些情况下，噬菌体是处于液体或固体配制品的形式。在一些情况下，本文所述的组合物的任一个中每种噬菌体的浓度为至少约102、103、104、105、106、107、108、109、1010或更多pfu/ml中的任一者。在一些情况下，本文所述的组合物的任一个中每种噬菌体的浓度为不超过约102、103、104、105、106、107、108、109pfu/ml中的任一者。在一些情况下，组合物中每种噬菌体的浓度为约102至约103、约103至约104、约104至约105、约105至约106、约107至约108、约108至约109、约102至约104、约104至约106、约106至约109、或约103至约108pfu/ml中的任一者。在一些情况下，其中组合物包括至少两种类型的噬菌体，每种类型的噬菌体的浓度可以相同或不同。例如，在一些情况下，混合物中一种噬菌体的浓度为约108pfu/ml，并且混合物中第二噬菌体的浓度为约106pfu/ml。

[0270] 包括如本文所述的噬菌体的调节剂可以按足以实现以下的量和时间与靶宿主接触：(a)达到靶宿主内噬菌体浓度的靶水平(例如，预定或阈值水平)；(b)达到靶宿主肠内噬菌体浓度的靶水平(例如，预定或阈值水平)；(c)达到靶宿主含菌细胞内噬菌体浓度的靶水平(例如，预定或阈值水平)；(d)调节靶宿主中一种或多种微生物(例如内共生体)的水平或活性；或/和(e)调节靶宿主的适合度。

[0271] 如实例1-3和25所示，噬菌体(例如，一种或多种天然存在的噬菌体)可用作靶向昆虫宿主(如蚜虫)中的内共生细菌，如布赫纳氏菌属物种(Buchnera spp)以降低(例如，如本文概述的)宿主的适合度的调节剂。

[0272] ii.多肽

[0273] 许多种多肽(例如，细菌素、R型细菌素、根瘤富含半胱氨酸肽、抗微生物肽、溶素、或含菌细胞调节肽)可用于本文所述的组合物和方法中。在一些情况下，有效浓度的本文所述的任何肽或多肽可以改变寄宿于宿主(例如蚜虫)中的一种或多种微生物(如本文所述的，例如布赫纳氏菌属物种(Buchnera spp))的水平、活性或代谢，该改变导致该宿主的适合度降低(例如，如本文概述的)。本文包括的多肽可以包括天然存在的多肽或重组产生的变体。例如，该多肽可以是本文所述的任何多肽的功能活性变体，例如在指定区域或整个序列上与本文所述的多肽或天然存在的多肽的序列具有至少70％、71％、72％、73％、74％、75％、76％、77％、78％、79％、80％、81％、82％、83％、84％、85％、86％、87％、88％、89％、
90％、91％、92％、93％、94％、95％、96％、97％、98％、或99％同一性。

[0274] 包括如本文所述的多肽的调节剂可以按足以实现以下的量和时间与靶宿主接触：(a)达到靶宿主内浓度的靶水平(例如，预定或阈值水平)；(b)达到靶宿主肠内浓度的靶水平(例如，预定或阈值水平)；(c)达到靶宿主含菌细胞内浓度的靶水平(例如，预定或阈值水平)；(d)调节靶宿主中一种或多种微生物(例如内共生体)的水平或活性；或/和(e)调节靶宿主的适合度。

[0275] 下文讨论的多肽调节剂，即细菌素、溶素、抗微生物肽、根瘤富含半胱氨酸肽和含菌细胞调节肽，可用于改变靶微生物(例如，布赫纳氏菌属(Buchnera))的水平、活性或代谢，如在用于降低昆虫(例如，蚜虫)的适合度的部分所指示的。

[0276] (a)细菌素

[0277] 本文所述的调节剂可以包括细菌素。在一些情况下，该细菌素是由革兰氏阳性细菌天然产生的，例如假单胞菌属(Pseudomonas)、链霉菌属(Streptomyces)、芽孢杆菌属(Bacillus)、葡萄球菌属(Staphylococcus)、或乳酸菌(LAB，如乳酸乳球菌(Lactococcus lactis))。在一些情况下，该细菌素是由革兰氏阴性细菌天然产生的，例如蜂房哈夫尼菌(Hafnia alvei)、弗氏柠檬酸杆菌(Citrobacter freundii)、产酸克雷伯氏菌(Klebsiella oxytoca)、肺炎克雷伯氏菌(Klebsiella pneumonia)、阴沟肠杆菌(Enterobacter cloacae)、Serratia plymithicum、野油菜黄单胞菌(Xanthomonas campestris)、软腐欧氏杆菌(Erwinia carotovora)、青枯雷尔氏菌(Ralstonia solanacearum)、或大肠杆菌
(Escherichia coli)。示例性细菌素包括但不限于I-IV类LAB抗生素(例如羊毛硫抗生素)、大肠杆菌素、小菌素(microcin)和脓菌素。细菌素的非限制性实例列于表4中。

[0278] 表4：细菌素的实例

[0279]

[0280]

[0281]

[0282] 在一些情况下，该细菌素是由革兰氏阴性细菌产生的大肠杆菌素、脓菌素、或小菌素(microcin)。在一些情况下，该细菌素是大肠杆菌素。大肠杆菌素可以是A组大肠杆菌素(例如，使用Tol系统以渗透靶细菌的外膜)或B组大肠杆菌素(例如，使用Ton系统以渗透靶细菌的外膜)。在一些情况下，该细菌素是小菌素(microcin)。小菌素(microcin)可以是I类小菌素(microcin)(例如，＜5kDa，具有翻译后修饰)或II类小菌素(microcin)(例如，5-10kDa，具有或不具有翻译后修饰)。在一些情况下，II类小菌素(microcin)是IIa类小菌素(microcin)(例如，需要多于一个基因以合成和组装功能肽)或IIb类小菌素(microcin)(例如，在C-末端具有或不具有翻译后修饰的线性肽)。在一些情况下，该细菌素是脓菌素。在一些情况下，该脓菌素是R-脓菌素、F-脓菌素、或S-脓菌素。

[0283] 在一些情况下，该细菌素是由革兰氏阳性细菌产生的I类、II类、III类、或IV类、细菌素。在一些情况下，该调节剂包括I类细菌素(例如，由革兰氏阳性细菌产生的含有羊毛硫氨酸的抗生素(羊毛硫抗生素))。I类细菌素或羊毛硫抗生素可以是低分子量肽(例如，小于约5kDa)并且可以具有翻译后修饰的氨基酸残基(例如，羊毛硫氨酸、β-甲基羊毛硫氨酸、或脱水氨基酸)。

[0284] 在一些情况下，该细菌素是II类细菌素(例如，由革兰氏阳性细菌产生的非羊毛硫抗生素)。许多是带正电荷的不含羊毛硫氨酸的肽，这些肽(与羊毛硫抗生素不同)不进行广泛的翻译后修饰。II类细菌素可能属于以下子类之一：“片球菌素(pediocin)样”细菌素(例如，片球菌素(pediocin)PA-1和肉食杆菌素(carnobacteriocin)X(IIa类))；双肽细菌素(例如，乳酸菌素F和ABP-118(IIb类))；环形细菌素(例如，环状细菌素(Carnocyclin)A和肠道菌素AS-48(IIc类))；或未修饰的、线性的、非片球菌素(pediocin)样细菌素(例如，表皮菌素(epidermicin)NI01和乳球菌素A(IId类))。

[0285] 在一些情况下，该细菌素是III类细菌素(例如，由革兰氏阳性细菌产生的)。III类细菌素可以具有大于10kDa的分子量并且可以是热不稳定的蛋白质。III类细菌素可以进一步细分为IIIA组细菌素和IIIB组细菌素。IIIA组细菌素包括溶菌酶，其通过细胞壁的裂解来杀死敏感菌株，例如Enterolisin A。IIIB组细菌素包括非裂解性蛋白质，例如Caseicin 80、Helveticin J和乳酸菌素B。

[0286] 在一些情况下，该细菌素是IV类细菌素(例如，由革兰氏阳性细菌产生的)。IV类细菌素是一组复合物蛋白，与其他脂质或碳水化合物部分相关，似乎是活性所需的。它们是相对疏水且热稳定的。IV类细菌素的实例leuconocin S、乳酸菌素27、和乳酸菌素S。

[0287] 在一些情况下，该细菌素是R型细菌素。R型细菌素是收缩性杀菌蛋白复合物。一些R型细菌素具有收缩性的噬菌体尾样结构。噬菌体尾丝蛋白的C-末端区域决定靶结合特异性。它们可以通过受体结合蛋白(例如尾丝)附着于靶细胞。附着之后是鞘收缩以及通过靶细菌的包膜插入核心。核心穿透导致细胞膜电位的快速去极化并促使细胞死亡。与单一R型细菌素颗粒接触可导致细胞死亡。例如，R型细菌素可以是不耐热的、温和酸抗性的、胰蛋白酶抗性的、可通过离心沉降的、可通过电子显微镜分辨的、或其组合。其他R型细菌素可以是包括多种蛋白质、多肽或亚单元的复合物分子，并且可以类似于肌尾噬菌体科(Myoviridae)的细菌噬菌体的尾结构。在天然存在的R型细菌素中，亚单元结构可以由细菌基因组编码，例如艰难梭状芽孢杆菌(C.Diffilcile)或铜绿假单胞菌(P.Aeruginosa)的基因组并形成R型细菌素以用作针对其他细菌的天然防御。在一些情况下，该R型细菌素是脓菌素。在一些情况下，该脓菌素是R-脓菌素、F-脓菌素、或S-脓菌素。

[0288] 在一些情况下，该细菌素是本文所述的细菌素的功能活性变体。在一些情况下，该细菌素的变体例如在指定区域或整个序列上与本文所述的细菌素或天然存在的细菌素的序列具有至少70％、71％、72％、73％、74％、75％、76％、77％、78％、79％、80％、81％、82％、83％、84％、85％、86％、87％、88％、89％、90％、91％、92％、93％、94％、95％、96％、97％、
98％、或99％同一性。

[0289] 在一些情况下，根据标准方法，该细菌素可以被生物工程化以调节其生物活性(例如，增加或减少或调节)或指定其靶微生物。在其他情况下，该细菌素是由微生物细胞的翻译机制(例如核糖体等)产生的。在一些情况下，该细菌素是化学合成的。一些细菌素可以衍生自多肽前体。该多肽前体可以经历切割(例如，通过蛋白酶加工)以产生细菌素本身的多肽。因此，在一些情况下，该细菌素由前体多肽产生。在一些其他情况下，该细菌素包括已经历翻译后修饰(例如切割，或添加一个或多个官能团)的多肽。

[0290] 可以在用于本文所述的任何用途的组合物中配制本文所述的细菌素。本文披露的组合物可以包括任何数量或类型(例如，类别)的细菌素，如至少约1种细菌素、2、3、4、5、10、15、20、30、40、50、100、或更多种细菌素中的任一者。本文所述的组合物中每种细菌素的合适的浓度取决于如功效、细菌素的稳定性、组合物中不同细菌素类型的数量、配制品和组合物的施用方法等因素。在一些情况下，液体组合物中每种细菌素是从约0.01ng/ml至约
100mg/mL。在一些情况下，固体组合物中每种细菌素是从约0.01ng/g至约100mg/g。在一些情况下，其中该组合物包括至少两种类型的细菌素，每种类型的细菌素的浓度可以相同或不同。在一些情况下，该细菌素提供于包括分泌该细菌素的细菌细胞的组合物中。在一些情况下，该细菌素提供于包括多肽(例如，从细菌细胞分离的多肽)的组合物中。

[0291] 细菌素可以中和(例如，杀死)除制备多肽的个体细菌细胞以外的至少一种微生物，包括与细菌细胞和其他微生物细胞克隆相关的细胞。因此，细菌细胞可通过分泌细菌素对多种微生物有机体发挥细胞毒性或生长抑制作用。在一些情况下，细菌素经由细胞质膜孔形成、细胞壁干扰(例如，肽聚糖酶活性)或核酸酶活性(例如，DNA酶活性、16S rRNA酶活性或tRNA酶活性)靶向并杀死寄宿于宿主中的一种或多种细菌。

[0292] 在一些情况下，该细菌素具有中和活性。细菌素的中和活性可以包括但不限于阻止微生物繁殖或细胞毒性。一些细菌素具有细胞毒活性，并且因此可以杀死微生物有机体，例如细菌、酵母、藻类等。一些细菌素可以抑制微生物有机体(例如细菌、酵母、藻类等)的繁殖，例如通过阻止细胞周期。

[0293] 在一些情况下，该细菌素具有杀伤活性。细菌素的杀伤机制对每组细菌素都是特异性的。在一些情况下，该细菌素具有窄谱生物活性。已知细菌素针对其靶菌株具有非常高的效力。一些细菌素活性仅限于与细菌素生产菌株密切相关的菌株(窄谱生物活性)。在一些情况下，该细菌素针对宽范围的属具有广谱生物活性。

[0294] 在一些情况下，细菌素与靶细菌细胞膜上的受体分子或对接分子相互作用。例如，乳链菌肽针对其靶细菌菌株非常有效，即使在一位数的纳摩尔浓度下也显示出抗微生物活性。乳链菌肽分子已被证明与脂质II结合，脂质II是肽聚糖亚单元从细胞质到细胞壁的主要转运体。

[0295] 在一些情况下，该细菌素具有抗真菌活性。已经鉴定了许多具有抗酵母或抗真菌活性的细菌素。例如，已经显示来自芽孢杆菌属(Bacillus)的细菌素具有针对一些酵母菌株的中和活性(参见，例如，Adetunji和Olaoye，Malaysian Journal of Microbiology[马来西亚微生物学杂志]9：130-13，2013)。在另一个实例中，已显示粪肠球菌(Enterococcus faecalis)肽具有针对假丝酵母属(Candida)物种的中和活性(参见，例如，Shekh和Roy，BMC Microbiology[BMC微生物学]12：132，2012)。在另一个实例中，已显示来自假单胞菌属(Pseudomonas)的细菌素具有针对真菌的中和活牲，如月状弯孢霉(Curvularia lunata)、镰刀菌属(Fusarium)物种、长蠕孢属(Helminthosporium)物种、和离蠕孢属(Biopolaris)物种(参见，例如，Shalani和Srivastava，The Internet Journal of Microbiology[网络微生物学杂志]，第5卷，第2期，2008)。在另一个实例中，已显示来自枯草芽孢杆菌(B.subtilis)的botrycidin AJ1316和alirin B1具有抗真菌活性。

[0296] 包括如本文所述的细菌素的调节剂可以按足以实现以下的量和时间与靶宿主接触：(a)达到靶宿主内细菌素浓度的靶水平(例如，预定或阈值水平)；(b)达到靶宿主肠内细菌素浓度的靶水平(例如，预定或阈值水平)；(c)达到靶宿主含菌细胞内细菌素浓度的靶水平(例如，预定或阈值水平)；(d)调节靶宿主中一种或多种微生物(例如内共生体)的水平或活性；或/和(e)调节靶宿主的适合度。

[0297] 如实例4、5和13所示，细菌素(例如，colA或乳链菌肽)可用作靶向昆虫宿主(如蚜虫)中的内共生细菌(如布赫纳氏菌属物种(Buchnera spp.))以降低(例如，如本文概述的)宿主的适合度的调节剂。

[0298] (b)溶素

[0299] 本文所述的调节剂可包括溶素(例如，也称为胞壁质水解酶或肽聚糖自溶素)。可以使用任何适用于抑制寄宿于宿主的细菌的溶素。在一些情况下，该溶素是可以由细菌细胞天然产生的溶素。在一些情况下，该溶素是可以由细菌噬菌体天然产生的溶素。在一些情况下，该溶素从抑制寄宿于宿主的细菌的噬菌体获得。在一些情况下，该溶素是基于天然存在的溶素工程化的。在一些情况下，将该溶素工程化使其由宿主细菌分泌，例如通过向溶素中引入信号肽。在一些情况下，该溶素与噬菌体穴蛋白组合使用。在一些情况下，溶素由对溶素不敏感的重组细菌宿主表达。在一些情况下，该溶素用于抑制寄宿于宿主的革兰氏阳性或革兰氏阴性细菌。

[0300] 该溶素可以是任何类的溶素，并且可以具有一种或多种底物特异性。例如，该溶素可以是糖苷酶，内肽酶、羧肽酶或其组合。在一些情况下，该溶素裂解细胞壁的糖部分中的β-1-4糖苷键，连接细菌细胞壁的糖和肽部分的酰胺键，和/或细胞壁的肽部分之间的肽键。该溶素可以属于一个或多个特异性溶素组，这取决于肽聚糖内的切割位点。在一些情况下，该溶素是N-乙酰基-β-D-胞壁酸酶(例如溶菌酶)、裂解性转糖基酶、N-乙酰基-β-D-氨基葡萄糖苷酶、N-乙酰胞壁酰基-L-丙氨酸酰胺酶、L，D-内肽酶、D，D-内肽酶、D，D-羧肽酶、L，D-羧肽酶或L，D-转肽酶。溶素的非限制性实例及其活性列于表5中。

[0301] 表5：溶素的实例

[0302]

[0303]

[0304]

[0305]

[0306]

[0307]

[0308]

[0309]

[0310]

[0311]

[0312]

[0313]

[0314]

[0315]

[0316]

[0317]

[0318]

[0319] 在一些情况下，该溶素是本文所述的溶素的功能活性变体。在一些情况下，该溶素的变体例如在指定区域或整个序列上与本文所述的溶素或天然存在的溶素的序列具有至少70％、71％、72％、73％、74％、75％、76％、77％、78％、79％、80％、81％、82％、83％、84％、85％、86％、87％、88％、89％、90％、91％、92％、93％、94％、95％、96％、97％、98％、或99％的同一性。

[0320] 在一些情况下，该溶素可以被生物工程化以调节其生物活性(例如，增加或减少或调节)或指定其靶微生物。在一些情况下，该溶素是由微生物细胞的翻译机制(例如核糖体等)产生的。在一些情况下，该溶素是化学合成的。在一些情况下，该溶素衍生自多肽前体。该多肽前体可以经历切割(例如，通过蛋白酶加工)以产生溶素本身的多肽。因此，在一些情况下，该溶素由前体多肽产生。在一些情况下，该溶素包括已经历翻译后修饰(例如切割，或添加一个或多个官能团)的多肽。

[0321] 可以在用于本文所述的任何用途的组合物中配制本文所述的溶素。本文披露的组合物可以包括任何数量或类型(例如，类别)的溶素，如至少约1种溶素、2、3、4、5、10、15、20、或更多种溶素中的任一者。组合物中每种溶素的合适的浓度取决于如功效、溶素的稳定性、不同溶素的数量、配制品和组合物的施用方法等因素。在一些情况下，液体组合物中每种溶素是从约0.1ng/mL至约100mg/mL。在一些情况下，固体组合物中每种溶素是从约0.1ng/g至约100mg/g。在一些情况下，其中该组合物包括至少两种类型的溶素，每种类型的溶素的浓度可以相同或不同。

[0322] 包括如本文所述的溶素的调节剂可以按足以实现以下的量和时间与靶宿主接触：(a)达到靶宿主内溶素浓度的靶水平(例如，预定或阈值水平)；(b)达到靶宿主肠内溶素浓度的靶水平(例如，预定或阈值水平)；(c)达到靶宿主含菌细胞内溶素浓度的靶水平(例如，预定或阈值水平)；(d)调节靶宿主中一种或多种微生物(例如内共生体)的水平或活性；或/和(e)调节靶宿主的适合度。

[0323] (c)抗微生物肽

[0324] 本文所述的调节剂可以包括抗微生物肽(AMP)。可以使用任何适用于抑制寄宿于宿主的微生物的AMP。AMP是一组多样化的分子，根据其氨基酸组成和结构分为亚组。AMP可以衍生或产生白天然产生AMP(包括衍生自植物的AMP(例如，copsin)、衍生自昆虫的AMP(例如，果蝇菌素、蝎肽(例如，Uy192、UyCT3、D3、D10、Uy17、Uy192)、蜂毒肽(Mastoparan)、poneratoxin、杀菌肽、家蚕抗菌肽、蜂毒素)、衍生自蛙类的AMP(例如，爪蟾抗菌肽、皮抑菌肽、aurein)，以及衍生自哺乳动物的AMP(例如，组织蛋白酶抑制素(cathelicidin)、防御素和抗菌肽))的任何生物。在一些情况下，AMP可以是蝎肽，如Uy192(5′-FLSTIWNGIKGLL-3′；SEQ ID NO：232)、UyCT3(5′-LSAIWSGIKSLF-3；SEQ ID NO：233)、D3(5′-LWGKLWEGVKSLI-3′；
SEQ ID NO：234)、和D10(5′-FPFLKLSLKIPKSAIKSAIKRL-3′；SEQ ID NO：235)、Uy17(5′-ILSAIWSGIKGLL-3′；SEQ ID NO：236)、或其组合。在一些情况下，该抗微生物肽可以与以下的一种或多种具有至少90％序列同一性(例如，至少90％、92％、94％、96％、98％、或100％序列同一性)：杀菌肽(SEQ ID NO：82)、蜂毒素、copsin、果蝇抗真菌肽(SEQ ID NO：93)、皮离蛋白(SEQ ID NO：81)、果蝇抗菌肽(SEQ ID NO：83)、家蚕抗菌肽(SEQ ID NO：84)、无锡亚肽(SEQ ID NO：85)、蜜蜂肽(SEQ ID NO：86)、蜜蜂抗菌肽(SEQ ID NO：87)、猪抗菌肽(SEQ ID NO：88)、吲哚力西丁(SEQ ID NO：89)、抗菌肽(SEQ ID NO：90)、速普肽(SEQ ID NO：91)、或防御素(SEQ ID NO：92)。AMP的非限制性实例列于表6中。

[0325] 表6：抗微生物肽的实例

[0326]

[0327]

[0328]

[0329] AMP可以针对任何数量的靶微生物具有活性。在一些情况下，该AMP可具有抗细菌和/或抗真菌活性。在一些情况下，该AMP可具有窄谱生物活性或广谱生物活性。例如，一些AMP仅靶向并杀死很少数种类的细菌或真菌，而其他AMP则针对革兰氏阴性和革兰氏阳性细菌两者以及真菌都具有活性。

[0330] 此外，该AMP可以通过许多已知的作用机制起作用。例如，细胞质膜是AMP的常见靶，但AMP也可能干扰DNA和蛋白质合成、蛋白质折叠和细胞壁合成。在一些情况下，具有净阳离子电荷和两亲性质的AMP破坏细菌膜，导致细胞裂解。在一些情况下，AMP可进入细胞并与细胞内靶相互作用以干扰DNA、RNA、蛋白质或细胞壁合成。除杀死微生物外，AMP已证明还具有许多免疫调节功能，这些功能与感染的清除有关，包括以下的能力：改变宿主基因表达、充当趋化因子和/或诱导趋化因子产生、抑制脂多糖诱导的促炎细胞因子产生、促进伤口愈合、并调节树突细胞和适应性免疫应答细胞的反应。

[0331] 在一些情况下，该AMP是本文所述的AMP的功能活性变体。在一些情况下，该AMP的变体例如在指定区域或整个序列上与本文所述的AMP或天然衍生的AMP的序列具有至少70％、71％、72％、73％、74％、75％、76％、77％、78％、79％、80％、81％、82％、83％、84％、
85％、86％、87％、88％、89％、90％、91％、92％、93％、94％、95％、96％、97％、98％、或99％的同一性。

[0332] 在一些情况下，该AMP可以被生物工程化以调节其生物活性(例如，增加或减少或调节)或指定其靶微生物。在一些情况下，该AMP是由细胞的翻译机制(例如核糖体等)产生的。在一些情况下，该AMP是化学合成的。在一些情况下，该AMP衍生自多肽前体。该多肽前体可以经历切割(例如，通过蛋白酶加工)以产生AMP本身的多肽。因此，在一些情况下，该AMP由前体多肽产生。在一些情况下，该AMP包括已经历翻译后修饰(例如切割，或添加一个或多个官能团)的多肽。

[0333] 可以在用于本文所述的任何用途的组合物中配制本文所述的AMP。本文披露的组合物可以包括任何数量或类型(例如，类别)的AMP，如至少约1种AMP、2、3、4、5、10、15、20、或更多种AMP中的任一者。例如，组合物可以包括AMP的混合物(例如，蝎肽(例如UyCT3、D3、D10和Uy17)的混合物)。组合物中每种AMP的合适的浓度取决于如功效、AMP的稳定性、组合物中不同AMP的数量、配制品和组合物的施用方法等因素。在一些情况下，液体组合物中的每种AMP是从约0.1ng/mL至约100mg/mL(约0.1ng/mL至约1ng/mL、约1ng/mL至约10ng/mL、约10ng/mL至约100ng/mL、约100ng/mL至约1000ng/mL、约1mg/mL至约10mg/mL、约10mg/mL至约
100mg/mL)。在一些情况下，固体组合物中的每种AMP是从约0.1ng/g至约100mg/g(约0.1ng/g至约1ng/g、约1ng/g至约10ng/g、约10ng/g至约100ng/g、约100ng/g至约1000ng/g、约1mg/g至约10mg/g、约10mg/g至约100mg/g)。在一些情况下，其中该组合物包括至少两种类型的AMP，每种类型的AMP的浓度可以相同或不同。

[0334] 包括如本文所述的AMP的调节剂可以按足以实现以下的量和时间与靶宿主接触：(a)达到靶宿主内AMP浓度的靶水平(例如，预定或阈值水平)；(b)达到靶宿主肠内AMP浓度的靶水平(例如，预定或阈值水平)；(c)达到靶宿主含菌细胞内AMP浓度的靶水平(例如，预定或阈值水平)；(d)调节靶宿主中一种或多种微生物(例如内共生体)的水平或活性；或/和(e)调节靶宿主的适合度。

[0335] 如实例17-19所示，AMP(如蝎肽)可用作靶向昆虫宿主(如蚜虫)中的内共生细菌(如布赫纳氏菌属物种(Buchnera spp.))以降低(例如，如本文概述的)宿主的适合度的调节剂。

[0336] (d)根瘤富含半胱氨酸肽

[0337] 本文所述的调节剂可以包括根瘤富含半胱氨酸肽(NCR肽)。NCR肽在某些豆科植物中产生，并且在植物与来自根瘤菌科(Rhizobiaceae，rhizobia)的细菌的互利、固氮共生中起重要作用，导致根瘤的形成，其中植物细胞含有数千个细胞内的内共生体。NCR肽具有抗微生物剂特性，其导致细菌的不可逆的终末分化过程，例如，使细菌膜透化、破坏细胞分裂或抑制蛋白质合成。例如，在感染了苜蓿中华根瘤菌(Sinorhizobium meliloti)的蒺藜状苜蓿(Medicago truncatula)根瘤细胞中，产生了数百种NCR肽，其导致细菌不可逆地分化成大的多倍体固氮拟杆菌。NCR肽的非限制性实例列于表7中。

[0338] 表7：NCR肽的实例

[0339]

[0340]

[0341]

[0342]

[0343]

[0344]

[0345]

[0346]

[0347]

[0348]

[0349]

[0350] 本领域已知的任何NCR肽都适用于在本文所述的方法或组合物中使用。产生NCR肽的植物包括但不限于碗豆(Pisum sativum，pea)、紫云英(Astragalus sinicus)(IRLC豆类)、菜豆(Phaseolus vulgaris)(豆(bean))、豇豆(Vigna unguiculata，cowpea)、蒺藜状苜蓿(Medicago truncatula)(桶形三叶草(barrel clover))、和百脉根(Lotus japonicus)。例如，从蒺藜状苜蓿(M.truncatula)基因组序列中预测了600多种潜在的NCR肽，并且已经在通过质谱法在从根瘤分离的细胞中检测到近150种不同的NCR肽。

[0351] 本文描述的NCR肽可以是成熟或未成熟的NCR肽。未成熟的NCR肽具有易位到内质网中所需的并且在易位后裂解的C-末端信号肽。NCR肽的N-末端包括可以是可裂解的信号肽，用于靶向分泌途径。NCR肽通常是具有稳定其结构的二硫桥的小肽。成熟的NCR肽具有在约20至约60个氨基酸、约25至约55个氨基酸、约30至约50个氨基酸、约35至约45个氨基酸、或其间任何范围的范围内的长度。NCR肽可以包括半胱氨酸残基的保守序列，其中肽序列的其余部分高度可变。NCR肽通常具有约四个或八个半胱氨酸。

[0352] NCR肽可以是阴离子的、中性的或阳离子的。在一些情况下，具有pI大于约八的合成阳离 子N CR肽 具有抗 微生 物活性 。例如 ，NC R2 47 (pI＝ 10 .15)(RNGCIVDPRCPYQQCRRPLYCRRR；SEQ ID NO：198)和NCR335(pI＝11.22)均对革兰氏阴性和革兰氏阳性细菌以及真菌有效。在一些情况下，中性和/或阴离子NCR肽，如NCR001(MAQFLLFVYSLIIFLSLFFGEAAFERTETRMLTIPCTSDDNCPKVISPCHTKCFDGFCGWYIEGSYEGP；SEQ ID NO：199)在pI大于约8时不具有抗微生物活性。

[0353] 在一些情况下，该NCR肽可有效杀死细菌。在一些情况下，该NCR肽可有效杀死S.meliloti、致病杆菌属物种(Xenorhabdus spp)、发光杆菌属物种(Photorhabdus spp)、暂定属物种(Candidatus spp)、布赫纳氏菌属物种(Buchnera spp)、布拉特杆菌属物种(Blattabacterium spp)、鲍曼属物种(Baumania spp)、威格尔斯沃思氏菌属物种(Wigglesworthia spp)、沃尔巴克氏体属物种(Wolbachia spp)、立克次体属物种
(Rickettsia spp)、东方体属物种(Orientia spp)、伴突属物种(Sodalis spp)、伯克霍尔德氏菌属物种(Burkholderia spp)、贪铜菌属物种(Cupriavidus spp)、弗兰克氏菌属物种(Frankia spp)、中华根瘤菌属物种(Snirhizobium spp)、链球菌属物种(Streptococcus spp)、沃廉菌属物种(Wolinella spp)、木杆菌属物种(Xylella spp)、欧氏杆菌属物种(Erwinia spp)、农杆菌属物种(Agrobacterium spp)、芽孢杆菌属物种(Bacillus spp)、类芽孢杆菌属物种(Paenibacillus spp)、链霉菌属物种(Streptomyces spp)、微球菌属物种(Micrococcus spp)、棒状杆菌属物种(Corynebacterium spp)、醋杆菌属物种
(Acetobacter spp)、蓝细菌属物种(Cyanobacteria spp)、沙门氏菌属物种(Salmonella spp)、红球菌属物种(Rhodococcus spp)、假单胞菌属物种(Pseudomonas spp)、乳杆菌属物种(Lactobacillus spp)、肠球菌属物种(Enterococcus spp)、产碱杆菌属物种
(Alcaligenes spp)、克雷伯氏菌属物种(Klebsiella spp)、类芽孢杆菌属物种
(Paenibacillus  spp)、节杆菌属物种(Arthrobacter spp)、棒状杆菌属物种
(Corynebacterium spp)、短杆菌属物种(Brevibacterium spp)、栖热菌属物种(Thermus spp)、假单胞菌属物种(Pseudomonas spp)、梭菌属物种(Clostridium spp)、或埃希氏杆菌属物种(Escherichia spp)。

[0354] 在一些情况下，该NCR肽是本文所述的NCR肽的功能活性变体。在一些情况下，该NCR肽的变体例如在指定区域或整个序列上与本文所述的NCR肽或天然衍生的NCR肽的序列具有至少70％、71％、72％、73％、74％、75％、76％、77％、78％、79％、80％、81％、82％、83％、84％、85％、86％、87％、88％、89％、90％、91％、92％、93％、94％、95％、96％、97％、
98％、或99％的同一性。

[0355] 在一些情况下，该NCR肽可以被生物工程化以调节其生物活性(例如，增加或减少或调节)或指定其靶微生物。在一些情况下，该NCR肽是由细胞的翻译机制(例如核糖体等)产生的。在一些情况下，该NCR肽是化学合成的。在一些情况下，该NCR肽衍生自多肽前体。该多肽前体可以经历切割(例如，通过蛋白酶加工)以产生NCR肽本身。因此，在一些情况下，该NCR肽由前体多肽产生。在一些情况下，该NCR肽包括已经历翻译后修饰(例如切割，或添加一个或多个官能团)的多肽。

[0356] 可以在用于本文所述的任何用途的组合物中配制本文所述的NCR肽。本文披露的组合物可以包括任何数量或类型的NCR肽，如至少约1种NCR肽、2、3、4、5、10、15、20、30、40、50、100、或更多种NCR肽中的任一者。组合物中每种NCR肽的合适的浓度取决于如功效、NCR肽的稳定性、不同NCR肽的数量、配制品和组合物的施用方法等因素。在一些情况下，液体组合物中每种NCR肽是从约0.1ng/mL至约100mg/mL。在一些情况下，固体组合物中每种NCR肽是从约0.1ng/g至约100mg/g。在一些情况下，其中该组合物包括至少两种类型的NCR肽，每种类型的NCR肽的浓度可以相同或不同。

[0357] 包括如本文所述的NCR肽的调节剂可以按足以实现以下的量和时间与靶宿主接触：(a)达到靶宿主内NCR肽浓度的靶水平(例如，预定或阈值水平)；(b)达到靶宿主肠内NCR肽浓度的靶水平(例如，预定或阈值水平)；(c)达到靶宿主含菌细胞内NCR肽浓度的靶水平(例如，预定或阈值水平)；(d)调节靶宿主中一种或多种微生物(例如内共生体)的水平或活性；或/和(e)调节靶宿主的适合度。

[0358] (e)含菌细胞调节肽

[0359] 本文所述的调节剂可以包括含菌细胞调节肽(BRP)。BRP是在昆虫的含菌细胞中表达的肽。这些基因首先在与共生体的掺入一致的发育时间点表达，并且在整个昆虫的生命中维持它们的含菌细胞特异性表达。在一些情况下，该BRP具有预测为信号肽的疏水氨基末端结构域。此外，一些BRP具有富含半胱氨酸的结构域。在一些情况下，该含菌细胞调节肽是含菌细胞特异性富含半胱氨酸(BCR)的蛋白质。含菌细胞调节肽具有在约40至150个之间的氨基酸的长度。在一些情况下，该含菌细胞调节肽具有在约45至约145、约50至约140、约55至约135、约60至约130、约65至约125、约70至约120、约75至约115、约80至约110、约85至约105、或其间任何范围的范围内的长度。BRP的非限制性实例及其活性列于表8中。

[0360] 表8：含菌细胞调节肽的实例

[0361]

[0362]

[0363]

[0364] 在一些情况下，该BRP改变寄宿于宿主的含菌细胞中一种或多种细菌的生长和/或活性。在一些情况下，该BRP可以被生物工程化以调节其生物活性(例如，增加、减少或调节)或指定其靶微生物。在一些情况下，该BRP是由细胞的翻译机制(例如核糖体等)产生的。在一些情况下，该BRP是化学合成的。在一些情况下，该BRP衍生自多肽前体。该多肽前体可以经历切割(例如，通过蛋白酶加工)以产生BRP本身的多肽。因此，在一些情况下，该BRP由前体多肽产生。在一些情况下，该BRP包括已经历翻译后修饰(例如切割，或添加一个或多个官能团)的多肽。

[0365] 如本文所述的BRP的功能活性变体也可用于本文所述的组合物和方法中。在一些情况下，该BRP的变体例如在指定区域或整个序列上与本文所述的BRP或天然衍生的BRP的序列具有至少70％、71％、72％、73％、74％、75％、76％、77％、78％、79％、80％、81％、82％、83％、84％、85％、86％、87％、88％、89％、90％、91％、92％、93％、94％、95％、96％、97％、
98％、或99％的同一性。

[0366] 可以在用于本文所述的任何用途的组合物中配制本文所述的BRP。本文披露的组合物可以包括任何数量或类型(例如，类别)的BRP，如至少约1种BRP、2、3、4、5、10、15、20、或更多种BRP中的任一者。组合物中每种BRP的合适的浓度取决于如功效、BRP的稳定性、不同BRP的数量、配制品和组合物的施用方法等因素。在一些情况下，液体组合物中每种BRP是从约0.1ng/mL至约100mg/mL。在一些情况下，固体组合物中每种BRP是从约0.1ng/g至约100mg/g。在一些情况下，其中该组合物包括至少两种类型的BRP，每种类型的BRP的浓度可以相同或不同。

[0367] 包括如本文所述的BRP的调节剂可以按足以实现以下的量和时间与靶宿主接触：(a)达到靶宿主内BRP浓度的靶水平(例如，预定或阈值水平)；(b)达到靶宿主肠内BRP浓度的靶水平(例如，预定或阈值水平)；(c)达到靶宿主含菌细胞内BRP浓度的靶水平(例如，预定或阈值水平)；(d)调节靶宿主中一种或多种微生物(例如内共生体)的水平或活性；或/和(e)调节靶宿主的适合度。

[0368] iii.小分子

[0369] 许多种小分子(例如，抗生素或代谢物)可用于本文所述的组合物和方法中。在一些情况下，本文所述的任何小分子的有效浓度可以改变寄宿于宿主中的一种或多种微生物(如本文所述的)的水平、活性或代谢，该改变导致宿主的适合度降低。

[0370] 包括如本文所述的小分子的调节剂可以按足以实现以下的量和时间与靶宿主接触：(a)达到靶宿主内小分子浓度的靶水平(例如，预定或阈值水平)；(b)达到靶宿主肠内小分子浓度的靶水平(例如，预定或阈值水平)；(c)达到靶宿主含菌细胞内小分子浓度的靶水平(例如，预定或阈值水平)；(d)调节靶宿主中一种或多种微生物(例如内共生体)的水平或活性；或/和(e)调节靶宿主的适合度。

[0371] 下文讨论的小分子，即抗生素和次生代谢物，可用于改变靶微生物的水平、活性或代谢，如在用于降低昆虫(如蚜虫)的适合度的部分所指示的。

[0372] (a)抗生素

[0373] 本文所述的调节剂可以包括抗生素。可以使用本领域已知的任何抗生素。抗生素通常根据其作用机制、化学结构或活性谱进行分类。

[0374] 本文所述的抗生素可以靶向任何细菌的功能或生长过程，并且可以是抑细菌的(例如，减缓或阻止细菌生长)或杀细菌的(例如，杀死细菌)。在一些情况下，该抗生素是杀细菌抗生素。在一些情况下，该杀细菌抗生素是靶向细菌细胞壁的杀细菌抗生素(例如，青霉素和头孢菌素)；靶向细胞膜的杀细菌抗生素(例如，多粘菌素)；或者抑制必需细菌酶的杀细菌抗生素(例如，利福霉素、闰年霉素(lipiarmycins)、喹诺酮类和磺胺类)。在一些情况下，该杀细菌抗生素是氨基糖苷类。在一些情况下，该抗生素是抑细菌抗生素。在一些情况下，该抑细菌抗生素靶向蛋白质合成(例如，大环内酯类、林可胺类和四环素类)。本文使用的另外类的抗生素包括环脂肽(如达托霉素)、甘氨酰环素(如替加环素)、噁唑烷酮类(如利奈唑胺)、或闰年霉素(lipiarmycins)(如非达霉素)。抗生素的实例包括利福平、环丙沙星、强力霉素、氨苄青霉素、和多粘菌素B。抗生素的其他非限制性实例见表9。

[0375] 表9：抗生素的实例

[0376]

[0377] 本文描述的抗生素可具有任何水平的靶特异性(例如，窄谱或广谱)。在一些情况下，该抗生素是窄谱抗生素，并且因此靶向特异性类型的细菌，如革兰氏阴性细菌或革兰氏阳性细菌。可替代地，该抗生素可以是靶向宽范围的细菌的广谱抗生素。

[0378] 可以在用于本文所述的任何用途的组合物中配制本文所述的抗生素。本文披露的组合物可以包括任何数量或类型(例如，类别)的抗生素，如至少约1种抗生素、2、3、4、5、10、15、20、或更多种抗生素(例如，利福平和强力霉素的组合，或氨苄青霉素和利福平的组合)中的任一者。组合物中每种抗生素的合适的浓度取决于如功效、抗生素的稳定性、不同抗生素的数量、配制品和组合物的施用方法等因素。在一些情况下，其中该组合物包括至少两种类型的抗生素，每种类型的抗生素的浓度可以相同或不同。

[0379] 包括如本文所述的抗生素的调节剂可以按足以实现以下的量和时间与靶宿主接触：(a)达到靶宿主内抗生素浓度的靶水平(例如，预定或阈值水平)；(b)达到靶宿主肠内抗生素浓度的靶水平(例如，预定或阈值水平)；(c)达到靶宿主含菌细胞内抗生素浓度的靶水平(例如，预定或阈值水平)；(d)调节靶宿主中一种或多种微生物(例如内共生体)的水平或活性；或/和(e)调节靶宿主的适合度。

[0380] 如实例6和11所示，抗生素(例如利福平)可用作靶向昆虫宿主(如蚜虫)中的内共生细菌(如布赫纳氏菌属物种(Buchnera spp.))以降低(例如，如本文概述的)宿主的适合度的调节剂。如实例7进一步所示，抗生素(如土霉素)可用作靶向昆虫宿主(如瓦螨(Varroa mite))中的内共生细菌(如芽孢杆菌属物种(Bacillus spp.))以降低(例如，如本文概述的)宿主的适合度的调节剂。如实例23又进一步所示，抗生素(例如环丙沙星)可用作靶向昆虫宿主(如象鼻虫)中的内共生细菌(如米象属物种(Sitophilus spp.))以降低(例如，如本文概述的)宿主的适合度的调节剂。还如实例24所示，抗生素(例如，利福平或强力霉素)可用作靶向昆虫宿主(如螨)中的内共生细菌以降低(例如，如本文概述的)宿主的适合度的调节剂。

[0381] (b)次生代谢物

[0382] 在一些情况下，本文所述的组合物和方法的调节剂包括次生代谢物。次生代谢物衍生自由生物产生的有机分子。次生代谢物可以充当(i)用于抗细菌、真菌、变形虫、植物、昆虫和大型动物的竞争剂；(ii)金属输送剂(metal transporting agent)；(iii)微生物与植物、昆虫和高等动物之间共生的药剂；(iv)性激素；以及(v)区分效应器。次生代谢物的非限制性实例见表10。

[0383] 表10：次生代谢物的实例

[0384]

[0385] 本文使用的次生代谢物可以包括来自任何已知的次生代谢物组的代谢物。例如，次生代谢物可分类为以下几组：生物碱类、萜类、类黄酮类、糖苷类、天然酚类(例如，棉酚乙酸)、二烯醛类(例如，反式-肉桂醛)、吩嗪类、联苯酚类和氧芴类、聚酮类、脂肪酸合酶肽类、非核糖体肽类、核糖体合成和翻译后修饰肽类、多酚类、多糖类(例如，壳聚糖)和生物聚合物。有关次生代谢物的深入审查，参见例如，Vining，Annu.Rev.Microbiol.[微生物学年鉴]44：395-427，1990。

[0386] 有用于本文所述的组合物和方法的次生代谢物包括改变内共生体(例如，原生内共生体或次生内共生体)、含菌细胞或细胞外共生体的天然功能的那些次生代谢物。在一些情况下，本文所述的一种或多种次生代谢物是从抗微生物化合物的高通量筛选(HTS)中分离的。例如，HTS筛选鉴定了49种抗细菌提取物，这些提取物对来自生长于一个特定区域的不同生态系统中的生物的39,000多种粗提取物中的革兰氏阳性细菌和革兰氏阴性细菌具有特异性。在一些情况下，该次生代谢物在含菌细胞内运输。

[0387] 在一些情况下，小分子是维生素合成的抑制剂。在一些情况下，维生素合成抑制剂是维生素前体类似物。在某些情况下，维生素前体类似物是泛醇。例如，泛醇可以用于抑制蚜虫中布赫纳氏菌属(Buchnera)中维生素B5合成。

[0388] 在一些情况下，小分子是氨基酸类似物。在某些情况下，氨基酸类似物是L-刀豆氨酸、D-精氨酸、D-缬氨酸、D-甲硫氨酸、D-苯丙氨酸、D-组氨酸、D-色氨酸、D-苏氨酸、D-亮氨酸、L-NG-硝基精氨酸或其组合。

[0389] 在一些情况下，小分子是天然抗微生物化合物，如丙酸、乙酰丙酸、反式-肉桂醛、乳链菌肽或低分子量壳聚糖。可以在用于本文所述的任何用途的组合物中配制本文所述的次生代谢物。本文披露的组合物可以包括任何数量或类型(例如，类别)的次生代谢物，如至少约1种次生代谢物、2、3、4、5、10、15、20、或更多种次生代谢物中的任一者。组合物中每种次生代谢物的合适的浓度取决于如功效、次生代谢物的稳定性、不同次生代谢物的数量、配制品和组合物的施用方法等因素。在一些情况下，其中该组合物包括至少两种类型的次生代谢物，每种类型的次生代谢物的浓度可以相同或不同。

[0390] 包括如本文所述的次生代谢物的调节剂可以按足以实现以下的量和时间与靶宿主接触：(a)达到靶宿主内次生代谢物浓度的靶水平(例如，预定或阈值水平)；(b)达到靶宿主肠内次生代谢物浓度的靶水平(例如，预定或阈值水平)；(c)达到靶宿主含菌细胞内次生代谢物浓度的靶水平(例如，预定或阈值水平)；(d)调节靶宿主中一种或多种微生物(例如内共生体)的水平或活性；或/和(e)调节靶宿主的适合度。

[0391] 如实例15所示，次生代谢物(例如棉酚)可用作靶向昆虫宿主(如蚜虫)中的内共生细菌(如布赫纳氏菌属物种(Buchnera spp.))以降低(例如，如本文概述的)宿主的适合度的调节剂。如实例8-10、12-14、16、20、和21进一步所示，小分子(如反式-肉桂醛、乙酰丙酸、壳聚糖、维生素类似物、或氨基酸转运抑制剂)可用作靶向昆虫宿主(如蚜虫)中的内共生细菌(如布赫纳氏菌属物种(Buchnera spp.))以降低(例如，如本文概述的)宿主的适合度的调节剂。

[0392] iv.细菌作为调节剂

[0393] 在一些情况下，本文所述的调节剂包括一种或多种细菌。许多种细菌在本文所述的组合物和方法中是有用的。在一些情况下，该药剂是在宿主中内源发现的细菌物种。在一些情况下，该细菌调节剂是内共生细菌物种。在一些情况下，细菌调节剂是宿主中的病原体。可用作调节剂的细菌的非限制性实例包括具体实施方式的部分II中本文所述的所有细菌物种和表1中列出的那些细菌物种。例如，该调节剂可以是来自昆虫肠中存在的任何细菌门的细菌物种，包括γ变形菌门(Gammaproteobacteria)、α变形菌门(Alphaproteobacteria)、β变形菌门(Betaproteobacteria)、拟杆菌门(Bacteroidetes)、厚壁菌门(Firmicutes)(例如，乳杆菌属(Lactobacillus)和芽孢杆菌属(Bacillus)物种)、梭菌属(Clostridia)、放线菌属(Actinomycetes)、螺旋体属(Spirochetes)、疣微菌门(Verrucomicrobia)、和放线菌门(Actinobacteria)。

[0394] 在一些情况下，该调节剂是破坏微生物多样性或以对宿主不利的方式改变宿主的微生物区系的细菌。在一个情况下，可以提供细菌以破坏昆虫的微生物区系。例如，细菌调节剂可以与昆虫中的共生细菌群体竞争，置换和/或减少昆虫中的共生细菌群体。例如，细菌可通过与该宿主中的共生细菌竞争来降低宿主的适合度，该共生细菌赋予对杀有害生物剂的抗性(例如，表12中列出的杀有害生物剂)。在其他情况下，细菌可以是通过在该宿主中引起疾病而降低宿主适合度的病原体。

[0395] 本文所讨论的细菌调节剂可用于改变靶微生物的水平、活性或代谢，如在用于降低昆虫(如蚜虫)的适合度的部分中所指示的。

[0396] v.对调节剂的修饰

[0397] (a)融合

[0398] 本文所述的任何调节剂可以与另外的部分融合或连接。在一些情况下，该调节剂包括一种或多种另外的部分(例如，1种另外的部分、2、3、4、5、6、7、8、9、10、或更多种另外的部分)的融合。在一些情况下，该另外的部分是本文所述的调节剂(例如，肽、多肽、小分子、或抗生素)中的任一者。可替代地，该另外的部分本身可以不充当调节剂，而是可以起辅助作用。例如，另外的部分可以帮助调节剂在宿主中的靶位点(例如，宿主肠或宿主含菌细胞)处或在寄宿于该宿主(如蚜虫)中的靶微生物处接近、结合或变得活化。

[0399] 在一些情况下，该另外的部分可以帮助调节剂渗透寄宿于宿主中的靶宿主细胞或靶微生物。例如，该另外的部分可以包括细胞穿透肽。细胞穿透肽(CPP)可以是衍生自以下的天然序列：蛋白质；通过两个天然序列的融合形成的嵌合肽；或合成的CPP，它们是基于结构-活性研究的合成设计的序列。在一些情况下，CPP具有普遍穿过具有有限毒性的细胞膜(例如，原核细胞膜和真核细胞膜)的能力。此外，CPP可能具有经由能量依赖性和/或独立机制，同时不需要特异性受体的手性识别而穿过细胞膜的能力。CPP可以与本文所述的任何调节剂结合。例如，CPP可以与抗微生物肽(AMP)(例如，蝎肽，例如与细胞穿透肽融合的UY192(例如，YGRKKRRQRRRFLSTIWNGIKGLLFAM；SEQ ID NO：237))结合。CPP的非限制性实例列于表11中。

[0400] 表11：细胞穿透肽(CPP)的实例

[0401]

[0402]

[0403] 在其他情况下，该另外的部分帮助调节剂结合寄宿于宿主的靶微生物(例如，真菌或细菌)。该另外的部分可以包括一个或多个靶向结构域。在一些情况下，该靶向结构域可以将调节剂靶向寄宿于宿主肠中的一种或多种微生物(例如，细菌或真菌)。在一些情况下，该靶向结构域可以将调节剂靶向宿主的特异性区域(例如，宿主肠或含菌细胞)以接近通常存在于所述宿主区域中的微生物。例如，该靶向结构域可以将调节剂靶向宿主的前肠、中肠或后肠。在其他情况下，该靶向结构域可以将调节剂靶向宿主中的含菌细胞和/或寄宿于宿主含菌细胞中的一种或多种特异性细菌。例如，该靶结构域可以是与本文所述的调节剂(例如AMP，例如蝎肽，如Uy192)结合的雪钟花(Galanthus nivalis)植物凝集素(lectin)或凝集素(agglutinin)(GNA)。

[0404] (b)前结构域(Pre-domain或Pro-domain)

[0405] 在一些情况下，该调节剂可以包括前氨基酸序列(pre-amino acid sequence或pro-amino acid sequence)。例如，该调节剂可以是可以通过前序列(pre-sequence或pro-sequence)的切割或翻译后修饰来激活的无活性蛋白质或肽。在一些情况下，该调节剂是用失活的前序列(pre-sequence或pro-sequence)工程化的。例如，该前序列(pre-sequence或pro-sequence)可以模糊调节剂上的激活位点(例如受体结合位点)，或可以诱导调节剂的构象变化。因此，在切割前序列(pre-sequence或pro-sequence)后，该调节剂被激活。

[0406] 可替代地，该调节剂可以包括前小分子(pre-small molecule或pro-small molecule)，例如抗生素。该调节剂可以是可以在宿主内的靶环境中被激活的本文所述的无活性小分子。例如，该小分子可在宿主肠中达到一定pH时被激活。

[0407] (c)接头

[0408] 在调节剂与另外的部分连接的情况下，该调节剂可以进一步包括接头。例如，该接头可以是化学键，例如一个或多个共价键或非共价键。在一些情况下，该接头可以是肽接头(例如，2、3、4、5、6、8、10、12、14、16、20、25、30、35、40、或更多个氨基酸长)。该接头可能包括本文所述的任何柔性、刚性或可裂解的接头。

[0409] 柔性肽接头可以包括本领域常用的任何接头，包括具有主要具有Gly和Ser残基的序列的接头(“GS”接头)。柔性接头可以有用于连接需要一定程度的移动或相互作用的结构域，并且可以包括小的、非极性的(例如Gly)或极性的(例如Ser或Thr)氨基酸。

[0410] 可替代地，肽接头可以是刚性接头。刚性接头有用于保持各部分之间的固定距离并维持它们的独立功能。当结构域的空间分离对于保持融合中一种或多种组分的稳定性或生物活性至关重要时，刚性接头也可以是有用的。例如，刚性接头可以具有α螺旋结构或富含脯氨酸的序列(Pro-rich sequence)、(XP)n，其中X表示任何氨基酸，优选Ala、Lys或Glu。

[0411] 在又其他情况下，肽接头可以是可裂解的接头。在一些情况下，接头可以在特异性条件下(例如在还原剂或蛋白酶的存在下)裂解。体内可裂解接头可利用二硫键的可逆性质。一个实例包括两个Cys残基之间的凝血酶敏感性序列(例如，PRS)。CPRSC的体外凝血酶处理导致凝血酶敏感性序列的切割，而可逆的二硫键保持完整。此类接头是已知的并且描述于，例如，Chen等人，Adv.Drug Deliv.Rev.[先进药物输送评论]65(10)：1357-1369，2013。融合中接头的切割也可以通过在宿主或寄宿于宿主中的微生物的特异性细胞或组织的条件下体内表达的蛋白酶进行。在一些情况下，接头的切割可在到达靶位点或细胞时释放游离的功能调节剂。

[0412] 本文所述的融合可以可替代地通过连接分子连接，这些连接分子包括疏水接头，如带负电荷的磺酸酯基团；脂质，如聚(--CH2--)烃链，如聚乙二醇(PEG)基团，其不饱和变体，其羟基化变体，其酰胺化或其他含N的变体，非碳接头；碳水化合物接头；磷酸二酯接头，或能够共价连接两个或多个分子(例如两种调节剂)的其他分子。可以使用非共价接头(如调节剂与之连接的疏水性脂质小球)例如通过调节剂的疏水区域或调节剂的疏水延伸，如富含亮氨酸、异亮氨酸、缬氨酸、或者也可能是丙氨酸、苯丙氨酸、或甚至酪氨酸、甲硫氨酸、甘氨酸的一系列残基或其他疏水残基。该调节剂可以使用基于电荷的化学连接，使得调节剂的带正电荷的部分与另一种调节剂或另外的部分的带负电荷的部分连接。

[0413] IV.配制品和组合物

[0414] 可以将本文所述的组合物以纯的形式(例如，组合物仅含有调节剂)配制或与一种或多种另外的药剂(如赋形剂、递送媒介物、载体、稀释剂、稳定剂等)一起配制以促进组合物的施用或递送。合适的赋形剂和稀释剂的实例包括但不限于：乳糖、右旋糖、蔗糖、山梨糖醇、甘露醇、淀粉、阿拉伯树胶、磷酸钙、藻酸盐、黄蓍胶、明胶、硅酸钙、微晶纤维素、聚乙烯吡咯烷酮、纤维素、水、盐水溶液、糖浆、甲基纤维素、羟基苯甲酸甲酯和羟基苯甲酸丙酯、滑石、硬脂酸镁和矿物油。

[0415] 在一些情况下，该组合物包括递送媒介物或载体。在一些情况下，该递送媒介物包括赋形剂。示例性赋形剂包括但不限于：固体或液体载体材料、溶剂、稳定剂、缓释赋形剂、色素和表面活性物质(表面活性剂)。在一些情况下，该递送媒介物是稳定性媒介物。在一些情况下，该稳定性媒介物包括稳定赋形剂。示例性稳定赋形剂包括但不限于：环氧化植物油、消泡剂(例如硅油)、防腐剂、粘度调节剂、粘合剂和增粘剂。在一些情况下，该稳定性媒介物是适用于调节剂的缓冲液。在一些情况下，将组合物微囊包封在聚合物珠递送媒介物中。在一些情况下，该稳定性媒介物保护调节剂免受UV和/或酸性条件的影响。在一些情况下，该递送媒介物含有pH缓冲液。在一些情况下，将组合物配制为具有在约4.5至约9.0的范围内的pH，包括例如范围在5.0至约8.0、约6.5至约7.5、或约6.5至约7.0中的任一者的pH。

[0416] 取决于预期的目的和当时环境，可以将组合物配制为可乳化的浓缩物、悬浮浓缩物、可直接喷雾的溶液或可稀释的溶液、可涂覆的膏剂、稀释的乳液、喷雾粉剂、可溶性粉剂、可分散性粉剂、可湿性粉剂、尘剂、粒剂、聚合物质中的包封物、微胶囊、泡沫、气溶胶、二氧化碳气体制剂、片剂、树脂制剂、纸制剂、非织造织物制剂、或针织织物制剂或机织织物制剂。在一些情况下，该组合物是液体。在一些情况下，该组合物是固体。在一些情况下，该组合物是气溶胶，如在加压气溶胶罐中。在一些情况下，该组合物存在于有害生物的废物(如粪便)中。在一些情况下，该组合物存在于活有害生物中或活有害生物上。

[0417] 在一些情况下，该递送媒介物是宿主的食物或水。在其他情况下，该递送媒介物是宿主的食物来源。在一些情况下，该递送媒介物是宿主的食物诱饵。在一些情况下，该组合物是被宿主食用的可食用药剂。在一些情况下，该组合物通过宿主被递送至第二宿主，并被第二宿主食用。在一些情况下，该组合物被宿主或第二宿主食用，并且该组合物经由宿主或第二宿主的废物(如粪便)释放到宿主或第二宿主的周围。在一些情况下，该调节剂包括于旨在由宿主食用或携带回其集落的食物诱饵中。

[0418] 在一些情况下，该调节剂可占该组合物的约0.1％至约100％，如约0.01％至约100％、约1％至约99.9％、约0.1％至约10％、约1％至约25％、约10％至约50％、约50％至约
99％、或约0.1％至约90％的活性成分(如噬菌体、溶素或细菌素)中的任一者。在一些情况下，该组合物包括0.1％、0.5％、1％、5％、10％、20％、30％、40％、50％、60％、70％、80％、
90％、95％或更多活性成分(如噬菌体、溶素或细菌素)中至少任一者。在一些情况下，优选浓缩剂作为商业产品，最终使用者通常使用稀释药剂(具有显著较低浓度的活性成分)。

[0419] 本文所述的任何配制品能以诱饵、蚊香、电蚊香片、烟制剂、熏剂或片剂的形式使用。

[0420] i.液体配制品

[0421] 本文提供的组合物可以是液体配制品的形式。液体配制品通常与水混合，但在一些情况下可与作物油、柴油燃料、煤油或其他轻油一起用作载体。活性成分的量的范围通常为按重量计从约0.5％至约80％。

[0422] 可乳化的浓缩物配制品可含有液体活性成分，一种或多种基于石油的溶剂，和允许配制品与水混合形成乳液的药剂。此类浓缩物可用于农业、观赏植物和草坪、林业、建筑业、食品加工、畜牧业、和公共卫生有害生物配制品。这些可适用于从小型便携式喷雾器到液压喷雾器、小容量地面喷雾器、弥雾器弥雾机和小容量飞机喷雾器的施用设备。一些活性成分易溶于液体载体中。当与载体混合时，它们形成不会沉淀或分离的溶液，例如均相溶液。这些类型的配制品可以包括活性成分、载体和一种或多种其他成分。溶液可用于室内和室外任何类型的喷雾器。

[0423] 在一些情况下，可以将该组合物可以配制为逆乳液。逆乳液是分散在油载体中的水溶性活性成分。逆乳液需要乳化剂，其允许活性成分与大量基于石油的载体(通常为燃料油)混合。逆乳液有助于减少漂移。对于其他配制品，当水滴在到达靶表面之前开始蒸发时会产生一些喷雾漂移；结果，液滴变得非常小且重量轻。由于油的蒸发速度比水慢，因此逆乳液液滴收缩较少，并且更多的活性成分到达靶。油进一步有助于减少径流并改善抗雨性。它还通过改善表面覆盖和吸收作为粘展剂。由于液滴相对较大且较重，因此难以在叶子的下侧进行彻底覆盖。最常沿着路域(rights-of-way)(其中漂移到易受影响的非靶区域)使用的逆乳液可能是一个问题。

[0424] 可流动或液体配制品结合了可乳化浓缩物和可湿性粉剂的许多特征。当活性成分是不溶于水或油的固体时，制造商使用这些配制品。将浸渍在如黏土的物质上的活性成分研磨成非常细的粉剂。然后将粉剂悬浮在少量液体中。得到的液体产品很稠。可流动物和液体具有可乳化浓缩物的许多特征，并且它们具有类似的缺点。它们需要适度的搅拌以使它们保持悬浮并留下可见的残留物，类似于可湿性粉剂中的那些。

[0425] 可流动物/液体易于处理和施用。因为它们是液体，所以它们会溢出和溅出。它们含有固体颗粒，因此会导致喷嘴和泵的磨损。可流动物和液体悬浮液在其容器中沉淀。由于可流动物和液体配制品倾向于沉淀，因此在五加仑或更少的容器中包装使得更容易再混合。

[0426] 气溶胶配制品含有一种或多种活性成分和溶剂。大多数气溶胶含有低百分比的活性成分。有两种类型的气溶胶配制品-通常可在加压密封容器中使用的即用型，和用于电动或汽油动力气溶胶发生器(将配制品释放为烟或雾)的那些产品。

[0427] 即用型气溶胶配制品通常是小型的独立单元，在喷嘴阀被触发时释放配制品。在压力下通过惰性气体驱动配制品穿过细孔，产生细小液滴。这些产品用于温室、建筑物内的小区域或小范围的室外区域。具有五至5磅的活性成分的商业模型通常是可再填充的。

[0428] 烟或雾气溶胶配制品不在压力条件下。它们用于使用快速旋转盘或加热表面将液体配制品破碎成细水雾或雾(气溶胶)的机器中。

[0429] ii.干配制品或固体配制品

[0430] 干配制品可分为两种类型：即用型和必须与水混合以作为喷雾施用的浓缩物。大多数尘剂配制品都可以即刻使用，并且含有低百分比的活性成分(按重量计小于约10％)，加上由滑石、白垩、黏土、坚果壳或火山灰制成的非常细的干惰性载体。单个尘剂颗粒的大小各不相同。一些尘剂配制品是浓缩物，并且含有高百分比的活性成分。在施用前将它们与干惰性载体混合。尘剂总是干燥使用，并且很容易漂移到非靶位点。

[0431] iii.粒剂或丸剂配制品

[0432] 在一些情况下，将该组合物配制为粒剂。粒剂配制品类似于尘剂配制品，除了粒剂颗粒更大更重。粗颗粒可以由如黏土、玉米芯或胡桃壳之类的材料制成。活性成分涂覆在粒剂外面或被吸收进其中。活性成分的量可以相对较低，通常范围为按重量计从约0.5％至约15％。粒剂配制品最常用于施用于土壤、生活在土壤中的昆虫、或通过根吸收到植物中。粒剂配制品有时通过飞机或直升机施用，以最小化漂移或以渗透茂密的植被。一旦施用，粒剂可缓慢释放活性成分。一些粒剂需要土壤水分来释放活性成分。粒剂配制品也用于控制幼虫蚊子和其他水生有害生物。粒剂用于农业、建筑业、观赏植物、草坪、水生动物、道路和公共卫生(咬虫)有害生物控制操作。

[0433] 在一些情况下，将该组合物配制为丸剂。大多数丸剂配制品与粒剂配制品非常相似；这些术语可互换使用。然而，在丸剂配制品中，所有颗粒具有相同的重量和形状。颗粒的均匀性允许与精密施用设备一起使用。

[0434] iv.粉剂

[0435] 在一些情况下，将该组合物配制为粉剂。在一些情况下，将该组合物配制为可湿性粉剂。可湿性粉剂是干燥的，精细研磨的配制品，看起来像尘剂。它们通常必须与水混合用于作为喷雾施用。然而，一些产品可以作为尘剂或可湿性粉剂施用-选择取决于上涂装置。可湿性粉剂含有按重量计约1％至约95％的活性成分；在一些情况下超过约50％。这些颗粒不溶于水。它们很快沉淀，除非经常搅拌以使其悬浮。它们可用于大多数有害生物问题，并且也可用于大多数可以搅拌的喷雾设备。可湿性粉剂具有优异的残留活性。由于它们的物理特性，大多数配制品保留在经处理的多孔材料(例如混凝土)、石膏和未经处理的木材的表面上。在此类情况下，只有水渗透材料。

[0436] 在一些情况下，将该组合物配制为可溶性粉剂。可溶性粉剂配制品看起来像可湿性粉剂。然而，当与水混合时，可溶性粉剂容易溶解并形成真溶液。将它们彻底混合后，不需要另外的搅拌。可溶性粉剂中活性成分的量通常范围为按重量计从约15％至约95％，在一些情况下超过约50％。可溶性粉剂具有可湿性粉剂的所有优点，并且除了混合期间的吸入危害外，不具有可湿性粉剂的任何缺点。

[0437] 在一些情况下，将该组合物配制为水可分散性粒剂。水可分散性粒剂，也称为干可流动物，就像可湿性粉剂(除了不是尘剂样外)，它们被配制为易于测量的粒剂。水可分散性粒剂必须与水混合才能施用。一旦进入水中，粒剂就会分解成类似于可湿性粉剂的细颗粒。该配制品需要恒定搅拌以使其悬浮在水中。活性成分的百分比很高，通常按重量计高达
90％。水可分散性粒剂(除了它们更容易测量和混合)具有许多与可湿性粉剂相同的优点和缺点。由于尘剂较少，因此在处理期间对上涂装置的吸入危害较小。

[0438] v.诱饵

[0439] 在一些情况下，该组合物包括诱饵。诱饵可以处于任何合适的形式，如固体、膏剂、丸剂或粉剂形式。诱饵也可以被宿主带回到所述宿主的群体(例如，集落或蜂巢)。然后诱饵可以充当该集落的其他成员的食物来源，从而为大量宿主和潜在的整个宿主集落提供有效的调节剂。

[0440] 诱饵可以提供于合适的“壳体”或“捕获器”中。此类壳体和捕获器是可商购的，并且现有的捕获器可以被调适成包括本文所述的组合物。壳体或捕获器可以是例如盒形的，并且可以在预成型条件下提供，或者可以例如由可折叠纸板形成。用于壳体或捕获器的合适材料包括塑料和纸板，特别是瓦楞纸板。捕获器的内表面可以内衬有粘性物质，以限制宿主一旦在捕获器内的移动。壳体或捕获器可以内部含有合适的槽，它可以将诱饵保持在适当位置。捕获器与壳体是有区别的，因为宿主在进入后不能容易地离开捕获器，而壳体充当“进食站”，其为宿主提供优选的环境，在该环境中它们可以进食并且远离捕食者而感到安全。

[0441] vi.引诱剂

[0442] 在一些情况下，该组合物包括引诱剂(例如，化学引诱剂)。引诱剂可以将成虫宿主或未成熟宿主(例如，幼虫)吸引到组合物的附近。引诱剂包括信息素，一种由动物(尤其是昆虫)分泌的化学物质，其影响同一物种的其他个体的行为或发育。其他引诱剂包括糖和蛋白水解产物糖浆、酵母和腐肉。引诱剂还可以与活性成分组合并喷雾到处理区域中的叶子或其他物品上。

[0443] 已知各种引诱剂影响宿主行为，例如宿主对食物、产卵或交配地点或配偶的搜索。可用于本文所述方法和组合物的引诱剂包括，例如，丁香酚、丙酸苯乙酯、乙基二甲基异丁基环丙烷羧酸酯、丙基苯并二噁烷羧酸酯、顺式-7，8-环氧-2-甲基十八烷、反式-8、反式-0-十二碳二烯醇、顺式-9-十四烯醛(具有顺式-11-十六烯醛)、反式-11-十四烯醛、顺式-11-十六烯醛、(Z)-11，12-十六碳二烯醛、顺式-7-十二烯基乙酸酯、顺式-8-十二烯基乙酸酯、顺式-9-十二烯基乙酸酯、顺式-9-十四碳烯基乙酸酯、顺式-11-十四碳烯基乙酸酯、反式-
11-十四碳烯基乙酸酯(具有顺式-11)、顺式-9、反式-11-十四碳二烯基乙酸酯(具有顺式-
9、反式-12)、顺式-9、反式-12-十四碳二烯基乙酸酯、顺式-7、顺式-11-十六碳双烯乙酸酯(具有顺式-7、反式-11)、顺式-3、顺式-13-十八碳二烯基乙酸酯、反式-3、顺式-13-十八碳二烯基乙酸酯、茴香脑和异戊基水杨酸盐。

[0444] 除化学引诱剂之外的其他方法也可用于吸引昆虫，包括各种波长或颜色的光。

[0445] vii.纳米胶囊/微胶囊/脂质体

[0446] 在一些情况下，将组合物以微胶囊化配制品提供。将微胶囊化配制品与水混合并以与其他可喷雾配制品相同的方式喷雾。喷雾后，塑料涂层破裂并缓慢释放活性成分。

[0447] viii.载体

[0448] 可配制本文所述的任何组合物以包括本文所述的调节剂和惰性载体。此类载体可以是固体载体、液体载体、凝胶载体和/或气体载体。在某些情况下，该载体可以是种子涂层。种子涂层是任何非天然存在的配制品，其全部或部分地粘附于种子表面。该配制品可以进一步包含佐剂或表面活性剂。该配制品还可以包含一种或多种调节剂以扩大作用光谱。

[0449] 用于配制品的固体载体包括黏土(例如高岭土、硅藻土、膨润土、Fubasami黏土、酸性黏土等)、合成水合氧化硅、滑石、陶瓷、其他无机矿物质(例如，绢云母、石英、硫磺、活性炭、碳酸钙、水合二氧化硅等)、可以升华并在室温下呈固体形式的物质(例如，2，4，6-三异丙基-1，3，5-三氧杂环己烷、萘、对二氯苯、樟脑(camphor)、刚烷等)的细粉剂或粒剂；羊毛；蚕丝；棉花；大麻；纸浆；合成树脂(例如，聚乙烯树脂，如低密度聚乙烯、直低密度聚乙烯和高密度聚乙烯；乙烯-乙烯酯共聚物，如乙烯-乙酸乙烯酯共聚物；乙烯-甲基丙烯酸酯共聚物，如乙烯-甲基丙烯酸甲酯共聚物和乙烯-甲基丙烯酸乙酯共聚物；乙烯-丙烯酸酯共聚物，如乙烯-丙烯酸甲酯共聚物和乙烯-丙烯酸乙酯共聚物；乙烯-乙烯基羧酸共聚物，如乙烯-丙烯酸共聚物；乙烯-四环十二烯共聚物；聚丙烯树脂，如丙烯均聚物和丙烯-乙烯共聚物；聚-4-甲基戊烯-1、聚丁烯-1、聚丁二烯、聚苯乙烯；丙烯腈-苯乙烯树脂；苯乙烯类弹性体，如丙烯腈-丁二烯-苯乙烯树脂、苯乙烯-共轭二烯嵌段共聚物、和苯乙烯-共轭二烯嵌段共聚物氢化物；氟树脂；丙烯酸树脂，如聚(甲基丙烯酸甲酯)；聚酰胺树脂，如尼龙6和尼龙
66；聚酯树脂，如聚乙烯对苯二甲酸酯、聚萘二甲酸乙二醇酯、聚丁烯对苯二甲酸酯、和聚对苯二甲酸亚环己基二亚甲酯；聚碳酸酯、聚缩醛、聚丙烯酰砜、聚芳酯、羟基苯甲酸聚酯、聚醚酰亚胺、聚酯碳酸酯、聚苯醚树脂、聚氯乙烯、聚偏二氯乙烯、聚氨酯、和有孔树脂(如发泡聚氨酯、发泡聚丙烯、或发泡乙烯等))、玻璃、金属、陶瓷、纤维、布料、针织物、片材、纸张、纱线、泡沫、有孔物质和复丝。

[0450] 液体载体可以包括，例如，芳香族或脂肪族碳氢化合物(例如，二甲苯、甲苯、烷基萘、苯基二甲苯基乙烷、煤油、瓦斯油、己烷、环己烷等)、卤代烃(例如，氯苯、二氯甲烷、二氯乙烷、三氯乙烷等)、醇类(例如，甲醇、乙醇、异丙醇、丁醇、己醇、苄基醇、乙二醇等)、醚类(例如，乙醚、乙二醇二甲醚、二甘醇单甲醚、二甘醇单乙醚、丙二醇单甲醚、四氢呋喃、二噁烷等)、酯类(例如，乙酸乙酯、乙酸丁酯等)、酮类(例如，丙酮、甲基乙基酮、甲基异丁基酮、环己酮等)、腈类(例如，乙腈、异丁腈等)、亚砜(例如，二甲亚砜等)、酰胺(例如，N，N-二甲基甲酰胺、N，N-二甲基乙酰胺)、环状亚胺(例如N-甲基吡咯烷酮)、亚烷基碳酸酯(例如，碳酸丙烯酯等)、蔬菜油(例如，大豆油、棉花籽油等)、植物精油(例如，橙油、海索油、柠檬油等)、或水。

[0451] 气体载体可以包括，例如丁烷气、氟里昂气、液化石油气(LPG)、二甲醚和二氧化碳气体。

[0452] ix.佐剂

[0453] 在一些情况下，本文提供的组合物可以包括佐剂。佐剂是不具有活性的化学物质。将佐剂在配制品中预混合或添加至喷雾罐中以改善混合或改善施用或提高性能。它们广泛用于为叶子施用而设计的产品中。佐剂可用于为特异性需要而定制配制品并补偿局部条件。佐剂可以设计用于执行特异性功能，包括润湿、涂抹、粘附、减少蒸发、减少挥发、缓冲、乳化、分散、减少喷雾漂移和减少发泡。没有单一佐剂可以执行所有这些功能，但是通常可以组合相容的佐剂以同时执行多种功能。

[0454] 包含于配制品中的佐剂的非限制性实例包括：粘合剂、分散剂和稳定剂，具体为例如，酪蛋白、明胶、多糖(例如，淀粉、阿拉伯树胶、纤维素衍生物、海藻酸等)、木质素衍生物、膨润土、糖、合成水溶性聚合物(例如，聚乙烯醇、聚乙烯吡咯烷酮、聚丙烯酸等)、PAP(酸性异丙基磷酸酯)、BHT(2，6-二叔丁基-4-甲基苯酚)、BHA(2-叔丁基-4-甲氧基苯酚和3-叔丁基-4-甲氧基苯酚的混合物)、植物油、矿物油、脂肪酸和脂肪酸酯。

[0455] x.表面活性剂

[0456] 在一些情况下，本文提供的组合物包括表面活性剂。表面活性剂，也称为润湿剂和涂布剂，在物理上改变喷雾液滴的表面张力。为了使配制品能够正常发挥其功能，喷雾液滴必须能够润湿叶子并均匀地散布在叶上。表面活性剂扩大了配制品的覆盖面积，从而增加了有害生物对化学物质的暴露。当将配制品施用于蜡质或多毛的叶时，表面活性剂特别重要。如果没有适当的润湿和涂布，喷雾液滴通常会流失或无法充分覆盖叶表面。然而，过多的表面活性剂会导致过多的径流并降低功效。

[0457] 表面活性剂按其电离或分裂成称为离子的带电荷的原子或分子的方式分类。带负电荷的表面活性剂是阴离子的。带正电荷的表面活性剂是阳离子的，而不带电荷的表面活性剂是非离子的。在非离子表面活性剂存在下的配制品活性可以与在阳离子或阴离子表面活性剂存在下的活性完全不同。选择错误的表面活性剂会降低杀有害生物剂产品的功效并损害靶植物。当与接触杀有害生物剂(通过直接接触而不是系统吸收来控制有害生物的杀有害生物剂)一起使用时，阴离子表面活性剂是最有效的。阳离子表面活性剂绝不能用作独立的表面活性剂，因为它们通常具有植物毒性。

[0458] 通常与系统杀有害生物剂一起使用的非离子表面活性剂有助于杀有害生物剂喷雾渗透植物角质层。非离子表面活性剂与大多数杀有害生物剂相容，并且大多数需要表面活性剂的EPA注册的杀有害生物剂推荐使用非离子型。佐剂包括但不限于黏着剂、增量剂、植物渗透剂、相容剂、缓冲液或pH改性剂、漂移控制添加剂、消泡剂、和增稠剂。

[0459] 本文所述的组合物中包括的表面活性剂的非限制性实例包括烷基硫酸酯盐、烷基磺酸酯、烷基芳基磺酸酯、烷基芳基醚及其聚氧乙烯化产物、聚乙二醇醚、多元醇酯和糖醇衍生物。

[0460] xi.组合

[0461] 在配制品和由这些配制品制备的使用形式中，调节剂可以处于含有其他活性化合物(例如杀有害生物剂(例如杀昆虫剂、杀菌剂、杀螨剂、杀线虫剂、杀软体动物剂或杀真菌剂；参见例如，列于表12中的杀有害生物剂)、引诱剂、生长调节物质或除草剂)的混合物中。如本文所用的，术语“杀有害生物剂”是指旨在用于预防、破坏、抵制或减轻任何有害生物的任何物质或物质的混合物。杀有害生物剂可以是用于对抗有害生物(包括与人竞争食物、破坏财产、传播疾病或是令人讨厌的昆虫、病原体、杂草和微生物)的化学物质或生物制剂。术语“杀有害生物剂”可以进一步涵盖其他生物活性分子，如抗生素、抗病毒杀有害生物剂、抗真菌剂、抗蠕虫剂、营养物、花粉、蔗糖和/或使昆虫运动减弱或减缓的药剂。

[0462] 在将调节剂施用于植物的情况下，也可以使用含有其他已知化合物(例如除草剂、肥料、生长调节剂、安全剂、化学信息素)或用于改善植物特性的药剂的混合物。

[0463] V.递送

[0464] 本文所述的宿主能以允许将组合物递送或给予至昆虫的任何合适方式而暴露于本文所述的任何组合物。调节剂可以单独递送或与其他活性或非活性物质组合递送，并且可以通过例如喷雾、显微注射、通过植物、倾倒、浸渍，以配制以递送有效浓度的调节剂的浓缩液体、凝胶、溶液、悬浮液、喷雾、粉剂、丸剂、块剂、砖剂等形式施用。施用本文所述的组合物的量和位置通常取决于宿主的习性、宿主微生物可被调节剂靶向的生命周期阶段、将施用的位置、以及调节剂的物理和功能特征。本文所述的调节剂可通过经口摄取给予至昆虫，但也可通过允许穿透角质层或穿透昆虫呼吸系统的方式给予。

[0465] 在一些情况下，可以用包括调节剂的溶液简单地“浸泡”或“喷雾”昆虫。可替代地，调节剂可以与昆虫的食物组分(例如，可食用组分)连接以便于递送和/或为了增加昆虫对调节剂的摄取。用于经口引入的方法包括，例如将调节剂与昆虫的食物直接混合，将调节剂喷雾在昆虫的生境或田地中，以及工程化方法，其中将用作食物的物种工程化以表达调节剂，然后向有待被影响的昆虫饲喂该物种。在一些情况下，例如，该调节剂组合物可以掺入昆虫的饮食中或覆盖在昆虫的饮食的顶部。例如，可以将该调节剂组合物喷雾到昆虫栖息的作物田地上。

[0466] 在一些情况下，通过例如背包喷雾、空中喷雾、作物喷雾/尘剂等将组合物直接喷雾到植物(例如作物)上。在将调节剂递送至植物的情况下，接受调节剂的植物可以处于植物生长的任何阶段。例如，配制的调节剂可以在植物生长的早期阶段作为种子涂层或根处理施用，或者在作物周期的后期作为总植物处理施用。在一些情况下，该调节剂可以作为局部制剂施用于植物，使得宿主昆虫在摄取或以其他方式与植物接触时与植物相互作用。

[0467] 此外，可以将调节剂(例如，在植物生长的土壤中，或在用于浇灌植物的水中)作为通过植物的组织(例如茎或叶)或动物宿主而吸收和分布的内吸剂(systemic agent)施用，使得其上进食的昆虫将获得有效剂量的调节剂。在一些情况下，可以对植物或食物生物进行遗传转化以表达调节剂，使得以植物或饵料生物为食的宿主摄取调节剂。

[0468] 延迟或持续释放也可以通过将调节剂或含有一种或多种调节剂的组合物涂覆有可溶解或生物可侵蚀涂层(例如明胶)(该涂层在使用环境中溶解或侵蚀，以使得该调节剂可用)或通过将药剂分散在可溶解或可侵蚀的基质中来实现。此类持续释放和/或分配方式装置可有利地用于在特异性宿主生境中始终维持本文所述的一种或多种调节剂的有效浓度。

[0469] 调节剂也可以掺入昆虫生长、生活、繁殖、进食或侵染的培养基中。例如，调节剂可以掺入食物容器、进食站、保护性包装或蜂巢中。对于一些施用，该调节剂可以与固体支持物结合，用于以粉剂形式或于“捕获器”或“进食站”中施用。例如，对于其中组合物用于捕获器或作为特定宿主昆虫的诱饵的施用，组合物也可以与固体支持物结合或包封在定时释放材料中。例如，可以通过递送该组合物至该农业有害生物(例如，蚜虫)生长、生活、繁殖或进食的至少一个生境中，给予本文所述的该组合物。

[0470] VI.筛选

[0471] 本文包括用于筛选调节剂的方法，这些调节剂有效改变宿主(例如昆虫)的微生物区系，从而降低宿主适合度。本文提供的筛选测定法可有效鉴定靶向寄宿于宿主的共生微生物的一种或多种调节剂(例如噬菌体)，从而降低宿主的适合度。例如，鉴定的调节剂(例如，噬菌体)可以有效减少降解杀有害生物剂或降解化感物质的微生物(例如，细菌，例如降解表12中列出的杀有害生物剂的细菌)的生存力，从而增加宿主对杀有害生物剂的敏感性(例如，对表12中列出的杀有害生物剂的敏感性)或化感剂的敏感性。

[0472] 例如，可以筛选噬菌体文库以鉴定靶向寄宿于宿主的特异性内共生微生物的噬菌体。在一些情况下，可以将噬菌体文库以一种或多种环境样品(例如，土壤、池塘沉积物或污水)的形式提供。可替代地，噬菌体文库可以从实验室分离物产生。噬菌体文库可以与靶细菌菌株共培养。在与细菌菌株孵育后，将成功感染和裂解靶细菌的噬菌体富集在培养基中。富集噬菌体的培养物可以与另外的细菌一起进行任何次数的传代培养，以进一步富集感兴趣的噬菌体。可以分离噬菌体以用作本文所述的任何方法或组合物中的调节剂，其中该噬菌体以降低宿主适合度的方式改变宿主的微生物区系。

[0473] 表12.杀有害生物剂

[0474]

[0475]

[0476]

[0477] 实例

[0478] 以下是本发明的方法的实例。应理解，鉴于以上提供的一般性描述，可以实践各种其他的实施例。

[0479] 实例1：噬菌体文库的生产

[0480] 本实例证明了从环境样品中收集获得噬菌体。

[0481] 治疗性设计：噬菌体文库集合具有如下噬菌体科：肌尾噬菌体科(Myoviridae)、长尾噬菌体科(Siphoviridae)、短尾噬菌体科(Podoviridae)、脂毛噬菌体科(Lipothrixviridae)、古噬菌体科(Rudiviridae)、Ampullaviridae、Bicaudaviridae、Clavaviridae、覆盖噬菌体科(Corticoviridae)、囊状噬菌科(Cystoviridae)、纺锤形噬菌体科(Fuselloviridae)、Gluboloviridae、滴状病毒科(Guttaviridae)、丝状噬菌体科(Inoviridae)、光滑噬菌体科(Leviviridae)、微小噬菌体科(Microviridae)、芽生噬菌体科(Plasmaviridae)、复层病毒科(Tectiviridae)。

[0482] 实验设计：

[0483] 经2周在无菌1L烧瓶中收集多个环境样品(土壤、池塘沉积物、污水)，并在收集后立即如下所述进行处理，然后在4℃下储存。将固体样品在无菌双倍强度difco公司卢里亚肉汤(Luria Broth，LB)中或补充有2mM CaCl2至最终体积100mL的胰蛋白酶大豆肉汤(TSB)中进行匀浆。使用磷酸盐测试条测量pH和磷酸盐水平。为了纯化，将所有样品在+4℃下在Megafuge 1.0R(贺利氏公司(Heraeus))或Eppendorf离心机5702R中以3000-6000g离心10-15分钟，并通过0.2-μm低蛋白质滤器过滤以除去所有剩余的细菌细胞。将上清液在氯仿存在下在4℃下储存于玻璃瓶中。

[0484] 实例2：靶特异性噬菌体的鉴定

[0485] 本实例证明了来自异源噬菌体文库的单个靶特异性噬菌体的分离、纯化和鉴定。

[0486] 实验设计：

[0487] 用LB-肉汤将20-30ml实例1中所述的噬菌体文库稀释至30-40ml的体积。添加靶细菌菌株，例如布赫纳氏菌(50-200μl在LB-肉汤中生长的过夜培养物)以富集靶向培养物中的该特异性细菌菌株的噬菌体。将该培养物在+37℃孵育过夜，以230rpm振荡。通过离心(3000-6000g，在Megafuge 1.0R(贺利氏公司)或在Eppendorf离心机5702R中，15-20分钟，+4℃)去除来自该富集培养物的细菌，并过滤(0.2μm或0.45μm滤器)。将2.5ml无菌培养物添加至2.5ml的LB-肉汤和50-100μl靶细菌中以富集噬菌体。将富集培养物如上生长过夜。将来自该富集培养物的样品在室温下以13,000g离心15分钟，并将10μl上清液铺板在含有LB-琼脂、同时含有100-300μl靶细菌和3ml熔化的0.7％软琼脂的培养皿上。将板在+37℃下孵育过夜。挑选在细菌菌苔上观察到的每个噬斑并将其转移到500μl的LB肉汤中。将来自该噬斑储备液的样品进一步铺板在靶细菌上。对所有发现的噬菌体进行三次噬斑纯化，以从异质噬菌体混合物中分离单个同质噬菌体。

[0488] 通过收获表现出融合裂解的宿主细菌菌株的覆盖板制备来自具有高滴度噬菌体(＞1x10^10PFU/ml)的平板的裂解物。在用5ml缓冲液充满后，将软琼脂覆盖物浸软，通过离心澄清，并过滤灭菌。将得到的裂解物储存在4℃。通过等密度CsCl离心进一步纯化高滴度噬菌体裂解物，如在(Summer等人，J.B.acteriol.[细菌学杂志]192：179-190，2010)中所述的。

[0489] 如在(Summer，Methods Mol.Biol.[分子生物学方法]502：27-46，2009)中所述的，从CsCl纯化的噬菌体悬浮液中分离DNA。通过使用454焦磷酸测序方法将个体分离的噬菌体测序为两个噬菌体基因组库的一部分。将噬菌体基因组DNA以等摩尔量混合至最终浓度为约100ng/L。将合并的DNA剪切，与对每个合并具有特异性的多重标识符(MID)标签连接，并根据制造商的方案使用Roche FLX Titanium测序仪上的全板反应通过焦磷酸测序法进行测序。将合并的噬菌体DNA存在于两个测序反应中。通过使用Newbler Assembler版本2.5.3(454生命科学公司(Life Sciences))，通过调整设置以仅包括每个组件包含单个MID的读数，将对应于每个合并的修整的FLX Titanium流量图输出单独组装。使用针对重叠群序列产生的引物和作为模板的个体噬菌体基因组DNA制备物，通过PCR确定个体重叠群的同一性。使用Sequencher 4.8(基因编码公司(Gene Codes Corporation))进行序列组装和编辑。通过实验确定噬菌体染色体端结构。通过对噬菌体基因组端进行测序以及对通过扩增(通过环化基因组DNA的连接的接点)衍生的PCR产物进行测序来确定噬菌体的粘性(cos)端，如在(Summer，Methods Mol.Biol.[分子生物学方法]502：27-46，2009)中所述的。蛋白质编码区最初使用GeneMark.hmm预测(Lukashin等人，Nucleic Acids Res.[核酸研究]26：1107-1115，1998)，通过Artemis中的人工分析进行精化(Rutherford等人，Bioinformatics[生物信息学]16：944-945，2000.)，并通过使用BLAST(E值截止值为0.005)进行分析
(Camacho等，BMCBioinformatics[BMC生物信息学]10：421，2009)。通过InterProScan另外分析了特别感兴趣的蛋白质(Hunter等人，Nucleic Acids Res.[核酸研究]40：D306-D312，
2012)。

[0490] 通过用胰蛋白酶大豆肉汤缓冲液稀释储备液，进行裂解内共生细菌布赫纳氏菌的CsCl纯化的噬菌体(＞1x10^11PFU/ml)的电子显微镜检查。将噬菌体施用到薄的400目碳涂覆的Formvar网格上，用2％(wt/vol)乙酸铀酰染色，并风干。在以100kV的加速电压操作的JEOL 1200EX透射电子显微镜上观察试样。测量每个噬菌体的五个病毒粒子以在适当时计算衣壳和尾的尺寸的平均值和标准偏差。

[0491] 实例3：用纯化的噬菌体溶液处理蚜虫

[0492] 本实例证明了通过用噬菌体溶液处理蚜虫来杀死或降低蚜虫的适合度的能力。本实例证明了噬菌体对蚜虫的作用是通过调节与对噬菌体敏感的蚜虫内源的细菌群体来介导的。一个靶向的细菌菌株是具有实例2中产生的噬菌体的布赫纳氏菌。

[0493] 蚜虫是最重要的农业昆虫有害生物之一。它们对植物造成直接的进食损害，并用作植物病毒的运载体。此外，蚜虫蜜露促进了烟霉(sooty mold)的生长，并吸引了令人讨厌的蚂蚁。化学处理的使用(不幸的是，仍然普遍存在)导致选择抗性个体，这些个体的根除变得越来越困难。

[0494] 治疗性设计：将噬菌体溶液用来自实例2的0(阴性对照)、102、105、或108的噬斑形成单元(pfu)/ml的噬菌体在10mL含有0.5％蔗糖和必需氨基酸的无菌水中配制。

[0495] 实验设计：

[0496] 为了准备处理，使蚜虫在实验室环境和培养基中生长。在气候控制室(16小时光照光周期；60％±5％RH；20℃±2℃)中，在24℃(伴随16小时的光照和8小时的黑暗)，蚕豆植物生长在蛭石和珍珠岩的混合物中。为了限制植物之间的母体效应或健康差异，将来自不同植物的5-10个成虫分布在10个两周龄的植物中，并且允许繁殖至高密度，持续5-7天。对于实验，将从健康植物收集第二龄和第三龄蚜虫并将其分成不同处理，使得每个处理从每个收集植物接收大约相同数量的个体。

[0497] 如本文所述的制备噬菌体溶液。将96孔板的孔填充200μl的人工蚜虫饲料(Febvay等人，Canadian Journal of Zoology[加拿大动物学杂志]，66(11)：2449-2453，1988)，并且将板用石蜡膜覆盖以制成进食小袋。将人工饲料与作为阴性对照的无菌水以及0.5％蔗糖和必需氨基酸混合、或与含有改变的噬菌体浓度的噬菌体溶液混合。将噬菌体溶液与人工饲料混合以得到最终浓度在102与108(pfu)/ml之间的噬菌体。

[0498] 对于每次重复处理，将30-50只第二龄和第三龄蚜虫分别置于96孔板的孔中，并在其上方倒置进食小袋板，允许昆虫通过石蜡膜进食并将它们限制在单个孔中。将实验蚜虫与蚜虫集落保持在相同的环境条件下。在蚜虫进食24小时后，将进食小袋用含有无菌人工饲料的新进食小袋替换，并且每24小时提供新的无菌小袋，持续4天。在替换小袋时，还检查蚜虫的死亡率。如果蚜虫已经变成棕色或位于孔底并且在观察期间不移动，则将其视为死亡。如果蚜虫在进食小袋的石蜡膜上但没有移动，则认为它将进食并且存活。

[0499] 通过PCR评估蚜虫样品中布赫纳氏菌的状态。将来自阴性对照(非噬菌体处理的)和噬菌体处理的组首先用70％乙醇(持续1分钟)、10％漂白剂(持续1分钟)表面灭菌，并用超纯水(持续1分钟)洗涤三次。根据制造商的方案，使用昆虫DNA试剂盒(OMEGA，美国宝特公司)从每个个体(全身)中提取总DNA。基于23S-5S rRNA序列(获得自布赫纳氏菌基因组(保藏号：GCA_000009605.1))，使用引物5.0软件(引物E有限公司，英国普利茅斯)设计布赫纳氏菌的引物(正向引物5′-GTCGGCTCATCACATCC-3′(SEQ ID NO：221)和反向引物5′-TTCCGTCTGTATTATCTCCT-3′(SEQ ID NO：222))(Shigenobu等人，Nature[自然]407：81-86，
2000)。PCR扩增循环包括在95℃持续5分钟的初始变性步骤，95℃持续30秒、55℃持续30秒、和72℃持续60秒的35个循环，以及在72℃进行10分钟的最终延伸步骤。将来自利福平处理和对照样品的扩增产物在1％琼脂糖凝胶上分析、用SYBR safe染色、并且使用成像系统可视化。噬菌体处理的蚜虫显示出布赫纳氏菌特异性基因的减少。

[0500] 将用布赫纳氏菌特异性噬菌体处理的蚜虫的存活率与用阴性对照处理的蚜虫的存活率进行比较。与对照处理的蚜虫相比，用布赫纳氏菌特异性噬菌体处理的蚜虫的存活率降低。

[0501] 实例4：colA细菌素溶液的生产

[0502] 本实例证明了colA细菌素的生产和纯化。

[0503] 构建体序列：

[0504]

[0505] 实验设计：

[0506] 用具有上游(NdeI)和下游(XhoI)限制性位点的特异性引物通过PCR产生DNA。正向引物GTATCTATTCCCGTCTACGAACATATGGAATTCC(SEQ ID NO：224)

[0507] 和反向引物CCGCTCGAGCCATCTGACACTTCCTCCAA(SEQ ID NO：225)。用NdeI或XhoI消化纯化的PCR片段(Nucleospin Extract II-马歇雷纳高公司(Macherey Nagel))，然后连接片段。对于colA克隆，将连接的DNA片段克隆到pcr2.1(GenBank数据库登录号EY122872)运载体中(Anselme等人，BMC Biol.[BMC生物学]6：43，2008)。系统地检查核苷酸序列(Cogenics公司)。

[0508] 将具有colA序列的质粒在BL21(DE3)/pLys中表达。细菌在30℃下在LB肉汤中生长。在OD600为0.9时，添加异丙基β-D-1-硫代吡喃半乳糖苷(IPTG)至最终浓度为1mM，并且使细胞生长6小时。通过在100mM NaCL、1％Triton X-100、100mM Tris-碱(pH 9.5)中超声处理来裂解细菌，并将蛋白质加载到HisTrap HP柱(通用电气医疗集团(GE Healthcare))上。依次用100mM NaCl、100mM Tris-HCl(pH 6.8)和PBS洗涤柱。用PBS中的0.3M咪唑进行洗脱。将脱盐PD-10柱(通用电气医疗集团(GE Healthcare))用于消除咪唑，并将PBS溶解的肽在离心滤器单元(密理博公司(Millipore))上浓缩。

[0509] ColA蛋白序列：

[0510]

[0511] 实例5：用colA细菌素的溶液处理蚜虫

[0512] 此实例证明了通过用细菌素溶液处理蚜虫来杀死或降低蚜虫适合度的能力。此实例证明了细菌素对蚜虫的作用是通过调节与对ColA细菌素敏感的蚜虫内源的细菌群体来介导的。一个靶向的细菌菌株是具有实例1中产生的细菌素的布赫纳氏菌。

[0513] 蚜虫是最重要的农业昆虫有害生物之一。它们对植物造成直接的进食损害，并用作植物病毒的运载体。此外，蚜虫蜜露促进了烟霉(sooty mold)的生长，并吸引了令人讨厌的蚂蚁。化学处理的使用(不幸的是，仍然普遍存在)导致选择抗性个体，这些个体的根除变得越来越困难。

[0514] 治疗性设计：将ColA溶液用来自实例4的0(阴性对照)、0.6、1、50或100mg/ml的ColA在10mL含有0.5％蔗糖和必需氨基酸的无菌水中配制。

[0515] 实验设计：

[0516] 为了准备处理，使蚜虫在实验室环境和培养基中生长。在气候控制室(16小时光照光周期；60％±5％RH；20℃±2℃)中，植物生长在蛭石和珍珠岩的混合物中，并且被蚜虫侵染。在相同的气候条件中，从大规模生产获得细扁食蚜蝇(E.balteatus)幼虫；将食蚜蝇(hoverflie)用糖、花粉和水饲养；在3小时期间通过在饲养笼中引入受侵染的宿主植物来诱导产卵。在每天被蚜虫重新侵染的宿主植物上发生完整的生命周期。

[0517] 将96孔板的孔填充200μl的人工蚜虫饲料(Febvay等人，Canadian Journal of Zoology[加拿大动物学杂志]，66(11)：2449-2453，1988)，并且将板用石蜡膜覆盖以制成进食小袋。将人工饲料与作为阴性对照的含有0.5％蔗糖和必需氨基酸的无菌水的溶液混合、或与含有改变的ColA浓度的ColA溶液混合。将ColA溶液与人工饲料混合以获得0.6至100mg/ml之间的最终浓度。

[0518] 对于每次重复处理，将30-50只第二龄和第三龄蚜虫分别置于96孔板的孔中，并在其上方倒置进食小袋板，允许昆虫通过石蜡膜进食并将它们限制在单个孔中。将实验蚜虫与蚜虫集落保持在相同的环境条件下。在蚜虫进食24小时后，将进食小袋用含有无菌人工饲料的新进食小袋替换，并且每24小时提供新的无菌小袋，持续4天。在替换小袋时，还检查蚜虫的死亡率。如果蚜虫已经变成棕色或位于孔底并且在观察期间不移动，则将其视为死亡。如果蚜虫在进食小袋的石蜡膜上但没有移动，则认为它将进食并且存活。

[0519] 通过PCR评估蚜虫样品中布赫纳氏菌的状态。将来自阴性对照和噬菌体处理的蚜虫成虫首先用70％乙醇(持续1分钟)、10％漂白剂(持续1分钟)表面灭菌，并用超纯水(持续1分钟)洗涤三次。根据制造商的方案，使用昆虫DNA试剂盒(OMEGA，美国宝特公司)从每个个体(全身)中提取总DNA。基于23S-5S rRNA序列(获得自布赫纳氏菌基因组(保藏号：GCA_
000009605.1))，使用Primer 5.0软件(引物E有限公司，英国普利茅斯)设计布赫纳氏菌的引物(正向引物5′-GTCGGCTCATCACATCC-3′(SEQ ID  NO：221)和反向引物5′-
TTCCGTCTGTATTATCTCCT-3′(SEQ ID NO：222))(Shigenobu等人，Nature[自然]200.407，81-
86)。PCR扩增循环包括在95℃持续5分钟的初始变性步骤，95℃持续30秒、55℃持续30秒、和
72℃持续60秒的35个循环，以及在72℃进行10分钟的最终延伸步骤。将来自利福平处理和对照样品的扩增产物在1％琼脂糖凝胶上分析、用SYBR safe染色、并且使用成像系统可视化。ColA处理的蚜虫显示布赫纳氏菌特异性基因的减少。

[0520] 将用布赫纳氏菌特异性ColA细菌素处理的蚜虫的存活率与用阴性对照处理的蚜虫的存活率进行比较。与对照处理的蚜虫相比，用布赫纳氏菌特异性ColA细菌素处理的蚜虫的存活率降低。

[0521] 实例6：用利福平溶液处理蚜虫

[0522] 此实例证明了通过用利福平(一种通过抑制细菌RNA聚合酶而抑制DNA依赖性RNA合成的窄谱抗生素)处理蚜虫来杀死或降低蚜虫适合度的能力。此实例证明了利福平对蚜虫的作用是通过调节与对利福平敏感的蚜虫内源的细菌群体来介导的。一个靶向的细菌菌株是布赫纳氏菌。

[0523] 蚜虫是最重要的农业昆虫有害生物之一。它们对植物造成直接的进食损害，并用作植物病毒的运载体。此外，蚜虫蜜露促进了烟霉(sooty mold)的生长，并吸引了令人讨厌的蚂蚁。化学处理的使用(不幸的是，仍然普遍存在)导致选择抗性个体，这些个体的根除变得越来越困难。

[0524] 治疗性设计：将抗生素溶液用0(阴性对照)、1、10、或50μg/ml的利福平在10mL含有0.5％蔗糖和必需氨基酸的无菌水中配制。

[0525] 实验设计：

[0526] 为了准备处理，使蚜虫在实验室环境和培养基中生长。在气候控制室(16小时光照光周期；60％±5％RH；20℃±2℃)中，在24℃(伴随16小时的光照和8小时的黑暗)，蚕豆植物生长在蛭石和珍珠岩的混合物中。为了限制植物之间的母体效应或健康差异，将来自不同植物的5-10个成虫分布在10个两周龄的植物中，并且允许繁殖至高密度，持续5-7天。对于实验，将从健康植物收集第二龄和第三龄蚜虫并将其分成不同处理，使得每个处理从每个收集植物接收大约相同数量的个体。

[0527] 通过将利福平(西格玛奥德里奇公司，557303)溶解于含有0.5％蔗糖和必需氨基酸的无菌水中来制备利福平溶液。将96孔板的孔填充200μl的人工蚜虫饲料(Febvay等人，Canadian Journal of Zoology[加拿大动物学杂志]，66(11)：2449-2453，1988)，并且将板用石蜡膜覆盖以制成进食小袋。将人工饲料与作为阴性对照的无菌水以及0.5％蔗糖和必需氨基酸混合，或与含有利福平浓度中的一种的利福平溶液混合。将利福平溶液与人工饲料混合以得到最终浓度在1与50μg/mL之间的抗生素。

[0528] 对于每次重复处理，将30-50只第二龄和第三龄蚜虫分别置于96孔板的孔中，并在其上方倒置进食小袋板，允许昆虫通过石蜡膜进食并将它们限制在单个孔中。将实验蚜虫与蚜虫集落保持在相同的环境条件下。在蚜虫进食24小时后，将进食小袋用含有无菌人工饲料的新饲喂小袋替换，并且每24小时提供新的无菌小袋，持续四天。在替换小袋时，还检查蚜虫的死亡率。如果蚜虫已经变成棕色或位于孔底并且在观察期间不移动，则将其视为死亡。如果蚜虫在进食小袋的石蜡膜上但没有移动，则认为它将进食并且存活。

[0529] 通过PCR评估蚜虫样品中布赫纳氏菌的状态。根据制造商的方案，使用昆虫DNA试剂盒(OMEGA，美国宝特公司)从对照(非利福平处理的)和利福平处理的个体中分离总DNA。基于23S-5S rRNA序列(获得自布赫纳氏菌基因组(保藏号：GCA_000009605.1))，使用引物
5.0软件(引物E有限公司，英国普利茅斯)设计布赫纳氏菌的引物(正向引物5′-
GTCGGCTCATCACATCC-3′(SEQ ID NO：221)和反向引物5′-TTCCGTCTGTATTATCTCCT-3′(SEQ ID NO：222))(Shigenobu等人，Nature[自然]407：81-86，2000)。PCR扩增循环包括在95℃持续5分钟的初始变性步骤，95℃持续30秒、55℃持续30秒、和72℃持续60秒的35个循环，以及在72℃进行10分钟的最终延伸步骤。将来自利福平处理和对照样品的扩增产物在1％琼脂糖凝胶上分析、用SYBR safe染色、并且使用成像系统可视化。利福平处理的蚜虫显示布赫纳氏菌特异性基因的减少。

[0530] 将用利福平溶液处理的蚜虫的存活率与用阴性对照处理的蚜虫的存活率进行比较。与对照相比，用利福平溶液处理的蚜虫的存活率降低。

[0531] 实例7：用利福平溶液处理感染蜂的瓦螨(Varroa mite)

[0532] 本实例证明了通过用抗生素溶液处理瓦螨(Varroa mite)来杀死或降低其适合度的能力。本实例证明了土霉素对瓦螨(Varroa mite)的作用是通过调节内源于对土霉素敏感的瓦螨的细菌群体(如芽孢杆菌属(Bacillus))来介导的。

[0533] 瓦螨(Varroa mite)被认为是蜂群崩溃综合症(CCD)广泛传播的的主要原因，该蜂群崩溃综合症大量毁灭了世界各地西方蜜蜂(Apis mellifera)的驯化的蜜蜂集落。它们附着于蜂的腹部，并且吸吮它们的血液，剥夺它们的营养物，并最终杀死它们。虽然瓦螨(Varroa mite)可以用化学合成的杀螨剂杀死，但这些类型的化学物质必须远离可食用的蜂蜜。

[0534] 治疗性设计：将土霉素溶液用含有0.5％蔗糖和必需氨基酸的0(阴性对照)、1、10、或50μg/ml于10mL无菌水配制。

[0535] 实验设计：

[0536] 为了确定繁殖阶段的成年瓦螨(Varroa mite)与寄生螨或其子代(因为它们的角质层没有硬化)相比是否具有不同的易感性，收集了生活在成年蜜蜂(西方蜜蜂(Apis mellifera))上的瓦螨以及与幼虫和蛹相关的螨。该测定在不同类型螨上测试了抗生素溶液，并通过靶向内源性微生物(如芽孢杆菌属(Bacillus))来确定其适合度如何改变。

[0537] 从瓦螨(Varroa mite)感染的蜂集落的蜂窝(或蜂窝片)收集传种的螨。从蜂幼虫发育的细胞中收集螨。

[0538] 根据瓦螨(Varroa mite)传种的宿主的年龄对瓦螨进行分组并分别进行测定。根据幼虫或蛹的形态和色素沉着如下确定传种的宿主年龄：将从小到足以围绕它们的巢室的吐丝期幼虫收集的瓦螨(Varroa mite)分为第1组；将从太大而不能放在巢室中并开始用它们的嘴朝巢室开口方向伸直的成蛹期幼虫收集的瓦螨(Varroa mite)分为第2组；以及将从蛹中收集的瓦螨(Varroa mite)分为第3组。将螨以其宿主幼虫或蛹储存在有盖玻璃培养皿中，直至收集50个单位。这确保了它们的进食常规和生理状态保持不变。为了防止螨从其宿主幼虫或蛹中离群或相互攀爬，只有处于相同发育阶段的宿主才能饲养在同一培养皿中。

[0539] 将设备(不锈钢环(内径56mm，高2-3mm)和2个玻璃圈(直径62mm))用丙酮和己烷或戊烷清洗，以形成测试场所。通过均匀喷雾玻璃皿和所在场所的环，将土霉素溶液和对照溶液施用到设备上。为此，在贮存器中加载1ml的溶液；将喷雾表面距管底端的距离设定为11mm，并使用0.0275英寸喷嘴。调节压力(通常在350-500hPa的范围内)，直至沉积的溶液量为1±0.05mg/cm2。将抗生素溶液倾倒入它们各自的培养皿中，覆盖培养皿的整个底部，并在通风橱下蒸发残留的液体。将环放置在玻璃圈之间以构建笼子。笼子在制备60小时内使用，用于不超过三次测定，以控制螨在抗生素溶液中的暴露。在该笼中引入10至15个瓦螨(Varroa mite)，并且将设备片与熔化的蜡液滴结合在一起。使用从吐丝期幼虫、成蛹期幼虫、白眼蛹和黑眼蛹(具有白色和苍白身体)收集的螨。

[0540] 4小时后，将螨转移到干净的有盖玻璃培养皿(直径60mm)中，用两只或三只白眼蛹(加盖后4-5天)饲喂。在用抗生素或对照溶液处理后4hr、24hr和48hr，在解剖显微镜下观察螨，并根据以下类别分类：

[0541] ·移动：无论是否用针戳后，它们均会用腿四处移动。

[0542] ·瘫痪：未受刺激或刺激后，它们移动一个或多个附属肢体，但它们无法四处移动。

[0543] ·死亡：不动，且不会对随后的3次刺激做出反应。

[0544] 使用无菌牙签或针通过触碰它们的腿来刺激螨。用新的牙签或无菌针对每组进行刺激，以避免螨组之间的污染。

[0545] 测定在32.5℃和60％-70％相对湿度下进行。如果对照组的死亡率超过30％，则排除该重复。每个实验都重复四个系列的笼子。

[0546] 通过PCR评估瓦螨(Varroa mite)组中芽孢杆菌属(Bacillus)的状态。根据制造商的方案，使用DNA试剂盒(OMEGA，美国宝特公司(Bio-tek))从对照(非土霉素处理的)和土霉素处理的个体(全身)中分离总DNA。基于23S-5S rRNA序列(获得自芽孢杆菌基因组(保藏号：AP007209.1))，使用引物5.0软件(引物E有限公司(Primer-E Ltd.)，英国普利茅斯)设计芽孢杆菌(Bacillus)的引物(正向引物5′-GAGGTAGACGAAGCGACCTG-3′(SEQ ID NO：226)和反向引物5′-TTCCCTCACGGTACTGGTTC-3′(SEQ ID NO：227))(Takeno等人，J.Bacteriol.[细菌学杂志]194(17)：4767-4768，2012)。PCR扩增循环包括在95℃持续5分钟的初始变性步骤，95℃持续1分钟、59℃持续1分钟、和72℃持续2分钟的35个循环，以及在72℃进行5分钟的最终延伸步骤。将来自土霉素处理和对照样品的扩增产物在1％琼脂糖凝胶上分析、用SYBR safe染色、并且使用成像系统可视化。

[0547] 将用土霉素溶液处理的瓦螨(Varroa mite)的存活率与用阴性对照处理的瓦螨(Varroa mite)的存活率进行比较。

[0548] 与对照相比，预期用土霉素溶液处理的瓦螨(Varroa mite)的存活率和迁移降低。

[0549] 实例8：布赫纳氏菌靶向分子的高通量筛选(HTS)

[0550] 此实例证明了靶向布赫纳氏菌的分子的鉴定。

[0551] 实验设计：用于鉴定靶向的细菌菌株(布赫纳氏菌)的抑制剂的HTS使用在pH-MMSuc培养基中的蔗糖发酵(Ymele-Leki等人，PLoS ONE[公共科学图书馆期刊]7(2)：
e31307，2012)以降低培养基的pH。培养基中的pH指示剂通过615nm处的吸光度变化(A615)分光光度法监测培养基酸化。将衍生自甘油储备液的靶细菌菌株(布赫纳氏菌)铺板在LB琼脂板上并在37℃孵育过夜。收获一菌环量的细胞，用PBS洗涤三次，然后在0.015的光密度下重悬于PBS中。

[0552] 对于HTS，将10μL的此细菌细胞悬浮液等分到含有30μL的pH-MMSuc培养基和100nL测试化合物级分的384孔板的孔中，该测试化合物级分来自微生物来源(如在(Ymele-Leki等人，PLoS ONE[公共科学图书馆期刊]7(2)：e31307，2012)中所述的真菌内生菌、细菌内生菌、土壤细菌和海洋细菌)的预分馏提取物(排列在384孔板中的39,314种提取物)的天然产物文库。对于每个测定，在室温孵育6小时和20小时后测量A615。使用EnVisionTM多孔分光光度计以384孔板格式自动化并验证此步骤，以测试来自文库的所有级分。选择通过蔗糖发酵证明延迟培养基酸化并抑制细胞生长的级分用于进一步纯化和鉴定。

[0553] 实例9：布赫纳氏菌特异性分子的分离和鉴定

[0554] 此实例证明了来自实例8中所述的级分的分离物的分离和鉴定，该分离物阻断蔗糖发酵并抑制布赫纳氏菌的细胞生长。

[0555] 实验设计：将实例8中所述的级分重悬浮于90％水/甲醇中并穿过C18 SPE柱以得到级分I。然后将该柱用甲醇洗涤以得到级分II。将级分II在具有制备型苯基-己基柱(菲罗门(Phenomenex)，Luna，25cm610mm、5mm粒度)的安捷伦(Agilent)1100系列HPLC上进行分离，使用含有20％乙腈/水与0.1％甲酸的洗脱缓冲液在2mL/min的流速下持续50分钟。这在不同的洗脱时间产生多种化合物。在αFT-IR质谱仪(布鲁克公司(Bruker))，UltrospecTM 5300pro UV/可见分光光度计(安玛西亚生物科学(Amersham Biosciences))和INOVA 
600MHz核磁共振光谱仪(瓦里安公司(Varian))上获得每种化合物的光谱。

[0556] 实例10：用布赫纳氏菌特异性分子的溶液处理蚜虫

[0557] 此实例证明了通过调节与对此化合物敏感的蚜虫内源的细菌群体，用实例9中鉴定的化合物之一处理蚜虫来杀死或降低蚜虫的适合度的能力。一个靶向的细菌菌株是布赫纳氏菌。

[0558] 治疗性设计：在10mL含有0.5％蔗糖和必需氨基酸的无菌水中，以0(阴性对照)、0.6、1、20或80μg/ml配制来自实例9的每种化合物。

[0559] 实验设计：

[0560] 为了准备处理，使蚜虫在实验室环境和培养基中生长。在气候控制室(16小时光照光周期；60％±5％RH；20℃±2℃)中，在24℃(伴随16小时的光照和8小时的黑暗)，蚕豆植物生长在蛭石和珍珠岩的混合物中。为了限制植物之间的母体效应或健康差异，将来自不同植物的5-10个成虫分布在10个两周龄的植物中，并且允许繁殖至高密度，持续5-7天。对于实验，将从健康植物收集第二龄和第三龄蚜虫并将其分成不同处理，使得每个处理从每个收集植物接收大约相同数量的个体。

[0561] 将96孔板的孔填充200μl的人工蚜虫饲料(Febvay等人，Canadian Journal of Zoology[加拿大动物学杂志]，66(11)：2449-2453，1988)，并且将板用石蜡膜覆盖以制成进食小袋。将人工饲料与作为阴性对照的含有0.5％蔗糖和必需氨基酸的无菌水混合、或与含有改变的化合物浓度的溶液混合。

[0562] 对于每次重复处理，将30-50只第二龄和第三龄蚜虫分别置于96孔板的孔中，并在其上方倒置进食小袋板，允许昆虫通过石蜡膜进食并将它们限制在单个孔中。将实验蚜虫与蚜虫集落保持在相同的环境条件下。在蚜虫进食24小时后，将进食小袋用含有无菌人工饲料的新进食小袋替换，并且每24小时提供新的无菌小袋，持续4天。在替换小袋时，还检查蚜虫的死亡率。如果蚜虫已经变成棕色或位于孔底并且在观察期间不移动，则将其视为死亡。如果蚜虫在进食小袋的石蜡膜上但没有移动，则认为它将进食并且存活。

[0563] 通过PCR评估蚜虫样品中布赫纳氏菌的状态。将来自阴性对照和化合物1处理的蚜虫首先用70％乙醇(持续1分钟)、10％漂白剂(持续1分钟)表面灭菌，并用超纯水(持续1分钟)洗涤三次。根据制造商的方案，使用昆虫DNA试剂盒(OMEGA，美国宝特公司)从每个个体(全身)中提取总DNA。基于23S-5S rRNA序列(获得自布赫纳氏菌基因组(保藏号：GCA_000009605.1))，使用引物5.0软件(引物E有限公司，英国普利茅斯)设计布赫纳氏菌的引物(正向引物5′-GTCGGCTCATCACATCC-3′(SEQ  ID  NO：221)和反向引物5′-
TTCCGTCTGTATTATCTCCT-3′(SEQ ID NO：222))(Shigenobu等人，Nature[自然]407：81-86，
2000)。PCR扩增循环包括在95℃持续5分钟的初始变性步骤，95℃持续30秒、55℃持续30秒、和72℃持续60秒的35个循环，以及在72℃进行10分钟的最终延伸步骤。将来自化合物1处理和对照样品的扩增产物在1％琼脂糖凝胶上分析，用SYBR safe染色，并且使用成像系统可视化。布赫纳氏菌特异性基因的减少指示化合物1的抗微生物活性。

[0564] 将用化合物处理的蚜虫的存活率与用阴性对照处理的蚜虫的存活率进行比较。预期用化合物处理的蚜虫的存活率的降低指示化合物的抗微生物活性。

[0565] 实例11：用抗生素溶液处理的蚜虫

[0566] 此实例证明了用利福平(一种通过抑制细菌的RNA聚合酶来抑制DNA依赖性RNA合成的窄谱抗生素)处理蚜虫。此实例证明了利福平对蚜虫的作用是通过调节与对利福平敏感的蚜虫内源的细菌群体来介导的。一个靶向的细菌菌株是布赫纳氏菌。

[0567] 蚜虫是对植物造成进食损害，并作为植物病毒的媒介的农业昆虫有害生物。此外，蚜虫蜜露促进了烟霉(sooty mold)的生长，并吸引了令人讨厌的蚂蚁。化学处理的使用(不幸的是，仍然普遍存在)导致选择抗性个体，这些个体的根除变得越来越困难。

[0568] 治疗性设计

[0569] 根据如以下的递送方式配制抗生素溶液(图1A-1G)：

[0570] 1)通过植物：在含有和不含必需氨基酸(2mg/ml组氨酸、2mg/ml异亮氨酸、2mg/ml亮氨酸、2mg/m赖氨酸、1mg/ml甲硫氨酸、1.62mg/ml苯丙氨酸、2mg/ml苏氨酸、1mg/ml色氨酸、和2mg/ml缬氨酸)的人工饲料(基于Akey和Beck，1971；参见实验设计)中配制的0(阴性对照)或100μg/ml的利福平。

[0571] 2)叶涂层：将在水中的100μl的0.025％非离子有机硅化合物表面活性剂溶剂Silwet L-77(阴性对照)、或在溶剂溶液中配制的100μl的50μg/ml的利福平直接施用至叶表面并允许干燥。

[0572] 3)显微注射：注射溶液是在水中的0.025％非离子有机硅化合物表面活性剂溶剂Silwet L-77(阴性对照)、或者在溶剂溶液中配制的50μg/ml的利福平。

[0573] 4)局部递送：使用30mL的喷雾瓶喷雾100μl的0.025％非离子有机硅化合物表面活性剂溶剂Silwet L-77(阴性对照)、或者在溶剂溶液中配制的50μg/ml的利福平。

[0574] 5)叶注射方法A-叶灌注和切割：将叶用在含有食用色素的水中的大约1ml的50μg/ml的利福平、或者含有水和食用色素的大约1ml的阴性对照注射。将叶切割成2x2cm方形的片，并将蚜虫放置在叶片上。

[0575] 6)叶灌注和通过植物递送：将叶用在含有食用色素的水中的大约1ml的100μg/ml的利福平、或者含有水和食用色素的大约1ml的阴性对照注射。然后将注射的叶的茎放置在Eppendorf管(含有1ml的100μg/ml的利福平加水和食用色素、或者1ml仅具有水和食用色素的阴性对照)中。

[0576] 7)组合递送方法：a)局部递送至蚜虫和植物：经由用在水中的0.025％非离子有机硅化合物表面活性剂溶剂Silwet L-77(阴性对照)、或者使用30mL配制在溶剂溶液中的100μg/ml的利福平两者喷雾蚜虫和植物，b)通过植物递送：仅水(阴性对照)或在水中配制的100μg/ml的利福平。

[0577] 植物递送实验设计：

[0578] 在气候控制培养箱(16小时光照/8小时黑暗光周期；60％±5％RH；25℃±2℃)中，蚜虫(LSR-1菌株，豌豆长管蚜(Acyrthosiphon pisum))在蚕豆植物(来自约翰尼精选种子公司(Johnny′s Selected Seeds)的Vroma vicia faba)上生长。在用于蚜虫饲养之前，在24℃伴随16小时的光照和8小时的黑暗，使蚕豆植物在盆栽土中生长。为了限制植物之间的母体效应或健康差异，将来自不同植物的5-10个成虫分布在10个两周龄的植物中，并且允许繁殖至高密度，持续5-7天。对于实验，从健康植物收集第一龄蚜虫，并且分成3个不同的处理组：1)不含必需氨基酸的单独的人工饲料，2)含有100μg/ml利福平但不含必需氨基酸的单独的人工饲料，以及3)含有必需氨基酸和100μg/ml利福平的人工饲料。每个处理组从每个收集植物接收大约相同数量的个体。

[0579] 如先前公开(Akey和Beck，1971 Continuous Rearing of the Pea Aphid，Acyrthosiphon pisum，on a Holidic Diet[以全纯饲料连续饲养豌豆蚜(豌豆长管蚜)])制备含有和不含必需氨基酸(2mg/ml组氨酸、2mg/ml异亮氨酸、2mg/ml亮氨酸、2mg/m赖氨酸、1mg/ml甲硫氨酸、1.62mg/ml苯丙氨酸、2mg/ml苏氨酸、1mg/ml色氨酸、和2mg/ml缬氨酸)的所使用的人工饲料，但两种饲料都不包括高丝氨酸或β丙氨酰基酪氨酸。用KOH将饲料的pH调节至7.5，并将饲料通过0.22μm滤器过滤灭菌并在4℃短期储存(＜7天)或在-80℃长期储存。

[0580] 将利福平(东京化工有限公司(Tokyo Chemical Industry，LTD))储备溶液在甲醇中以25mg/ml制备，穿过0.22μm针筒式滤器灭菌，并储存在-20℃。对于处理(参见治疗性设计)，将适量的储备溶液添加至含有或不含必需氨基酸的人工饲料中以获得100μg/ml利福平的最终浓度。然后将饲料放置在1.5ml Eppendorf管(具有带有叶的蚕豆茎)中，并且使用石蜡膜封闭管的开口。然后将此人工饲料饲喂系统放置在深的有盖培养皿(飞世尔科技公司(Fisher Scientific)，目录号FB0875711)中，并将蚜虫施用于植物的叶。

[0581] 对于每次处理，将33只蚜虫放置在每片叶上。贯穿整个实验，每2-3天更换人工饲料饲喂系统。每天监测蚜虫的存活，并且当发现死蚜虫时将其从装有人工饲喂系统的深的有盖培养皿中去除。

[0582] 此外，贯穿整个实验，每天确定发育阶段(第1龄、第2龄、第3龄、第4龄、第5龄)。一旦蚜虫到达第4龄期，在深的有盖培养皿向它们提供各自的人工饲喂系统，使得一旦它们到达成虫期，可以监测繁殖力。

[0583] 对于成年蚜虫，每天计数新的蛹然后丢弃。在实验结束时，繁殖力被确定为一旦蚜虫到达成虫期后每天产生的后代的平均数量。贯穿整个实验，拍摄蚜虫照片以评估治疗组之间的大小差异。

[0584] 处理7天后，从来自每个处理组的多个蚜虫提取DNA。简言之，通过将蚜虫浸入6％漂白溶液中大约5秒来对蚜虫体表进行灭菌。然后将蚜虫在无菌水中漂洗，并且使用DNA提取试剂盒(凯杰公司，DNeasy试剂盒)根据制造商的说明从每个个体蚜虫中提取DNA。使用nanodrop核酸定量法测量DNA浓度，并且通过qPCR测量布赫纳氏菌和蚜虫DNA拷贝数。用于布赫纳氏菌的引物是Buch_groES_18F(CATGATCGTGTGCTTGTTAAG；SEQ ID NO：228)和Buch_groES_98R(CTGTTCCTCGAGTCGATTTCC；SEQ ID NO：229)(Chong和Moran，2016PNAS[美国国家科学院院刊])。用于蚜虫的引物是ApEF1a 107F(CTGATTGTGCCGTGCTTATTG；SEQ ID NO：230)和ApEF1a 246R(TATGGTGGTTCAGTAGAGTCC；SEQ ID NO：231)(Chong和Moran，2016PNAS[美国国家科学院院刊])。使用1.6℃/秒的qPCR扩增斜率和以下条件进行qPCR：1)95℃持续10分钟，2)95℃持续15秒，3)55℃持续30秒，4)重复步骤2-340x，5)95℃持续15秒，6)55℃持续1分钟，7)斜率改变为0.15℃/s，8)95℃持续1秒。使用分析软件(赛默飞世尔科技公司(Thermo Fisher Scientific)，QuantStudio设计和分析)分析qPCR数据。

[0585] 抗生素处理延迟并停止了蚜虫发育的进展

[0586] 如实验设计(上文)中定义的，将LSR-1第1龄蚜虫分成三个不同的处理组。每天监测蚜虫并确定每个发育阶段的蚜虫数量。用不含必需氨基酸的单独的人工饲料处理的蚜虫在大约6天开始达到成熟(第5龄期)(图2A)。用利福平处理的蚜虫发育延迟，并且通过6天的处理，大多数蚜虫没有进一步比第3龄期成熟(甚至在12天的处理后也是如此)，并且它们的尺寸极大地受到影响(图2A-2C)。

[0587] 相比之下，与用单独的利福平处理的蚜虫相比，用含有补充必需氨基酸的利福平的人工饲料处理的蚜虫发育更快并且发育至更高龄期，但是没有用不含必需氨基酸的人工饲料处理的蚜虫发育更快(图2A-2C)。这些数据指示用利福平处理损害蚜虫发育。将必需氨基酸部分添加回来可挽救发育的这种缺陷。

[0588] 抗生素处理增加了蚜虫死亡率

[0589] 在处理期间还测量了蚜虫的存活率。用不含必需氨基酸的单独的人工饲料处理的蚜虫的大多数在处理后5天存活(图3)。5天后，蚜虫开始逐渐死亡，并且一些蚜虫在处理后超过13天存活。

[0590] 相比之下，用不含必需氨基酸的利福平处理的蚜虫比用单独的人工饲料(p＜0.00001)处理的蚜虫具有更低的存活率。经过1天的处理后，用利福平处理的蚜虫开始死亡，并且所有蚜虫在9天内在处理中死亡。用利福平和必需氨基酸两者处理的蚜虫比用单独的利福平处理的那些蚜虫存活更长(p＝0.017)。这些数据指示用利福平处理影响了蚜虫存活。

[0591] 抗生素处理降低了蚜虫繁殖

[0592] 在治疗期间还监测蚜虫的繁殖力。在处理后第7天和第8天，大多数用不含必需氨基酸的人工饲料处理的成年蚜虫开始繁殖。用不含必需氨基酸的人工饲料处理的蚜虫在成熟后每天产生的后代的平均数大约为4(图4)。相比之下，用含有或不含必需氨基酸的利福平处理的蚜虫不能达到成虫期以及产生后代。这些数据指示利福平处理导致蚜虫繁殖的丧失。

[0593] 抗生素处理降低了蚜虫中的布赫纳氏菌

[0594] 为了测试利福平是否特异性地导致蚜虫中布赫纳氏菌的丧失，并且这种丧失影响蚜虫适合度，在处理7天后从每个处理组的蚜虫中提取DNA并且进行qPCR以确定布赫纳氏菌/蚜虫拷贝数。用不含必需氨基酸的单独的人工饲料处理的蚜虫具有高比率的布赫纳氏菌/蚜虫DNA拷贝。相比之下，用利福平处理的蚜虫具有约4倍减少的布赫纳氏菌/蚜虫DNA拷贝(图5)，这指示利福平处理降低了布赫纳氏菌水平。

[0595] 叶涂层递送实验设计

[0596] 将利福平储备溶液添加至0.025％的非离子有机硅化合物表面活性剂溶剂(Silwet L-77)中以获得50μg/ml利福平的最终浓度。如在先前实例中所述的，蚜虫(eNASCO菌株，豌豆长管蚜(Acyrthosiphon pisum)在蚕豆植物上生长。对于实验，从健康植物收集第一龄蚜虫，并且分成2个不同的处理组：将叶用1)阴性对照(仅溶剂溶液)、2)溶剂中的50μg/ml利福平进行喷雾。将溶液吸收到蚕豆叶的2x2cm片上。

[0597] 每个处理组从每个收集植物接收大约相同数量的个体。对于每次处理，将20只蚜虫放置在每片叶上。每天监测蚜虫的存活，并且在发现死蚜虫时将其去除。此外，贯穿整个实验，每天确定发育阶段(第1龄、第2龄、第3龄、第4龄、第5龄、和5R(代表繁殖第5龄))。贯穿整个实验，拍摄蚜虫照片以评估治疗组之间的大小差异。

[0598] 在处理6天后，从来自每个处理组的多个蚜虫中提取DNA，并如在先前实例中所述的进行用于定量布赫纳氏菌水平的qPCR。

[0599] 通过叶涂层递送的抗生素处理延迟并停止了蚜虫发育的进展

[0600] 如本文所述的实验设计中定义的，将LSR-1第1龄蚜虫分成两个不同的处理组。每天监测蚜虫并确定每个发育阶段的蚜虫数量。放置在用对照处理的涂覆的叶上的蚜虫在大约6天开始达到成熟(第5龄繁殖阶段；5R)(图6A)。放置在用利福平涂覆的叶上的蚜虫发育延迟，并且通过6天的处理，大多数蚜虫没有进一步比第3龄期成熟(甚至在12天的处理后也是如此)，并且它们的尺寸极大地受到影响(图6A和6B)。

[0601] 这些数据指示用利福平的叶涂层损害蚜虫发育。

[0602] 通过叶涂层递送的抗生素处理增加了蚜虫死亡率

[0603] 在叶涂层处理期间还测量了蚜虫的存活率。放置在用利福平涂覆的叶上的蚜虫比放置在用对照涂覆的叶上的蚜虫具有更低的存活率(图7)。这些数据指示通过叶涂层递送的利福平处理影响了蚜虫存活。

[0604] 通过叶涂层递送的抗生素处理降低了蚜虫中的布赫纳氏菌

[0605] 为了测试通过叶涂层递送的利福平处理是否特异性地导致蚜虫中布赫纳氏菌的丧失，并且这种丧失影响蚜虫适合度，在处理6天后从每个处理组的蚜虫中提取DNA并且进行qPCR以确定布赫纳氏菌/蚜虫拷贝数。

[0606] 放置在用对照处理的叶上的蚜虫具有高比率的布赫纳氏菌/蚜虫DNA拷贝。相比之下，放置在用利福平处理的叶上的蚜虫具有布赫纳氏菌/蚜虫DNA拷贝的大幅减小(图8)，这指示利福平叶涂层处理消除了内共生布赫纳氏菌。

[0607] 显微注射递送实验设计：

[0608] 使用具有内部拉出的硼硅酸盐针的NanoJet III Auto-Nanoliter注射器(德拉蒙德科学公司(Drummond Scientific)；目录号3-000-203-G/XL)进行显微注射。如在先前实例中所述的，蚜虫(eNASCO菌株，豌豆长管蚜(Acyrthosiphon pisum)在蚕豆植物上生长。使用漆刷将蚜虫转移到与真空连接的管道系统中(图1C)。注射位点在蚜虫的腹侧胸腔。注射溶液是在水中的有机硅化合物表面活性剂溶剂0.025％Silwet L-77(莱尔种子公司(Lehle Seeds)，目录号VIS-01)(阴性对照)、或者在溶剂溶液中配制的50μg/ml的利福平。蛹的注射体积是10nl，并且成虫的注射体积是20nl(均以2nl/秒的速率)。每个处理组具有从每个收集植物注射的大约相同数量的个体。注射后，将蚜虫释放到具有蚕豆叶的有盖培养皿中，这些叶的茎在2％琼脂中。

[0609] 用抗生素处理的显微注射降低了蚜虫中的布赫纳氏菌

[0610] 为了测试通过显微注射递送的利福平是否导致蚜虫中布赫纳氏菌的丧失，并且如先前实例中所证明的这种丧失影响蚜虫适合度，在处理4天后从每个处理组中的蚜虫中提取DNA，并且如在先前实例中所述的进行qPCR以确定布赫纳氏菌/蚜虫拷贝数。

[0611] 用阴性对照显微注射的蚜虫具有高比率的布赫纳氏菌/蚜虫DNA拷贝。相比之下，用利福平显微注射的蚜虫蛹和成虫具有布赫纳氏菌/蚜虫DNA拷贝的大幅减小(图9)，这指示利福平显微注射处理降低了内共生布赫纳氏菌的存在。

[0612] 局部递送实验设计：

[0613] 如在先前实例中所述的，蚜虫(LSR-1菌株，豌豆长管蚜(Acyrthosiphon pisum)在蚕豆植物上生长。将喷雾瓶用2ml的对照(0.025％Silwet L-77)或利福平溶液(溶剂溶液中50μg/ml)填充。将蚜虫(数目＝10)转移到干净的有盖培养皿的底部，并使用漆刷将其收集到有盖培养皿的角落。随后，将蚜虫分成两个群组并用约100μl对照或利福平溶液喷雾。喷雾后立即用盖子盖住有盖培养皿。喷雾五分钟后，将蚜虫释放到具有蚕豆叶的有盖培养皿中，其中茎在2％琼脂中。

[0614] 局部递送抗生素处理降低了蚜虫中的布赫纳氏菌

[0615] 为了测试通过局部递送而递送的利福平是否导致蚜虫中布赫纳氏菌的丧失，并且如先前实例中所证明的这种丧失影响蚜虫适合度，在处理3天后从每个处理组中的蚜虫中提取DNA，并且如在先前实例中所述的进行qPCR以确定布赫纳氏菌/蚜虫拷贝数。

[0616] 用对照溶液喷雾的蚜虫具有高比率的布赫纳氏菌/蚜虫DNA拷贝。相比之下，用利福平喷雾的蚜虫具有布赫纳氏菌/蚜虫DNA拷贝的大幅减小(图10)，这指示通过局部处理递送的利福平处理降低内共生布赫纳氏菌的存在。

[0617] 叶注射方法A-叶灌注和切割

[0618] 实验设计：

[0619] 在气候控制培养箱(16小时光照/8小时黑暗光周期；60％±5％RH；25℃±2℃)中，蚜虫LSR-1(仅含有布赫纳氏菌，豌豆长管蚜(Acyrthosiphon pisum))在蚕豆植物(来自约翰尼精选种子公司(Johnny′s Selected Seeds)的Vroma vicia faba)上生长。在用于蚜虫饲养之前，在24℃伴随16小时的光照和8小时的黑暗，使蚕豆植物在盆栽土中生长。为了限制植物之间的母体效应或健康差异，将来自不同植物的5-10个成虫分布在10个两周龄的植物中，并且允许繁殖至高密度，持续5-7天。对于实验，从健康植物收集第一龄和第二龄蚜虫，并且分成2个不同的处理组：1)阴性对照(用水加蓝色食用色素注射的叶)、和2)用水加蓝色食用色素中的50μg/ml利福平注射的叶。每个处理组从每个收集植物接收大约相同数量的个体。对于处理，将利福平储备溶液(25mg/ml，在100％甲醇中)在水加蓝色食用色素中稀释至50μg/ml。然后将溶液放置在1.5ml Eppendorf管(具有灌注溶液的蚕豆茎)中，并且使用石蜡膜封闭管的开口。然后将此饲喂系统放置在深的有盖培养皿(飞世尔科技公司(Fisher Scientific)，目录号FB0875711)中，并将蚜虫施用于植物的叶。对于每次处理，将74-81只蚜虫放置在每片叶上。贯穿整个实验，每2-3天更换饲喂系统。每天监测蚜虫的存活，并且在发现死蚜虫时将其从深的有盖培养皿中去除。此外，贯穿整个实验，每天确定发育阶段(第1龄、第2龄、第3龄、第4龄、第5龄、和5R龄(繁殖的第5龄)。

[0620] 通过叶注射方法A递送的抗生素处理延迟并停止了蚜虫发育的进展

[0621] 如叶注射方法A-叶灌注和切割实验设计(本文所述的)中定义的，将LSR-1第1龄和第2龄蚜虫分成两个不同的处理组。每天监测蚜虫并确定每个发育阶段的蚜虫数量。用水加食用色素处理的蚜虫在大约6天开始达到成熟(第5龄期)(图11)。用注射利福平的叶饲喂的蚜虫发育延迟，并且通过6天的处理，大多数蚜虫没有进一步比第4龄期更成熟。甚至在8天后，用注射利福平的叶饲喂的蚜虫的发育大幅延迟(图11)。这些数据指示经由叶灌注的利福平处理损害蚜虫发育。

[0622] 通过叶注射方法A递送的抗生素处理增加了蚜虫死亡率

[0623] 在叶灌注实验期间还测量了蚜虫的存活率。放置在用利福平注射的叶上的蚜虫比放置在用对照溶液注射的叶上的蚜虫具有更低的存活率(图12)。这些数据指示通过叶注射递送的利福平处理影响了蚜虫存活。

[0624] 通过叶注射方法A递送的抗生素处理导致了降低水平的布赫纳氏菌

[0625] 为了测试经由叶灌注递送的利福平是否导致蚜虫中布赫纳氏菌的丧失，并且如先前实例中所证明的该丧失影响蚜虫适合度，在处理8天后从每个处理组中的蚜虫中提取DNA，并且如在先前实例中所述的进行qPCR以确定布赫纳氏菌/蚜虫拷贝数。

[0626] 用对照溶液注射的叶饲喂的蚜虫具有高比率的布赫纳氏菌/蚜虫DNA拷贝。相比之下，用注射利福平的叶饲喂的蚜虫具有布赫纳氏菌/蚜虫DNA拷贝(图13)的减少，这指示经由叶注射递送的利福平处理降低了内共生布赫纳氏菌的存在(如在先前实例中显示的)并且导致了适合度降低。

[0627] 叶灌注和通过植物递送

[0628] 实验设计：

[0629] 在气候控制培养箱(16小时光照/8小时黑暗光周期；60％±5％RH；20℃±2℃)中，蚜虫LSR-1(仅含有布赫纳氏菌，豌豆长管蚜(Acyrthosiphon pisum))在蚕豆植物(来自约翰尼精选种子公司(Johnny′s Selected Seeds)的Vroma vicia faba)上生长。在用于蚜虫饲养之前，在24℃伴随16小时的光照和8小时的黑暗，使蚕豆植物在盆栽土中生长。

[0630] 为了限制植物之间的母体效应或健康差异，将来自不同植物的5-10个成虫分布在10个两周龄的植物中，并且允许繁殖至高密度，持续5-7天。对于实验，从健康植物收集第一龄和第二龄蚜虫，并且分成2个不同的处理组：1)将蚜虫放置在用阴性对照溶液(水和食用色素)注射的叶上并放置在Eppendorf管(含有阴性对照溶液)中，或者2)将蚜虫放置在用
100ug/ml利福平(在水加食用色素中)注射的叶上并放置在Eppendorf管(含有在水中的
100ug/ml利福平)中。每个处理组从每个收集植物接收大约相同数量的个体。

[0631] 对于处理，将利福平储备溶液(25mg/ml，于100％甲醇中)在水加蓝色食用色素中稀释至100μg/ml。然后将溶液放置在1.5ml Eppendorf管(具有带有灌注溶液的叶的蚕豆茎)中，并且使用石蜡膜封闭管的开口。然后将此饲喂系统放置在深的有盖培养皿(飞世尔科技公司(Fisher Scientific)，目录号FB0875711)中，并将蚜虫施用于植物的叶。

[0632] 对于每次处理，将49-50只蚜虫放置在每片叶上。贯穿整个实验，每2-3天更换饲喂系统。每天监测蚜虫的存活，并且在发现死蚜虫时将其从深的有盖培养皿中去除。

[0633] 此外，贯穿整个实验，每天确定发育阶段(第1龄、第2龄、第3龄、第4龄、第5龄、和5R龄(繁殖的第5龄)。

[0634] 通过叶注射递送的和通过植物递送的抗生素处理延迟并停止了蚜虫发育的进展[0635] 如在叶灌注和通过植物递送实验设计(本文所述的)中定义的，将LSR-1第1龄和第2龄蚜虫分成两个不同的处理组。每天监测蚜虫并确定每个发育阶段的蚜虫数量。用对照溶液(仅水加食用色素)处理的蚜虫在大约6天达到成熟(第5龄期)(图14)。

[0636] 用利福平处理的蚜虫中发育延迟，并且通过6天的处理，大多数蚜虫没有进一步比第3龄期更成熟。甚至在8天后，它们的发育大幅延迟(图14)。这些数据指示经由叶灌注的利福平处理损害蚜虫发育。

[0637] 通过叶注射递送的和通过植物递送的抗生素处理增加了蚜虫死亡率

[0638] 还在实验期间测量蚜虫的存活率，其中将蚜虫用对照溶液或者经由叶灌注和通过植物递送的利福平处理。用利福平灌注和处理的叶饲喂的蚜虫比用对照溶液灌注和处理的叶饲喂的蚜虫具有更低的存活率(图15)。这些数据指示通过叶灌注和通过植物递送的利福平处理负面地影响蚜虫存活。

[0639] 经由叶注射和通过植物递送的抗生素处理导致了降低水平的布赫纳氏菌

[0640] 为了测试经由叶灌注和通过植物递送的利福平是否导致蚜虫中布赫纳氏菌的丧失，并且如先前实例中所证明的这种丧失影响蚜虫适合度，在处理6天和8天后从每个处理组的蚜虫中提取DNA并且进行qPCR以确定布赫纳氏菌/蚜虫拷贝数，如在先前实例中所述的。

[0641] 用对照溶液注射和处理的叶饲喂的蚜虫具有高比率的布赫纳氏菌/蚜虫DNA拷贝。相比之下，在两个时间点(p＝0.0037和p＝0.0025分别为第6天和第8天)，用利福平灌注和处理的叶饲喂的蚜虫具有布赫纳氏菌/蚜虫DNA拷贝的统计学上显著的减少(图16A和16B)，这指示经由叶灌注和通过植物递送的利福平处理降低了内共生布赫纳氏菌的存在(并且如在先前实例中显示的)并且导致适合度降低。

[0642] 组合递送方法

[0643] 实验设计：

[0644] 在气候控制培养箱(16小时光照/8小时黑暗光周期；60％±5％RH；20℃±2℃)中，蚜虫LSR-1(仅含有布赫纳氏菌，豌豆长管蚜(Acyrthosiphon pisum))在蚕豆植物(来自约翰尼精选种子公司(Johnny′s Selected Seeds)的Vroma vicia faba)上生长。在用于蚜虫饲养之前，在24℃伴随16小时的光照和8小时的黑暗，使蚕豆植物在盆栽土中生长。为了限制植物之间的母体效应或健康差异，将来自不同植物的5-10个成虫分布在10个两周龄的植物中，并且允许繁殖至高密度，持续5-7天。

[0645] 对于实验，从健康植物收集第一龄和第二龄蚜虫，并且分成2个不同的处理组：1)用Silwet-L77或水对照溶液处理，或者2)用稀释在silwet L-77或水中的利福平处理。每个处理组从每个收集植物接收大约相同数量的个体。递送方法的组合如下：a)使用30mL喷雾瓶，通过喷雾0.025％非离子有机硅化合物表面活性剂溶剂Silwet L-77(阴性对照)、或者配制在溶剂溶液中的100μg/ml的利福平局部递送至蚜虫和植物，以及b)用水(阴性对照)、或配制在水中的100μg/ml的利福平通过植物递送。对于处理，在Silwet L-77(用于局部处理蚜虫，并涂覆叶)或水(用于通过植物递送)中，将利福平储备溶液(25mg/ml，于100％甲醇中)稀释至100μg/ml。然后将溶液放置在1.5ml Eppendorf管(具有带有灌注溶液的叶的蚕豆茎)中，并且使用石蜡膜封闭管的开口。然后将此饲喂系统放置在深的有盖培养皿(飞世尔科技公司(Fisher Scientific)，目录号FB0875711)中，并将蚜虫施用于植物的叶。

[0646] 对于每次处理，将76-80只蚜虫放置在每片叶上。贯穿整个实验，每2-3天更换饲喂系统。每天监测蚜虫的存活，并且在发现死蚜虫时将其从深的有盖培养皿中去除。

[0647] 此外，贯穿整个实验，每天确定发育阶段(第1龄、第2龄、第3龄、第4龄、第5龄、和5R龄(繁殖的第5龄)。

[0648] 组合抗生素处理延迟了蚜虫发育

[0649] 如在组合递送方法实验设计(本文所述的)中定义的，将LSR-1第1龄和第2龄蚜虫分成两个不同的处理组。每天监测蚜虫并确定每个发育阶段的蚜虫数量。对照处理的蚜虫在大约6天开始达到成熟(第5龄期)(图17)。用利福平处理的蚜虫发育延迟，并且通过6天的处理，大多数蚜虫没有进一步比第3龄期成熟，甚至7天后它们的发育大幅延迟(图17)。这些数据指示利福平处理的组合损害蚜虫发育。

[0650] 组合抗生素处理导致蚜虫死亡率增加

[0651] 还在实验期间测量了蚜虫的存活率，其中将蚜虫用利福平处理的组合进行处理。用利福平处理的蚜虫比用对照溶液处理的蚜虫具有轻微较低的存活率(图18)。这些数据指示通过处理的组合递送的利福平处理影响了蚜虫存活。

[0652] 组合抗生素处理以降低布赫纳氏菌水平

[0653] 为了测试经由方法的组合递送的利福平是否导致蚜虫中布赫纳氏菌的丧失，并且如先前实例中所证明的这种丧失影响蚜虫适合度，在处理7天后从每个处理组中的蚜虫中提取DNA，并且如在先前实例中所述的进行qPCR以确定布赫纳氏菌/蚜虫拷贝数。

[0654] 用对照溶液处理的蚜虫具有高比率的布赫纳氏菌/蚜虫DNA拷贝。相比之下，用利福平处理的蚜虫具有布赫纳氏菌/蚜虫DNA拷贝的统计学上显著的和大幅的减小(p＝0.227；图19)，这指示经由方法的组合递送的利福平处理降低了内共生布赫纳氏菌的存在，并且如在先前实例中显示的，这导致适合度降低。

[0655] 总之，在先前实例中所述的此数据证明了通过多个递送方法用抗生素处理蚜虫而杀死和降低蚜虫发育、生殖能力、寿命、和内源性细菌群体的能力(例如，适合度)。

[0656] 实例12：用天然抗微生物多糖处理的蚜虫

[0657] 此实施例证明了用壳聚糖(衍生自几丁质的脱乙酰化β-1，4-D-葡糖胺的天然阳离子线性多糖)处理蚜虫。几丁质是昆虫、甲壳类动物(主要是虾和蟹)和真菌细胞壁的外骨骼中的结构元素，并且是纤维素之后第二丰富的天然多糖。此实例证明了壳聚糖对蚜虫的作用是通过调节内源于对壳聚糖敏感的蚜虫的细菌群体来介导的。一个靶向的细菌菌株是蚜虫布赫纳氏菌(Buchnera aphidicola)。

[0658] 蚜虫是对植物造成直接进食损害，并作为植物病毒的媒介的农业昆虫有害生物。此外，蚜虫蜜露促进了烟霉(sooty mold)的生长，并吸引了令人讨厌的蚂蚁。化学处理的使用(不幸的是，仍然普遍存在)导致选择抗性个体，这些个体的根除变得越来越困难。

[0659] 治疗性设计

[0660] 使用叶灌注和通过植物递送的组合配制壳聚糖溶液(图20)。对照溶液是用水+蓝色食用色素注射的叶，并且水在管中。经由叶注射(蓝色食用色素)和通过植物(在Eppendorf管中)，含有在水中的300ug/ml壳聚糖(低分子量)的处理溶液。

[0661] 叶灌注-植物递送实验设计：

[0662] 在气候控制培养箱(16小时光照/8小时黑暗光周期；60％±5％RH；25℃±2℃)中，蚜虫LSR-1(仅含有布赫纳氏菌，豌豆长管蚜(Acyrthosiphon pisum))在蚕豆植物(来自约翰尼精选种子公司(Johnny′s Selected Seeds)的Vroma vicia faba)上生长。在用于蚜虫饲养之前，在24℃伴随16小时的光照和8小时的黑暗，使蚕豆植物在盆栽土中生长。为了限制植物之间的母体效应或健康差异，将来自不同植物的5-10个成虫分布在10个两周龄的植物中，并且允许繁殖至高密度，持续5-7天。对于实验，从健康植物收集第一龄和第二龄蚜虫，并且分成2个不同的处理组：1)阴性对照(水处理的)，2)包括在水中的300ug/ml壳聚糖(低分子量)的处理溶液。每个处理组从每个收集植物接收大约相同数量的个体。

[0663] 将壳聚糖(西格玛公司(Sigma)，目录号448869-50G)储备溶液在乙酸中以1％制备，高压灭菌法灭菌，并储存在4℃。对于处理(参见治疗性设计)，将适量的储备溶液用水稀释以获得壳聚糖的最终处理浓度。然后将溶液放置在1.5ml Eppendorf管(具有带有灌注溶液的叶的蚕豆茎)中，并且使用石蜡膜封闭管的开口。然后将此饲喂系统放置在深的有盖培养皿(飞世尔科技公司(Fisher Scientific)，目录号FB0875711)中，并将蚜虫施用于植物的叶。

[0664] 对于每次处理，将50-51只蚜虫放置在每片叶上。贯穿整个实验，每2-3天更换饲喂系统。每天监测蚜虫的存活，并且在发现死蚜虫时将其从深的有盖培养皿中去除。

[0665] 此外，贯穿整个实验，每天确定发育阶段(第1龄、第2龄、第3龄、第4龄、第5龄、和5R龄(繁殖的第5龄)。

[0666] 处理8天后，从来自每个处理组的多个蚜虫提取DNA。简言之，通过将蚜虫浸入6％漂白溶液中大约5秒来对蚜虫体表进行灭菌。然后将蚜虫在无菌水中漂洗，并且使用DNA提取试剂盒(凯杰公司，DNeasy试剂盒)根据制造商的说明从每个个体蚜虫中提取DNA。使用nanodrop核酸定量法测量DNA浓度，并且通过qPCR测量布赫纳氏菌和蚜虫DNA拷贝数。用于布赫纳氏菌的引物是Buch_groES_18F(CATGATCGTGTGCTTGTTAAG；SEQ ID NO：228)和Buch_groES_98R(CTGTTCCTCGAGTCGATTTCC；SEQ ID NO：229)(Chong和Moran，2016PNAS[美国国家科学院院刊])。用于蚜虫的引物是ApEF1a 107F(CTGATTGTGCCGTGCTTATTG；SEQ ID NO：230)和ApEF1a 246R(TATGGTGGTTCAGTAGAGTCC；SEQ ID NO：231)(Chong和Moran，2016PNAS[美国国家科学院院刊])。使用1.6℃/秒的qPCR扩增斜率和以下条件进行qPCR：1)95℃持续10分钟，2)95℃持续15秒，3)55℃持续30秒，4)重复步骤2-340x，5)95℃持续15秒，6)55℃持续1分钟，7)斜率改变为0.15℃/s，8)95℃持续1秒。使用分析软件(赛默飞世尔科技公司(Thermo Fisher Scientific)，QuantStudio设计和分析)分析qPCR数据。

[0667] 用天然抗微生物多糖处理后，存在对昆虫适合度的负面应答

[0668] 如实验设计(上文)中定义的，将LSR-1豌豆长管蚜第1龄和第2龄蚜虫分成两个不同的处理组。每天监测蚜虫并确定每个发育阶段的蚜虫数量。单独用阴性对照处理的蚜虫在大约6天开始达到成熟(第5龄期)(图21)。用壳聚糖溶液处理的蚜虫发育延迟，并且通过6天的壳聚糖处理，大多数蚜虫没有进一步比第4龄期更成熟。这些数据指示用壳聚糖处理延迟和停止了蚜虫发育的进展。

[0669] 壳聚糖处理蚜虫死亡率增加

[0670] 在处理期间还测量了蚜虫的存活率。大多数单独用对照处理的蚜虫在处理后3天存活(图22)。4天后，蚜虫开始逐渐死亡，并且一些蚜虫在处理后超过7天存活。

[0671] 相比之下，用壳聚糖溶液处理的蚜虫比用对照处理的蚜虫具有更低的存活率。这些数据指示用天然抗微生物多糖处理后存活降低。

[0672] 壳聚糖处理降低了蚜虫中的布赫纳氏菌

[0673] 为了测试壳聚糖溶液处理是否特异性地导致蚜虫中布赫纳氏菌的丧失，并且这种丧失影响蚜虫适合度，在处理8天后从每个处理组的蚜虫中提取DNA并且进行qPCR以确定布赫纳氏菌/蚜虫拷贝数。单独用对照处理的蚜虫具有高比率的布赫纳氏菌/蚜虫DNA拷贝。相比之下，用在水中的300ug/ml壳聚糖处理的蚜虫具有约5倍减少的布赫纳氏菌/蚜虫DNA拷贝(图23)，这指示壳聚糖处理降低了布赫纳氏菌水平。

[0674] 总之，先前描述的此数据证明了通过用天然抗微生物多糖处理蚜虫而杀死和降低蚜虫发育、寿命、和内源性细菌群体的能力(例如，适合度)。

[0675] 实例13：用乳链菌肽(天然抗微生物肽)处理的蚜虫

[0676] 此实例证明用通常用作食物防腐剂的天然“广谱”多环抗菌肽(由细菌乳酸乳球菌(Lactococcus lactis)产生)处理蚜虫。乳链菌肽的抗菌活性通过其在细菌细胞膜中产生孔并通过特异性脂质II相互作用中断细菌细胞壁生物合成的能力来介导。此实例证明乳链菌肽对蚜虫适合度的负面作用是通过调节内源于对乳链菌肽敏感的蚜虫的细菌群体来介导的。一个靶向的细菌菌株是蚜虫布赫纳氏菌(Buchnera aphidicola)。

[0677] 蚜虫是对植物造成直接进食损害，并作为植物病毒的媒介的农业昆虫有害生物。此外，蚜虫蜜露促进了烟霉(sooty mold)的生长，并吸引了令人讨厌的蚂蚁。化学处理的使用(不幸的是，仍然普遍存在)导致选择抗性个体，这些个体的根除变得越来越困难。

[0678] 治疗性设计：

[0679] 使用叶灌注和通过植物递送的组合配制乳链菌肽。将对照溶液(水)或处理溶液(乳链菌肽)注射到叶中并放置在Eppendorf管中。处理溶液由在水中的1.6或7mg/ml乳链菌肽组成。

[0680] 叶灌注-植物递送实验设计：

[0681] 在气候控制培养箱(16小时光照/8小时黑暗光周期；60％±5％RH；25℃±2℃)中，LSR-1蚜虫(豌豆长管蚜(Acyrthosiphon pisum))在蚕豆植物(来自约翰尼精选种子公司(Johnny′s Selected Seeds)的Vroma vicia faba)上生长。在用于蚜虫饲养之前，在24℃伴随16小时的光照和8小时的黑暗，使蚕豆植物在盆栽土中生长。为了限制植物之间的母体效应或健康差异，将来自不同植物的5-10个成虫分布在10个两周龄的植物中，并且允许繁殖至高密度，持续5-7天。对于实验，从健康植物收集第一龄和第二龄蚜虫，并且分成2个不同的处理组：1)阴性对照(水处理的)，2)用在水中的1.6或7mg/ml乳链菌肽处理的乳链菌肽。每个处理组从每个收集植物接收大约相同数量的个体。

[0682] 对于处理(参见治疗性设计)，以1.6或7mg/ml(w/v)在水中制备乳链菌肽(西格玛公司，产品号：N5764)溶液，并使用0.22um针筒式滤器过滤灭菌。然后将溶液注射到植物的叶中，并且将植物的茎放置在1.5ml Eppendorf管中。使用石蜡膜封闭管的开口。然后将此饲喂系统放置在深的有盖培养皿(飞世尔科技公司(Fisher Scientific)，目录号FB0875711)中，并将蚜虫施用于植物的叶。

[0683] 对于每次处理，将56-59只蚜虫放置在每片叶上。贯穿整个实验，每2-3天更换饲喂系统。每天监测蚜虫的存活，并且在发现死蚜虫时将其从深的有盖培养皿中去除。

[0684] 此外，贯穿整个实验，每天确定发育阶段(第1龄、第2龄、第3龄、第4龄、第5龄、和5R龄(繁殖的第5龄蚜虫))。

[0685] 处理8天后，从每个处理组的剩余蚜虫中提取DNA。简言之，通过将蚜虫浸入6％漂白溶液中大约5秒来对蚜虫体表进行灭菌。然后将蚜虫在无菌水中漂洗，并且使用DNA提取试剂盒(凯杰公司，DNeasy试剂盒)根据制造商的说明从每个个体蚜虫中提取DNA。使用nanodrop核酸定量法测量DNA浓度，并且通过qPCR测量布赫纳氏菌和蚜虫DNA拷贝数。用于布赫纳氏菌的引物是Buch_groES_18F(CATGATCGTGTGCTTGTTAAG；SEQ ID NO：228)和Buch_groES_98R(CTGTTCCTCGAGTCGATTTCC；SEQ ID NO：229)(Chong和Moran，2016 PNAS[美国国家科学院院刊])。用于蚜虫的引物是ApEF1a 107F(CTGATTGTGCCGTGCTTATTG；SEQ ID NO：230)和ApEF1a 246R(TATGGTGGTTCAGTAGAGTCC；SEQ ID NO：231)(Chong和Moran，2016 PNAS[美国国家科学院院刊])。使用1.6℃/秒的qPCR扩增斜率和以下条件进行qPCR：1)95℃持续
10分钟，2)95℃持续15秒，3)55℃持续30秒，4)重复步骤2-3 40x，5)95℃持续15秒，6)55℃持续1分钟，7)斜率改变为0.15℃/s，8)95℃持续1秒。使用分析软件(赛默飞世尔科技公司(Thermo Fisher Scientific)，QuantStudio设计和分析)分析qPCR数据。

[0686] 用乳链菌肽处理后，存在对昆虫适合度的剂量依赖性的负面应答

[0687] 如实验设计(上文)中定义的，将LSR-1豌豆长管蚜第1龄和第2龄蚜虫分成三个不同的处理组。每天监测蚜虫并确定每个发育阶段的蚜虫数量。用阴性对照溶液(水)处理的蚜虫在大约6天开始达到成熟(第5龄期)，并且在7天后繁殖(5R期)(图24)。用7mg/ml乳链菌肽处理的蚜虫的发育严重延迟。仅用7mg/ml乳链菌肽处理的蚜虫在第3天发展至第2龄期，并且在第6天，组中的所有蚜虫死亡(图24)。在较低浓度的乳链菌肽(1.6mg/ml)处理的蚜虫中发育被轻微地延迟，并且在评估的每个时间点，与水处理的对照相比存在更少发育的蚜虫(图24)。这些数据指示用乳链菌肽处理延迟和停止了蚜虫发育的进展，并且这种发育中的延迟取决于所给予的乳链菌肽的剂量。

[0688] 然而，重要的是要注意用7mg/ml的乳链菌肽处理对用于测定中的叶的健康也具有负面影响。在叶灌注7mg/ml的乳链菌肽后不久，叶开始变成棕色。两天后，用7mg/ml灌注的叶变成黑色。用1.6mg/ml乳链菌肽处理的叶的状况没有明显差异。

[0689] 用乳链菌肽的处理导致蚜虫死亡率增加

[0690] 在处理期间还测量了蚜虫的存活率。用单独的对照处理的蚜虫中大约50％在8天实验中存活(图25)。相比之下，对于用7mg/ml乳链菌肽处理的蚜虫存活显著较低(p＜0.0001，通过对数秩(Mantel Cox)检验)，并且在这组中的所有蚜虫在6天内在处理中死亡(图25)。与对照处理的蚜虫相比，用低剂量的乳链菌肽(1.6mg/ml)处理的蚜虫具有更高的死亡率，尽管差异没有达到统计学显著性(p＝0.0501，通过对数秩(Mantel Cox)检验)。这些数据指示用乳链菌肽处理后的存活存在剂量依赖性降低。

[0691] 用乳链菌肽的处理导致蚜虫中布赫纳氏菌降低

[0692] 为了测试用乳链菌肽处理是否特异性地导致蚜虫中布赫纳氏菌的丧失，并且这种丧失影响蚜虫适合度，在处理8天后从每个处理组的蚜虫中提取DNA并且进行qPCR以确定布赫纳氏菌/蚜虫拷贝数。单独用对照处理的蚜虫具有高比率的布赫纳氏菌/蚜虫DNA拷贝。相比之下，用1.6mg/ml乳链菌肽处理的蚜虫在处理8天后具有约1.4倍减少的布赫纳氏菌/蚜虫DNA拷贝(图26)。在用7mg/ml乳链菌肽处理的组中没有蚜虫存活，因此，没有在这组中评估布赫纳氏菌/蚜虫DNA拷贝。这些数据指示乳链菌肽处理降低了布赫纳氏菌水平。

[0693] 总之，先前描述的此数据证明了通过用抗微生物肽乳链菌肽处理蚜虫而杀死和降低蚜虫发育、寿命、和内源性细菌群体的能力(例如，适合度)。

[0694] 实例14：用乙酰丙酸处理的蚜虫降低了昆虫适合度

[0695] 此实例证明了用乙酰丙酸(通过用己糖(例如，木材、淀粉、小麦、稻草或蔗糖)加热碳水化合物，并添加稀释的矿物酸而产生的酮酸)处理蚜虫减少了昆虫适合度。先前已经测试了乙酰丙酸在肉类生产中作为针对大肠杆菌(Escherichia coli)和沙门氏菌(Salmonella)的抗微生物剂(Carpenter等人，2010，Meat Science[肉类科学]；Savannah G.Hawkins，2014，University of Tennessee Honors Thesis[田纳西大学荣誉论文])。此实例证明了乙酰丙酸对蚜虫的作用是通过调节内源于对乙酰丙酸敏感的蚜虫的细菌群体来介导的。一个靶向的细菌菌株是蚜虫布赫纳氏菌(Buchnera aphidicola)。

[0696] 蚜虫是对植物造成直接进食损害，并作为植物病毒的媒介的农业昆虫有害生物。此外，蚜虫蜜露促进了烟霉(sooty mold)的生长，并吸引了令人讨厌的蚂蚁。化学处理的使用(不幸的是，仍然普遍存在)导致选择抗性个体，这些个体的根除变得越来越困难。

[0697] 治疗性设计：

[0698] 使用叶灌注和通过植物递送的组合配制乙酰丙酸。对照溶液是用水注射的叶，并且将水放置在Eppendorf管中。处理溶液包括经由叶注射和通过植物的在水中的0.03％或0.3％乙酰丙酸(在Eppendorf管中)。

[0699] 叶灌注-植物递送实验设计：

[0700] 在气候控制培养箱(16小时光照/8小时黑暗光周期；60％±5％RH；25℃±2℃)中，eNASCO蚜虫(豌豆长管蚜(Acyrthosiphon pisum))在蚕豆植物(来自约翰尼精选种子公司(Johnny′s Selected Seeds)的Vroma vicia faba)上生长。在用于蚜虫饲养之前，在24℃伴随16小时的光照和8小时的黑暗，使蚕豆植物在盆栽土中生长。为了限制植物之间的母体效应或健康差异，将来自不同植物的5-10个成虫分布在10个两周龄的植物中，并且允许繁殖至高密度，持续5-7天。对于实验，从健康植物收集第一龄和第二龄蚜虫，并且分成2个不同的处理组：1)阴性对照(水处理的)，2)包括在水中的0.03％或0.3％乙酰丙酸的处理溶液。每个处理组从每个收集植物接收大约相同数量的个体。

[0701] 对于处理(参见治疗性设计)，将乙酰丙酸(西格玛公司，产品号：W262706)在水中稀释至0.03％或0.3％。然后将溶液放置在1.5ml Eppendorf管(具有带有灌注溶液的叶的蚕豆茎)中，并且使用石蜡膜封闭管的开口。然后将此饲喂系统放置在深的有盖培养皿(飞世尔科技公司(Fisher Scientific)，目录号FB0875711)中，并将蚜虫施用于植物的叶。

[0702] 对于每次处理，将57-59只蚜虫放置在每片叶上。贯穿整个实验，每2-3天更换饲喂系统。每天监测蚜虫的存活，并且在发现死蚜虫时将其从深的有盖培养皿中去除。

[0703] 此外，贯穿整个实验，每天确定发育阶段(第1龄、第2龄、第3龄、第4龄、和第5龄)。

[0704] 处理7天后，从每个处理组的剩余蚜虫中提取DNA。简言之，通过将蚜虫浸入6％漂白溶液中大约5秒来对蚜虫体表进行灭菌。然后将蚜虫在无菌水中漂洗，并且使用DNA提取试剂盒(凯杰公司，DNeasy试剂盒)根据制造商的说明从每个个体蚜虫中提取DNA。使用nanodrop核酸定量法测量DNA浓度，并且通过qPCR测量布赫纳氏菌和蚜虫DNA拷贝数。用于布赫纳氏菌的引物是Buch groES_18F(CATGATCGTGTGCTTGTTAAG；SEQ ID NO：228)和Buch groES_98R(CTGTTCCTCGAGTCGATTTCC；SEQ ID NO：229)(Chong和Moran，2016 PNAS[美国国家科学院院刊])。用于蚜虫的引物是ApEF1a 107F(CTGATTGTGCCGTGCTTATTG；SEQ ID NO：230)和ApEF1a 246R(TATGGTGGTTCAGTAGAGTCC；SEQ ID NO：231)(Chong和Moran，2016 PNAS[美国国家科学院院刊])。使用1.6℃/秒的qPCR扩增斜率和以下条件进行qPCR：1)95℃持续
10分钟，2)95℃持续15秒，3)55℃持续30秒，4)重复步骤2-3 40x，5)95℃持续15秒，6)55℃持续1分钟，7)斜率改变为0.15℃/s，8)95℃持续1秒。使用分析软件(赛默飞世尔科技公司(Thermo Fisher Scientific)，QuantStudio设计和分析)分析qPCR数据。

[0705] 用乙酰丙酸处理后，存在对昆虫适合度的剂量依赖性的负面应答

[0706] 如实验设计(上文)中定义的，将eNASCO豌豆长管蚜第1龄和第2龄蚜虫分成三个不同的处理组。每天监测蚜虫并确定每个发育阶段的蚜虫数量。单独用阴性对照处理的蚜虫在大约7天开始达到成熟(第5龄期)(图27)。在用乙酰丙酸处理的蚜虫中发育延迟，并且在处理后11天，几乎所有对照处理的蚜虫都达到成熟，而用0.03％和0.3％乙酰丙酸处理的蚜虫中分别约23％和63％没有进一步比第4龄期更成熟。这些数据指示用乙酰丙酸处理延迟和停止了蚜虫发育的进展，并且这种发育中的延迟取决于所给予的乙酰丙酸的剂量。

[0707] 用乙酰丙酸的处理导致蚜虫死亡率增加

[0708] 在处理期间还测量了蚜虫的存活率。用单独的对照处理的蚜虫中大约50％在11天实验中存活(图28)。相比之下，用0.3％乙酰丙酸处理的蚜虫存活显著较少(p＜0.01)。与对照处理的蚜虫相比，用低剂量的乙酰丙酸(0.03％)处理的蚜虫具有更高的死亡率，尽管差异没有达到统计学显著性。这些数据指示用乙酰丙酸处理后存活存在剂量依赖性降低。

[0709] 用乙酰丙酸的处理导致蚜虫中布赫纳氏菌降低

[0710] 为了测试用乙酰丙酸处理是否特异性地导致蚜虫中布赫纳氏菌的丧失，并且这种丧失影响蚜虫适合度在处理7天后从每个处理组的蚜虫中提取DNA并且进行qPCR以确定布赫纳氏菌/蚜虫拷贝数。单独用对照处理的蚜虫具有高比率的布赫纳氏菌/蚜虫DNA拷贝。相比之下，用水中的0.03％或0.3％乙酰丙酸处理的蚜虫在处理7天后具有约6倍减少的布赫纳氏菌/蚜虫DNA拷贝(图29，左小图)。这些数据指示乙酰丙酸处理降低了布赫纳氏菌水平。

[0711] 总之，先前描述的此数据证明了通过用乙酰丙酸处理蚜虫而杀死和降低蚜虫发育、寿命、和内源性细菌群体的能力(例如，适合度)。

[0712] 实例15：用植物衍生的次生代谢物溶液处理的蚜虫

[0713] 此实例证明用棉酚乙酸(一种衍生自棉花植物(棉属(Gossypium)的天然苯酚，该天然苯酚渗透细胞并充当若干种脱氢酶的抑制剂)处理蚜虫。此实例证明了棉酚对蚜虫的作用是通过调节内源于对棉酚敏感的蚜虫的细菌群体来介导的。一个靶向的细菌菌株是蚜虫布赫纳氏菌(Buchnera aphidicola)。

[0714] 蚜虫是对植物造成直接进食损害，并作为植物病毒的媒介的农业昆虫有害生物。此外，蚜虫蜜露促进了烟霉(sooty mold)的生长，并吸引了令人讨厌的蚂蚁。化学处理的使用(不幸的是，仍然普遍存在)导致选择抗性个体，这些个体的根除变得越来越困难。

[0715] 治疗性设计：取决于以下递送方法配制棉酚溶液：

[0716] 1)通过植物：在不含必需氨基酸(组氨酸、异亮氨酸、亮氨酸、赖氨酸、甲硫氨酸、苯丙氨酸、苏氨酸、色氨酸、和缬氨酸)的人工饲料(基于Akey和Beck，1971；参见实验设计)中配制0(阴性对照)或0.5％、0.25％、和0.05％的棉酚。

[0717] 2)显微注射：注射溶液是0.5％的棉酚、或者仅人工饲料(阴性对照)。

[0718] 植物递送实验设计：

[0719] 在气候控制培养箱(16小时光照/8小时黑暗光周期；60％±5％RH；25℃±2℃)中，蚜虫(eNASCO(分别含有布赫纳氏菌和沙雷氏菌属(Serratia)原生和次生共生体)或者LSR-1(仅含有布赫纳氏菌)菌株豌豆长管蚜(Acyrthosiphon pisum))在蚕豆植物(来自约翰尼精选种子公司(Johnny′s Selected Seeds)的Vroma vicia faba)上生长。在用于蚜虫饲养之前，在24℃伴随16小时的光照和8小时的黑暗，使蚕豆植物在盆栽土中生长。为了限制植物之间的母体效应或健康差异，将来自不同植物的5-10个成虫分布在10个两周龄的植物中，并且允许繁殖至高密度，持续5-7天。对于实验，从健康植物收集第一龄和第二龄蚜虫，并且分成4个不同的处理组：1)不含必需氨基酸的单独的人工饲料，2)不含必需氨基酸的单独的人工饲料、和0.05％的棉酚，3)不含必需氨基酸的单独的人工饲料、和0.25％的棉酚，
4)不含必需氨基酸的单独的人工饲料、和0.5％的棉酚。每个处理组从每个收集植物接收大约相同数量的个体。

[0720] 如先前公开(Akey和Beck，1971Continuous Rearing of the Pea Aphid，Acyrthosiphon pisum，on a Holidic Diet[以全纯饲料连续饲养豌豆蚜(豌豆长管蚜)])制备含有和不含必需氨基酸(2mg/ml组氨酸、2mg/ml异亮氨酸、2mg/ml亮氨酸、2mg/m赖氨酸、1mg/ml甲硫氨酸、1.62mg/ml苯丙氨酸、2mg/ml苏氨酸、1mg/ml色氨酸、和2mg/ml缬氨酸)的所使用的人工饲料，但两种饲料都不包括高丝氨酸或β丙氨酰基酪氨酸。用KOH将饲料的pH调节至7.5，并将饲料通过0.22μm滤器过滤灭菌并在4℃短期储存(＜7天)或在-80℃长期储存。

[0721] 将棉酚乙酸(西格玛公司，目录号G4382-250MG)储备溶液在甲醇中以5％制备，穿过0.22μm针筒式滤器灭菌，并储存在4℃。对于处理(参见治疗性设计)，将适量的储备溶液添加至人工饲料中以获得棉酚的不同的最终浓度。然后将饲料放置在1.5ml Eppendorf管(具有带有叶的蚕豆茎)中，并且使用石蜡膜封闭管的开口。然后将此饲喂系统放置在深的有盖培养皿(飞世尔科技公司(Fisher Scientific)，目录号FB0875711)中，并将蚜虫施用于植物的叶。

[0722] 对于每次处理，将15-87只蚜虫放置在每片叶上。贯穿整个实验，每2-3天更换人工饲料饲喂系统。每天监测蚜虫的存活，并且当发现死蚜虫时将其从装有人工饲喂系统的深的有盖培养皿中去除。

[0723] 此外，贯穿整个实验，每天确定发育阶段(第1龄、第2龄、第3龄、第4龄、第5龄、和5R龄(繁殖的第5龄)。一旦蚜虫到达第4龄期，在深的有盖培养皿向它们提供各自的人工饲喂系统，使得一旦它们到达成虫期，可以监测繁殖力。

[0724] 对于成年蚜虫，每天计数新的蛹然后丢弃。在实验结束时，通过以下两种方式测量繁殖力：1)确定治疗组的第一后代的平均天数，和2)一旦蚜虫到达成虫期后每天产生的后代的平均数。贯穿整个实验，拍摄蚜虫照片以评估治疗组之间的大小差异。

[0725] 处理5或13天后，从来自每个处理组的多个蚜虫提取DNA。简言之，通过将蚜虫浸入6％漂白溶液中大约5秒来对蚜虫体表进行灭菌。然后将蚜虫在无菌水中漂洗，并且使用DNA提取试剂盒(凯杰公司，DNeasy试剂盒)根据制造商的说明从每个个体蚜虫中提取DNA。使用nanodrop核酸定量法测量DNA浓度，并且通过qPCR测量布赫纳氏菌和蚜虫DNA拷贝数。用于布赫纳氏菌的引物是Buch_groES_18F(CATGATCGTGTGCTTGTTAAG；SEQ ID NO：228)和Buch_groES_98R(CTGTTCCTCGAGTCGATTTCC；SEQ ID NO：229)(Chong和Moran，2016 PNAS[美国国家科学院院刊])。用于蚜虫的引物是ApEF1a 107F(CTGATTGTGCCGTGCTTATTG；SEQ ID NO：
230)和ApEF1a 246R(TATGGTGGTTCAGTAGAGTCC；SEQ ID NO：231)(Chong和Moran，2016 PNAS[美国国家科学院院刊])。使用1.6℃/秒的qPCR扩增斜率和以下条件进行qPCR：1)95℃持续
10分钟，2)95℃持续15秒，3)55℃持续30秒，4)重复步骤2-3 40x，5)95℃持续15秒，6)55℃持续1分钟，7)斜率改变为0.15℃/s，8)95℃持续1秒。使用分析软件(赛默飞世尔科技公司(Thermo Fisher Scientific)，QuantStudio设计和分析)分析qPCR数据。

[0726] 用化感物质棉酚处理后，存在对昆虫适合度的剂量依赖性的负面应答

[0727] 如实验设计(如本文所述)中定义的，将eNASCO和LSR-1豌豆长管蚜第1龄和第2龄蚜虫分成四个不同的处理组。每天监测蚜虫并确定每个发育阶段的蚜虫数量。用单独的人工饲料处理的蚜虫在大约3天开始达到成熟(第5龄期)(图30A)。用棉酚处理的蚜虫发育延迟，并且通过用0.5％的棉酚处理5天，大多数蚜虫没有进一步比第3龄期成熟，并且它们的尺寸也受到影响(图30A和30B)。这些数据指示用棉酚处理延迟和停止了蚜虫发育的进展，并且此应答是剂量依赖性的。

[0728] 棉酚处理增加了蚜虫死亡率

[0729] 在处理期间还测量了蚜虫的存活率。用不含必需氨基酸的单独的人工饲料处理的蚜虫的大多数在处理后2天存活(图31)。4天后，蚜虫开始逐渐死亡，并且一些蚜虫在处理后超过7天存活。

[0730] 相比之下，用0.25％(与对照没有显著差异，p＝0.2794)和0.5％的棉酚处理的蚜虫比用单独的人工饲料处理的蚜虫具有更低的存活率，其中0.5％棉酚处理比AD(无EAA)对照显著不同(p＝0.002)。经过2天的治疗后，用0.5％棉酚处理的蚜虫开始死亡，并且所有蚜虫在4天内在处理中死亡。用0.25％处理的蚜虫比用0.5％处理的那些蚜虫存活时间稍长，但也极大地受到影响。这些数据指示用化感物质棉酚处理后存活存在剂量依赖性降低。

[0731] 棉酚处理降低了蚜虫繁殖

[0732] 在治疗期间还监测蚜虫的繁殖力。在处理后第7天和第8天，大多数用不含必需氨基酸的人工饲料处理的成年蚜虫开始繁殖。用不含必需氨基酸的人工饲料处理的蚜虫在成熟后每天产生的后代的平均数大约为5(图32A和32B)。

[0733] 相比之下，用0.25％的棉酚处理的蚜虫显示到达成虫期和产生后代的减少。这些数据指示棉酚处理导致蚜虫繁殖的降低。

[0734] 棉酚处理降低了蚜虫中的布赫纳氏菌

[0735] 为了测试不同浓度的棉酚是否特异性地导致蚜虫中布赫纳氏菌的丧失，并且这种丧失影响蚜虫适合度，在处理5天或13天后从每个处理组的蚜虫中提取DNA并且进行qPCR以确定布赫纳氏菌/蚜虫拷贝数。用不含必需氨基酸的单独的人工饲料(对照)处理的蚜虫具有高比率的布赫纳氏菌/蚜虫DNA拷贝。相比之下，用0.25％和0.5％的棉酚处理的蚜虫具有约4倍减少的布赫纳氏菌/蚜虫DNA拷贝(图33)，这指示棉酚处理降低了布赫纳氏菌水平，并且此降低是浓度依赖性的。

[0736] 显微注射递送实验设计：

[0737] 使用具有内部拉出的硼硅酸盐针的NanoJet III Auto-Nanoliter注射器(德拉蒙德科学公司(Drummond Scientific)；目录号3-000-203-G/XL)进行显微注射。如在先前实例中所述的，蚜虫(LSR-1菌株，豌豆长管蚜)在蚕豆植物上生长。每个处理组具有从每个收集植物注射的大约相同数量的个体。使用漆刷将蛹蚜虫(＜第3龄期)转移到与真空连接的管道系统，并将20nl的不含必需氨基酸的人工饲料(阴性对照)、或者在不含必需氨基酸的人工饲料中的0.05％的棉酚溶液显微注射到腹侧胸腔中。注射后，将蚜虫放置在具有蚕豆叶的深的有盖培养皿中，其中茎在2％琼脂中。

[0738] 用抗生素处理的显微注射降低了蚜虫中的布赫纳氏菌

[0739] 为了测试通过显微注射递送的棉酚是否导致蚜虫中布赫纳氏菌的丧失，并且如先前实例中所证实的该丧失影响蚜虫适合度，在处理4天后从每个处理组中的蚜虫中提取DNA，并且如在先前实例中所述的进行qPCR以确定布赫纳氏菌/蚜虫拷贝数。

[0740] 用阴性对照显微注射的蚜虫具有高比率的布赫纳氏菌/蚜虫DNA拷贝。相比之下，用棉酚显微注射的蚜虫蛹和成虫具有大幅减小的布赫纳氏菌/蚜虫DNA拷贝(图34)，这指示棉酚显微注射处理降低了内共生布赫纳氏菌的存在，并且如在先前实例中显示的，这导致适合度降低。

[0741] 总之，在先前实例中描述的此数据证明了通过多个递送方法用植物次生代谢物溶液处理蚜虫而杀死和降低蚜虫发育、生殖能力、寿命、和内源性细菌群体的能力(例如，适合度)。

[0742] 实例16：用天然植物衍生的抗微生物化合物(反式-肉桂醛)处理的蚜虫

[0743] 此实例证明了用反式-肉桂醛(一种天然芳香醛，其是肉桂(锡兰肉桂(Cinnamomum zeylandicum))的树皮提取物的主要组分)处理蚜虫导致了降低的适合度。已经显示反式-肉桂醛具有针对革兰氏阴性生物和革兰氏阳性生物两者的抗微生物活性，但它们的抗微生物活性的确切作用机制仍不清楚。反式-肉桂醛可损害细菌细胞膜并抑制特异性细胞过程或酶(Gill和Holley，2004 Applied Environmental Microbiology[施用环境微生物学])。此实例证明了反式-肉桂醛对蚜虫的作用是通过调节内源于对反式-肉桂醛敏感的蚜虫的细菌群体来介导的。一个靶向的细菌菌株是蚜虫布赫纳氏菌(Buchnera aphidicola)。

[0744] 蚜虫是对植物造成直接进食损害，并作为植物病毒的媒介的农业昆虫有害生物。此外，蚜虫蜜露促进了烟霉(sooty mold)的生长，并吸引了令人讨厌的蚂蚁。化学处理的使用(不幸的是，仍然普遍存在)导致选择抗性个体，这些个体的根除变得越来越困难。

[0745] 治疗性设计：

[0746] 在水中将反式-肉桂醛稀释至0.05％、0.5％、或5％，并且通过叶灌注(将约1ml注射到叶中)和通过植物递送。

[0747] 实验设计：

[0748] 在气候控制培养箱(16小时光照/8小时黑暗光周期；60％±5％RH；25℃+2℃)中，蚜虫(LSR-1(其仅含有布赫纳氏菌菌株，豌豆长管蚜(Acyrthosiphon pisum))在蚕豆植物(来自约翰尼精选种子公司(Johnny′s Selected Seeds)的Vroma vicia faba)上生长。在用于蚜虫饲养之前，在24℃伴随16小时的光照和8小时的黑暗，使蚕豆植物在盆栽土中生长。为了限制植物之间的母体效应或健康差异，将来自不同植物的5-10个成虫分布在10个两周龄的植物中，并且允许繁殖至高密度，持续5-7天。对于实验，从健康植物收集第一龄和第二龄蚜虫，并且分成四个不同的处理组：1)水处理的对照，2)在水中的0.05％反式-肉桂醛，3)在水中的0.5％反式-肉桂醛，和4)在水中的5％反式-肉桂醛。每个处理组从每个收集植物接收大约相同数量的个体。

[0749] 将反式-肉桂醛(西格玛公司，目录号C80687)在水中稀释至适当的浓度(参见治疗性设计)，穿过0.22μm针筒式滤器灭菌，并储存在4℃。向蚕豆叶注射大约1ml的处理，然后将叶放置进含有相同处理溶液的1.5ml Eppendorf管中。使用石蜡膜封闭放置蚕豆茎的管的开口。然后将此处理饲喂系统放置在深的有盖培养皿(飞世尔科技公司(Fisher Scientific)，目录号FB0875711)中，并将蚜虫施用于植物的叶。

[0750] 对于每次处理，将40-49只蚜虫放置在每片叶上。贯穿整个实验，每2-3天更换处理饲喂系统。每天监测蚜虫的存活，并且当发现死蚜虫时将其从装有处理饲喂系统的深的有盖培养皿中去除。

[0751] 此外，贯穿整个实验，每天确定发育阶段(第1龄、第2龄、第3龄、第4龄、第5龄、和5R龄(繁殖的第5龄)。

[0752] 处理3天后，从来自每个处理组的剩余活着的蚜虫中提取DNA。简言之，通过将蚜虫浸入6％漂白溶液中大约5秒来对蚜虫体表进行灭菌。然后将蚜虫在无菌水中漂洗，并且使用DNA提取试剂盒(凯杰公司，DNeasy试剂盒)根据制造商的说明从每个个体蚜虫中提取DNA。使用nanodrop核酸定量法测量DNA浓度，并且通过qPCR测量布赫纳氏菌和蚜虫DNA拷贝数。用于布赫纳氏菌的引物是Buch_groES_18F(CATGATCGTGTGCTTGTTAAG；SEQ ID NO：228)和Buch_groES_98R(CTGTTCCTCGAGTCGATTTCC；SEQ ID NO：229)(Chong和Moran，2016 PNAS[美国国家科学院院刊])。用于蚜虫的引物是ApEF1a 107F(CTGATTGTGCCGTGCTTATTG；SEQ ID NO：230)和ApEF1a 246R(TATGGTGGTTCAGTAGAGTCC；SEQ ID NO：231)(Chong和Moran，2016 PNAS[美国国家科学院院刊])。使用1.6℃/秒的qPCR扩增斜率和以下条件进行qPCR：
1)95℃持续10分钟，2)95℃持续15秒，3)55℃持续30秒，4)重复步骤2-3 40x，5)95℃持续15秒，6)55℃持续1分钟，7)斜率改变为0.15℃/s，8)95℃持续1秒。使用分析软件(赛默飞世尔科技公司(Thermo Fisher Scientific)，QuantStudio设计和分析)分析qPCR数据。

[0753] 用反式-肉桂醛处理后，存在对昆虫适合度的剂量依赖性的负面应答

[0754] 如实验设计(如本文所述)中定义的，将LSR-1豌豆长管蚜第1龄和第2龄蚜虫分成四个不同的处理组。每天监测蚜虫并确定每个发育阶段的蚜虫数量。用单独的水处理的蚜虫在处理后3天达到第3龄期(图35)。用反式-肉桂醛处理的蚜虫发育延迟，并且通过用三个反式-肉桂醛浓度的每个处理3天，没有蚜虫成熟到通过第二龄期(图35)。此外，贯穿整个实验过程，用最高浓度的反式-肉桂醛(5％)处理的所有蚜虫保持在第1龄期。这些数据指示用反式-肉桂醛处理延迟并停止了蚜虫发育的进展，并且这种应答是剂量依赖性的。

[0755] 反式-肉桂醛处理增加了蚜虫死亡率

[0756] 在处理期间还测量了蚜虫的存活率。用单独的水处理的蚜虫中大约75％在处理后3天存活(图36)。相比之下，用0.05％、0.5％、和5％反式-肉桂醛处理的蚜虫比用单独的水处理的蚜虫具有显著较低的(与用水处理的对照相比，每个处理组p＜0.0001)存活率。这些数据指示用天然抗微生物反式-肉桂醛处理后存活存在剂量依赖性降低。

[0757] 反式-肉桂醛处理降低了蚜虫中的布赫纳氏菌

[0758] 为了测试不同浓度的反式-肉桂醛是否特异性地导致蚜虫中布赫纳氏菌的丧失，并且这种丧失影响蚜虫适合度，在处理3天后从每个处理组的蚜虫中提取DNA并且进行qPCR以确定布赫纳氏菌/蚜虫拷贝数。用单独的水(对照)处理的蚜虫具有高比率的布赫纳氏菌/蚜虫DNA拷贝。相似地，用最低浓度的反式-肉桂醛(0.5％)处理的蚜虫具有高比率的布赫纳氏菌/蚜虫DNA拷贝。

[0759] 相比之下，用0.5％和5％的反式-肉桂醛处理的蚜虫具有约870倍减少的布赫纳氏菌/蚜虫DNA拷贝(图37)，这指示反式-肉桂醛处理降低了布赫纳氏菌水平，并且此降低是浓度依赖性的。

[0760] 总之，在先前实例中描述的此数据证明了通过多个递送方法用植物次生代谢物溶液处理蚜虫而杀死和降低蚜虫发育、生殖能力、寿命、和内源性细菌群体的能力(例如，适合度)。

[0761] 实例17：用蝎抗微生物肽处理的蚜虫

[0762] 此实例证明了用多个蝎抗微生物肽(AMP)处理蚜虫，其中若干种是在蝎Urodacus yaschenkoi的毒液腺转录组中鉴定的AMP(Luna-Ramirez等人，2017，Toxins[毒素])。AMP典型地具有净正电荷，并且因此对细菌膜具有高亲和力。此实例证明了AMP对蚜虫的作用是通过调节内源于对AMP肽敏感的蚜虫的细菌群体来介导的。一个靶向的细菌菌株是蚜虫布赫纳氏菌(Buchnera aphidicola)，其是一种蚜虫的专性共生体。

[0763] 蚜虫是对植物造成直接进食损害，并作为植物病毒的媒介的农业昆虫有害生物。此外，蚜虫蜜露促进了烟霉(sooty mold)的生长，并吸引了令人讨厌的蚂蚁。化学处理的使用(不幸的是，仍然普遍存在)导致选择抗性个体，这些个体的根除变得越来越困难。

[0764] 治疗性设计：

[0765] 使用叶灌注和通过植物递送的组合配制Uy192溶液。对照溶液是用水+蓝色食用色素注射的叶，并且水在管中。处理溶液由在水中的100ug/ml Uy192组成，经由叶注射(蓝色食用色素)和通过植物(在Eppendorf管中)。

[0766] 叶灌注-植物递送实验设计：

[0767] 在气候控制培养箱(16小时光照/8小时黑暗光周期；60％±5％RH；20℃±2℃)中，蚜虫LSR-1(仅含有布赫纳氏菌，豌豆长管蚜(Acyrthosiphon pisum))在蚕豆植物(来自约翰尼精选种子公司(Johnny′s Selected Seeds)的Vroma vicia faba)上生长。在用于蚜虫饲养之前，在24℃伴随16小时的光照和8小时的黑暗，使蚕豆植物在盆栽土中生长。为了限制植物之间的母体效应或健康差异，将来自不同植物的5-10个成虫分布在10个两周龄的植物中，并且允许繁殖至高密度，持续5-7天。对于实验，从健康植物收集第一龄和第二龄蚜虫，并且分成2个不同的处理组：1)阴性对照(水处理的)，2)在水中的100ug/ml AMP的处理溶液。每个处理组从每个收集植物接收大约相同数量的个体。

[0768] 通过生物合成以＞75％纯度合成Uy192。将1mg的冻干的肽重组到500ul的80％乙腈、20％水、和0.1％TFA中，将100ul(100ug)等分到10个单独的Eppendorf管中，并允许干燥。对于处理(参见治疗性设计)，将1ml的水添加至肽的100ug等分试样中以获得Uy192的最终浓度(100ug/ml)。然后将溶液放置在1.5ml Eppendorf管(具有带有灌注溶液的叶的蚕豆茎)中，并且使用石蜡膜封闭管的开口。然后将此饲喂系统放置在深的有盖培养皿(飞世尔科技公司(Fisher Scientific)，目录号FB0875711)中，并将蚜虫施用于植物的叶。

[0769] 对于每次处理，将50只蚜虫放置在每片叶上。贯穿整个实验，每2-3天更换饲喂系统。每天监测蚜虫的存活，并且在发现死蚜虫时将其从深的有盖培养皿中去除。

[0770] 此外，贯穿整个实验，每天确定发育阶段(第1龄、第2龄、第3龄、第4龄、第5龄、和5R龄(繁殖的第5龄)。

[0771] 处理8天后，从每个处理组的剩余蚜虫中提取DNA。简言之，通过将蚜虫浸入6％漂白溶液中大约5秒来对蚜虫体表进行灭菌。然后将蚜虫在无菌水中漂洗，并且使用DNA提取试剂盒(凯杰公司，DNeasy试剂盒)根据制造商的说明从每个个体蚜虫中提取DNA。使用nanodrop核酸定量法测量DNA浓度，并且通过qPCR测量布赫纳氏菌和蚜虫DNA拷贝数。用于布赫纳氏菌的引物是Buch_groES_18F(CATGATCGTGTGCTTGTTAAG；SEQ ID NO：228)和Buch_groES_98R(CTGTTCCTCGAGTCGATTTCC；SEQ ID NO：229)(Chong和Moran，2016 PNAS[美国国家科学院院刊])。用于蚜虫的引物是ApEF1a 107F(CTGATTGTGCCGTGCTTATTG；SEQ ID NO：230)和ApEF1a 246R(TATGGTGGTTCAGTAGAGTCC；SEQ ID NO：231)(Chong和Moran，2016 PNAS[美国国家科学院院刊])。使用1.6℃/秒的qPCR扩增斜率和以下条件进行qPCR：1)95℃持续
10分钟，2)95℃持续15秒，3)55℃持续30秒，4)重复步骤2-3 40x，5)95℃持续15秒，6)55℃持续1分钟，7)斜率改变为0.15℃/s，8)95℃持续1秒。使用分析软件(赛默飞世尔科技公司(Thermo Fisher Scientific)，QuantStudio设计和分析)分析qPCR数据。

[0772] 用蝎AMP处理后，存在对昆虫适合度的负面应答

[0773] 如实验设计(上文)中定义的，将LSR-1豌豆长管蚜第1龄和第2龄蚜虫分成两个不同的处理组。每天监测蚜虫并确定每个发育阶段的蚜虫数量。单独用阴性对照处理的蚜虫在大约6天开始达到成熟(第5龄期)(图38)。用Uy192处理的蚜虫发育延迟，并且在8天的处理后，蚜虫没有进一步比第4龄期更成熟。这些数据指示用Uy192处理延迟和停止了蚜虫发育的进展。

[0774] 用蝎AMP的处理导致蚜虫死亡率增加

[0775] 在处理期间还测量了蚜虫的存活率。大多数单独用对照处理的蚜虫在处理后3天存活(图39)。4天后，蚜虫开始逐渐死亡，并且一些蚜虫在处理后超过7天存活。

[0776] 相比之下，用Uy192处理的蚜虫比用对照处理的蚜虫具有更低的存活率。这些数据指示用蝎AMP Uly192处理后存活降低。

[0777] 用蝎AMP Uy192的处理导致蚜虫中布赫纳氏菌降低

[0778] 为了测试用Uy192处理是否特异性地导致蚜虫中布赫纳氏菌的丧失，并且这种丧失影响蚜虫适合度，在处理8天后从每个处理组的蚜虫中提取DNA并且进行qPCR以确定布赫纳氏菌/蚜虫拷贝数。单独用对照处理的蚜虫具有高比率的布赫纳氏菌/蚜虫DNA拷贝。相比之下，用在水中的100ug/ml Uy192处理的蚜虫具有约7倍减少的布赫纳氏菌/蚜虫DNA拷贝(图40)，这指示Uy192处理降低了布赫纳氏菌水平。

[0779] 总之，先前描述的此数据证明了通过用天然蝎抗微生物肽处理蚜虫而杀死和降低蚜虫发育、寿命、和内源性细菌群体的能力(例如，适合度)。

[0780] 实例18：用蝎抗微生物肽处理的蚜虫

[0781] 此实例证明了用若干个蝎抗微生物肽(AMP，D10、D3、Uyct3、和Uy17)处理蚜虫，最近在蝎Urodacus yaschenkoi的毒液腺转录组中鉴定了AMP(Luna-Ramirez等人，2017，Toxins[毒素])。AMP典型地具有净正电荷，并且因此对细菌膜具有高亲和力。此实例证明了AMP对蚜虫的作用是通过调节内源于对AMP肽敏感的蚜虫的细菌群体来介导的。一个靶向的细菌菌株是蚜虫布赫纳氏菌(Buchnera aphidicola)，其是一种蚜虫的专性共生体。

[0782] 蚜虫是对植物造成直接进食损害，并作为植物病毒的媒介的农业昆虫有害生物。此外，蚜虫蜜露促进了烟霉(sooty mold)的生长，并吸引了令人讨厌的蚂蚁。化学处理的使用(不幸的是，仍然普遍存在)导致选择抗性个体，这些个体的根除变得越来越困难。

[0783] 治疗性设计：

[0784] 将指示的肽或肽混合物(参见以下详细描述的蚜虫显微注射实验设计和叶灌注-植物实验设计部分)直接显微注射到蚜虫中或者使用叶灌注和通过植物递送的组合进行递送。作为阴性对照，将蚜虫用水显微注射(用于显微注射实验)、或放置在用水注射的叶上，并且水在管中(用于叶灌注和植物递送实验)。处理溶液由20nl的溶解在水中的5μg/μl的D3和D10(用于蚜虫显微注射)、或者40μg/ml的在水中的D10、Uy17、D3、和UyCt3的混合物组成，经由叶注射和通过植物(在Eppendorf管中)。

[0785] 蚜虫显微注射实验设计

[0786] 使用具有内部拉出的硼硅酸盐针的NanoJet III Auto-Nanoliter注射器(德拉蒙德科学公司(Drummond Scientific)；目录号3-000-203-G/XL)进行显微注射。在气候控制培养箱(16小时光照/8小时黑暗光周期；60％±5％RH；25℃±2℃)中，蚜虫(LSR-1菌株，豌豆长管蚜(Acyrthosiphon pisum))在蚕豆植物(来自约翰尼精选种子公司(Johnny′s Selected Seeds)的Vroma vicia faba)上生长。在用于蚜虫饲养之前，在24℃伴随16小时的光照和8小时的黑暗，使蚕豆植物在盆栽土中生长。为了限制植物之间的母体效应或健康差异，将来自不同植物的5-10个成虫分布在10个两周龄的植物中，并且允许繁殖至高密度，持续5-7天。每个处理组具有从每个收集植物注射的大约相同数量的个体。向成年蚜虫的腹侧胸腔显微注射20nl的水、或者100ng(20ul的5ug/ml)的肽D3或D10溶液。显微注射速率为
5nl/秒。注射后，将蚜虫放置在含有蚕豆叶的深的有盖培养皿，其中茎在2％琼脂中。

[0787] 通过生物合成以＞75％纯度合成肽。将1mg的冻干的肽重组到500μl的80％乙腈、20％水、和0.1％TFA中，将100μl(100μg)等分到10个单独的Eppendorf管中，并允许干燥。

[0788] 处理5天后，从每个处理组的剩余蚜虫中提取DNA。简言之，通过将蚜虫浸入6％漂白溶液中大约5秒来对蚜虫体表进行灭菌。然后将蚜虫在无菌水中漂洗，并且使用DNA提取试剂盒(凯杰公司，DNeasy试剂盒)根据制造商的说明从每个个体蚜虫中提取DNA。使用nanodrop核酸定量法测量DNA浓度，并且通过qPCR测量布赫纳氏菌和蚜虫DNA拷贝数。用于布赫纳氏菌的引物是Buch_groES_18F(CATGATCGTGTGCTTGTTAAG；SEQ ID NO：228)和Buch_groES_98R(CTGTTCCTCGAGTCGATTTCC；SEQ ID NO：229)(Chong和Moran，2016 PNAS[美国国家科学院院刊])。用于蚜虫的引物是ApEF1a 107F(CTGATTGTGCCGTGCTTATTG；SEQ ID NO：230)和ApEF1a 246R(TATGGTGGTTCAGTAGAGTCC；SEQ ID NO：231)(Chong和Moran，2016 PNAS[美国国家科学院院刊])。使用1.6℃/秒的qPCR扩增斜率和以下条件进行qPCR：1)95℃持续
10分钟，2)95℃持续15秒，3)55℃持续30秒，4)重复步骤2-3 40x，5)95℃持续15秒，6)55℃持续1分钟，7)斜率改变为0.15℃/s，8)95℃持续1秒。使用分析软件(赛默飞世尔科技公司(Thermo Fisher Scientific)，QuantStudio设计和分析)分析qPCR数据。

[0789] 用蝎肽D3和D10显微注射蚜虫导致昆虫存活降低

[0790] 如实验设计(如本文所述)中定义的，将LSR-1豌豆长管蚜第1龄和第2龄蚜虫分成三个不同的处理组。每天监测蚜虫并确定存活率。处理5天后，与用水注射的对照相比，用蝎肽注射的蚜虫具有更低的存活率(对于用D3、D10、和水注射而言分别为9％、35％、和45％存活)(图41)。这些数据指示用蝎AMP D3和D10处理后存活降低。

[0791] 用蝎肽D3和D10显微注射蚜虫导致布赫纳氏菌内共生体减少

[0792] 为了测试用蝎AMP D3和D10注射是否特异性地导致蚜虫中布赫纳氏菌的丧失，并且这种丧失影响蚜虫适合度，在注射后5天从每个处理组的蚜虫中提取DNA并且进行qPCR以确定布赫纳氏菌/蚜虫拷贝数。用单独的水注射的蚜虫具有高比率的布赫纳氏菌/蚜虫DNA(47.4)，而用D3和D10注射的蚜虫具有较低比率的布赫纳氏菌/蚜虫DNA(分别为25.3和30.9)(图42)。这些数据指示用蝎肽D3和D10处理导致降低水平的细菌共生体布赫纳氏菌。

[0793] 叶灌注-植物递送实验设计：

[0794] 如上所述的，eNASCO蚜虫(其仅含有布赫纳氏菌和沙雷氏菌)豌豆长管蚜(Acyrthosiphon pisum)在蚕豆植物(来自约翰尼精选种子公司(Johnny′s Selected 
Seeds)的Vroma vicia faba)上生长。对于实验，从健康植物收集第一龄和第二龄蚜虫，并且分成2个不同的处理组：1)阴性对照(水处理的)，2)处理溶液由在水中的D10、Uy17、D3、和UyCt3中的每种40μg/ml组成。每个处理组从每个收集植物接收大约相同数量的个体。

[0795] 如上所述对肽进行合成、溶解、和等分。对于处理(参见治疗性设计)，将水添加至肽的100μg等分试样中以获得所希望的最终浓度(40μg/ml)。将四种肽进行组合以制备肽混合物溶液。将此溶液用于经由注射灌注到叶中。注射后，将注射的叶的茎放置在1.5ml Eppendorf管中，然后用石蜡膜封闭该管。然后将此饲喂系统放置在深的有盖培养皿(飞世尔科技公司(Fisher Scientific)，目录号FB0875711)中，并将蚜虫施用于植物的叶。

[0796] 对于每次处理，将41-49只蚜虫放置在每片叶上。贯穿整个实验，每2-3天更换饲喂系统。每天监测蚜虫的存活，并且在发现死蚜虫时将其从深的有盖培养皿中去除。

[0797] 用蝎肽的混合物的处理导致蚜虫死亡率增加

[0798] 在处理期间还测量了蚜虫的存活率。处理6天后，与用水处理的那些蚜虫进行比较，用肽混合物处理的蚜虫具有更低的存活率，并且9天后，该作用更明显(肽混合物和水处理分别为16％和29％存活)(图43)。这些数据指示用蝎AMP的混合物处理后存活降低，并且如在先前实例中显示的，这些AMP降低了蚜虫中内共生体水平。

[0799] 总之，先前描述的此数据证明了通过用单个天然蝎抗微生物肽或者肽混合物处理蚜虫而杀死和降低蚜虫寿命和内源性细菌群体的能力(例如，适合度)。

[0800] 实例19：用与细胞穿透肽融合的抗微生物肽处理的蚜虫

[0801] 此实例证明了用与衍生自病毒的细胞穿透肽融合的蝎抗微生物肽(AMP)(Uy192)处理蚜虫。AMP Uy192是在蝎Urodacus yaschenkoi的毒液腺转录组中的若干种最近鉴定的AMP之一(Luna-Ramirez等人，2017，Toxins[毒素])。AMP典型地具有净正电荷，并且因此对细菌膜具有高亲和力。为了增加将蝎肽Uy192递送至蚜虫细胞，将合成的肽与人免疫缺陷病毒I(HIV-1)的转录的反式激活因子(TAT)蛋白的部分融合。先前的研究已经显示，将此细胞穿透肽(CPP)与其他分子缀合经由转导增加了它们被吸收进细胞中(Zhou等人，2015 Journal of Insect Science[昆虫科学杂志]和Cermenati等人，2011 Journal of Insect Physiology[昆虫生理学杂志])。此实例证明了融合肽对蚜虫的作用是通过调节内源于对抗微生物肽敏感的蚜虫的细菌群体来介导的。一个靶向的细菌菌株是布赫纳氏菌。

[0802] 蚜虫是对植物造成直接进食损害，并作为植物病毒的媒介的农业昆虫有害生物。此外，蚜虫蜜露促进了烟霉(sooty mold)的生长，并吸引了令人讨厌的蚂蚁。化学处理的使用(不幸的是，仍然普遍存在)导致选择抗性个体，这些个体的根除变得越来越困难。

[0803] 治疗性设计

[0804] 使用叶灌注和通过植物递送的组合，配制与细胞穿透肽缀合并且用6FAM(Uy192+CPP+FAM)荧光标记的蝎肽。将对照溶液(水)或处理溶液(Uy192+CPP+FAM)注射到叶中并放置在Eppendorf管中。处理溶液包括在水中的100μg/ml Uy192+CPP+FAM。

[0805] 叶灌注-植物递送实验设计

[0806] 在气候控制培养箱(16小时光照/8小时黑暗光周期；60％±5％RH；25℃+2℃)中，LSR-1蚜虫(豌豆长管蚜(Acyrthosiphon pisum))在蚕豆植物(来自约翰尼精选种子公司(Johnny′s Selected Seeds)的Vroma vicia faba)上生长。在用于蚜虫饲养之前，在24℃伴随16小时的光照和8小时的黑暗，使蚕豆植物在盆栽土中生长。为了限制植物之间的母体效应或健康差异，将来自不同植物的5-10个成虫分布在10个两周龄的植物中，并且允许繁殖至高密度，持续5-7天。对于实验，从健康植物收集第一龄蚜虫，并且分成2个不同的处理组：1)阴性对照(水处理的)，2)Uy192+CPP+FAM，用在水中的100μg/ml Uy192+CPP+FAM处理。每个处理组从每个收集植物接收大约相同数量的个体。

[0807] 对于处理(参见治疗性设计)，通过生物合成以＞75％纯度合成Uy192+CPP+FAM(氨基酸序列：YGRKKRRQRRRFLSTIWNGIKGLL-FAM)。将5mg的冻干的肽重组到1ml的80％乙腈、20％水、和0.1％TFA中，将50μl(100μg)等分到单独的Eppendorf管中，并允许干燥。对于处理(参见治疗性设计)，将1ml的无菌水添加至肽的100μg等分试样中以获得Uy192+CPP+FAM的最终浓度(100μg/ml)。然后将溶液注射到植物的叶中，并且将植物的茎放置在1.5ml Eppendorf管中。使用石蜡膜封闭管的开口。然后将此饲喂系统放置在深的有盖培养皿(飞世尔科技公司(Fisher Scientific)，目录号FB0875711)中，并将蚜虫施用于植物的叶。叶的Epi荧光成像证实叶在其维管系统中含有绿色荧光标记的肽。

[0808] 对于每次处理，将30只蚜虫一式三份放置在每片叶上。贯穿整个实验，每2-3天更换饲喂系统。每天监测蚜虫的存活，并且在发现死蚜虫时将其从深的有盖培养皿中去除。此外，贯穿整个实验，每天确定发育阶段(第1龄、第2龄、第3龄、第4龄、第5龄、和5R龄(繁殖的第5龄蚜虫))。

[0809] 处理后5天，从每个处理组的若干个蚜虫中提取DNA。简言之，通过将蚜虫浸入6％漂白溶液中大约5秒来对蚜虫体表进行灭菌。然后将蚜虫在无菌水中漂洗，并且使用DNA提取试剂盒(凯杰公司，DNeasy试剂盒)根据制造商的说明从每个个体蚜虫中提取DNA。使用nanodrop核酸定量法测量DNA浓度，并且通过qPCR测量布赫纳氏菌和蚜虫DNA拷贝数。用于布赫纳氏菌的引物是Buch_groES_18F(CATGATCGTGTGCTTGTTAAG；SEQ ID NO：228)和Buch_groES_98R(CTGTTCCTCGAGTCGATTTCC；SEQ ID NO：229)(Chong和Moran，2016 PNAS[美国国家科学院院刊])。用于蚜虫的引物是ApEF1a 107F(CTGATTGTGCCGTGCTTATTG；SEQ ID NO：230)和ApEF1a 246R(TATGGTGGTTCAGTAGAGTCC；SEQ ID NO：231)(Chong和Moran，2016 PNAS[美国国家科学院院刊])。使用1.6℃/秒的qPCR扩增斜率和以下条件进行qPCR：1)95℃持续
10分钟，2)95℃持续15秒，3)55℃持续30秒，4)重复步骤2-3 40x，5)95℃持续15秒，6)55℃持续1分钟，7)斜率改变为0.15℃/s，8)95℃持续1秒。使用分析软件(赛默飞世尔科技公司(Thermo Fisher Scientific)，QuantStudio设计和分析)分析qPCR数据。

[0810] 用与细胞穿透肽融合的蝎肽Uy192的处理延迟和停止了蚜虫发育的进展

[0811] 如实验设计(上文)中定义的，将LSR-1豌豆长管蚜第1龄蚜虫分成三个不同的处理组。每天监测蚜虫并确定每个发育阶段的蚜虫数量。用水处理的蚜虫和用与细胞穿透肽融合的蝎肽处理的那些蚜虫两者的发育在第0天和第1天是相似的(图44)。然而，到第2天，对照处理的蚜虫发育至第二龄期或第三龄期，而用与细胞穿透肽融合的蝎肽处理的一些蚜虫保持在第一龄期(图44)。甚至在处理后3天，用与细胞穿透肽融合的蝎肽处理的一些蚜虫仍保持在第一龄期(图44)。在处理后7天，大部分用水处理的蚜虫发育到第5龄期或第5繁殖龄期。相比之下，用与细胞穿透肽融合的蝎肽处理的蚜虫中仅50％发育至第5龄期，而约42％和约8％的蚜虫分别保持在第3龄期或第4龄期(图44)。这些数据指示用与细胞穿透肽融合的蝎肽Uy192处理延迟和停止了蚜虫发育的进展。

[0812] 用与细胞穿透肽融合的蝎肽Uy192的处理导致蚜虫死亡率增加

[0813] 在处理期间还测量了蚜虫的存活率。用单独的对照处理的蚜虫中大约40％在7天实验中存活(图45)。相比之下，对于用100μg/ml Uy192+CPP+FAM(p＝0.0036，通过对数秩(Mantel Cox)检验确定)处理的蚜虫存活显著较低，其中仅16％的蚜虫存活至第7天(图45)。这些数据指示用与细胞穿透肽融合的蝎肽Uy192处理后存活降低。

[0814] 用与细胞穿透肽融合的蝎肽的处理导致布赫纳氏菌/蚜虫DNA比率降低

[0815] 为了测试用Uy192+CPP+FAM处理是否特异性地导致蚜虫中布赫纳氏菌的丧失，并且这种丧失影响蚜虫适合度，在处理5天后从每个组的蚜虫中提取DNA并且进行qPCR以确定布赫纳氏菌/蚜虫拷贝数。用水处理的蚜虫具有高比率(约134)的布赫纳氏菌/蚜虫DNA。相比之下，在5天的处理后，与细胞穿透肽融合的蝎肽处理的蚜虫具有约1.8倍减少的布赫纳氏菌/蚜虫DNA拷贝(图46)。这些数据指示用与细胞穿透肽融合的蝎肽处理降低了内共生体水平。

[0816] 与细胞穿透肽融合的蝎肽自由进入含菌细胞中以针对布赫纳氏菌起作用

[0817] 为了测试细胞穿透肽是否有助于将蝎肽直接递送到含菌细胞中，将分离的含菌细胞直接暴露于融合蛋白并成像。将来自在补充有1％w/v BSA的施耐德培养基(Schneider’s medium)(施耐德(Schneider)-BSA培养基)中的蚜虫中的含菌细胞切开，并放置在含有20ul的施耐德培养基的成像孔中。将蝎肽的100ug冻干的等分试样重悬于100ul的施耐德培养基中以产生1mg/ml溶液，并且将5ul的此溶液混合进含有含菌细胞的孔中。在室温孵育30分钟后，彻底洗涤含菌细胞以消除溶液中任何过量的游离肽。在孵育之前和之后，捕获含菌细胞的图像(图47)。融合肽渗透含菌细胞膜，并且可直接用于布赫纳氏菌。

[0818] 总之，此数据证明了通过用与细胞穿透肽融合的蝎抗微生物肽Uy192处理蚜虫而杀死和降低蚜虫发育、寿命、和内源性细菌群体的能力(例如，适合度)。

[0819] 实例20：用维生素类似物处理的蚜虫

[0820] 此实例证明了用前维生素泛醇(其是泛酸的乙醇类似物，维生素B5)处理蚜虫。蚜虫具有专性内共生体细菌(布赫纳氏菌)，该专性内共生体细菌可以帮助它们形成必需氨基酸和维生素(包括维生素B5)。先前的研究已经显示，泛醇通过抑制特异性寄生物激酶来抑制恶性疟原虫(Plasmodium falciparium)的生长(Saliba等人，2005)。据推测，用泛醇处理蚜虫对细菌的-昆虫共生是不利的，因此影响蚜虫的适合度。此实例证明用泛醇处理降低了蚜虫适合度。

[0821] 蚜虫是对植物造成直接进食损害，并作为植物病毒的媒介的农业昆虫有害生物。此外，蚜虫蜜露促进了烟霉(sooty mold)的生长，并吸引了令人讨厌的蚂蚁。化学处理的使用(不幸的是，仍然普遍存在)导致选择抗性个体，这些个体的根除变得越来越困难。

[0822] 治疗性设计：

[0823] 取决于以下递送方法配制泛醇溶液：

[0824] 1)在人工饲料中，通过植物：在不含必需氨基酸(2mg/ml组氨酸、2mg/ml异亮氨酸、2mg/ml亮氨酸、2mg/m赖氨酸、1mg/ml甲硫氨酸、1.62mg/ml苯丙氨酸、2mg/ml苏氨酸、1mg/ml色氨酸、和2mg/ml缬氨酸)的人工饲料(基于Akey和Beck，1971；参见实验设计)中配制的0(阴性对照)或10或100uM的泛醇。

[0825] 2)叶涂层：将在水中的100μl的0.025％非离子有机硅化合物表面活性剂溶剂Silwet L-77(阴性对照)、或在溶剂溶液中配制的100μl的50μg/ml的利福平直接施用至叶表面并允许干燥。

[0826] 植物递送实验设计

[0827] 在气候控制培养箱(16小时光照/8小时黑暗光周期；60％±5％RH；25℃±2℃)中，蚜虫(eNASCO，豌豆长管蚜(Acyrthosiphon pisum))在蚕豆植物(来自约翰尼精选种子公司(Johnny′s Selected Seeds)的Vroma vicia faba)上生长。在用于蚜虫饲养之前，在24℃伴随16小时的光照和8小时的黑暗，使蚕豆植物在盆栽土中生长。为了限制植物之间的母体效应或健康差异，将来自不同植物的5-10个成虫分布在10个两周龄的植物中，并且允许繁殖至高密度，持续5-7天。对于实验，从健康植物收集第一龄和第二龄蚜虫，并且分成3个不同的处理组：1)不含必需氨基酸的单独的人工饲料，2)含有10uM泛醇但不含必需氨基酸的单独的人工饲料，和3)含有100uM泛醇但不含必需氨基酸的单独的人工饲料。每个处理组从每个收集植物接收大约相同数量的个体。

[0828] 如先前公开(Akey和Beck，1971 Continuous Rearing of the Pea Aphid，Acyrthosiphon pisum，on a Holidic Diet[以全纯饲料连续饲养豌豆蚜(豌豆长管蚜)])制备含有和不含必需氨基酸(2mg/ml组氨酸、2mg/ml异亮氨酸、2mg/ml亮氨酸、2mg/m赖氨酸、1mg/ml甲硫氨酸、1.62mg/ml苯丙氨酸、2mg/ml苏氨酸、1mg/ml色氨酸、和2mg/ml缬氨酸)的所使用的人工饲料，但两种饲料都不包括高丝氨酸或β丙氨酰基酪氨酸。用KOH将饲料的pH调节至7.5，并将饲料通过0.22μm滤器过滤灭菌并在4℃短期储存(＜7天)或在-80℃长期储存。

[0829] 将泛醇(西格玛公司，目录号295787)溶液在不含必需氨基酸的人工饲料中以10uM和100uM制备，穿过0.22μm针筒式滤器灭菌，并储存在-20℃。对于处理(参见治疗性设计)，将适量的储备溶液添加至不含必需氨基酸的人工饲料中以获得10或100uM泛醇的最终浓度。然后将饲料放置在1.5ml Eppendorf管(具有带有叶的蚕豆茎)中，并且使用石蜡膜封闭管的开口。然后将此人工饲料饲喂系统放置在深的有盖培养皿(飞世尔科技公司(Fisher Scientific)，目录号FB0875711)中，并将蚜虫施用于植物的叶。

[0830] 对于每次处理，将16-20只蚜虫放置在每片叶上。贯穿整个实验，每2-3天更换人工饲料饲喂系统。每天监测蚜虫的存活，并且当发现死蚜虫时将其从装有人工饲喂系统的深的有盖培养皿中去除。

[0831] 此外，贯穿整个实验，每天确定发育阶段(第1龄、第2龄、第3龄、第4龄、第5龄)。一旦蚜虫到达第4龄期，在深的有盖培养皿向它们提供各自的人工饲喂系统，使得一旦它们到达成虫期，可以监测繁殖力。

[0832] 对于成年蚜虫，每天计数新的蛹然后丢弃。在实验结束时，繁殖力被确定为一旦蚜虫到达成虫期后每天产生的后代的平均数量。贯穿整个实验，拍摄蚜虫照片以评估治疗组之间的大小差异。

[0833] 处理8天后，从来自每个处理组的多个蚜虫提取DNA。简言之，通过将蚜虫浸入6％漂白溶液中大约5秒来对蚜虫体表进行灭菌。然后将蚜虫在无菌水中漂洗，并且使用DNA提取试剂盒(凯杰公司，DNeasy试剂盒)根据制造商的说明从每个个体蚜虫中提取DNA。使用nanodrop核酸定量法测量DNA浓度，并且通过qPCR测量布赫纳氏菌和蚜虫DNA拷贝数。用于布赫纳氏菌的引物是Buch_groES_18F(CATGATCGTGTGCTTGTTAAG；SEQ ID NO：228)和Buch_groES_98R(CTGTTCCTCGAGTCGATTTCC；SEQ ID NO：229)(Chong和Moran，2016 PNAS[美国国家科学院院刊])。用于蚜虫的引物是ApEF1a 107F(CTGATTGTGCCGTGCTTATTG；SEQ ID NO：230)和ApEF1a 246R(TATGGTGGTTCAGTAGAGTCC；SEQ ID NO：231)(Chong和Moran，2016 PNAS[美国国家科学院院刊])。使用1.6℃/秒的qPCR扩增斜率和以下条件进行qPCR：1)95℃持续
10分钟，2)95℃持续15秒，3)55℃持续30秒，4)重复步骤2-3 40x，5)95℃持续15秒，6)55℃持续1分钟，7)斜率改变为0.15℃/s，8)95℃持续1秒。使用分析软件(赛默飞世尔科技公司(Thermo Fisher Scientific)，QuantStudio设计和分析)分析qPCR数据。

[0834] 维生素类似物处理延迟了蚜虫发育

[0835] 如在植物递送实验设计(本文所述的)中定义的，将eNASCO第1龄和第2龄蚜虫分成三个不同的处理组。每天监测蚜虫并确定每个发育阶段的蚜虫数量。用不含必需氨基酸的单独的人工饲料处理的蚜虫在大约5天开始达到成熟(第5龄期)(图48A)。用泛醇处理的蚜虫中发育延迟，尤其是在治疗后两天和三天(图48A)，这指示用泛酸处理损害了蚜虫的发育。最终，来自每个处理组的大多数蚜虫达到成熟并开始繁殖。除了随时间监测蚜虫的发育阶段外，还对蚜虫进行成像并确定蚜虫面积。在1天的处理后所有蚜虫的大小相同，但是，处理后3天，用泛醇处理的蚜虫的面积小于未经处理的对照。此外，与用不含必需氨基酸的单独的人工饲料处理的蚜虫相比，在实验过程中，用泛醇处理的蚜虫的虫体尺寸的增加小得多(如通过面积确定的)(图48B)。

[0836] 维生素类似物处理增加了蚜虫死亡率

[0837] 在处理期间还测量了蚜虫的存活率。与用10或100uM泛醇处理的蚜虫相比，饲养在不含必需氨基酸的单独的人工饲料上的蚜虫具有更高的存活率(图49)，这指示泛醇处理负面地影响了蚜虫适合度。

[0838] 用泛醇的处理降低了蚜虫繁殖力

[0839] 在治疗期间还监测蚜虫的繁殖力。确定了存活至成熟和繁殖的蚜虫的分数。用不含必需氨基酸的人工饲料处理的蚜虫中大约四分之一在处理后8天存活至成熟(图50A)。相比之下，只有用10或100uM泛醇处理的蚜虫中略高于1/10的蚜虫在处理后8天存活至成熟并繁殖。还测量了每个处理组中的蚜虫开始繁殖的平均天数，并且对于所有处理组，蚜虫开始繁殖的平均天数为7天(图50B)。另外地，还监测了由成熟的、繁殖蚜虫每天产生的后代的平均数量。用不含必需氨基酸的单独的人工饲料处理的蚜虫每天产生大约7个后代。相比之下，用10和100uM泛醇处理的蚜虫每天分别仅产生大约4和5个后代，显示在图50C中。总之，这些数据指示泛醇处理导致蚜虫繁殖的丧失。

[0840] 泛醇处理不影响蚜虫中布赫纳氏菌

[0841] 为了测试用泛醇处理是否特异性地导致蚜虫中布赫纳氏菌的丧失，并且这种丧失影响蚜虫适合度，在处理8天后从每个处理组的蚜虫中提取DNA并且进行qPCR以确定布赫纳氏菌/蚜虫拷贝数。用不含必需氨基酸的单独的人工饲料处理的蚜虫具有高比率的布赫纳氏菌/蚜虫DNA拷贝，用两种浓度的泛醇处理的蚜虫也是如此(图51)。这些数据指示泛醇处理不直接地影响布赫纳氏菌/蚜虫DNA拷贝数。

[0842] 叶涂层递送实验设计：

[0843] 将泛醇粉剂添加至0.025％的非离子有机硅化合物表面活性剂溶剂(Silwet L-77)中以获得10uM泛醇的最终浓度。使用0.22um滤器将处理进行过滤灭菌，并储存在4℃。如在先前实例中所述的，蚜虫(eNASCO菌株，豌豆长管蚜(Acyrthosiphon pisum)在蚕豆植物上生长。对于实验，从健康植物收集第一龄蚜虫，并且分成2个不同的处理组：1)阴性对照(仅溶剂溶液)，和2)在溶剂中的10uM泛醇。将100ul的溶液吸收到蚕豆叶的2x2cm片上。

[0844] 每个处理组从每个收集植物接收大约相同数量的个体。对于每次处理，将20只蚜虫放置在每片叶上。每天监测蚜虫的存活，并且在发现死蚜虫时将其去除。此外，贯穿整个实验，每天确定发育阶段(第1龄、第2龄、第3龄、第4龄、第5龄、和5R(代表繁殖第5龄))。

[0845] 通过叶涂层递送的泛醇处理不影响蚜虫发育

[0846] 如在本文所述的实验设计中定义的，将eNASCO第1龄蚜虫分成两个不同的处理组。每天监测蚜虫并确定每个发育阶段的蚜虫数量。放置在用对照或泛醇溶液处理的涂覆的叶上的蚜虫在处理后长达两天以相似的速率成熟(图52)。这些数据指示用泛醇涂覆叶不影响蚜虫发育。

[0847] 通过叶涂层递送的泛醇处理增加了蚜虫死亡率

[0848] 在叶涂层处理期间还测量了蚜虫的存活率。放置在用泛醇涂覆的叶上的蚜虫比放置在用对照溶液涂覆的叶上的蚜虫具有更低的存活率(图53)。这些数据指示通过叶涂层递送的泛醇处理显著地(p＝0.0019)影响了蚜虫存活。此实验中的所有蚜虫死亡，因此没有蚜虫存留以从中提取DNA并确定布赫纳氏菌/蚜虫DNA比率。

[0849] 总之，在先前实例中描述的此数据证明了通过多个递送方法用泛醇处理蚜虫而杀死和降低蚜虫发育、生殖能力、寿命、和内源性细菌群体的能力(例如，适合度)。

[0850] 实例21：用氨基酸转运体抑制剂的混合物处理的蚜虫

[0851] 此实例证明了用氨基酸类似物的混合物处理蚜虫。此处理的目的是通过ApGLNT1谷氨酰胺转运体抑制含菌细胞摄取谷氨酰胺。先前已经显示，精氨酸通过谷氨酰胺转运体抑制谷氨酰胺摄取(Price等人，2014 PNAS[美国国家科学院院刊])，并且假设用精氨酸的类似物、或其他氨基酸类似物处理也会抑制将必需氨基酸摄取到蚜虫含菌细胞中。此实例证明了处理后适合度的降低是通过调节内源于对氨基酸类似物敏感的蚜虫的细菌群体来介导的。一个靶向的细菌菌株是布赫纳氏菌。

[0852] 蚜虫是对植物造成直接进食损害，并作为植物病毒的媒介的农业昆虫有害生物。此外，蚜虫蜜露促进了烟霉(sooty mold)的生长，并吸引了令人讨厌的蚂蚁。化学处理的使用(不幸的是，仍然普遍存在)导致选择抗性个体，这些个体的根除变得越来越困难。

[0853] 治疗性设计：

[0854] 将氨基酸混合物配制用于通过叶灌注递送和通过植物递送。此递送方由用以下组成：向叶注射在水中的大约1ml的氨基酸混合物(参见下面的混合物中的组分列表)、或者1ml的仅含有水的阴性对照溶液。

[0855] 叶灌注和通过植物递送实验设计：

[0856] 在气候控制培养箱(16小时光照/8小时黑暗光周期；60％±5％RH；25℃±2℃)中，蚜虫LSR-1(仅含有布赫纳氏菌，豌豆长管蚜(Acyrthosiphon pisum))在蚕豆植物(来自约翰尼精选种子公司(Johnny′s Selected Seeds)的Vroma vicia faba)上生长。在用于蚜虫饲养之前，在24℃伴随16小时的光照和8小时的黑暗，使蚕豆植物在盆栽土中生长。为了限制植物之间的母体效应或健康差异，将来自不同植物的5-10个成虫分布在10个两周龄的植物中，并且允许繁殖至高密度，持续5-7天。对于实验，从健康植物收集第一龄蚜虫，并且分成2个不同的处理组：1)阴性对照(水处理)，和2)氨基酸混合物处理。氨基酸混合物含有指示的最终浓度的以下每种药剂：330μM L-NNA(N-硝基-L-精氨酸；西格玛公司)、0.1mg/ml L-刀豆氨酸(西格玛公司)、0.5mg/ml D-精氨酸(西格玛公司)、0.5mg/ml D-苯丙氨酸(西格玛公司)、0.5mg/ml D-组氨酸(西格玛公司)、0.5mg/ml D-色氨酸(西格玛公司)、0.5mg/ml D-苏氨酸(西格玛公司)、0.5mg/ml D-缬氨酸(西格玛公司)、0.5mg/ml D-甲硫氨酸(西格玛公司)、0.5mg/ml D-亮氨酸、和6μM L-NMMA(柠檬酸酯)(开曼化学公司(Cayman Chemical))。经由注射将约1ml的处理溶液灌注到蚕豆叶中，并且将植物的茎放置进含有处理溶液的1.5ml Eppendorf管中。使用石蜡膜封闭管的开口。然后将此饲喂系统放置在深的有盖培养皿(飞世尔科技公司(Fisher Scientific)，目录号FB0875711)中，并将蚜虫施用于植物的叶。对于每次处理，将总共56-58只蚜虫放置在每片叶上(每种处理由28-31只蚜虫的两次重复组成)。每个处理组从每个收集植物接收大约相同数量的个体。贯穿整个实验，每2-3天更换饲喂系统。每天监测蚜虫的存活，并且在发现死蚜虫时将其从深的有盖培养皿中去除。贯穿整个实验，每天确定蚜虫发育阶段(第1龄、第2龄、第3龄、第4龄、和第5龄)，并在第5天拍摄蚜虫的显微图像以确定蚜虫面积测量值。

[0857] 将L-NNA的储备溶液在水中以5mM制备，穿过0.22μm针筒式滤器灭菌，并储存在-20℃。将L-刀豆氨酸的储备溶液在水中以100mg/ml制备，穿过0.22μm针筒式滤器灭菌，并储存在4℃。将D-精氨酸和D-苏氨酸的储备溶液在水中以50mg/ml制备，穿过0.22μm针筒式滤器灭菌，并储存在4℃。将D-缬氨酸和D-甲硫氨酸的储备溶液在水中以25mg/ml制备，穿过0.22μm针筒式滤器灭菌，并储存在4℃。将D-亮氨酸的储备溶液在水中以12mg/ml制备，穿过0.22μm针筒式滤器灭菌，并储存在4℃。将D-苯丙氨酸和D-组氨酸的储备溶液在1M HCl中以50mg/ml制备，穿过0.22μm针筒式滤器灭菌，并储存在4℃。将D-色氨酸的储备溶液在0.5M HCl中以50mg/ml制备，穿过0.22μm针筒式滤器灭菌，并储存在4℃。将L-NMMA的储备溶液在无菌PBS中以6mg/ml制备，穿过0.22μm针筒式滤器灭菌，并储存在-20℃。对于处理(参见治疗性设计)，将适量的储备溶液添加至水中以获得如上所指示的混合物中药剂的最终浓度。

[0858] 处理6天后，从来自每个处理组的多个蚜虫提取DNA。简言之，通过将蚜虫浸入6％漂白溶液中大约5秒来对蚜虫体表进行灭菌。然后将蚜虫在无菌水中漂洗，并且使用DNA提取试剂盒(凯杰公司，DNeasy试剂盒)根据制造商的说明从每个个体蚜虫中提取DNA。使用nanodrop核酸定量法测量DNA浓度，并且通过qPCR测量布赫纳氏菌和蚜虫DNA拷贝数。用于布赫纳氏菌的引物是Buch_groES_18F(CATGATCGTGTGCTTGTTAAG；SEQ ID NO：228)和Buch_groES_98R(CTGTTCCTCGAGTCGATTTCC；SEQ ID NO：229)(Chong和Moran，2016 PNAS[美国国家科学院院刊])。用于蚜虫的引物是ApEF1a 107F(CTGATTGTGCCGTGCTTATTG；SEQ ID NO：230)和ApEF1a 246R(TATGGTGGTTCAGTAGAGTCC；SEQ ID NO：231)(Chong和Moran，2016 PNAS[美国国家科学院院刊])。使用1.6℃/秒的qPCR扩增斜率和以下条件进行qPCR：1)95℃持续
10分钟，2)95℃持续15秒，3)55℃持续30秒，4)重复步骤2-3 40x，5)95℃持续15秒，6)55℃持续1分钟，7)斜率改变为0.15℃/s，8)95℃持续1秒。使用分析软件(赛默飞世尔科技公司(Thermo Fisher Scientific)，QuantStudio设计和分析)分析qPCR数据。

[0859] 用氨基酸类似物的混合物的处理延迟和停止了蚜虫发育的进展

[0860] 如在叶灌注和通过植物递送实验设计(本文所述的)中定义的，将LSR-1第1龄蚜虫分成两个不同的处理组。每天监测蚜虫并确定每个发育阶段的蚜虫数量。用水处理的蚜虫在5天处理后开始达到成熟(第5龄期)(图54A)。通过6天处理后，用水处理的蚜虫中约20％达到第5龄期。相比之下，小于3％的氨基酸混合物处理的蚜虫达到第5龄期，甚至6天后(图54A)。通过在处理后5天进行的蚜虫尺寸测量中进一步例证了用氨基酸混合物处理后的这种发育延迟。用单独的水处理的蚜虫为大约0.45mm2，而用氨基酸混合物处理的蚜虫为大约
0.33mm2(图54B)。这些数据指示用氨基酸混合物处理延迟了蚜虫发育，负面地影响蚜虫适合度。

[0861] 用氨基酸类似物混合物的处理导致蚜虫中布赫纳氏菌降低

[0862] 为了测试用氨基酸类似物混合物处理是否特异性地导致蚜虫中布赫纳氏菌的丧失，并且这种丧失影响蚜虫适合度，在处理6天后从每个处理组的蚜虫中提取DNA并且进行qPCR以确定布赫纳氏菌/蚜虫拷贝数。放置在对照溶液中的蚜虫具有高比率的布赫纳氏菌/蚜虫DNA拷贝。相比之下，放置在AA混合物处理上的蚜虫具有大幅减小的布赫纳氏菌/蚜虫DNA拷贝(图55)，这指示AA类似物混合物处理消除了内共生布赫纳氏菌。

[0863] 总之，此数据证明了通过用氨基酸类似物的混合物处理蚜虫而降低蚜虫发育和内源性细菌群体的能力(例如，适合度)。

[0864] 实例22：用药剂(抗生素、肽、和天然抗微生物)的组合处理的蚜虫

[0865] 此实例证明了用三种抗微生物剂(抗生素(利福平)、肽(蝎肽Uy192)、和天然抗微生物剂(低分子量壳聚糖))的组合处理蚜虫。在其他实例中，单独地给予这些药剂的每个导致了降低的蚜虫适合度和减少的内共生体水平。此实例证明，通过递送处理组合，蚜虫适合度和内共生体水平降低，或者优于单独使用每种单独药剂的治疗。

[0866] 蚜虫是对植物造成直接进食损害，并作为植物病毒的媒介的农业昆虫有害生物。此外，蚜虫蜜露促进了烟霉(sooty mold)的生长，并吸引了令人讨厌的蚂蚁。化学处理的使用(不幸的是，仍然普遍存在)导致选择抗性个体，这些个体的根除变得越来越困难。

[0867] 治疗性设计

[0868] 将组合处理配制用于通过叶灌注递送和通过植物递送。此递送方由用以下组成：向叶注射在水中的大约1ml的组合处理(含有100μg/ml利福平、100μg/ml Uy192、和300μg/ml壳聚糖的最终浓度)、或者1ml的仅含有水的阴性对照溶液。

[0869] 叶灌注和通过植物递送实验设计

[0870] 在气候控制培养箱(16小时光照/8小时黑暗光周期；60％±5％RH；25℃±2℃)中，蚜虫LSR-1(仅含有布赫纳氏菌，豌豆长管蚜(Acyrthosiphon pisum))在蚕豆植物(来自约翰尼精选种子公司(Johnny′s Selected Seeds)的Vroma vicia faba)上生长。在用于蚜虫饲养之前，在24℃伴随16小时的光照和8小时的黑暗，使蚕豆植物在盆栽土中生长。为了限制植物之间的母体效应或健康差异，将来自不同植物的5-10个成虫分布在10个两周龄的植物中，并且允许繁殖至高密度，持续5-7天。对于实验，从健康植物收集第一龄蚜虫，并且分成2个不同的处理组：1)阴性对照(水处理)，和2)100μg/ml利福平、100μg/ml Uy192、和300μg/ml壳聚糖处理的组合。经由注射将约1ml的处理溶液灌注到蚕豆叶中，并且将植物的茎放置进含有处理溶液的1.5ml Eppendorf管中。使用石蜡膜封闭管的开口。然后将此处理系统放置在深的有盖培养皿(飞世尔科技公司(Fisher Scientific)，目录号FB0875711)中，并将蚜虫施用于植物的叶。对于每次处理，将总共56只蚜虫放置在每片叶上(每种处理由28只蚜虫的两次重复组成)。每个处理组从每个收集植物接收大约相同数量的个体。贯穿整个实验，每2-3天更换饲喂系统。每天监测蚜虫的存活，并且在发现死蚜虫时将其从深的有盖培养皿中去除。贯穿整个实验，每天确定蚜虫发育阶段(第1龄、第2龄、第3龄、第4龄、和第5龄)，并在第5天拍摄蚜虫的显微图像以确定蚜虫面积测量值。

[0871] 将利福平(东京化工有限公司(Tokyo Chemical Industry，LTD))储备溶液在甲醇中以25mg/ml制备，穿过0.22μm针筒式滤器灭菌，并储存在-20℃。对于处理，将适量的储备溶液添加至水中以获得100μg/ml利福平的最终浓度。通过生物合成以＞75％纯度合成Uy192。将1mg的冻干的肽重组到500μl的80％乙腈、20％水、和0.1％TFA中。将100μl(100μg)等分到10个单独的Eppendorf管中并允许干燥。对于处理，将1ml的水添加至肽的100μg等分试样中以获得100μg/ml Uy192的最终浓度。将壳聚糖(西格玛公司(Sigma)，目录号448869-50G)储备溶液在乙酸中以1％制备，高压灭菌法灭菌，并储存在4℃。对于处理，将适量的储备溶液添加至水中以获得300μg/ml壳聚糖的最终浓度。

[0872] 处理6天后，从来自每个处理组的多个蚜虫提取DNA。简言之，通过将蚜虫浸入6％漂白溶液中大约5秒来对蚜虫体表进行灭菌。然后将蚜虫在无菌水中漂洗，并且使用DNA提取试剂盒(凯杰公司，DNeasy试剂盒)根据制造商的说明从每个个体蚜虫中提取DNA。使用nanodrop核酸定量法测量DNA浓度，并且通过qPCR测量布赫纳氏菌和蚜虫DNA拷贝数。用于布赫纳氏菌的引物是Buch_groES_18F(CATGATCGTGTGCTTGTTAAG；SEQ ID NO：228)和Buch_groES_98R(CTGTTCCTCGAGTCGATTTCC；SEQ ID NO：229)(Chong和Moran，2016 PNAS[美国国家科学院院刊])。用于蚜虫的引物是ApEF1a 107F(CTGATTGTGCCGTGCTTATTG；SEQ ID NO：230)和ApEF1a 246R(TATGGTGGTTCAGTAGAGTCC；SEQ ID NO：231)(Chong和Moran，2016 PNAS[美国国家科学院院刊])。使用1.6℃/秒的qPCR扩增斜率和以下条件进行qPCR：1)95℃持续
10分钟，2)95℃持续15秒，3)55℃持续30秒，4)重复步骤2-3 40x，5)95℃持续15秒，6)55℃持续1分钟，7)斜率改变为0.15℃/s，8)95℃持续1秒。使用分析软件(赛默飞世尔科技公司(Thermo Fisher Scientific)，QuantStudio设计和分析)分析qPCR数据。

[0873] 用三种抗微生物剂的组合的处理延迟和停止了蚜虫发育的进展

[0874] 如在叶灌注和通过植物递送实验设计(本文所述的)中定义的，将LSR-1第1龄蚜虫分成两个不同的处理组。每天监测蚜虫并确定每个发育阶段的蚜虫数量。用水处理的蚜虫在5天处理后开始达到成熟(第5龄期)(图56A)。通过6天处理后，用水处理的蚜虫中约20％达到第5龄期。相比之下，用三种药剂的组合处理的蚜虫中没有蚜虫达到第5龄期，甚至6天后(图56A)。通过在处理后5天进行的蚜虫尺寸测量进一步例证了用组合处理后的这种发育延迟。用单独的水处理的蚜虫为大约0.45mm2，而用3种药剂组合处理的蚜虫为大约0.26mm2(图56B)。这些数据指示用药剂的组合的处理延迟了蚜虫发育，负面地影响蚜虫适合度。

[0875] 用三种抗微生物剂的组合的处理增加了蚜虫死亡率

[0876] 处理后也每天监测存活。在处理后2天，用水处理的蚜虫中大约75％存活，而用药剂的组合处理的蚜虫中仅62％存活。在实验期间，在对照(用水处理的)组的处理中更多的蚜虫存活的趋势持续。在处理后6天，对照(用水处理的)蚜虫中64％存活，而用利福平、Uy192、和壳聚糖的组合处理的蚜虫中58％存活(图57)。这些数据指示处理的组合负面地影响蚜虫存活。

[0877] 用三种药剂的组合的处理导致蚜虫中布赫纳氏菌降低

[0878] 为了测试用肽、抗生素、和天然抗微生物剂的组合处理是否特异性地导致蚜虫中布赫纳氏菌的丧失，并且这种丧失影响蚜虫适合度，在处理6天后从每个处理组的蚜虫中提取DNA并且进行qPCR以确定布赫纳氏菌/蚜虫拷贝数。用单独的水处理的蚜虫比率为大约2.3布赫纳氏菌/蚜虫DNA(图58)。相比之下，用肽、抗生素、和天然抗微生物剂的组合处理的蚜虫具有大约2倍较低比率的布赫纳氏菌/蚜虫DNA(图58)。这些数据指示组合处理减少内共生体水平，该减少的内共生体水平导致蚜虫适合度降低。

[0879] 总之，此数据证明了通过用肽、抗生素、和天然抗微生物剂的组合处理蚜虫而降低蚜虫发育和内源性细菌群体的能力(例如，适合度)。

[0880] 实例23：用抗生素溶液处理的象鼻虫

[0881] 此实例证明了用环丙沙星(一种抑制DNA旋转酶和拓扑异构酶(DNA复制所必需的两种酶)的活性的杀细菌的抗生素)处理象鼻虫的作用。此实例证明了环丙沙星对象鼻虫的表型作用是通过调节内源于对环丙沙星敏感的象鼻虫的细菌群体来介导的。一个靶向的细菌菌株是米象属(Sitophilus)原生内共生体(SPE，暂定属Sodalis pierantonius)。

[0882] 米象属(Sitophilus)包含三种称为仓储有害生物的象鼻虫物种(玉米象(Sitophilus zemais，maize weevil)；米象(Sitophilus oryzae，the rice weevil)；和谷象(Sitophilus granarius，grain weevil))。所有这三种象鼻虫物种都含有细胞内共生体SPE，它为象鼻虫提供营养物像维生素和氨基酸，并改善线粒体的能量代谢。仓储有害生物主要由合成的杀昆虫剂控制，这导致抗性个体的选择，这使仓储有害生物的根除变得越来越困难。

[0883] 实验设计：

[0884] 将米象属(Sitophilus)玉米象(maize weevils，Sitophilus zeamais)用有机玉米在27.5℃和70％相对湿度下饲养。在用于象鼻虫饲养之前，将玉米冷冻7天，然后用无菌水回火至10％湿度。对于实验，将成虫雄性/雌性交配对分成3个不同的处理组，将这些组一式三份进行：1)水对照，2)250μg/ml环丙沙星，和3)2.5mg/ml环丙沙星。将环丙沙星(西格玛公司)储备溶液在0.1N HCl中以25mg/ml制备，穿过0.22μm针筒式滤器灭菌，并储存在-20℃。对于处理，将适量的储备溶液在无菌水中稀释。

[0885] 对象鼻虫进行以下三个连续处理：

[0886] 1.第一次处理包括用上文列出的三个处理组中的每个浸泡25g玉米：1)水对照，2)250μg/ml环丙沙星，和3)2.5mg/ml环丙沙星。简言之，将25g的玉米放置在50ml锥形管中，并添加每种处理至填满管。将管置于振荡器上1.5小时，然后取出玉米并放置在深的有盖培养皿中并风干。然后将雄性/雌性交配对添加至每个处理组中并允许进食4天。

[0887] 2. 4天后，取出交配对，并通过将它们置于25g用以下处理的新的玉米中进行第二次处理：1)水对照、2)250μg/ml环丙沙星、和3)2.5mg/ml环丙沙星。交配对在这种玉米上进食和产卵7天。评估来自第二次处理的玉米中后代的出现(参见下文的评估后代)。

[0888] 3.对交配对进行最终处理，该最终处理包括将它们浸泡在以下处理中的组合中：(1)水对照、2)250μg/ml环丙沙星、和3)2.5mg/ml环丙沙星持续5秒，然后将它们放置在小瓶中，该小瓶含有用1ml的1)水对照、2)250μg/ml环丙沙星、和3)2.5mg/ml环丙沙星涂覆的10个玉米籽粒。

[0889] 每天监测象鼻虫存活，持续18天，之后从每组中剩余的象鼻虫中提取DNA。简言之，通过将象鼻虫浸入6％漂白溶液中大约5秒来对象鼻虫体进行表面灭菌。然后将象鼻虫在无菌水中漂洗，并且使用DNA提取试剂盒(凯杰公司，DNeasy试剂盒)根据制造商的说明从每个个体蚜虫中提取DNA。使用nanodrop核酸定量法测量DNA浓度，并且通过qPCR测量SPE和象鼻虫DNA拷贝数。用于SPE的引物是qPCR_Sod_F(ATAGCTGTCCAGACGCTTCG；SEQ ID NO：238)和qPCR_Sod_R(ATGTCGTCGAGGCGATTACC；SEQ ID NO：239)。用于象鼻虫(β-肌动蛋白)的引物是SACT144_FOR(GGTGTTGGCGTACAAGTCCT；SEQ  ID  NO：240)和SACT314_REV(GAATTGCCTGATGGACAGGT；SEQ ID NO：241)(Login等人，2011)。使用1.6℃/秒的qPCR扩增斜率和以下条件进行qPCR：1)95℃持续10分钟，2)95℃持续15秒，3)57℃持续30秒，4)重复步骤2-3 40x，5)95℃持续15秒，6)55℃持续1分钟，7)斜率改变为0.15℃/s，8)95℃持续1秒。
使用分析软件(赛默飞世尔科技公司(Thermo Fisher Scientific)，QuantStudio设计和分析)分析qPCR数据。

[0890] 评估后代：

[0891] 在25天后，切开来自成虫交配对的第二次处理的玉米籽粒的一个重复(参见上面的实验设计)以检查任何发育中的幼虫、蛹、或成虫象鼻虫的存在。米象属(Sitophilus)象鼻虫的大部分发育都发生在谷粒/稻米/玉米中，并且一旦发育完成，成虫就会从籽粒玉米中出现。用解剖刀轻轻切开玉米籽粒，并且收集任何发育中的象鼻虫，以及确定成虫、蛹和幼虫的百分比。然后对来自解剖的象鼻虫进行表面灭菌，并通过qPCR确定SPE的水平。来自第二次处理的每组的剩余两个重复的玉米籽粒未被切开，但每天检查成虫象鼻虫的出现。

[0892] 评估抗生素对玉米的渗透

[0893] 将25mg的玉米籽粒放置在50ml锥形管中，并添加水或者在水中的2.5mg/ml或0.25mg/ml环丙沙星至填满管。如本文所述将籽粒浸泡1.5小时。浸泡后，将籽粒风干并进行测定以确定抗生素是否能够涂覆并渗透籽粒。为了测试这一点，将在水中的大肠杆菌
(Escherichia coli)DH5α的浓缩的样品涂布在5个卢里亚肉汤(Luria Broth，LB)板上。对每个板进行：1)添加浸泡在水中的玉米籽粒，2)添加已经用2.5或0.25mg/ml环丙沙星浸泡的整个玉米籽粒，和3)添加已经用2.5或0.25mg/ml环丙沙星浸泡的半个玉米籽粒，并将其置于板内。将板在37℃孵育过夜，并在第二天评估细菌生长和/或一个或多个抑制区。

[0894] 在抗生素中浸泡玉米籽粒允许抗生素涂覆玉米籽粒表面并渗透玉米籽粒。

[0895] 为了测试环丙沙星是否能够涂覆玉米籽粒的表面，之后将籽粒(玉米籽粒)浸泡在不含抗生素的水中、或含有2.5或0.25mg/ml环丙沙星的水中(如上所述)。然后将浓缩的大肠杆菌培养物涂布在LB板上，然后将一个涂覆的籽粒放置在板的中心上。将板孵育过夜，并在第二天评估细菌生长。

[0896] 细菌的菌苔在整个板上生长，其中玉米籽粒已经涂覆有水而没有任何抗生素(图59A)。相比之下，没有细菌在具有浸泡在两种浓度的环丙沙星中的任一种中的整个玉米籽粒的板上生长(图59B，左小图)。这些数据显示，在这些实验中使用的涂覆方法允许环丙沙星成功地涂覆玉米籽粒表面并抑制细菌生长。

[0897] 为了测试环丙沙星是否可以渗透玉米籽粒，将浸泡在2.5或0.25mg/ml环丙沙星中的玉米籽粒切成两半，并将切面朝下放在含有浓缩的大肠杆菌培养物的LB板上。将板孵育过夜，并在第二天评估细菌生长。在板上没有细菌生长，其中籽粒浸泡在任一浓度的抗生素中，这指示环丙沙星渗透玉米籽粒(图59B，右小图)。总之，这些数据指示用于这些实验的玉米粒浸泡方法成功地使籽粒被抗生素涂覆并渗透。

[0898] 抗生素处理降低了F0代中的SPE水平。

[0899] 如实验设计(上文)中定义的，将S.zeamais交配对分成三个不同的处理组。每天监测象鼻虫，并且所有象鼻虫在实验过程中都保持存活。处理18天后，对象鼻虫进行表面灭菌，提取基因组DNA，并且通过qPCR测量SPE水平。与分别用250ug/ml和2.5mg/ml环丙沙星处理的象鼻虫相比，仅用水处理的象鼻虫具有大约4倍和8倍更高量的SPE(图60)。这些数据指示用环丙沙星处理象鼻虫导致SPE水平降低。

[0900] 抗生素处理延迟了发育并且降低了象鼻虫的F1代的SPE水平。

[0901] 通过解剖F0交配对已经产卵7天并随后被去除的玉米籽粒来评估F1代象鼻虫的发育。在25天后，在用水/对照处理的玉米中发现12个后代，其中大部分(约67％)的后代处于蛹形式(图61A)。在用250ug/ml和2.5mg/ml环丙沙星处理的象鼻虫中分别发现了13和20个后代。有趣的是，与对照处理的象鼻虫相比，用抗生素处理的象鼻虫显示出发育延迟，其中大多数(对于250ug/ml和2.5mg/ml环丙沙星，分别为38％和65％)的后代处于幼虫形式(图61A)。

[0902] 从来自玉米籽粒切开的象鼻虫中提取基因组DNA，并进行qPCR以测量SPE的水平。与用2.5mg/ml环丙沙星处理的象鼻虫相比，用水处理的F1象鼻虫具有大约4倍更高的SPE水平(图61B)。这些数据指示，用环丙沙星处理降低象鼻虫中SPE水平，这导致发育延迟。

[0903] 抗生素处理降低了象鼻虫繁殖

[0904] 将在初始交配对从第二次处理中去除后43天的过程中出现的象鼻虫的数量用于测量繁殖力(图62A和62B)。第一个象鼻虫在第29天出现，并计算出直到第43天出现的象鼻虫总数。虽然用水和250ug/ml处理的象鼻虫具有相似量的F1后代，但是从2.5mg/ml处理组产生的后代少得多，这指示抗生素处理降低了SPE水平，影响象鼻虫繁殖力。

[0905] 与先前的实例一起，此数据证明了通过多个递送方法用抗生素处理象鼻虫而杀死和降低象鼻虫发育、生殖能力、寿命和内源性细菌群体的能力(例如，适合度)。

[0906] 实例24：用抗生素溶液处理螨

[0907] 此实例证明了通过用利福平(一种通过抑制细菌RNA聚合酶而抑制DNA依赖性RNA合成的窄谱抗生素)和强力霉素(一种通过抑制蛋白合成阻止细菌繁殖的广谱抗生素)处理棉红蜘蛛(two-spotted spider mite)来杀死、降低棉红蜘蛛适合度的能力。利福平和强力霉素对螨的作用是通过调节与对抗生素敏感的螨内源的细菌群体来介导的。

[0908] 昆虫(如，蚊子)和蛛形纲动物(如，蜱)可以作为针对病原体的媒介起作用，在人和动物中引起严重疾病，如莱姆病、登革热、锥体虫病、和疟疾。媒介传播的疾病每年引起数百万人死亡。此外，感染动物(如牲畜)的媒介传播的疾病代表主要的全球公共卫生负担。因此，需要控制携带媒介传播的疾病的对照昆虫和蛛形纲动物的方法和组合物。棉红蜘蛛是与蜱在相同亚纲中的蛛形纲动物。因此，用于降低棉红蜘蛛的适合度的方法和组合物可以用于提供降低蜱适合度的见解。

[0909] 治疗性设计

[0910] 将两种处理用于这些实验：1)0.025％Silwet L-77(阴性对照)、或2)含有250μg/ml利福平和500μg/ml强力霉素的抗生素的混合物。将利福平(东京化工有限公司(Tokyo Chemical Industry，LTD))储备溶液在甲醇中以25mg/ml制备，穿过0.22μm针筒式滤器灭菌，并储存在-20℃。将强力霉素(制造商公司(manufacture))储备溶液在水中以50mg/mL制备，穿过0.22μm针筒式滤器灭菌，并储存在-20℃。

[0911] 实验设计：

[0912] 此测定在棉红蜘蛛上测试了抗生素溶液，并通过靶向内源性微生物确定了它们的适合度如何改变。

[0913] 在24℃伴随16小时的光照和8小时的黑暗，使肾形豆(kidney)植物在盆栽土中生长。在26℃和15％-20％相对湿度下，在肾形豆(kidney bean)植物上饲养螨。对于处理，从肾形豆(kidney bean)叶上切下一英尺直径的叶圆盘，并使用Master Airbrush品牌压缩机型号C-16-B黑色迷你喷枪空气压缩机用0.025％Silwet L-77(阴性对照)或抗生素混合物(在0.025％Silwet L-77中的250μg/ml利福平和500μg/ml强力霉素)进行喷雾。在处理之前、之后和之间用乙醇清洁压缩机。使用四分之一英寸的管将液体通过压缩机进料。每次处理使用新管。

[0914] 在叶盘干燥后，将每种处理中的四个放置在覆盖有一片擦拭纸(金佰利公司(kimwipe))的湿棉球顶部的杯中。每个处理设置一式两份进行。然后将25只成年雌性螨放入杯中。在第4天，将雌性从杯中取出，并且将卵和幼虫留在叶盘上。

[0915] 在第11天，从杯中取出在第一若虫阶段和第二若虫阶段的螨并放入它们自己的管中，这样可以测量存活。每个管含有一个湿润的棉球，上面覆盖着一片擦拭纸(金佰利公司)，其中半英寸的叶盘用阴性对照或混合物处理。

[0916] 在用抗生素或对照溶液处理的叶上饲喂后，每天在解剖显微镜下观察螨，并根据以下类别分类：

[0917] ·存活：在用漆刷戳后，它们用腿走动或者被移动。

[0918] ·死亡：不移动并且对漆刷的刺激没有反应

[0919] 使用无菌漆刷通过触碰它们的腿来刺激螨。在整个测定过程中保留分类为死亡的螨并每天重新检查运动。测定在26℃和15％-20％相对湿度下进行。

[0920] 抗生素处理增加了螨死亡率

[0921] 将用阴性对照处理的螨与用抗生素混合物处理的棉红蜘蛛的存活率进行比较。与对照相比，用混合物处理的螨的存活率降低(图60)。

[0922] 此数据证明了通过用抗生素溶液处理螨而降低螨的适合度的能力。

[0923] 实例25：用纯化的噬菌体溶液处理昆虫

[0924] 此实例证明了从靶向特异性昆虫细菌的环境样品中分离和纯化噬菌体。此实例还通过噬斑测定，通过测量其氧消耗率和细胞外酸化率，证明了分离的噬菌体在体外针对靶细菌的功效。最后，此实例通过测量噬菌体对来自蝇的靶细菌的能力(通过用针对细菌分离的噬菌体来处理噬菌体)证明了噬菌体在体内的功效。此实例证明了可以使用噬菌体靶向细菌来清除降低昆虫适合度的致病细菌。具体而言，可以使用从花园堆肥中分离的噬菌体清除作为蝇中的致病细菌的黏质沙雷氏菌(Serratia marcescens)。

[0925] 实验设计

[0926] 从天然样品中分离特异性细菌噬菌体：

[0927] 从环境来源材料中分离出针对靶细菌的细菌噬菌体。简言之，将黏质沙雷氏菌(Serratia marcescens)的饱和培养物稀释进新鲜的双倍强度胰蛋白酶大豆肉汤(TSB)中，并在24℃-26℃生长约120分钟至早期对数期，或者稀释进双倍强度的卢里亚-贝尔塔尼(Luria-Bertani，LB)中并在37℃生长约90分钟。通过在PBS中均质化并通过0.2μm过滤灭菌来制备花园堆肥。通过0.2μm过滤对未处理的污水进行灭菌。将一体积过滤的源材料添加至对数期细菌培养物中并继续孵育24小时。通过沉淀培养物并通过0.45μm膜对上清液进行过滤来制备富集的源材料。

[0928] 通过将样品铺板到双琼脂细菌菌苔上来分离噬菌体。将固定的细菌培养物与熔融的0.6％琼脂LB或TSB组合并倾倒入1.5％琼脂LB或TSB板上。凝固后，将2.5μL噬菌体样品稀释液点样在双琼脂板上并允许其吸收。然后将板包裹并在25℃(TSA)或37℃(LB)孵育过夜，然后对可见噬斑的形成进行评估。将新分离的噬斑通过在靶菌株上连续传代单个噬斑(通过将噬斑选择到SM缓冲液(50mM Tris-HCl[pH 7.4]、10mM MgSO4、100mM NaCl)中并在55℃孵育15分钟)进行纯化，然后使用噬斑悬浮液重复上文的双琼脂点样方法。

[0929] 如上详述，成功地从污水和堆肥中分离出细菌噬菌体。在将样品点样到用于富集的黏质沙雷氏菌细菌的菌苔上之后，噬斑形成是清楚明显的。

[0930] 细菌噬菌体的传代、定量、和繁殖：

[0931] 使用如上分离和纯化的细菌噬菌体进行用于后续实验的噬菌体裂解物的繁殖和产生。简言之，将饱和细菌培养物稀释100倍至新鲜培养基中并生长60-120分钟以实现用于有效噬菌体感染的早期对数生长状态。将噬菌体悬浮液或裂解物添加至早期对数期培养物中并继续孵育直至观察到肉汤清除(指示噬菌体繁殖和细菌裂解)，或直至感染后直至24小时。通过以7,197xg沉淀细胞20分钟，然后通过0.45或0.2μm膜过滤上清液来收获裂解物。将过滤的裂解物储存在4℃。

[0932] 使用双琼脂点样法进行感染性噬菌体颗粒的计数。简言之，在PBS中进行1∶10稀释系列的样品，并将稀释液点样在用如上的宿主细菌制备的固化双琼脂板上。在孵育过夜后计数噬斑形成单位(PFU)以确定样品的近似滴度。

[0933] 测量细菌呼吸的分离噬菌体的体外分析：

[0934] 通过监测感染期间的氧消耗率(OCR)和细胞外酸化率(ECAR)，使用海马(Seahorse)XFe96分析仪(安捷伦公司(Agilent))测量噬菌体对细菌的作用。在实验前一天，将XFe96板通过每孔15μL的1mg/mL聚-L-赖氨酸储备液涂覆并在28℃干燥过夜，并且将XFe96探针通过放置在含有200μL的校准液(XF Calibrant)的孔中平衡并在黑暗中在室温孵育。第二天，用ddH2O洗涤用聚-L-赖氨酸涂覆的板两次。将大肠杆菌(E.coli)BL21(LB，37℃)或黏质沙雷氏菌(S.marcescens)(TSB，25℃)的饱和的过夜培养物以1∶100再次培养到相同的培养基并在30℃通风培养约2.5h。然后使用相同的培养基将培养物稀释
(O.D.600nm)至约0.02。通过以10x最终浓度将储备液稀释到SM缓冲液中并将20μL的10x溶液加载到探针板的适当注射口中来制备处理。当探针在XFe96 Flux分析仪中平衡时，将细菌板通过添加90μL细菌悬浮液或培养基对照制备并以3,000rpm旋转10分钟。离心后，将另外的90μL适当的培养基轻轻地添加至孔中，以便不干扰细菌粘附，使每孔的总体积达到180μL。

[0935] XFe96 Flux分析仪在约30℃运行，按照1∶00、0∶30、3∶00的混合、等待、读数循环。完成四个循环以允许细菌的平衡/标准化，然后注射20μL处理并如上继续循环，持续总共大约6小时。使用海马(Seahorse)XFe96 Wave软件包分析数据。

[0936] 用海马(Seahorse)XFe96分析仪，通过测量细菌的氧消耗率(OCR)和细胞外酸化率(ECAR)测定分离的细菌噬菌体的作用。当用新分离的ΦpSmVL-C1感染噬菌体T7和黏质沙雷氏菌(S.marcescens)感染大肠杆菌时，在该速率短暂爆发后观察到OCR显著降低(图64)。对于具有两种宿主生物的两种噬菌体，海马(Seahorse)测定允许检测成功的噬菌体感染而无需噬斑测定。因此，此方法适用于检测不适合传统噬菌体检测方法的宿主生物的噬菌体感染。

[0937] 用于感染鉴定的SYBR Gold转导测定：

[0938] 通过用核酸酶预处理来除去可以干扰荧光信号说明的额外病毒核酸(extraviral nucleic acid)，制备细菌噬菌体制剂用于染色。简言之，将MgCl2添加至10mL的噬菌体裂解物(10mM最终浓度)，并且添加RNA酶A(凯杰公司)和DNA酶I(西格玛公司)两者至10μg/mL的最终浓度。将样品在室温孵育1小时。核酸酶处理后，将5mL的裂解物与1μL的SYBR Gold(赛默公司(Thermo)，10,000x)合并，并且在室温孵育约1.5小时。随后使用米康(Amicon)超滤柱从样品中去除过量的染料。简言之，通过添加10mL的SM缓冲液并在5,000xg、4℃旋转5分钟来洗涤米康(Amicon)柱(15mL，10k MWCO)。然后将标记的噬菌体样品以5,000xg、4℃旋转通过柱，直至体积减少大约10倍(15-30分钟)。为了洗涤样品，将5mL SM缓冲液添加至每个贮存器并重复旋转，然后再洗涤两次。在第三次洗涤后，将保留的样品从米康(Amicon)贮存器中用移液管移出，并使用SM缓冲液使其达到大约1mL。为了除去较大的污染物，将洗涤过的和标记的噬菌体样品以10,000xg离心2分钟，随后将上清液通过0.2μm膜过滤到黑色微管中并在4℃储存。

[0939] 通过旋转1mL等分试样并用1mL PBS洗涤一次，然后使用1mL PBS最终重悬来制备饱和细菌培养物(在37℃在LB中生长的大肠杆菌(E.coli)MG1655，在26℃在TSB中生长的黏质沙雷氏菌(S.marcescens)和S.symbiotica)。通过将500μL洗涤过的细菌与1μL的SYBR Gold组合并在室温在黑暗中孵育1小时来染色阳性对照标记的细菌。将细菌通过以8,000xg旋转5分钟沉淀，并用等体积的PBS洗涤两次，然后重悬于最终体积为500μL的PBS中。将体积为25μL的染色的细菌与黑色微管中的25μL的SM缓冲液合并，向其中添加50μL的10％福尔马林(5％最终体积，约2％甲醛)并通过轻弹混合。将样品在室温固定约3小时，然后使用米康(Amicon)超滤柱洗涤。简言之，将500μL的picopure水添加至米康(Amicon)柱(0.5mL，100k MWCO)上，并以14,000xg旋转5分钟以洗涤膜。将固定的样品通过添加400μL的PBS进行稀释，然后转移至预洗涤的旋转柱并以14,000xg旋转10分钟。将柱转移到新鲜的收集管中，然后添加500μL的PBS以稀释保留在渗余物中的固定剂。随后，进行另外两次PBS稀释，总共洗涤三次。将最终的渗余物稀释至约100μL，然后将柱倒入新鲜的收集管中并以1,000xg旋转2分钟以收集样品。将洗涤过的样品转移到黑色微管中并储存在4℃。

[0940] 对于转导实验和对照，将25μL的细菌(或PBS)和25μL的SYBR Gold标记的噬菌体(或SM缓冲液)在黑色微管中合并，并在室温静置孵育15-20分钟以允许噬菌体吸附和注射到受体细菌中。孵育后立即向样品中添加50μL的10％福尔马林，并在室温下固定约4小时。如上，使用米康(Amicon)柱用PBS洗涤样品。

[0941] 细菌噬菌体核酸的注射需要噬菌体成功地感染宿主细菌细胞。用SYBR Gold标记的并与黏质沙雷氏菌共孵育的大肠杆菌噬菌体P1kc通过显微镜检查显示荧光细菌的存在，这验证了在噬菌体分离管道中测定的用途。与海马(Seahorse)测定一样，这种方法提供了传统噬菌体方法的替代方案，以允许扩增到不适合噬斑测定的生物中。另外地，SYBR Gold转导测定不需要细菌生长，因此适用于分析靶向困难或甚至不可培养的生物(包括内共生体，如布赫纳氏菌)的噬菌体。

[0942] 测试针对黑腹果蝇(Drosophila melanogaster)蝇中黏质沙雷氏菌的噬菌体的体内功效

[0943] 黏质沙雷氏菌培养物在30℃在胰蛋白酶大豆肉汤(TSB)中生长，伴随200rpm恒定振荡。

[0944] 用于饲养蝇储备的培养基是玉米粉、糖蜜和酵母培养基(11g/l酵母、54g/l黄玉米粉、5g/l琼脂、66ml/l糖蜜、和4.8ml/l丙酸)。将除丙酸外的所有饲料组分在去离子水中一起加热至80℃(伴随30分钟恒定混合)，然后冷却至60℃。然后混合进丙酸，并将50ml饲料等分到各个瓶中，并允许其冷却并固化。将蝇在26℃、16∶8 小时光照∶黑暗循环、在约60％湿度下饲养。

[0945] 为了用黏质沙雷氏菌感染蝇，将细针(约10um宽的尖端)浸入密集的过夜静止期培养物中并刺破蝇的胸腔。对于此实验，使用针穿刺法，用黏质沙雷氏菌感染10只雄性和10只雌性的四个重复，作为蝇死亡率的阳性对照。对于处理组，将四个重复(每个10只雄性和10只雌性)用黏质沙雷氏菌和含有约108个噬菌体颗粒/ml的噬菌体溶液针刺。最后，将不用针刺或没有任何处理的两个重复(每个10只雄性和10只雌性)用作死亡率的阴性对照。

[0946] 将所有条件下的蝇置于食品瓶中并在26℃、16∶8 光照∶黑暗循环、60％湿度下孵育。在针刺后每天计数活蝇和死蝇的数量，持续四天。所有用单独的黏质沙雷氏菌针刺的蝇都在治疗后24小时内死亡。相比之下，噬菌体处理组中超过60％的蝇和未经处理的对照组中的所有蝇在该时间点都存活(图65)。此外，当实验终止时，噬菌体处理组和阴性对照组中的大多数蝇继续存活四天。

[0947] 为了确定蝇死亡的原因，将来自用黏质沙雷氏菌和黏质沙雷氏菌+噬菌体两者针刺的蝇中的死蝇匀浆并铺板。将来自黏质沙雷氏菌和黏质沙雷氏菌+噬菌体处理的四个重复中的每一个的四只死蝇在100ul的TSB中匀浆。通过在TSB中稀释匀浆也产生1∶100稀释液。将10ul浓缩的匀浆以及1∶100稀释液铺板在TSA板上，并在30℃孵育过夜。在检查用于细菌生长的板时，来自死的质沙雷氏菌针刺的蝇的所有板都有在其上生长的细菌的菌苔，而来自死的黏质沙雷氏菌+噬菌体针刺的蝇的板上没有细菌。这显示在不存在噬菌体时，黏质沙雷氏菌可能在蝇中诱导感染性休克，导致其死亡。然而，在噬菌体的存在下，死亡率可能是由于用针刺引起的损伤。

[0948] 其他实施例

[0949] 尽管出于清楚理解的目的，已经通过说明和实例详细地描述了前述发明，但是描述和实例不应被解释为限制本发明的范围。本文引用的所有专利和科学文献的披露都明确地通过引用以其全文并入。