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一种抗白粉病近等基因系Brock/京4117的遗传检测方法

申请号 CN201010101921.9 申请日 2010-01-28 公开(公告)号 CN101955988A 公开(公告)日 2011-01-26
申请人 天津师范大学; 发明人 王振英; 彭永康; 刘晓颖; 陈欧; 陈宏;
摘要 本发明公开了抗白粉病近等基因系Brock/京4117配制、遗传背景的分子检测方法和与抗白粉病基因紧密连锁的分子标记P15/M14-160的核苷酸序列,属于农业生物基因工程领域。该近等基因系的获得是以抗白粉病普通小麦Brock为抗病基因供体亲本,以农艺性状优良但不抗白粉病的栽培小麦京411为轮回亲本,Brock×京411杂交后,F1再与京411连续回交7代,自交1代育成近等基因系Brock/京4117。每一次的杂交和回交,均在白粉菌胁迫下选择抗病单株。本发明用AFLP检测技术,发现有4种AFLP谱型:亲二型、偏抗病供体Brock型、偏轮回亲本京411型和交换型被检测到,它们能反映出近等基因系中双亲遗传背景。
权利要求

一种抗白粉病近等基因系Brock/京4117遗传检测方法,其特征在于包括如下步骤:1)AFLP分析参照所用接头和引物见表1;2)基因组DNA双酶切及接头连接:100×BSA 0.2μl,NEB buffer 4.0μl,Pst I(20U/μl)0.25μl,Mse I(10U/μl)0.5μl,Pst I接头(5pM)1.0μl,Mse I接头(50pM)1.0μl,T4DNAligase 0.4μl,10×T4buffer 2.0μl,DNA(100ng/μl)5.0μl,ddH2O补齐40μl。37℃条件下保温8个小时;3)预扩增:反应体系为25μL,内含1μL连接产物,0.6pmol/L引物,10×PCR缓冲液2.5μL,0.2mmol/L的dNTPs,1U Taq聚合酶。PCR扩增程序为94℃2min;94℃35S,56℃35S,72℃60S,30个循环;72℃5min。预扩增产物用1%琼脂糖电泳检测,稀释20倍保存备用;4)选择性扩增:选择性扩增体积为20μL,AFLP选扩体系:PstI接头引物(50ng/μL)0.8μL,Mse I接头引物(50ng/μL)0.8μL,10×Buffer 2.0μL,MgCl2(25mM)1.2μL,dNTP(10mM)0.45μL,TaqE(5U/μL)0.2μL,模板DNA 2.0μL,ddH2O补齐20μL;PCR扩增采用递降式方法,其程序为94℃2min:94℃35S,65℃35S,72℃30S,以后每个循环退火温度降低0.7℃,共12个循环;然后94℃35S,56℃35S,72℃,60S,30个循环;最后72℃5min。扩增在MJ Research PTC‑200型PCR仪上进行。5)扩增产物的检测:扩增产物加等量loading Buffer(98%甲酰胺;10mM EDTA(pH8.0);0.25%溴酚兰;0.25%二甲苯青),95℃变性5min,立即于冰浴待用;用6%的变性聚丙烯酰胺凝胶(含6mol/L尿素)电泳分离,银染法显示电泳图谱。6)遗传背景分析:以两个近等基因系(Brock/015//京4117;Brock/京4117)和供体亲本Brock及轮回亲本京411为材料,用表2中随机选取225对AFLP引物组合,用上述酶切连接、预扩增、选择扩增及扩增产物检测体系进行AFLP分子检测,结果有4种亲二型、偏抗病供体Brock型、偏轮回亲本京411型和交换型被检测到。

2.权利要求1所述的遗传检测方法,其中抗白粉病近等基因系Brock/京4117的配制 在于:以抗白粉病普通小麦Brock为抗病基因供体亲本,以农艺性状优良但不抗白粉病的 栽培小麦京411为轮回亲本,BrockX京411杂交,杂交组合为Brock/京411”,所得F1均 抗白粉病,用京411回交7代,自交1代育成抗白粉病近等基因系Brock/京4117;每一次的 杂交和回交,均在白粉菌胁迫下选择抗病单株。

3. 一种采用AFLP方法与抗白粉病基因紧密连锁的分子标记P15/M14-160,其碱基序列为:GCAGAAGTCGTTTACAATCAGGTCATAGTAGAAACTGTTGAAATCAAAAGGAAATGGGTGCGTGTTTTGAATTGAGACGTGTTAGTCGCTAAATCGAGGTGTCAAAGCGTCGTTCTGTTCTTATGATCGCTCGTTATGTGTTGCTGAAGAAAATGTGGTC。

说明书全文

一种抗白粉病近等基因系Brock/京41 Γ的遗传检测方法

技术领域

[0001] 本发明属于农业生物技术工程,涉及抗白粉病近等基因系配制,更具体的说是涉 及小麦Brock抗白粉病近等基因系遗传背景的分子检测与应用。技术背景
[0002] 近等基因系(Near-isogenic Lines, NIL)是由Yong等提出的,指的是遗传背景 相近,目标基因不同的一组品系(Young N D, Zamir D G, Tanksley S D. Use of isogenic lines andsimultaneoue probing to identify DNA markers tightly linked to the TM-Za gene in tomato. Genetics. 1988,120 :579_585),它可以用于基因多效性分析、目 标基因分离、基因精细定位和克隆等研究(田清震,周荣华,贾继增.小麦抗白粉病近等 基因系遗传背景的分子检测.作物学报,2004,30 (3) :205-209;张毅,李云峰,谢戎,杨正 林,钟秉强,沈福成,谭自俊,何光华.水稻小穗簇生性近等基因系的构建及其近等性评 价.作物学报,2006,32 (3) :397-401),因此,是遗传学及育种研究的珍贵材料。通过杂交 和多代回交已培育了包括抗病性在内的许多目标性状的NIL,并应用于各自的相关领域研 究中([BorbalaD, Harrach J F,Miklos P,et al. Antioxidant ethylene and membrane leakage responses topowdery mildew infection of near-isogenic barley lines with various types of resistance. European Journal of Plant Pathology.2008, 121 :21_33 ;Mumtaz S,Khan I A,Ali S,et al. Development of RAPD based markers for wheat rust resistance gene cluster(Lr37_Sr38_Yrl7)derived from Triticum ventricosum L.African Journal of Biotechnology. 2009,8(7) : 1188-1192 ;Zhu S, Walker D R,Boerma H R,et al. Effects of defoliating insectresistance QTLs and a crylAc transgene in soybean near-isogenic lines. Theoretical andApplied Genetics. 2008,116 :455_463 ;Brevis J C,Chicaiza 0,Khan I A,et al. Agronomicand quality evaluation of common wheat near-isogenic lines carrying the Leaf Rust ResistanceGene Lr47. Crop Science.2008,48,1411-1451. Zhou R H, Zhu Z D, Kong X Y,Huo N X,Tian Q Z,Li P,Jin C Y,Dong Y C,Jia J Z. Development of wheat near-isogenic lines forpowdery mildew resistance.Theoretical and Applied Genetics. 2005,110 :640_648)。但NIL的培育与选择需7_8年时间,周期长,而选择效率 的评价指标是回交代数和外观形态,这种方法容易受发育和环境条件影响,选择效率低。 分子水平上跟踪和评价NIL遗传背景,可靠性高,不受发育和环境条件制约,因此,可以提 高NIL的培育进程和选择效率。栽培小麦Brock中含有一个抗白粉病新基因(Wang Z Y, Zheng Q,Peng Y K,et al.Identification of random amplified polymorphic DNA and simple sequence repeat markerslinked to powdery mildew resistance in common wheat cultivar Brock. Plant ProductionScience,2004,7(3) :318-322 ;Wang Z Y,Zhao P,Chen H,et al. Identification of RAPDmarkers and development of SCAR markers linked to a powdery mildew resistance gene, andtheir location on chromosome inwheat cultivar Brock. Plant Production Science, 2005,8 (5) :578_585)。中国农业大学 以Brock为供体,和农业性状优良的小麦品系015杂交后,后代与优良品 种京411杂交,获 得抗白粉病的F1,与京411为轮回亲本再次杂交,后代用京411回交,并在白粉菌胁迫下选 择,配制了近等基因系Brock/015//京4117。
[0003] 本发明以Brock为抗白粉病基因供体亲本,直接和优良品种京411,通过杂交、回 交和白粉菌胁迫下的个体选择,配制了抗白粉病近等基因系Brock/京4117。并利用AFLP方 法,对本发明配制的近等基因系Brock/京4117的遗传背景进行了检测,该检测在抗白粉病 基因供体亲本Brock、轮回亲本京411和近等基因系Brock/015/京4117和Brock/京4117 之间进行。结果发现有4种AFLP谱型:“亲二型”、“偏抗病供体Brock型”、“偏轮回亲本京 411型”和“交换型”被检测到,它们能反映出近等基因系中双亲遗传背景。同时,对2对近 等基因系中与抗病基因相连锁分子标记进行了筛选,获得紧密连锁分子标记P15/M14-160。 上述对近等基因系遗传背景的检测,会使其能在抗病遗传机理研究和农业上应用发挥更好 作用。

发明内容

[0004] 本发明的目的在于用对白粉菌免疫的小麦品种Brock为抗白粉病基因供体亲本, 以农艺性状优良的品种京411为轮回亲本,配制抗白粉病近等基因系,通过AFLP检测技术, 检测近等基因系与双亲间的遗传背景,从而获得可靠的抗白粉病近等基因系,用于小麦的 抗白粉病育种、抗病基因因克隆及抗病分子机理研究。为实现上述目的,本发明提供如下的 技术方案:
[0005] 一种抗白粉病近等基因系Brock/京4117遗传检测方法,其特征在于包括如下步 骤:
[0006] DAFLP分析参照所用接头和引物见表1 ;
[0007] 表1 AFLP分析所用接头和引物
[0008]接头与引物 序列
Pst I 接头 5’ CTCGTAGACTGCGTACATGCA3’
3' CATCTGACGCATGT 5' Mse I 接头 5' GACGATGAGTCCTGAG3' 3' TACTCAGGACTCAT5' 5, GACTGCGTACATGCAG3, 预扩增引物 5’ GATGAGTCCTGAGTAA3,
[0009]5’ -GACTGCGTACATGCAG ANN 或 GNN_3;~ 5’ -GATGAGTCCTGAGTAACNN-3’
选择性扩增引物
[0010] 注:下画线部分为选择碱基,N为任意碱基A、G、T、C[0011] 2)基因组 DNA 双酶切及接头连接:100XBSA 0. 2μ 1, NEB buffer 4. 0μ 1, Pst I(20U/y 1)0. 25 μ 1, Mse I(10U/μ 1)0. 5 μ 1, Pst I 接头(5ρΜ) 1· 0 μ 1,Mse I 接头 (50ρΜ) 1· 0μ 1,Τ4 DNAligase 0. 4μ 1,10ΧΤ4 buffer 2· O μ 1,DNA(100ng/μ 1) 5· O μ 1, ddH20补齐40 μ 1。37 °C条件下保温8个小时;
[0012] 3)预扩增:反应体系为25 μ L,内含IyL连接产物,0.6pmol/L引物,IOXPCR缓冲 液 2. 5μ L,0. 2mmol/L 的 dNTPs,IU Taq 聚合酶。PCR 扩增程序为 94°C 2min ;94°C 35S,56°C 35S,72°C 60S, 30个循环;72°C 5min。预扩增产物用琼脂糖电泳检测,稀释20倍保存备用; [0013] 4)选择性扩增:选择性扩增体积为20 μ L,AFLP选扩体系:Pst I接头引物(50ng/ μ L) 0· 8 μ L,Mse I 接头引物(50ng/μ L) 0. 8 μ L, IOXBuffer 2. 0 μ LjMgCl2 (25mM) L 2 μ L, dNTP (IOmM) 0. 45 μ L, TaqE (5U/ μ L) 0· 2 μ L,模板 DNA 2. 0 μ L, ddH20 补齐 20 μ L ;PCR 扩增采 用递降式方法,其程序为94°C 2min -MV 35S,65°C 35S,72°C 30S,以后每个循环退火温度 降低 0. 7°C,共 12 个循环;然后 94°C 35S,56°C 35S, 72°C, 60S, 30 个循环;最后 72°C 5min。 扩增在MJ Research PTC-200型PCR仪上进行。
[0014] 5)扩增产物的检测:扩增产物加等量loading Buffer (98 %甲酰胺;IOmM EDTA(pH8. 0) ;0.25%溴酚兰;0. 25%二甲苯青),95°C变性5min,立即于冰浴待用;用6% 的变性聚丙烯酰胺凝胶(含6mol/L尿素)电泳分离,银染法显示电泳图谱。
[0015] 6)遗传背景分析:以两个近等基因系(Brock/015//京4117 ;Brock/京4117)和供 体亲本Brock及轮回亲本京411为材料,用表2中随机选取225对AFLP引物组合,用上述 酶切连接、预扩增、选择扩增及扩增产物检测体系进行AFLP分子检测,结果有4种亲二型、 偏抗病供体Brock型、偏轮回亲本京411型和交换型被检测到。
[0016] 表2 AFLP标记的弓丨物组合
[0017]
[0019] 本发明所述的遗传检测方法,其中抗白粉病近等基因系Brock/京4117的配制在 于:以抗白粉病普通小麦Brock为抗病基因供体亲本,以农艺性状优良但不抗白粉病的栽 培小麦京411为轮回亲本,BrockX京411杂交,杂交组合为Brock/京411”,所得F1均抗 白粉病,用京411回交7代,自交1代育成抗白粉病近等基因系Brock/京4117 ;每一次的杂 交和回交,均在白粉菌胁迫下选择抗病单株。
[0020] 本发明采用AFLP方法与抗白粉病基因紧密连锁的分子标记P15/M14-160,其碱基 序列为:
[0021] GCAGAAGTCGTTTACAATCAGGTCATAGTAGAAACTGTTGAAATCAAAAGGAAATGGGTGCGTGTTTT GAATTGAGACGTGTTAGTCGCTAAATCGAGGTGTCAAAGCGTCGTTCTGTTCTTATGATCGCTCGTTATGTGTTGC TGAAGAAAATGTGGTC。
[0022] 本发明与已有标记相比的优点和有益效果在于:
[0023] 白粉病是影响小麦生产的一种严重病害。本发明是利用对白粉菌免疫的栽培小麦 Brock为抗白粉病基因供体亲本,用农艺性状优良但对白粉菌敏感的京411为轮回亲本配 制近等基因系,并利用AFLP方法对该近等基因系的遗传背景进行了分子检测,建立安全有 效的检测方法;同时筛选到与抗白粉病基因紧密连锁的分子标记。本发明对抗白粉病栽培 小麦优良品种的选育、进一步了解小麦抗白粉病的分子遗传学机理有积极意义。因此,本发 明的研究结果在小麦育种实践及抗病理论研究上都很有价值。其优点具体归纳如下:
[0024] (1)本发明配制的小麦抗白粉病近等基因系,可以用于小麦抗白粉病新品种选育, 小麦抗白粉病分子机理研究。
[0025] (2)本研究所用材料为对15号生理小种(为混合型生理小种,为华北地区流行的 多种白粉病病菌)免疫的小麦品种,对华北地区白粉病菌具有比较广普的抗性。因此,根据 所得近等基因系有望克隆到新的白粉病抗性基因。[0026] (3)本发明用AFLP分子标记技术,对近等基因系和双亲的遗传背景进行分子检 测,得到肯定的实验结果,得到的分子标记P15/M14-160与抗白粉病新基因紧密连锁,有可 能用于生产实践。

附图说明

[0027] 图1 :近等基因系、Brock和京411对白粉病的抗性反应。其中a.京411 ;b.近等 ;基因系 Brock/015// 京 4117 ;c.近等基因系 Brock/ 京 4117 ;d. Brock。
[0028] 图2 :近等基因系及供体亲本Brock、京411的AFLP指纹。其中1.京411 2.近等基因系 Brock/015// 京 4117 ;3.近等基因系 Brock/ 京 4117 ;4. Brock
[0029] I代表“亲二型,,
[0030] II代表“偏抗病供体Brock型”
[0031] III代表“偏轮回亲本京411型”
[0032] IV代表“交换型”
[0033] 图3 =AFLPs核酸序列,其中(1)为P6/M3-166的测序结果(2)P6/M3_163的测序结 果(3)P3/M6-395的测序结果(4) P15/M14-206的测序结果(5) P13/M13-245的测序结果(6) P11/M14-206的测序结果。
[0034] 图4 :P15/M14在Brock、京411和抗、感单株中的PCR扩增结果。其中M, DL2000Marker ; 1-3 感病单株;4,Jing 411 ;5, Brock ;6-18 抗病单株。

具体实施方式

[0035] 以下结合实施例(附图、表具体说明)用来帮助理解本发明,并且不用于也不应被 解释为以任何方式对所列出的权利要求中发明的限制。特别加以说明的是,本发明所用到 的各种试剂均有市售。
[0036] 实施例1、近等基因系的配制:
[0037] 本发明近等基因系的配制:抗病基因供体亲本来自英国普通小麦品种Brock,其 与农艺性状优良但感病亲本京411进行杂交,杂交组合为“Brock/京411”,所得F1均抗 白粉病,用京411回交,在华北地区流行的白粉菌15号生理小种胁迫下,选择抗病单株,7 代后,再自交一次,获得抗白粉病近等基因系Brock/京4117。图1为京411、近等基因系 Brock/015//京4117、近等基因系Brock/京4117和Brock叶片染菌2周时比较,发现竟411 严重染菌,菌丝几乎铺满叶片,而两个近等基因系(图lb,c)和Brock叶片上未见菌斑。
[0038] 实施例2、基因组DNA的分离:
[0039] 取0.2g黄化幼苗叶片,于液氮中研磨,尽量呈粉末,迅速加入2毫升提取 Buffer (50mM Tris-HCl, ρΗ 8. O ;20mM EDTA ;50mM NaCl),轻轻混合,65°C温浴 15min,其间 颠倒混勻2-3次。0°C冰浴10分钟,0-4°C,3000转/分离心15分钟,轻取上清,加入到一新 管中,加等体积Tris-HCl (ρΗ 8. 0)饱和酚,轻轻混合。0-4°C,3000转/分离心10分钟,取上 清,加入等体积酚、氯仿-异戊醇(25 : 24 : 1)抽提,轻轻混勻。0-4°C,3000转/分离心 10分钟,取上清,加入等体积氯仿-异戊醇(25 : 24 : 1)抽提,轻轻混勻。0-4°C,3000转/ 分,离心10分钟,取上清,加2倍体积冷乙醇,_20°C沉淀1小时以上。0-4°C,12000转/分, 离心20分钟,弃上清,75 %乙醇0-4°C短暂离心,洗沉淀2次,晾干,溶于100 μ 1 TE (ρΗ8· 0)。加1 μ 1 RNase(10mg/ml),37°C保温1小时,以除去样品中的RNA0加等体积酚、氯仿,抽提 一次,0-40C,3000转/分离心10分钟。取上清,加等体积仿,抽提一次,0-40C,3000转/分 离心10分钟。取上清,加两倍体积冷乙醇,-20°C沉淀2小时以上。0-4°C,12000转/分, 离心20分钟。弃上清,75%乙醇0-4°C短暂离心,洗沉淀2次,晾干,溶于50 μ 1 TE (ρΗ8. 0) 中。分别用紫外分光光度法检测DNA样品的浓度,0. 7%的琼脂糖凝胶电泳检测DNA的完整 性。
[0040] 实施例3、遗传背景检测:
[0041] AFLP 分析参照 Vos (Vos, P.,R. Hogers, M. Bleeker, M. Reijans, T. van de Lee, Μ. Homes, A. Fri jters, J. Pot, J. Peleman, M. Kuiper, M. Zabeau. AFLP :A new technique forDNA fingerprinting. Nucleic Acids Res,1995,21 :4407_4414)等的方法进行。所用 接头和引物见表1。
[0042] 1)基因组 DNA 双酶切及接头连接:100XBSA 0. 2μ 1, NEB buffer 4. 0μ 1, Pst I(20U/y 1)0. 25 μ 1, Mse I(10U/μ 1)0. 5 μ 1, Pst I 接头(5ρΜ) 1· 0 μ 1,Mse I 接头 (50ρΜ) 1· 0μ 1,Τ4 DNAligase 0. 4μ 1,10XT4buffer 2· 0 μ 1,DNA(100ng/μ 1) 5· 0 μ 1, ddH20补齐40 μ 1。37 °C条件下保温8个小时。
[0043] 2)预扩增:反应体系为25 μ L,内含IyL连接产物,0.6pmol/L引物,10XPCR缓 冲液 2. 5 μ L,0. 2mmol/L 的 dNTPs, IU Taq 聚合酶。PCR 扩增程序为 94°C 2min ;94°C 35S, 56 0C 35S,72°C 60S, 30个循环;72°C 5min。预扩增产物用琼脂糖电泳检测,稀释20倍保存备用。
[0044] 3)选择性扩增:稀释的预扩增产物为选择性扩增模板进行AFLP分析。选择性扩增 体积为20 μ L,AFLP选扩体系:Pst I接头引物(50ng/μ L) 0. 8 μ L, Mse I接头引物(50ng/ μ L) 0· 8 μ L,10 X Buffer 2. 0 μ L, MgCl2 (25mM) 1· 2 μ L,dNTP (IOmM) 0. 45 μ L, TaqE (5U/ μ L) 0· 2 μ L,模板 DNA 2. 0 μ L,ddH20 补齐 20 μ L。
[0045] PCR扩增采用递降式方法,其程序为94°C 2min :94°C 35S,65°C 35S,72°C 30S,以后 每个循环退火温度降低0. 7°C,共12个循环;然后94°C 35S,56°C 35S,72°C,60S, 30个循环; 最后72°C5min。扩增在MJ Research PTC-200型PCR仪上进行。
[0046] 4)扩增产物的检测:扩增产物加等量loading Buffer (98 %甲酰胺;IOmM EDTA(pH8. 0) ;0.25%溴酚兰;0. 25%二甲苯青),95°C变性5min,立即于冰浴待用。用6% 的变性聚丙烯酰胺凝胶(含6mol/L尿素)电泳分离,银染法显示电泳图谱。
[0047] 5)遗传背景分析:以两个近等基因系(Brock/015//京4117 ;Brock/京4117)和供 体亲本Brock及轮回亲本京411为材料,用表2中随机选取225对AFLP引物组合,用上述 酶切连接、预扩增、选择扩增及扩增产物检测体系进行AFLP分子检测,扩增谱型的统计按 照下列方法:由引物组合P6/M3扩增出的谱带(图21),明显可以看出2对NIL中,有两条 AFLP谱带分别来自于供体亲本Brock和轮回亲本京411,这种AFLP谱型我们称其为“亲二 型”,图中箭头所指,用I表示。由引物组合P3/M6、P6/M3、P6/M6、P6/M7、P11/M14、P13/M13、 P15/M11、P15/M14、P15/M15扩增出来的AFLP谱型,表现为供体亲本Brock中存在的谱带, 在2对OTL中也均存在,在京411中均缺失,这种谱型我们称之为“偏抗病亲本Brock型”, 图中箭头所指,用II表示(图211)。而由P6/M3、P3/M6、P6/M6、P13/M13引物组合扩增到 的,特异地存在于京411和2对NIL中,在抗病亲本Brock中不存在,这类AFLP谱带我们称之为“偏轮回亲本京411型”,图中箭头所指,用III表示(图2111)。除了上述三种谱型外, 我们还看到了在亲本Brock和京411中均不存在,但在2对NIL中存在的谱带,如由 引物组 合P6/M3、P6/M6、P6/M7、P13/M13扩增出来的AFLP谱带,这种谱型我们称之为“交换型”,图 中箭头所指,用IV表示(图2IV)。
[0048] 实施例4、P15/M14-160标记的获得:
[0049] 以Brock、京411及近等基因系为材料,在表2中随机选取225对AFLP引物组合, 用上述酶切连接、预扩增、选择扩增及扩增产物检测体系进行AFLP分子筛选,结果发现有 28个引物组合出现扩增产物多态性,从聚丙烯酰胺凝胶中回收上述特异片段,分别用原来 的引物对进行二次扩增,其中8个片段获得有效扩增,将扩增产物经纯化、克隆、鉴定后送 上海生工测序。
[0050] 实施例5、P15/M14-160分子标记与抗自粉病基因的连锁性鉴定:
[0051] 根据实施例4测序结果设计特异引物,以BrockX京411 F2代183单株和两个亲 本小麦总体DNA为模板进行PCR扩增,仅引物组合P15/M14扩增的谱带与抗性基因相连锁 (图 4),扩增引物序列为 F :GCAGAAGTCGTTTACAATCAG, R :GACCACATTTTCTTCAGCAAC,产物分子 量为160bp,定名为P15/M14-160。表现为在抗病亲本Brock和BrockX京411 F2分离所 得136单株中均检测到这条谱带,而在感病的京411和47感病单株中均未出现这条谱带, 没有交换产生,说明可能这个AFLP分子标记与Brock中的抗病基因距离很近,甚至于可能 是该抗病基因中的一个片段。该分子标记在小麦抗白粉病辅助选择育种有重要价值。
[0052] 序列表
[0053] <110>天津师范大学
[0054] <120>小麦Brock抗白粉病近等基因系的分子检测与应用
[0055] <160>2
[0056] <210>1
[0057] <211>160bp
[0058] <212>DNA
[0059] <213>基因序列
[0060] <220>
[0061] <221>gene
[0062] <222>(1). . (160)
[0063] <400>1
[0064] gcagaagtcg tttacaatca ggtcatagta gaaactgttg aaatcaaaag gaaatgggtg 60
[0065] cgtgttttga attgagacgt gttagtcgct aaatcgaggt gtcaaagcgt cgttctgttc 120
[0066] ttatgatcgc tcgttatgtg ttgctgaaga aaatgtggtc 160