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一种脐带血细菌和真菌快速检测的方法

申请号 CN202310299802.6 申请日 2023-03-25 公开(公告)号 CN116218966A 公开(公告)日 2023-06-06
申请人 山东省齐鲁干细胞工程有限公司; 发明人 李永志; 贾晓鹏; 孙旭燕; 庄肃静; 马艳飞; 王歌; 王琦; 雒猛; 刘诗泽; 周芙玲;
摘要 本 发明 涉及血液快速检测方法技术领域,特别涉及一种脐带血细菌和 真菌 快速检测的方法。本发明提出的针对脐带血中细菌和真菌污染的检测方法,首先进行脐血中人源DNA去除以及去人源DNA的微量提取,再使用数字PCR方法对提取得到的微量细菌和真菌DNA进行高 精度 检测,以此实现对脐血中微量细菌和真菌的检测。
权利要求

1.一种脐带血细菌和真菌快速检测的方法,包括以下步骤:
A、进行脐血中人源DNA去除以及去人源DNA的提取,裂解细菌或真菌细胞壁,释放细菌和真菌核酸;
B、使用数字PCR方法对提取得到的细菌和真菌DNA进行检测,以此实现对脐血中微量细菌或真菌的检测,所述的细菌或真菌包括:金黄色葡萄球菌、绿假单胞菌、枯草芽孢杆菌、生孢梭菌、大肠杆菌、酿脓链球菌、藤黄微球菌、痤疮丙酸杆菌、乙型伤寒沙氏菌、卷曲乳杆菌、黑曲霉、白色念球菌。
2.根据权利要求1所述的一种脐带血细菌和真菌快速检测的方法,其特征在于,所述步骤A具体包括:
A1、用注射器将脐血在采血袋中充分混匀,取5mL样本置于15mL离心管中并做好标记;
A2、每个含5 mL血样的离心管中加2 mL 细胞裂解液,使用涡旋振荡器,震荡15s混合均匀,室温放置5 min;
A3、离心去除盖子上的液体,向15mL离心管中加入2mL 核酸释放液,然后吸取10 μL DNA酶至裂解产物中,立即涡旋震荡15 s,室温静置15 min;
A4、将样本分装入5个2 mL EP管中,每管1.8 mL;
A5、将EP管以离心12000g离心10 min,之后吸取上清液丢弃,加入200μL 清洗重悬液,震荡混匀;
A6、将五个2 mL 的EP管中重悬样本汇聚入1个2 mL 的EP管中;
A7、裂解细菌或真菌细胞壁,释放细菌或真菌核酸,完成去人源DNA的提取。
3.根据权利要求1所述的一种脐带血细菌和真菌快速检测的方法,其特征在于,所述的步骤B具体包括:
B1、体系配置;
B2、生成微滴液;
B3、对微滴液内的细菌和真菌进行数字PCR的扩增;
B4、使用生物芯片分析仪对扩增后的微滴液进行检测并进行数据分析。
4.根据权利要求3所述的一种脐带血细菌和真菌快速检测的方法,其特征在于,所述的步骤B1中,体系配置包括针对细菌16S基因和真菌18S基因的16S体系和18s体系;
所述的16s体系中,按照以下试剂比例进行体系配制:每20 μL样本含10 μL数字PCR用反应预混液,1 μL 16S检测混合液,0.5 μL 稳定剂,8.5 μL细菌核酸样本;
所述的18s体系中,按照以下试剂比例进行体系配制:每20 μL样本含5 μL 数字PCR用反应预混液,1 μL 18S检测混合液,0.6 μL酶混合液,0.4 μL,13 μL真菌核酸样本。
5.根据权利要求3所述的一种脐带血细菌和真菌快速检测的方法,其特征在于,所述的步骤B4中,进行数据分析的具体方法包括:
B41、微滴数范围值取70000‑90000,若微滴数小于50000,则数据无效;
B42、细菌样本:分析仪的荧光检测通道,线荧光值10000,拷贝数大于20则判定为阳性,小于等于20判定为阴性;
B43、真菌样本:分析仪的荧光检测通道,线荧光值10000,有阳性微滴判定为阳性,无则为阴性。

说明书全文

一种脐带血细菌和真菌快速检测的方法

技术领域

[0001] 本发明涉及血液快速检测方法技术领域,特别涉及一种脐带血细菌和真菌快速检测的方法。

背景技术

[0002] 本领域的技术方案是以培养法为主要检测方法,其原理是以细菌和真菌培养时物质变化进行检测。其中用以检测脐带血有无细菌和真菌污染的主要设备以法国梅里埃 BacT/ALERT3D240和美国BD BACTECTM FX 为主。
[0003] 但是其具有以下不足:1.设备配套检测方法检测周期长,一般为5‑7天;2.由于检测方法为培养法,对于不易培养的细菌和真菌无法进行有效培养,而导致出现假阴性结果。3.当细菌和真菌数量极少时,也会由于细菌和真菌迟滞期过长,导致在检测时间内不会出现培养过程中的指数增长阶段,而出现假阴性;4.检测样本需要16‑20 mL,体积需求较大。
[0004] 现阶段PCR技术已经广泛用于多种领域的病毒检测,但是并没有用于脐带血细菌和真菌检测。主要原因在于:1.相比于病毒,细菌和真菌的结构更为复杂,无法通过简单操作直接作为PCR模版使用。2.细菌和真菌核酸提取方法回收率并不稳定,尤其是在处理样本中细菌或真菌浓度极低的情况下,能否进行有效提取是后续能否使用PCR检测的关键。3.在提取方法能够达到微量提取的目的后,PCR检测精确度能否达到存在少量模版就完成扩增的目的。4.对于人源样本,样本内会存在大量的人源核酸,这些核酸样本会大幅度降低对细菌或真菌核酸的提取效率,同时在存在大量人源核酸的样本中,人源核酸也会竞争引探而影响检测。

发明内容

[0005] 为了解决现有技术的问题,本发明提供了一种脐带血细菌和真菌快速检测的方法,其能够提高脐血细菌和真菌检测的效率,在不需要培养的条件下,生物低浓度(细菌和真菌浓度1‑10 CFU/mL量级下)的状态下也能够进行检测,另外,也在一定程度的减少培养所需要的时间,提高了检测效率。
[0006] 本发明所采用的技术方案如下:一种脐带血细菌和真菌快速检测的方法,包括以下步骤:
A、进行脐血中人源DNA去除以及去人源DNA的提取,裂解细菌和真菌细胞壁,释放细菌和真菌核酸;
B、使用数字PCR方法对提取得到的细菌和真菌DNA进行检测,以此实现对脐血中微量细菌和真菌的检测;所述的细菌或真菌包括:金黄色葡萄球菌、绿假单胞菌、枯草芽孢杆菌、生孢梭菌、大肠杆菌、酿脓链球菌、藤黄微球菌、痤疮丙酸杆菌、乙型伤寒沙氏菌、卷曲乳杆菌、黑曲霉、白色念球菌。
[0007] 优选的,步骤A具体包括:A1、用注射器将脐血在采血袋中充分混匀,取5mL样本置于15mL离心管中并做好标记;
A2、每个含5 mL血样的离心管中加2 mL 细胞裂解液,使用涡旋振荡器,震荡15s混合均匀,室温放置5 min;
A3、离心去除盖子上的液体,向15mL离心管中加入2mL 核酸释放液,然后吸取10 μLDNA酶至裂解产物中,立即涡旋震荡15 s,室温静置15 min;
A4、将样本分装入5个2 mL EP管中,每管1.8 mL;
A5、将EP管以离心12000g离心10 min,之后吸取上清液丢弃,加入200μL 清洗重悬液,震荡混匀;
A6、将五个2 mL EP管中重悬样本汇聚入1个2 mL EP管中;
A7、裂解细菌和真菌细胞壁,释放细菌和真菌核酸,完成去人源DNA的提取。
[0008] 优选的,步骤B具体包括:B1、体系配置;
B2、生成微滴液;
B3、对微滴液内的细菌和真菌进行数字PCR的扩增;
B4、使用生物芯片分析仪对扩增后的微滴液进行检测并进行数据分析。
[0009] 步骤B1中,体系配置包括针对细菌16s基因和真菌18s基因的16s体系和18s体系。
[0010] 所述的16s体系中,按照以下试剂比例进行体系配制。每个样本含10 μL数字PCR用反应预混液,1 μL 16s检测混合液,0.5 μL 稳定剂,8.5 μL细菌核酸样本,总计20 μL。
[0011] 所述的18s体系中,按照以下试剂比例进行体系配制。每个样本含5 μL 数字PCR用反应预混液,1 μL 18s检测混合液,0.6 μL酶混合液,0.4 μL,13 μL真菌核酸样本,总计20 μL。
[0012] 步骤B4是使用MicroDrop‑100B生物芯片分析仪中进行检测,数据分析软件为QuantDrop。
[0013] 优选的,步骤B4中,进行数据分析的具体方法包括:B41、微滴数范围值取70000‑90000,若微滴数小于50000,则数据无效;
B42、细菌样本:分析仪的荧光检测通道,线荧光值10000,拷贝数大于20则判定为阳性,小于等于20判定为阴性;
B43、真菌样本:分析仪的荧光检测通道,线荧光值10000,有阳性微滴判定为阳性,无则为阴性。
[0014] 本发明提供的技术方案带来的有益效果是:本发明主要是提供一种针对脐带血中细菌和真菌污染的检测方法。首先进行脐血中人源DNA去除以及去人源DNA的微量提取,再使用数字PCR方法对提取得到的微量细菌和真菌DNA进行高精度检测,以此实现对脐血中微量细菌和真菌的检测。本发明的检测方法时间显著小于培养法时间。
[0015] 除上述有益效果外,本发明还具有以下特点:1、检测所需时间更短。相较于培养法5‑7天出结果,本发明可以在9小时内完成检测(核酸提取约4h,数字PCR检测约4.5h)。
[0016] 2、本发明无需培养法的增菌过程,不会出现因细菌或真菌难以培养或增殖较慢而出现无法检出的情况。检测方法基于数字PCR对细菌和真菌核酸进行检测。
[0017] 3、样本需求量小。培养法检测需要对需和厌氧两个培养瓶进行加样,总样本量在16‑20 mL,本方法样本量仅需要5mL。
[0018] 4、该方法检出限为1‑2 CFU/mL。在低浓度(1‑2 CFU/mL)下,检测稳定性高于培养法。
[0019] 5、实现了对脐血体系内的微量细菌和真菌的核酸提取。通过对人源样本的去除的相关改良,以及细菌和真菌同时进行微量提取,完成了在脐血体系内对微量细菌和真菌的核酸提取。
[0020] 6、实现了使用数字PCR方法对存在人源核酸样本的细菌和真菌核酸体系检测。相较于q‑PCR和传统PCR方法,数字PCR通过对样本体系的拆分减少了人源核酸对检测的影响,最终达到检测目的。
[0021] 7、通过对数据分析方法的改良,在实现极低浓度检测的同时,将假阳性样本控制在合理范围内。附图说明
[0022] 为了更清楚地说明本发明实施例中的技术方案,下面将对实施例描述中所需要使用的附图作简单地介绍,显而易见地,下面描述中的附图仅仅是本发明的一些实施例,对于本领域普通技术人员来讲,在不付出创造性劳动的前提下,还可以根据这些附图获得其他的附图。
[0023] 图1为本发明的一种脐带血细菌和真菌快速检测的方法中,伤寒沙门氏菌的检测效果示意图;图2为本发明的一种脐带血细菌和真菌快速检测的方法中,大肠杆菌检测的效果对比示意图。

具体实施方式

[0024] 为使本发明的目的、技术方案和优点更加清楚,下面将结合附图对本发明实施方式作进一步地详细描述。实施例
[0025] 本实施例提供一种脐带血细菌和真菌快速检测的方法,包含以下过程:一、从脐血中提取去人源基因组DNA
核酸提取部分使用sepsiTest检测试剂盒进行脐血中人源DNA去除以及去人源DNA的微量提取。
[0026] 具体步骤如下:1、用20 mL注射器在采血袋中将脐带血血样充分混匀,取5mL样本置于15 mL离心管并做好标记。
[0027] 2、每个含5 mL血样的离心管中加2 mL 细胞裂解液,全速旋涡震荡15s混合均匀。室温放置5 min。
[0028] 3、短暂离心以去除盖子上的液体,向15mL离心管中加入2mL 核酸释放液,然后吸取10 μL DNA酶至裂解产物中,立即涡旋震荡15 s,室温静置15 min。将样本分装入5个2 mL EP管中,每管1.8 mL。
[0029] 4、将EP管以离心力12000g离心10 min,之后轻轻吸取上清液丢弃加入200μL 清洗重悬液,震荡混匀。并将五个2 mL EP中重悬样本汇聚入1个2 mL EP管中。
[0030] 5、后续操作与试剂盒说明书一致。裂解细菌或真菌细胞壁,释放细菌或真菌核酸,完成全基因组提取。
[0031] 本步骤中的方法可以在大部分超速离心机上实现。以较少的操作步骤和效率达成5mL体系下进行核酸提取的目的。试剂原本的使用方法存在混匀不够充分,导致脐血中红细胞裂解不完全,而沉降在离心管下部,影响去除效果。通过此步骤,在转移过程中进一步混匀,使人源核酸去除更充分。
[0032] 二、数字PCR检测去人源基因组DNAPCR检测阶段使用广东永诺医疗科技有限公司细菌16s基因核酸检测试剂盒、真菌
18s基因核酸检测试剂盒,针对细菌16s基因和真菌18s基因进行d PCR扩增,并使用配套检测仪器进行检测。
[0033] 具体步骤如下:1、体系配制,参考试剂盒中体系及试剂比例进行体系配制。
[0034] 16s体系中,按照以下试剂比例进行体系配制。每个样本含10 μL数字PCR用反应预混液,1 μL 16s检测混合液,0.5 μL 稳定剂,8.5 μL细菌核酸样本,总计20 μL。
[0035] 18s体系中,按照以下试剂比例进行体系配制。每个样本含5 μL 数字PCR用反应预混液,1 μL 18s检测混合液,0.6 μL酶混合液,0.4 μL水,13 μL真菌核酸样本,总计20 μL。
[0036] 2、微液滴生成按照试剂盒使用说明进行微滴生成。
[0037] PCR扩增使用广东永诺医疗科技有限公司基因扩增仪(型号:P100),扩增程序如下:
50 ℃ 2 min;95 ℃,10 min;95 ℃ 30 s,60 ℃ 1 min,循环45次;98 ℃ 10 min;16 ℃维持。设置热盖温度105℃,样本体积50μL,升降温速率1℃/s
(4)微液滴检测:
使用MicroDrop‑100B生物芯片分析仪中进行检测。数据分析软件为QuantDrop,按照使用说明进行使用。使用该仪器的优势:
1、微滴生成采用油包水乳化微滴技术,在微管道中利用气压驱动,2 min生成数万个微滴,效率更高。
[0038] 2、微滴生成芯片为高精度微流控芯片设计,可同时处理8个样本。
[0039] 3、理论单个样本微滴总数100,000个,实际检测过程中约为70,000‑90,000微滴数,精密度和准确性更高。
[0040] (5)数据分析试剂盒原有方法通过阳性微滴是否存在进行数据分析,由于体系中存在生产菌的核酸残留,导致原有分析方法下存在极大的假阳性险,无法满足检测需求。通过大量数据分析整理,统计空白组拷贝数的相关数据,最终通过改良后分析方法可以达成检测需求,假阳性样本也出于可接受范围。
[0041] 本实施例的分析方式具体如下:1、微滴数范围为70000‑90000,若微滴数小于50000,则数据无效。通常是由于加样异常,未加入稳定剂;微滴生成异常,液相或油相为完全用于微滴生成,或未加入密封剂
PCR温度异常或取出样本时温度过高,导致微滴破裂;生物芯片分析仪故障,液路堵塞。
[0042] 2、细菌样本:通道一(FAM),判定线荧光值10000,拷贝数大于20判定为阳性,小于等于20判定为阴性。
[0043] 3、真菌样本:通道一(FAM),判定线荧光值10000,有阳性微滴判定为阳性,无则为阴性。
[0044] 一、本发明的快速检测方法可检出细菌或真菌种类包括:金黄色葡萄球菌、铜绿假单胞菌、枯草芽孢杆菌、生孢梭菌、大肠杆菌、酿脓链球菌、藤黄微球菌、痤疮丙酸杆菌、乙型伤寒沙门氏菌、卷曲乳杆菌、黑曲霉、白色念球菌。总计12种。
[0045] 如附图1所示,以伤寒沙门氏菌为例,分别在0CFU/mL,1‑2 CFU/mL,5‑10 CFU/mL下进行检测,证明此方法可以完成沙门氏菌检测。
[0046] 同理检测其他细菌或真菌种类,汇总得知此方法可以检测所需检出的12种细菌或真菌。
[0047] 二、快速检测方法检出限通过六次重复实验,金黄色葡萄球菌等前文提及12种微生物检测限为1‑2 CFU/mL。
[0048] 如附图2所示,以大肠杆菌为例,在1‑2 CFU/mL下,本发明的发明方法和培养法性能对比。
[0049]
[0050] 其他细菌或真菌种类使用相同检测方法,每种细菌或真菌在1‑2CFU/mL浓度下分别用发明方法和培养法进行检测,进行六次重复,以此确定发明方法检测限及两种方法在低浓度下的检出效率。
[0051] 以上所述仅为本发明的较佳实施例,并不用以限制本发明,凡在本发明的精神和原则之内,所作的任何修改、等同替换、改进等,均应包含在本发明的保护范围之内。